تم دعم هذا العمل من قبل مؤسسة علم الأعصاب في مستشفى ملبورن الملكي (A2087).

تمت الموافقة على هذه الدراسة من قبل لجنة فلوري لأخلاقيات (جامعة ملبورن ، رقم 22-025UM) وفقا للقانون الأسترالي لرعاية واستخدام للأغراض العلمية. تم استخدام C57BL / 6 ذكور الفئران (8 أسابيع) ، التي تم الحصول عليها من مركز الموارد الحيوانية (أستراليا) ، في هذه الدراسة.
1. تصميم وتصنيع الكواليس
ملاحظة: لوحة PCB الأمامية عبارة عن لوحة مدمجة رباعية الطبقات مقاس 14 مم × 12 مم مصممة لتوضع مباشرة على رأس. يستخدم شريحة مكبر صوت تجارية (انظر جدول المواد) ، وجميع ملفات التصميم و Gerber متاحة عبر الإنترنت (رابط GitHub: https://github.com/dechuansun/Intan-headstage/tree/main/pcbway).
<ol><li>تقديم المواصفات التالية للشركة المصنعة: سمك اللوح: 0.6 مم ؛ الحد الأدنى للتتبع / التباعد: 4 مل ؛ الحد الأدنى لحجم الثقب: 0.2 مم.</li>
	<li>أثناء عملية تجميع ثنائي الفينيل متعدد الكلور ، اتبع هذا الترتيب:<ol><li>قم بلحام شريحة مكبر الصوت على اللوحة باستخدام مسدس الهواء الساخن المحدد على 350 درجة مئوية.</li>
		<li>لحام المكونات السلبية.</li>
		<li>قم بلحام موصل SPI وموصل القطب (انظر جدول المواد).</li>
	</ol></li>
	<li>افحص اللحام تحت المجهر لضمان الجودة. ثبت موصل SPI في مكانه باستخدام الإيبوكسي لمزيد من الثبات.</li>
	<li>استخدم برنامج تسجيل تابع لجهة خارجية ولوحة تحكم (انظر جدول المواد) للحصول على الإشارة. راجع دليل مستخدم البرنامج للحصول على إرشادات مفصلة.</li>
	<li>تدعم مرحلة الرأس المصممة 8 قنوات. في البرنامج ، قم بتمكين القنوات 8 و 9 و 12 و 13 و 20 و 21 و 22 و 23 للتسجيل.</li>
</ol>2. تصنيع القطب
<ol><li>قطع أسلاك التنغستن المطلية ب PFA (انظر جدول المواد) إلى أطوال محددة لأنواع الأقطاب المختلفة: قطب قشرة الفص الجبهي (12 مم) ، قطب الحصين (10 مم) ، والقطب الأرضي (6 مم).</li>
	<li>قطع الأنبوب النحاسي (انظر جدول المواد) إلى شرائح 3 مم.</li>
	<li>قم بإزالة 2 مم من الطلاء في نهاية كل سلك باستخدام أخف وزنا ، ثم قم بلحام سلك القطب بإحكام بالأنبوب النحاسي. يبلغ قطر الأنبوب النحاسي 0.45 مم وقطره الخارجي 0.60 مم.</li>
