生产尺寸控制肿瘤细胞球体采用微孔板大数

摘要

我们引进的粒度均匀，并组成控制肿瘤球体的协议大数代（几千到几十万），使用市售微孔板。

摘要

肿瘤球状体正日益被视为一个重要的体外模型中对肿瘤细胞在三维空间中的行为。比传统的贴张文化更加生理有关，他们更准确地概括了复杂性和目前的实际肿瘤的相互作用。为了利用这一模型，以更好地评估肿瘤生物学，或新的治疗剂的功效，这是必要的，以便能够重复地产生球状体，以受控的方式并在显著号码。

该AggreWell系统由金字塔形微孔的高密度阵列，成单细胞悬浮液进行离心分离的。细胞的数量聚类在各微孔的底部，并涉及不同的细胞类型的数量和比率仅依靠由实验者引入悬浮液的性质。因此，我们能够生成任意大小和组成的肿瘤与球体出需要修改底层平台技术。反过来数百每培养面积的平方厘米的微孔确保极高的生产水平可以通过一个简单的，非人工密集的过程来实现。因此，我们预计，该协议将是广泛有益的研究人员在肿瘤球体领域。

引言

有越来越多的证据体，肿瘤细胞有不同的行为在三维培养物比它们在塑料培养时以及确定在常规组织培养平台的治疗剂时，转变到多种生理上相关的系统¹可能会失去功效。因此，需要研究癌症细胞的行为在这些条件下，既要深入了解其潜在的生物，并且还增加过渡的新的治疗剂的筛选设施到诊所的成功率。一个有用的模型系统，具有悠久的历史采用被称为肿瘤球体^1,2癌细胞的三维集群。理想情况下，技术球体的形成将允许生产大量均匀的球体，其大小和组成由实验者所控制的。而悬滴和孔板接近^3,4能够满足其中的一些重quirements，吞吐量一般是有限的，并且产生大量的球状物变得劳动密集的任务。

我们最近开发了一个系统，以解决在再生医学领域⁵类似的挑战。在一系列密集微米级孔的用人被迫聚集（ 见图1），该方法允许球状体的生成从任意数量的细胞，包括多种细胞类型⁶的混合物，以及各种生物材料⁷的掺入。球状体形成大量-几千到几十万或更多-而可以立即提取或保持在其上，形成具有至少一个⁸到2（未发表的观察）周培养基交换的微孔。因此，该系统非常适合于大量的均匀和可再现的肿瘤球状体的产生为EFFE的评估ctiveness新型抗肿瘤药物或生物的基本调查。

研究方案

注:微孔板中可用不同的格式，这取决于所期望的结果。规格以及对细胞应与每种格式中使用的最小和最大数目的近似的准则示于表1中 。较小的微孔逐渐变细至一尖点，并且因此不存在下的大小限制，虽然球状体之间的变异性变得在较小的尺寸更显著。常规生产的球状物由平均每少至20个细胞的是直接的^8。较大微孔尺寸没有完全锥形的，因此试图以形成由小数量的细胞球状体可导致在各微孔多个较小的球状体。由于表面性质略有不同，使用AggreWell 400EX板时，准备用表面活性剂溶液（步骤1.2）是不可选的。

该协议是基于使用AggreWell 400板 - 为其他格式的利弊ULT 表1。细胞在每孔加载的数量乘以它包含由细胞被群集的每个球体的数目微孔的数目来确定。例如，为了产生从1000个细胞每个球状体，每孔必须装入（1200倍球体1,000个细胞每=）1.2×10 ⁶个细胞。细胞密度必须计算给定的细胞将在0.4毫升的体积被加载。因此，对于从各1000个细胞形成的球状体的例子中，1.2×10 ⁶细胞在0.4毫升转化为每毫升3×10 ⁶个细胞的密度。

