Este trabajo contó con el apoyo de la Fundación de Neurociencia del Royal Melbourne Hospital (A2087).

Este estudio fue aprobado por el Comité de Ética Animal de Florey (Universidad de Melbourne, No. 22-025UM) de acuerdo con el código australiano para el cuidado y uso de animales con fines científicos. Para el presente estudio se utilizaron ratones machos C57BL/6 (8 semanas), obtenidos del Centro de Recursos Animales (Australia).
1. Diseño y fabricación de la cabecera
NOTA: La placa PCB de la cabeza es una placa compacta de cuatro capas de 14 mm x 12 mm diseñada para colocarse directamente sobre la cabeza del animal. Utiliza un chip amplificador comercial (ver Tabla de Materiales), y todos los archivos de diseño y Gerber están disponibles en línea (enlace de GitHub: https://github.com/dechuansun/Intan-headstage/tree/main/pcbway).
<ol><li>Proporcione las siguientes especificaciones al fabricante: Espesor del tablero: 0,6 mm; Seguimiento/espaciado mínimo: 4 milésimas de pulgada; Tamaño mínimo del orificio: 0,2 mm.</li>
	<li>Durante el proceso de ensamblaje de PCB, siga este orden:<ol><li>Suelde el chip amplificador a la placa con una pistola de aire caliente ajustada a 350 °C.</li>
		<li>Suelde los componentes pasivos.</li>
		<li>Suelde el conector SPI y el conector del electrodo (consulte la tabla de materiales).</li>
	</ol></li>
	<li>Inspeccione la soldadura bajo un microscopio para garantizar la calidad. Asegure el conector SPI en su lugar con epoxi para mayor estabilidad.</li>
	<li>Utilice un software de grabación de terceros y un tablero de control (consulte la Tabla de materiales) para la adquisición de señales. Consulte la guía del usuario del software para obtener instrucciones detalladas.</li>
	<li>La cabecera diseñada admite 8 canales. En el software, habilite los canales 8, 9, 12, 13, 20, 21, 22 y 23 para grabar.</li>
</ol>2. Fabricación de electrodos
<ol><li>Corte alambres de tungsteno recubiertos de PFA (consulte la Tabla de materiales) a longitudes específicas para diferentes tipos de electrodos: electrodo de corteza prefrontal (12 mm), electrodo de hipocampo (10 mm) y electrodo de tierra (6 mm).</li>
	<li>Corte el tubo de latón (ver Tabla de Materiales) en segmentos de 3 mm.</li>
	<li>Retire 2 mm del recubrimiento en el extremo de cada cable con un encendedor, luego suelde firmemente el cable del electrodo al tubo de latón. El tubo de latón tiene un diámetro interior de 0,45 mm y un diámetro exterior de 0,60 mm.</li>
	<li>Para el electrodo de tierra, suelde un tornillo de acero inoxidable M1.2 (consulte la Tabla de materiales) al electrodo. Aplique fundente a base de ácido fosfórico al tornillo para mejorar la soldadura. Después de soldar, limpie el tornillo con alcohol. NOTA: Use guantes para protegerse durante el proceso de soldadura.</li>
</ol>3. Procedimiento quirúrgico
<ol><li>Anestesiar al ratón en una cámara de anestesia con isoflurano al 3% y flujo de oxígeno de 1 L/min.</li>
	<li>Coloque el ratón anestesiado sobre una almohadilla térmica y asegúrelo en un marco estereotáxico (consulte la tabla de materiales).</li>
	<li>Ajuste la tasa de mantenimiento de isoflurano al 2,5-3% y reduzca el flujo de oxígeno a 500 mL/min. Con el pellizco del dedo del pie, verifique si el animal todavía está bajo anestesia profunda.</li>
	<li>Por vía subcutánea, inyecte carprofeno a 0,5 mg/kg y aplique ungüento ocular para protegerlos.</li>
	<li>Afeitar y esterilizar la cabeza del ratón con povidona yodada y etanol al 80%.</li>
	<li>Realice una incisión de 8 mm a lo largo de la línea media del cuero cabelludo, eliminando el tejido conectivo en el área de la incisión.</li>
	<li>Aplique peróxido de hidrógeno para limpiar la superficie del cráneo, teniendo cuidado de no tocar la piel circundante.</li>