	<li>بالنسبة للقطب الأرضي ، قم بلحام برغي من الفولاذ المقاوم للصدأ M1.2 (انظر جدول المواد) بالقطب. ضع التدفق القائم على حمض الفوسفوريك على المسمار لتعزيز اللحام. بعد اللحام ، قم بتنظيف المسمار باستخدام الكحول. ملاحظة: ارتد قفازات للحماية أثناء عملية اللحام.</li>
</ol>3. الإجراء الجراحي
<ol><li>تخدير الفأر في غرفة التخدير مع 3٪ إيزوفلوران و 1 لتر / دقيقة تدفق الأكسجين.</li>
	<li>ضع الماوس المخدر على وسادة تدفئة وقم بتثبيته في إطار مجسم (انظر جدول المواد).</li>
	<li>ضبط معدل صيانة الأيزوفلوران إلى 2.5-3٪ وتقليل تدفق الأكسجين إلى 500 مل / دقيقة. باستخدام قرصة إصبع القدم ، تحقق مما إذا كان لا يزال تحت التخدير العميق.</li>
	<li>حقن كاربروفين تحت الجلد بمعدل 0.5 ملغ/كغ وتطبيق مرهم العين لحماية العين.</li>
	<li>حلق وتعقيم رأس الفأر باستخدام البوفيدون اليود و 80 ٪ من الإيثانول.</li>
	<li>قم بعمل شق 8 مم على طول خط الوسط لفروة الرأس ، وإزالة النسيج الضام في منطقة الشق.</li>
	<li>ضع بيروكسيد الهيدروجين لتنظيف سطح الجمجمة ، مع الحرص على عدم لمس الجلد المحيط.</li>
	<li>قم بمحاذاة معالم bregma و lambda إلى نفس المستوى لوضع القطب بدقة (bregma و lambda هما المكان الذي يتقاطع فيه الخيط السهمي مع الغرز الإكليلية و lambdoid ).</li>
	<li>ثقوب للقطب الكهربي المرجعي/الأرضي، ومسامير التثبيت (نتوء الحفر 0.9 مم)، والأقطاب الكهربائية النشطة (نتوءات الحفر 0.3 مم) عند الإحداثيات المحددة.</li>
	<li>قم بتوصيل القطب الكهربائي المصنوع خصيصا (الخطوة 2) بذراع الإطار التجسيمي وتأكد من أنه عمودي على الدماغ.</li>
	<li>زرع القطب في منطقة الحصين CA1 (AP - 1.8 مم ، ML - 1.3 مم ، DV - 1.4 مم). ملاحظة: AP ، الأمامي الخلفي ؛ ML ، متوسط الجانب. DV ، الظهرية البطنية.</li>
	<li>كرر زرع القطب في قشرة الفص الجبهي (AP - 2.0 مم ، ML - 0.3 مم ، DV - 1.7 مم).</li>
	<li>قم بتأمين الأقطاب الكهربائية باستخدام مادة لاصقة قوية وأسمنت أسنان قوي متوفر تجاريا (انظر جدول المواد).</li>
	<li>قم بزرع اثنين من مسامير التثبيت مقاس 1.2 مم (AP - 1.8 مم ، ML -1.6 مم) لمنع الحركة.</li>
