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Method Article
我们演示了如何使用供给的RNAi技术敲除目标基因和分体尺寸型 C.线虫。这种方法可用于大规模的画面,以找出潜在的基因成分,如在车身尺寸上的DBL-1/TGF-β信号调节。
双链RNA介导的干扰(RNAi)是一种有效的策略,以击倒靶基因的表达1-3。它已被应用到许多模型系统,包括植物,无脊椎动物和脊椎动物。有各种各样的方法来实现RNAi 在体内 4,5。例如,可以与靶基因的RNAi载体转化,然后永久或瞬时转化的细胞系或初级细胞实现的基因敲除效果,或者从特定的靶基因(RNAi的寡核苷酸)的合成的双链寡核苷酸,可以是瞬时转化靶基因沉默的细胞系或原代细胞或合成的双链RNA分子可显微注射到生物体。由于线虫C.的利用细菌作为食物来源,饲养的动物与对靶基因的表达双链RNA的细菌提供了一个可行的策略。在这里,我们提出的RNAi输送机身尺寸表型的方法来得分。车身尺寸C.线虫主要受型TGF-β -等配位体DBL-1,所以该法是适合识别的TGF-β信号元件7。我们使用不同的菌株,其中包括两个RNA干扰过敏株重复供给的RNAi实验。我们的研究结果表明,RRF-3株给了我们最好的预期的RNAi表型。该方法易于操作,重现性好,易于量化。此外,我们的协议,最大限度地减少了使用专门的设备,所以它是适合于规模较小的实验室或主要是本科院校。
1。准备携带目的基因序列的RNA干扰进料板
2。文化蠕虫的RNAi送料板
3。分数车身尺寸表型的RNAi治疗的蠕虫
在我们的研究中,我们专注上机身尺寸调节的DBL-1/TGF-β途径。 DBL-1途径体型小,更短的车身长度相比,与野生型动物7,10,11功能的损失。因此,屏幕为C.线虫的机身尺寸突变体能够确定TGF-β信号组件和改性剂。 DBL-1信号是介导的一个保守的TGF-β的信号转导途径,其中包括细胞表面受体与细胞内的Smad信号传感器12。要测试的有效性的RNAi通过喂养的车身尺寸突变体的识别,我们?...
在这个协议中,我们描述的车身尺寸有缺陷的突变体C.识别方法通过RNA干扰喂养的线虫 。此方法是适用于TGF-β信号分量的识别。由于这样的组件通过进化15是高度保守的,这样的屏幕是在所有后生动物阐明的分子机制的TGF-β信号有关。在这样的屏幕设计是一个重要的考虑出发菌株。我们已经证明,无论ERI-1,LIN-15b和RRF-3更敏感的RNAi喂养比对照菌株,这与以往的研...
没有利益冲突的声明。
我们感谢詹姆斯·C.克拉克为动物提供的数字,在不同的发育时间点。 的菌株在这项研究中获得的秀丽隐杆线虫的遗传学中心,这是由美国国立卫生研究院国家研究资源中心(NCRR)的支持。这项工作是从纽约市立大学支持的CIRG 1817 JL和惩教署和美国国立卫生研究院1R15GM073678-01和1R15GM097692-01,惩教署,我们感谢William水稻博士,博士娜塔莉亚·霍尔茨曼,梅丽莎Silvestrini的手稿上的评论。这项工作是进行在部分履行一个博士学位研究生中心纽约市立大学(S.雄)“的要求。
Name | Company | Catalog Number | Comments |
- RNA干扰蠕虫板 17.7克WORM介质混合 60克琼脂 H 2 O 3升。高压灭菌。 加入3毫升1M IPTG(无菌)和3毫升25毫克/毫升羧苄青霉素(无菌);然后倒入培养皿60毫米。 蠕虫板 17.7克WORM介质混合 0.6克硫酸链霉素 60克琼脂 H 2 O 3升。高压灭菌。倒成60毫米的培养皿中。 WORM介质混合 的55克Tris-CL 的24克Tris-OH 310克细菌蛋白胨 800毫克胆固醇 200克氯化钠 调匀,一定要避免大块,可以存放许多个月前使用这种粉状混合物。 2%琼脂糖 0.5 G琼脂糖 广告D 25毫升蒸馏水2 O。在微波加热,直至溶解。 1M异丙基β-D-1-硫代吡喃半乳糖苷(IPTG)诱导 2克IPTG 毫升蒸馏水溶解IN10 2 O 1M NaN的3 6.5克楠3 添加蒸馏水至100毫升2 O 25毫米楠3 2.5毫升1M南3 添加蒸馏水至100毫升2 O 秀丽隐杆线虫线虫遗传学中心 L4440质粒(携带氨苄青霉素抗性基因) 细菌菌株HT115(DE3)中(包含经IPTG诱导T7聚合酶; RNA酶III基因(dsRNAse)也携带四环素抗性基因的缺陷)16 60毫米陪替氏培养皿 100毫米培养皿 14毫升的园底猎鹰文化管 玻璃幻灯片 盖玻片 1-20微升移液器 20-200微升移液器 200-1000微升移液器 1-200μL枪头 200-1000微升枪头 1.5毫升的Eppendorf管 铂丝蠕虫挑 |
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