1。准备微孔以接收细胞

1. 微孔板是作为提供无菌的，并且应该只从它们的包装中，在无菌的环境中，例如一个层流生物安全柜中移除。不育应保持整个协议。应无菌受到损害，该井是使用70％的乙醇在水中使用重新消毒​​的以下可选步骤。
   1. 加入0.5毫升70％乙醇中，每个未使用的井。一些微孔将捕获的气泡，尽管这可以通过增加液体的一侧上，并允许它在表面上扩散，而不是垂直地落下它在表面上被降低。更换盖子。
   2. 虽然乙醇蒸气应迅速渗透任何气泡，如果有大量的，可能需要将其删除。离心2分钟，2,000×g的。请注意，重要的是确保转子是否正确以这样的速度平衡是很重要的。
   3. 使用低倍率倒置显微镜，确认气泡已经从微孔中删除。
   4. 孵育5分钟，用盖子上在室温下进行。
   5. 吸乙醇。板现在可以用无菌水或PBS中，可直接使用，或风干进行存储。
2. 为了确保电池不会与微孔表面相互作用，可以使用表面活性剂来制备。一般来说它是可取的初始执行该步骤，并随后比较使用和不使用表面活性剂包覆的微孔所产生的球粒。
   1. 加入0.5毫升的冲洗液到每个孔中。一些微孔将捕获的气泡，尽管这可以通过增加液体的一侧上，并允许它在表面上扩散，而不是垂直地落下它在表面上被降低。更换盖子。
   2. 离心2分钟，2,000×g离心以去除气泡。请注意，重要的是确保转子是否正确以这样的速度平衡是很重要的。
   3. 使用低倍率倒置显微镜，确认气泡已经从微孔中删除。
   4. 孵育至少30分钟，盖子上，在室温下过夜或在4℃下板可以被存储在4度的孔中的表面活性剂溶液中，直至需要的，如果适当地密封，以防止干燥。
   5. 用无菌水或PBS在使用前立即冲洗板。不要让板涂布后干燥。

2。细胞的准备

注:细胞制备的细节将有所变化与所研究的特定的细胞类型。然而，我们观察到这些条件是有效的与广泛的细胞，包括这里所讨论的线路，以及人类和鼠胚胎干细胞（ESC），人的诱导多能干细胞（IPSC），成纤维细胞，假定原始内胚层的，和基质细胞。其他团体已采用此系统成功用于广泛的应用范围包括从间充质干细胞的软骨^9，标准化的一代从多能干细胞¹⁰的神经前体，在肝细胞¹¹和在山椒¹²脊髓再生的评估毒理分析。与HT29细胞工作的具体协议如下所示。

1. 从HT29细胞的T75烧瓶，培养在DMEM+10％FBS
2. 从瓶中吸出培养基，并加3毫升的胰蛋白酶。
3. 孵育细胞5分钟，在37℃下
4. 加入3ml生长培养基的停止胰蛋白酶消化。取一等份用于细胞计数，其余转移到15ml离心管中。
5. 离心5分钟，在200×g下。
6. 而在离心分离过程中，计数细胞。
7. 吸胰蛋白酶/中混合，然后换上由上述计算所需的细胞密度测定新鲜生长培养基，体积。
8. （可选）通过一个过滤器传递细胞悬液，以消除任何团块。注:电池的收割条件不同而有所变化线之间。如果离解的协议，例如传代感兴趣的细胞是可用的，应该作为起点。敏感细胞系使用胰蛋白酶，可能会导致过度的细胞死亡。在这种情况下，我们使用的TrypLE作为替代dissociati观察到很好的效果对试剂^8。如果离解过程中的细胞成为结块和失去活力，除了DNA酶的酶溶液可以解决这个问题。减少分离时间，采用研磨的步骤，打破了细胞团块也可以提高生存能力。