	<li>ضع القطب المرجعي / الأرضي على اتصال مباشر مع الأم الجافية ، 2 مم خلفي و 2 مم أحادي الجانب لمعلم لامدا.</li>
	<li>قم بتوصيل جانب الأنبوب النحاسي للأقطاب الكهربائية بموصل مقبس متعدد القنوات (انظر جدول المواد) مع وجود القطب الأرضي في المنتصف.</li>
	<li>استخدم أنابيب الانكماش الحراري 0.8 مم على السطح الخارجي للدبوس الأوسط للعزل.</li>
	<li>قم بتأمين الأقطاب الكهربائية ومسامير التثبيت والموصل بمادة لاصقة وأسمنت أسنان.</li>
</ol>4. رعاية ما بعد الجراحة
<ol><li>لتخفيف آلام ما بعد الجراحة ، يتم حقن كاربروفين بجرعة 5-10 مجم / كجم تحت الجلد كل 12-24 ساعة بناء على تقييم الألم لمدة ثلاثة أيام.</li>
	<li>تزويد بفترة نقاهة لمدة أسبوع قبل البدء في أي تسجيل أو إجراءات تجريبية.</li>
</ol>5. إجراء التسجيل
<ol><li>تعامل مع لمدة 15 دقيقة ، مرتين يوميا ، لمدة ثلاثة أيام متتالية.</li>
	<li>التقط الفئران عن طريق إغلاق اليد حولها برفق دون الضغط المفرط.</li>
	<li>ضع لوح الكواليس على رأس لمدة 30 دقيقة مرة واحدة يوميا لمدة ثلاثة أيام متتالية.</li>
	<li>في يوم التسجيل ، تأقلم مع غرفة التسجيل لمدة 30 دقيقة.</li>
	<li>ضع في غرفة تسجيل صغيرة داخل قفص فاراداي لتقليل التداخل الكهربائي الخارجي. قم بتوصيل المسرح المخصص للتسجيل.</li>
	<li>افتح برنامج التسجيل وحدد معدل أخذ عينات 2.00 كيلو هرتز. قم بتعطيل جميع القنوات باستثناء 13 و 20 عن طريق تحديد كل قناة والضغط على شريط المسافة.</li>
	<li>في نافذة النطاق الترددي للأجهزة ، اضبط النطاق الترددي السفلي على 2 هرتز وعرض النطاق الترددي العلوي على 100 هرتز.</li>
	<li>في نافذة تصفية البرامج ، اضبط مرشح الترددات المنخفضة على 100 هرتز ومرشح الترددات العالية على 2 هرتز.</li>
	<li>اختر مسار التخزين بالنقر فوق تحديد اسم الملف ، ثم انقر فوق تسجيل.</li>
	<li>ابدأ كل جلسة تسجيل بفترة تعود مدتها 10 دقائق متبوعة بتسجيل تخطيط كهربية الدماغ الأساسي لمدة 15 دقيقة.</li>
	<li>بعد التسجيل الأساسي، يتم تطبيق الدواء عن طريق الحقن داخل الصفاق والاستمرار في التسجيل لمدة 30 دقيقة إضافية دون تأخير. ملاحظة: راجع قسم النتائج للحصول على تفاصيل حول الأدوية المستخدمة.</li>
</ol>