	<li>Alinee los puntos de referencia bregma y lambda al mismo nivel para una colocación precisa de los electrodos (bregma y lambda son donde la sutura sagital se cruza con las suturas coronal y lambdoide).</li>
	<li>Taladre orificios para electrodo de referencia/rectificado, tornillos de anclaje (rebaba de perforación de 0,9 mm) y electrodos activos (rebaba de perforación de 0,3 mm) en coordenadas especificadas.</li>
	<li>Conecte el electrodo hecho a medida (paso 2) al brazo del marco estereotáxico y asegúrese de que esté perpendicular al cerebro.</li>
	<li>Implante el electrodo en el área CA1 del hipocampo (AP - 1,8 mm, ML - 1,3 mm, DV - 1,4 mm). NOTA: AP: anteroposterior; ML: mediolateral; DV: dorsoventral.</li>
	<li>Repetir la implantación del electrodo en la corteza prefrontal (AP - 2,0 mm, ML - 0,3 mm, DV - 1,7 mm).</li>
	<li>Asegure los electrodos con un adhesivo potente y cemento dental disponibles en el mercado (consulte la tabla de materiales).</li>
	<li>Implante dos tornillos de anclaje de 1,2 mm (AP - 1,8 mm, ML -1,6 mm) para evitar el movimiento.</li>
	<li>Coloque el electrodo de referencia/tierra en contacto directo con la duramadre, 2 mm posterior y 2 mm unilateral con respecto al punto de referencia lambda.</li>
	<li>Conecte el lado del tubo de latón de los electrodos a un conector hembra multicanal (consulte la Tabla de materiales) con el electrodo de tierra en el medio.</li>
	<li>Utilice un tubo termorretráctil de 0,8 mm en el exterior del pin central para el aislamiento.</li>
	<li>Asegure los electrodos, los tornillos de anclaje y el conector con adhesivo y cemento dental.</li>
</ol>4. Cuidados postoperatorios
<ol><li>Para aliviar el dolor postoperatorio, inyecte carprofeno a una dosis de 5-10 mg/kg por vía subcutánea cada 12-24 horas sobre la base de una evaluación del dolor durante un período de tres días.</li>
	<li>Proporcione al animal un período de recuperación de una semana antes de comenzar cualquier procedimiento de registro o experimentación.</li>
</ol>5. Procedimiento de grabación
<ol><li>Manipule al animal durante 15 minutos, dos veces al día, durante tres días consecutivos.</li>
	<li>Levanta a los ratones cerrando suavemente la mano alrededor de ellos sin aplicar una presión excesiva.</li>
	<li>Coloque la tabla del escenario en la cabeza del animal durante 30 minutos una vez al día durante tres días consecutivos.</li>
	<li>El día de la grabación, aclimatar al animal a la sala de grabación durante 30 min.</li>
	<li>Coloque al animal en una pequeña cámara de registro dentro de una jaula de Faraday para reducir la interferencia eléctrica externa. Conecte el escenario principal personalizado para la grabación.</li>
	<li>Abra el software de grabación y seleccione una frecuencia de muestreo de 2,00 kHz. Deshabilite todos los canales excepto el 13 y el 20 seleccionando cada canal y presionando la barra espaciadora.</li>
	<li>En la ventana de ancho de banda de hardware, establezca el ancho de banda inferior en 2 Hz y el ancho de banda superior en 100 Hz.</li>
	<li>En la ventana de filtrado de software, ajuste el filtro de paso bajo a 100 Hz y el filtro de paso alto a 2 Hz.</li>
	<li>Elija la ruta de almacenamiento haciendo clic en Seleccionar nombre de archivo y luego haga clic en Grabar.</li>
	<li>Comience cada sesión de grabación con un período de habituación de 10 minutos seguido de un registro de EEG de referencia de 15 minutos.</li>
	<li>Después del registro basal, administre el fármaco mediante inyección intraperitoneal y continúe registrando durante 30 minutos adicionales sin demora. NOTA: Consulte la sección de Resultados para obtener detalles sobre los medicamentos utilizados.</li>
</ol>