تسجيل LFP في دماغ الفأر للبحث المعرفي وتحليل المخدرات

<ol>
	<li>Einevoll, G. T., Kayser, C., Logothetis, N. K., Panzeri, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Modelling+and+analysis+of+local+field+potentials+for+studying+the+function+of+cortical+circuits.">Modelling and analysis of local field potentials for studying the function of cortical circuits.</a> Nat Rev Neurosci. 14 (11), 770-785 (2013).</li><li>Buzsaki, G., Anastassiou, C. A., Koch, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+origin+of+extracellular+fields+and+currents-EEG,+ECOG,+LFP+and+spikes.">The origin of extracellular fields and currents-EEG, ECOG, LFP and spikes.</a> Nat Rev Neurosci. 13 (6), 407-420 (2012).</li><li>Sigurdsson, T., Stark, K. L., Karayiorgou, M., Gogos, J. A., Gordon, J. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Impaired+hippocampal-prefrontal+synchrony+in+a+genetic+mouse+model+of+schizophrenia.">Impaired hippocampal-prefrontal synchrony in a genetic mouse model of schizophrenia.</a> Nature. 464 (7289), 763-767 (2010).</li><li>Witton, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Disrupted+hippocampal+sharp-wave+ripple-associated+spike+dynamics+in+a+transgenic+mouse+model+of+dementia.">Disrupted hippocampal sharp-wave ripple-associated spike dynamics in a transgenic mouse model of dementia.</a> J Physiol. 594 (16), 4615-4630 (2016).</li><li>Englot, D. J., Konrad, P. E., Morgan, V. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Regional+and+global+connectivity+disturbances+in+focal+epilepsy,+related+neurocognitive+sequelae,+and+potential+mechanistic+underpinnings.">Regional and global connectivity disturbances in focal epilepsy, related neurocognitive sequelae, and potential mechanistic underpinnings.</a> Epilepsia. 57 (10), 1546-1557 (2016).</li><li>Pievani, M., De Haan, W., Wu, T., Seeley, W. W., Frisoni, G. B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Functional+network+disruption+in+the+degenerative+dementias.">Functional network disruption in the degenerative dementias.</a> Lancet Neurol. 10 (9), 829-843 (2011).</li><li>Sigurdsson, T., Duvarci, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Hippocampal-prefrontal+interactions+in+cognition,+behavior+and+psychiatric+disease.">Hippocampal-prefrontal interactions in cognition, behavior and psychiatric disease.</a> Front Syst Neurosci. 9, 190 (2015).</li><li>Sun, D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Effects+of+antipsychotic+drugs+and+potassium+channel+modulators+on+spectral+properties+of+local+field+potentials+in+mouse+hippocampus+and+pre-frontal+cortex.">Effects of antipsychotic drugs and potassium channel modulators on spectral properties of local field potentials in mouse hippocampus and pre-frontal cortex.</a> Neuropharmacology. 191, 108572 (2021).</li><li>Bokil, H., Andrews, P., Kulkarni, J. E., Mehta, S., Mitra, P. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Chronux:+A+platform+for+analyzing+neural+signals.">Chronux: A platform for analyzing neural signals.</a> J Neurosci Methods. 192 (1), 146-151 (2010).</li><li>Bozkurt, A., Lal, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Low-cost+flexible+printed+circuit+technology+based+microelectrode+array+for+extracellular+stimulation+of+the+invertebrate+locomotory+system.">Low-cost flexible printed circuit technology based microelectrode array for extracellular stimulation of the invertebrate locomotory system.</a> Sens Actuator A Phys. 169 (1), 89-97 (2011).</li><li>Du, P., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=High-resolution+mapping+of+in+vivo+gastrointestinal+slow+wave+activity+using+flexible+printed+circuit+board+electrodes:+Methodology+and+validation.">High-resolution mapping of in vivo gastrointestinal slow wave activity using flexible printed circuit board electrodes: Methodology and validation.</a> Ann Biomed Eng. 37, 839-846 (2009).</li><li>JoVE Science Education Database. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Neuroscience.+Histological+Staining+of+Neural+Tissue.">Neuroscience. Histological Staining of Neural Tissue.</a> JoVE. , (2023).</li></ol>

ليس لدى المؤلفين ما يكشفون عنه.

يحدد البروتوكول المقدم هنا إجراءات بناء مرحلة رئيسية مخصصة مصممة خصيصا للتسجيل المتزامن لإمكانات المجال المحلي المزدوج (LFPs) في الحصين (HIP) وقشرة الفص الجبهي (PFC). توفر الخطوات التفصيلية الواردة في هذا البروتوكول معلومات كافية للباحثين لفحص اتصالات الإشارة بدقة داخل كل منطقة وبين HIP و PFC.
<p...

تشير إمكانات المجال المحلي (LFPs) إلى النشاط الكهربائي المسجل من الفضاء خارج الخلية ، مما يعكس النشاط الجماعي لمجموعة موضعية من الخلايا العصبية. وهي تظهر مجموعة متنوعة من الترددات ، تمتد من الموجات البطيئة عند 1 هرتز إلى التذبذبات السريعة عند 100 هرتز أو 200 هرتز. ارتبطت نطاقات تردد محددة بالوظائف المعرفية مثل التعلم والذاكرة واتخاذ القرار 1,2. تم استخدام التغييرات في خصائص LFP كمؤشرات حيوية لمختلف الاضطرابات العصبية ، بما في ذلك الخرف والفصام3،4. يمكن أن يقدم تحليل تسجيلات LFP رؤى قيمة حول الآليات المرضية الأساسية المرتبطة بهذه الحالات والاستراتيجيات العلاجية المحتملة.
تسجيل LFP المزدوج هو تقنية تستخدم لقياس النشاط الكهربائي الموضعي داخل وبين منطقتين محددتين من الدماغ. توفر هذه التقنية فرصة ثمينة للتحقيق في الديناميات العصبية المعقدة واتصالات الإشارات التي تحدث داخل وبين مناطق الدماغ المتميزة. كشفت الدراسات السابقة أن اكتشاف التغيرات في الخصائص العصبية لمناطق الدماغ الفردية يمكن أن يكون معقدا ، ولكن يمكن ملاحظة التغيرات في التواصل القشري بين الأقاليم 5,6. لذلك ، يوفر استخدام تسجيل LFP المزدوج وسيلة قوية لمعالجة هذه المشكلة.
يلعب اتصال الحصين والفص الجبهي دورا حاسما في تعديل الوظائف المعرفية ، وقد تم ربط الخلل الوظيفي باضطرابات عصبية مختلفة 7,8. يمكن أن توفر تسجيلات الأقطاب الكهربائية المزدوجة لهذه المناطق معلومات حول هذه التفاعلات. لسوء الحظ ، هناك معلومات محدودة متاحة حول طرق إجراء تسجيلات LFP ذات القطب المزدوج بين هذه المناطق. علاوة على ذلك ، فإن أجهزة التسجيل المتاحة تجاريا باهظة الثمن بشكل عام وتفتقر إلى القدرة على التكيف مع تصميمات تجريبية محددة. تتضمن الطريقة التقليدية لتسجيل LFPs استخدام كابل محمي لتوصيل جهاز التسجيل بأقطاب كهربائية مزروعة في دماغ. ومع ذلك ، فإن هذا النهج عرضة لآثار الحركة والضوضاء البيئية ، مما يؤثر على جودة وموثوقية الإشارات المسجلة.
يصف هذا البروتوكول إجراء شاملا لإجراء تسجيلات LFP ثنائية القطب في قرن آمون الفأر وقشرة الفص الجبهي ، باستخدام مقدمة منخفضة التكلفة مصممة خصيصا يمكن وضعها على رأس. تمكن هذه الطرق الباحثين من التحقيق في أنماط التذبذب الخاصة بالمنطقة داخل منطقتين دماغيتين منفصلتين واستكشاف تبادل المعلومات بين الأقاليم والاتصال بين هذه المناطق.

<table border="1" fo:keep-together.within-page="1" fo:keep-with-next.within-page="always">
	<tbody>
		<tr>
			<td>Brass tube&#160;</td>
			<td>Albion Alloys, USA</td>
			<td>Inside diameter of 0.45 mm</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Carprofen&#160;</td>
			<td>Rimadyl, Pfizer Animal Health&#160;</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Commercial amplifier chip</td>
			<td>Intantech</td>
			<td>RHD 2132</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Control board</td>
			<td>Intantech</td>
			<td>RHD recording system</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Dental cement&#160;</td>
			<td>Paladur</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Heat shrinks</td>
			<td>Panduit</td>
			<td>0.8 mm diameter</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>M1.2 stainless steel screw</td>
			<td>Watch tools</td>
			<td>Clock and watch screw</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Multichannel socket connector&#160;</td>
			<td>Harwin, AU</td>
			<td>1.27 mm pitch, PCB socket</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>PFA-coated tungsten wires&#160;</td>
			<td>A-M SYSTEMS, USA</td>
			<td>Inside diameter of 150 &#181;m&#160;</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Phosphoric acid-based flux</td>
			<td>Chip Quik</td>
			<td>CQ4LF-0.5</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Recording software</td>
			<td>Intantech</td>
			<td>RHX recording software</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Stereotactic Frame</td>
			<td>World Precision Instruments</td>
			<td>Mouse stereotactic instrument</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Super glue</td>
			<td>UHU</td>
			<td>Ultra fast</td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