Registro de LFP en cerebro de ratón para investigación cognitiva y análisis de fármacos

<ol>
	<li>Einevoll, G. T., Kayser, C., Logothetis, N. K., Panzeri, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Modelling+and+analysis+of+local+field+potentials+for+studying+the+function+of+cortical+circuits.">Modelling and analysis of local field potentials for studying the function of cortical circuits.</a> Nat Rev Neurosci. 14 (11), 770-785 (2013).</li><li>Buzsaki, G., Anastassiou, C. A., Koch, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+origin+of+extracellular+fields+and+currents-EEG,+ECOG,+LFP+and+spikes.">The origin of extracellular fields and currents-EEG, ECOG, LFP and spikes.</a> Nat Rev Neurosci. 13 (6), 407-420 (2012).</li><li>Sigurdsson, T., Stark, K. L., Karayiorgou, M., Gogos, J. A., Gordon, J. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Impaired+hippocampal-prefrontal+synchrony+in+a+genetic+mouse+model+of+schizophrenia.">Impaired hippocampal-prefrontal synchrony in a genetic mouse model of schizophrenia.</a> Nature. 464 (7289), 763-767 (2010).</li><li>Witton, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Disrupted+hippocampal+sharp-wave+ripple-associated+spike+dynamics+in+a+transgenic+mouse+model+of+dementia.">Disrupted hippocampal sharp-wave ripple-associated spike dynamics in a transgenic mouse model of dementia.</a> J Physiol. 594 (16), 4615-4630 (2016).</li><li>Englot, D. J., Konrad, P. E., Morgan, V. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Regional+and+global+connectivity+disturbances+in+focal+epilepsy,+related+neurocognitive+sequelae,+and+potential+mechanistic+underpinnings.">Regional and global connectivity disturbances in focal epilepsy, related neurocognitive sequelae, and potential mechanistic underpinnings.</a> Epilepsia. 57 (10), 1546-1557 (2016).</li><li>Pievani, M., De Haan, W., Wu, T., Seeley, W. W., Frisoni, G. B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Functional+network+disruption+in+the+degenerative+dementias.">Functional network disruption in the degenerative dementias.</a> Lancet Neurol. 10 (9), 829-843 (2011).</li><li>Sigurdsson, T., Duvarci, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Hippocampal-prefrontal+interactions+in+cognition,+behavior+and+psychiatric+disease.">Hippocampal-prefrontal interactions in cognition, behavior and psychiatric disease.</a> Front Syst Neurosci. 9, 190 (2015).</li><li>Sun, D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Effects+of+antipsychotic+drugs+and+potassium+channel+modulators+on+spectral+properties+of+local+field+potentials+in+mouse+hippocampus+and+pre-frontal+cortex.">Effects of antipsychotic drugs and potassium channel modulators on spectral properties of local field potentials in mouse hippocampus and pre-frontal cortex.</a> Neuropharmacology. 191, 108572 (2021).</li><li>Bokil, H., Andrews, P., Kulkarni, J. E., Mehta, S., Mitra, P. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Chronux:+A+platform+for+analyzing+neural+signals.">Chronux: A platform for analyzing neural signals.</a> J Neurosci Methods. 192 (1), 146-151 (2010).</li><li>Bozkurt, A., Lal, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Low-cost+flexible+printed+circuit+technology+based+microelectrode+array+for+extracellular+stimulation+of+the+invertebrate+locomotory+system.">Low-cost flexible printed circuit technology based microelectrode array for extracellular stimulation of the invertebrate locomotory system.</a> Sens Actuator A Phys. 169 (1), 89-97 (2011).</li><li>Du, P., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=High-resolution+mapping+of+in+vivo+gastrointestinal+slow+wave+activity+using+flexible+printed+circuit+board+electrodes:+Methodology+and+validation.">High-resolution mapping of in vivo gastrointestinal slow wave activity using flexible printed circuit board electrodes: Methodology and validation.</a> Ann Biomed Eng. 37, 839-846 (2009).</li><li>JoVE Science Education Database. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Neuroscience.+Histological+Staining+of+Neural+Tissue.">Neuroscience. Histological Staining of Neural Tissue.</a> JoVE. , (2023).</li></ol>

Los autores no tienen nada que revelar.

El protocolo presentado aquí describe el procedimiento para construir una cabecera personalizada diseñada específicamente para el registro simultáneo de potenciales de campo local (LFP) duales en el hipocampo (HIP) y la corteza prefrontal (PFC). Los pasos detallados proporcionados en este protocolo ofrecen suficiente información para que los investigadores examinen a fondo la comunicación de señales tanto dentro de cada región como entre el HIP y el PFC.
La cabecera diseñada a medida ...

Los potenciales de campo local (LFP) se refieren a la actividad eléctrica registrada desde el espacio extracelular, que refleja la actividad colectiva de un grupo localizado de neuronas. Exhiben una amplia gama de frecuencias, que van desde ondas lentas a 1 Hz hasta oscilaciones rápidas a 100 Hz o 200 Hz. Bandas de frecuencia específicas se han asociado con funciones cognitivas como el aprendizaje, la memoria y la toma de decisiones 1,2. Los cambios en las propiedades de la LFP se han utilizado como biomarcadores para diversos trastornos neurológicos, como la demencia y la esquizofrenia 3,4. El análisis de los registros de LFP puede ofrecer información valiosa sobre los mecanismos patológicos subyacentes asociados con estas afecciones y las posibles estrategias terapéuticas.
El registro dual de LFP es una técnica utilizada para medir la actividad eléctrica localizada dentro y entre dos regiones específicas del cerebro. Esta técnica ofrece una valiosa oportunidad para investigar la intrincada dinámica neuronal y la comunicación de señales que se producen dentro y entre las distintas regiones del cerebro. Estudios previos han revelado que la detección de alteraciones en las propiedades neuronales de regiones cerebrales individuales puede ser compleja, pero se pueden observar cambios en la comunicación cortical interregional 5,6. Por lo tanto, la utilización de la grabación LFP dual ofrece un medio potente para abordar este problema.
La conectividad hipocampo-prefrontal juega un papel crucial en la modulación de las funciones cognitivas, y la disfunción se ha relacionado con diversos trastornos neurológicos 7,8. Los registros de electrodos duales de estas regiones pueden proporcionar información sobre estas interacciones. Desafortunadamente, hay poca información disponible sobre los métodos para realizar registros de LFP de doble electrodo entre estas áreas. Además, los dispositivos de grabación disponibles en el mercado son generalmente caros y carecen de adaptabilidad a diseños experimentales específicos. El método convencional para registrar las LFP consiste en utilizar un cable blindado para conectar el dispositivo de grabación a los electrodos implantados en el cerebro de un animal. Sin embargo, este enfoque es susceptible a los artefactos de movimiento y al ruido ambiental, lo que afecta a la calidad y fiabilidad de las señales grabadas.
Este protocolo describe un procedimiento exhaustivo para realizar registros de LFP de doble electrodo en el hipocampo y la corteza prefrontal del ratón, utilizando una plataforma de cabeza de bajo costo diseñada a medida que se puede colocar en la cabeza del animal. Estos métodos permiten a los investigadores investigar los patrones oscilatorios específicos de la región dentro de dos regiones cerebrales discretas y explorar el intercambio de información interregional y la conectividad entre estas áreas.