dual extracellular recordings in the mouse hippocampus and prefrontal cortex

تقنية تسجيل إمكانات المجال المحلي (LFPs) هي طريقة فيزيولوجية كهربية تستخدم لقياس النشاط الكهربائي لمجموعات الخلايا العصبية الموضعية. إنه بمثابة أداة حاسمة في البحث المعرفي ، لا سيما في مناطق الدماغ مثل الحصين وقشرة الفص الجبهي. وتكتسي تسجيلات LFP المزدوجة بين هذه المناطق أهمية خاصة لأنها تسمح باستكشاف اتصالات الإشارات الأقاليمية. ومع ذلك ، نادرا ما يتم وصف طرق إجراء هذه التسجيلات ، ومعظم أجهزة التسجيل التجارية إما باهظة الثمن أو تفتقر إلى القدرة على التكيف لاستيعاب تصميمات تجريبية محددة. تقدم هذه الدراسة بروتوكولا شاملا لإجراء تسجيلات LFP ثنائية القطب في قرن آمون الفأر وقشرة الفص الجبهي للتحقيق في آثار الأدوية المضادة للذهان ومعدلات قناة البوتاسيوم على خصائص LFP في هذه المناطق. تتيح هذه التقنية قياس خصائص LFP ، بما في ذلك أطياف الطاقة داخل كل منطقة دماغية والتماسك بين الاثنين. بالإضافة إلى ذلك ، تم تطوير جهاز تسجيل منخفض التكلفة ومصمم خصيصا لهذه التجارب. باختصار ، يوفر هذا البروتوكول وسيلة لتسجيل الإشارات ذات نسب الإشارة إلى الضوضاء العالية في مناطق مختلفة من الدماغ ، مما يسهل التحقيق في اتصالات المعلومات بين الأقاليم داخل الدماغ.

Local field potentials (LFPs) refer to the electrical activity recorded from the extracellular space, reflecting the collective activity of a localized group of neurons. They exhibit a diverse range of frequencies, spanning from slow waves at 1 Hz to fast oscillations at 100 Hz or 200 Hz. Specific frequency bands have been associated with cognitive functions such as learning, memory, and decision making1,2. Changes in LFP properties have been used as biomarkers for various neurological disorders, including dementia and schizophrenia3,4. Analyzing LFP recordings can offer valuable insights into the underlying pathological mechanisms associated with these conditions and potential therapeutic strategies.
Dual LFP recording is a technique used to measure localized electrical activity within and between two specific brain regions. This technique provides a valuable opportunity to investigate the intricate neural dynamics and signal communication occurring within and between distinct brain regions. Prior studies have revealed that detecting alterations in the neuronal properties of individual brain regions can be complex, but changes in interregional cortical communication can be observed5,6. Therefore, the utilization of dual LFP recording offers a potent means to address this issue.
Hippocampal-prefrontal connectivity plays a crucial role in modulating cognitive functions, and dysfunction has been linked to various neurological disorders7,8. Dual electrode recordings of these regions can provide information about these interactions. Unfortunately, there is limited information available on methods for performing dual electrode LFP recordings between these areas. Moreover, commercially available recording devices are generally expensive and lack adaptability to specific experimental designs. The conventional method for recording LFPs involves using a shielded cable to connect the recording device to electrodes implanted in an animal's brain. However, this approach is susceptible to motion artifacts and environmental noise, impacting the quality and reliability of the recorded signals.
This protocol describes a comprehensive procedure for performing dual-electrode LFP recordings in the mouse hippocampus and prefrontal cortex, using a low-cost custom-designed headstage that can be placed on the animal's head. These methods enable researchers to investigate region-specific oscillatory patterns within two discrete cerebral regions and explore interregional information exchange and connectivity between these areas.

تسليط الضوء على المؤلف: دراسة تأثيرات الأدوية على إشارات الدماغ باستخدام بروتوكول تسجيل LFP المزدوج في الفئران

تسجيلات مزدوجة خارج الخلية في الحصين الفأر وقشرة الفص الجبهي

This study presents a comprehensive protocol for performing dual-electrode LFP recordings in the mouse hippocampus and the prefrontal cortex to investigate the effects of drugs on LFP properties in these areas. This protocol provides a low-cost and ultra-light brain signal recording device that is fully optimized for cognitive research in mice. This study provides a means to record signals with high signal-noise ratios in different brain regions, facilitating the investigation of interregional information communication within the brain.