<table border="1" fo:keep-together.within-page="1" fo:keep-with-next.within-page="always">
	<tbody>
		<tr>
			<td>Brass tube&#160;</td>
			<td>Albion Alloys, USA</td>
			<td>Inside diameter of 0.45 mm</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Carprofen&#160;</td>
			<td>Rimadyl, Pfizer Animal Health&#160;</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Commercial amplifier chip</td>
			<td>Intantech</td>
			<td>RHD 2132</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Control board</td>
			<td>Intantech</td>
			<td>RHD recording system</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Dental cement&#160;</td>
			<td>Paladur</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Heat shrinks</td>
			<td>Panduit</td>
			<td>0.8 mm diameter</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>M1.2 stainless steel screw</td>
			<td>Watch tools</td>
			<td>Clock and watch screw</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Multichannel socket connector&#160;</td>
			<td>Harwin, AU</td>
			<td>1.27 mm pitch, PCB socket</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>PFA-coated tungsten wires&#160;</td>
			<td>A-M SYSTEMS, USA</td>
			<td>Inside diameter of 150 &#181;m&#160;</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Phosphoric acid-based flux</td>
			<td>Chip Quik</td>
			<td>CQ4LF-0.5</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Recording software</td>
			<td>Intantech</td>
			<td>RHX recording software</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Stereotactic Frame</td>
			<td>World Precision Instruments</td>
			<td>Mouse stereotactic instrument</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Super glue</td>
			<td>UHU</td>
			<td>Ultra fast</td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

dual extracellular recordings in the mouse hippocampus and prefrontal cortex

La técnica de registro de potenciales de campo local (LFPs) es un método electrofisiológico utilizado para medir la actividad eléctrica de poblaciones neuronales localizadas. Sirve como una herramienta crucial en la investigación cognitiva, particularmente en regiones del cerebro como el hipocampo y la corteza prefrontal. Las grabaciones de LFP dual entre estas zonas son de particular interés, ya que permiten explorar la comunicación interregional de señales. Sin embargo, los métodos para realizar estas grabaciones rara vez se describen, y la mayoría de los dispositivos de grabación comerciales son caros o carecen de adaptabilidad para adaptarse a diseños experimentales específicos. Este estudio presenta un protocolo completo para realizar registros de LFP de doble electrodo en el hipocampo del ratón y la corteza prefrontal para investigar los efectos de los fármacos antipsicóticos y los moduladores de los canales de potasio sobre las propiedades de la LFP en estas áreas. La técnica permite medir las propiedades de la LFP, incluidos los espectros de potencia dentro de cada región del cerebro y la coherencia entre ambas. Además, para estos experimentos se ha desarrollado un dispositivo de grabación de bajo coste y diseño personalizado. En resumen, este protocolo proporciona un medio para registrar señales con una alta relación señal-ruido en diferentes regiones del cerebro, lo que facilita la investigación de la comunicación de información interregional dentro del cerebro.

Local field potentials (LFPs) refer to the electrical activity recorded from the extracellular space, reflecting the collective activity of a localized group of neurons. They exhibit a diverse range of frequencies, spanning from slow waves at 1 Hz to fast oscillations at 100 Hz or 200 Hz. Specific frequency bands have been associated with cognitive functions such as learning, memory, and decision making1,2. Changes in LFP properties have been used as biomarkers for various neurological disorders, including dementia and schizophrenia3,4. Analyzing LFP recordings can offer valuable insights into the underlying pathological mechanisms associated with these conditions and potential therapeutic strategies.
Dual LFP recording is a technique used to measure localized electrical activity within and between two specific brain regions. This technique provides a valuable opportunity to investigate the intricate neural dynamics and signal communication occurring within and between distinct brain regions. Prior studies have revealed that detecting alterations in the neuronal properties of individual brain regions can be complex, but changes in interregional cortical communication can be observed5,6. Therefore, the utilization of dual LFP recording offers a potent means to address this issue.
Hippocampal-prefrontal connectivity plays a crucial role in modulating cognitive functions, and dysfunction has been linked to various neurological disorders7,8. Dual electrode recordings of these regions can provide information about these interactions. Unfortunately, there is limited information available on methods for performing dual electrode LFP recordings between these areas. Moreover, commercially available recording devices are generally expensive and lack adaptability to specific experimental designs. The conventional method for recording LFPs involves using a shielded cable to connect the recording device to electrodes implanted in an animal's brain. However, this approach is susceptible to motion artifacts and environmental noise, impacting the quality and reliability of the recorded signals.
This protocol describes a comprehensive procedure for performing dual-electrode LFP recordings in the mouse hippocampus and prefrontal cortex, using a low-cost custom-designed headstage that can be placed on the animal's head. These methods enable researchers to investigate region-specific oscillatory patterns within two discrete cerebral regions and explore interregional information exchange and connectivity between these areas.