توضح النتائج الموضحة هنا تأثيرات العديد من الأدوية على خصائص إمكانات المجال المحلي (LFPs) التي تم اختبارها في أربع مجموعات من الفئران الذكور C57BL / 6 (ن = 8 لكل مجموعة ؛ العمر: 8 أسابيع ؛ الوزن: 24.0 ± 0.42 جم). تضمنت الأدوية التي تم اختبارها عقار كلوزابين المضاد للذهان ، ومعدلات قناة البوتاسيوم 4-أمينو?...

Watch this Scientific Journal Video about Dual Extracellular Recordings in the Mouse Hippocampus and Prefrontal Cortex at JoVE.com

يحدد هذا البروتوكول استخدام جهاز تسجيل وأقطاب كهربائية مصممة خصيصا لتسجيل إمكانات المجال المحلي والتحقيق في تدفق المعلومات في قرن آمون الفأر وقشرة الفص الجبهي.

The technique of recording local field potentials (LFPs) is an electrophysiological method used to measure the electrical activity of localized neuronal ...

تقدم هذه الدراسة بروتوكولا شاملا لإجراء تسجيلات LFP ثنائية القطب في قرن آمون الفأر وقشرة الفص الجبهي للتحقيق في آثار الأدوية على خصائص LFP في هذه المناطق. يوفر هذا البروتوكول جهاز تسجيل إشارات دماغية منخفض التكلفة وخفيف للغاية تم تحسينه بالكامل للبحث المعرفي في الفئران. توفر هذه الدراسة وسيلة لتسجيل الإشارات ذات نسب ضوضاء الإشارة العالية في مناطق مختلفة من الدماغ ، مما يسهل التحقيق في اتصالات المعلومات بين الأقاليم داخل الدماغ.

dual-extracellular-recordings-mouse-hippocampus-prefrontal

Research

JoVE Journal

Neuroscience

Dual Extracellular Recordings in the Mouse Hippocampus and Prefrontal Cortex

782 Views.  The University of Melbourne. تقدم هذه الدراسة بروتوكولا شاملا لإجراء تسجيلات LFP ثنائية القطب في قرن آمون الفأر وقشرة الفص الجبهي للتحقيق في آثار الأدوية على خصائص LFP في هذه المناطق. يوفر هذا البروتوكول جهاز تسجيل إشارات دماغية منخفض التكلفة وخفيف للغاية تم تحسينه بالكامل للبحث المعرفي في الفئران. توفر...

Video: تسليط الضوء على المؤلف: دراسة تأثيرات الأدوية على إشارات الدماغ باستخدام بروتوكول تسجيل LFP المزدوج في الفئران

The technique of recording local field potentials (LFPs) is an electrophysiological method used to measure the electrical activity of localized neuronal populations. It serves as a crucial tool in cognitive research, particularly in brain regions like the hippocampus and prefrontal cortex. Dual LFP recordings between these areas are of particular interest as they allow the exploration of interregional signal communication. However, methods for performing these recordings are rarely described, and most commercial recording devices are either expensive or lack adaptability to accommodate specific experimental designs. This study presents a comprehensive protocol for performing dual-electrode LFP recordings in the mouse hippocampus and the prefrontal cortex to investigate the effects of antipsychotic drugs and potassium channel modulators on LFP properties in these areas. The technique enables the measurement of LFP properties, including power spectra within each brain region and coherence between the two. Additionally, a low-cost, custom-designed recording device has been developed for these experiments. In summary, this protocol provides a means to record signals with high signal-to-noise ratios in different brain regions, facilitating the investigation of interregional information communication within the brain.

This protocol outlines the use of a custom-designed recording device and electrodes to record local field potentials and investigate information flow in the mouse hippocampus and prefrontal cortex.