Autor destacado: Estudio de los impactos de los fármacos en las señales cerebrales utilizando el protocolo de registro LFP dual en ratones

Registros extracelulares duales en el hipocampo y la corteza prefrontal del ratón

This study presents a comprehensive protocol for performing dual-electrode LFP recordings in the mouse hippocampus and the prefrontal cortex to investigate the effects of drugs on LFP properties in these areas. This protocol provides a low-cost and ultra-light brain signal recording device that is fully optimized for cognitive research in mice. This study provides a means to record signals with high signal-noise ratios in different brain regions, facilitating the investigation of interregional information communication within the brain.

Los resultados que se muestran aquí demuestran los efectos de varios fármacos sobre las propiedades de los potenciales de campo local (LFPs) probados en cuatro cohortes de ratones machos C57BL/6 (n = 8 para cada cohorte; edad: 8 semanas; peso: 24,0 ± 0,42 g). Los fármacos analizados incluyeron el fármaco antipsicótico clozapina, los moduladores de los canales de potasio 4-aminopiridina (4-AP) y retigabina, así como el vehículo de control solución salina.
Como se muestra en la <strong ...

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Este protocolo describe el uso de un dispositivo de registro y electrodos diseñados a medida para registrar los potenciales de campo local e investigar el flujo de información en el hipocampo y la corteza prefrontal del ratón.

The technique of recording local field potentials (LFPs) is an electrophysiological method used to measure the electrical activity of localized neuronal ...

Este estudio presenta un protocolo completo para realizar registros de LFP de doble electrodo en el hipocampo del ratón y la corteza prefrontal para investigar los efectos de los fármacos sobre las propiedades de la LFP en estas áreas. Este protocolo proporciona un dispositivo de registro de señales cerebrales ultraligero y de bajo coste que está totalmente optimizado para la investigación cognitiva en ratones. Este estudio proporciona un medio para registrar señales con altas relaciones señal-ruido en diferentes regiones del cerebro, lo que facilita la investigación de la comunicación de información interregional dentro del cerebro.

dual-extracellular-recordings-mouse-hippocampus-prefrontal

Research

JoVE Journal

Neuroscience

Dual Extracellular Recordings in the Mouse Hippocampus and Prefrontal Cortex

759 vistas.  The University of Melbourne. Este estudio presenta un protocolo completo para realizar registros de LFP de doble electrodo en el hipocampo del ratón y la corteza prefrontal para investigar los efectos de los fármacos sobre las propiedades de la LFP en estas áreas. Este protocolo proporciona un dispositivo de registro de señales cerebrales ultraligero y de bajo coste que está totalmente optimizado para la investigación cognitiva en ratones. Este estudio proporciona un medio para registrar señales con altas relacion...

Video: Autor destacado: Estudio de los impactos de los fármacos en las señales cerebrales utilizando el protocolo de registro LFP dual en ratones

The technique of recording local field potentials (LFPs) is an electrophysiological method used to measure the electrical activity of localized neuronal populations. It serves as a crucial tool in cognitive research, particularly in brain regions like the hippocampus and prefrontal cortex. Dual LFP recordings between these areas are of particular interest as they allow the exploration of interregional signal communication. However, methods for performing these recordings are rarely described, and most commercial recording devices are either expensive or lack adaptability to accommodate specific experimental designs. This study presents a comprehensive protocol for performing dual-electrode LFP recordings in the mouse hippocampus and the prefrontal cortex to investigate the effects of antipsychotic drugs and potassium channel modulators on LFP properties in these areas. The technique enables the measurement of LFP properties, including power spectra within each brain region and coherence between the two. Additionally, a low-cost, custom-designed recording device has been developed for these experiments. In summary, this protocol provides a means to record signals with high signal-to-noise ratios in different brain regions, facilitating the investigation of interregional information communication within the brain.

This protocol outlines the use of a custom-designed recording device and electrodes to record local field potentials and investigate information flow in the mouse hippocampus and prefrontal cortex.