3。球体的形成

注:球体​​可以在各种介质中的制剂产生，但是初步试验应进行使用，其中所述细胞进行培养，以区分从改变介质组合物的后果过渡到三维培养系统的后果的介质。

1. 加0.4毫升生长培养基到每个孔中。
2. 离心2分钟，2,000×g离心以去除气泡。请注意，重要的是确保转子是否正确以这样的速度离心之前平衡是很重要的。
3. 使用低倍率倒置显微镜，确认气泡已经从微孔中删除。
4. 添加0.4毫升细胞悬液（以上计算）所需的密度。移液器向上和向下轻轻混匀，而不引入气泡进入微孔。以确保将细胞均匀分布在整个井，以便获得一致的球状体是很重要的。
5. 离心5分钟，在200×g下。如果板没有离心分离期间自我水平，对流可能产生的结果在细胞穿过微孔分布不均匀。因此，板应在内部平衡以及对其他板，从而使重量分布均匀的片托架的两侧。

注:如果单元格不均匀分布的证据可见，它可能需要将少量的润滑，以板架在枢轴点 - 与离心机制造商的说明进行咨询。

注意:一旦细胞已被离心分离成微孔，它们是合理的电阻tant要洗出从板的轻微运动。应避免导致介质的晃荡突然动作，但该板从离心机到显微镜或培养箱转移不应导致显著细胞位移。

6. 使用倒置显微镜，确认细胞已在微孔内聚集，并且它们均匀地分布在井。
7. 孵育过夜，在37°C。
8. 使用倒置显微镜，观察球体的形成过程。某些细胞系将形成致密的球体在24小时内，其他人可能需要更长的时间。从集群中的HT29细胞聚集的级数示于图2。
9. 从微孔中恢复球体，并轻轻地喷射出来用移液器转移到悬浮培养。另外，保持在球体与原位更换培养基⁸ -持续时间取决于其初始大小和增长速度，这DEFINE的时间，直到他们长大了在它们形成的微孔。
   1. 要更换培养基中不失球体，吸出培养基在井的边缘使用巴斯德吸管。慢慢把尖，直到它开始从半月板画液，并按照半月板下来，因为它下降。然后加入新鲜培养基对井壁在同一个地方。一些球粒可能会丢失，但是，如果介质总是抽吸和在相同的位置取代，这个数目将维持小相比，大量的好。

结果

可以容易地产生和提取到的悬浮培养从别共解剖起源多种肿瘤细胞系的球状体， 图3示出了一致的尺寸控制得到通过这种方法，用各条件下高度均匀的球体种群。在行为上清除行间的差异也可见，与HT29结肠癌细胞和TE6食管癌细胞形成密集的球体与轮廓分明的界限，而前列腺癌细胞LNCaP引起了那么一致球体不规则边界（见讨论可能的原因）。更强的内力在更连贯的聚集也导致崩溃到一个更对称的形式甚至仍然在其形成的微孔，而LNCaP细胞聚集，特别是在较大的尺寸，明显保留了方形锥体几何微孔。输入的细胞数和所述phy之间的关系所得到的球状体的iCal的大小将依赖于许多变量。根据每个细胞的体积和细胞的雇员的数目的乘积的理论量可以通过细​​胞的损失，这反过来又可以包括细胞内的单细胞悬液阶段损失，以及从过小的聚集体造成的损失降低数字邻居的不足，并从由于运输中的核心局限性坏死和过大的聚集体。大小也将通过在聚合过程中可能出现的任何细胞增殖的影响。因为这些参数会有所不同细胞系的细胞系，如特定物理尺寸的球粒所需细胞，介绍了正确数量的必须通过实验确定。作为第一近似值，预计球体直径以增加与掺入的细胞数的立方根- 例如在细胞的数目的8倍的增加应该导致球体直径增加一倍。

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图1。球体制作示意图。的微孔系统由紧凑的四方锥微孔阵列（625每^平方厘米为400μM号），为使细胞可以被离心的。将细胞聚集了由倾斜的侧壁，以及所得到的旋转椭圆体的大小是通过改变所用的细胞悬浮液的密度来控制。

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图2。细胞聚集成球状体的组装。球体从每个七百HT29细胞形成。立即离心后（A）中，细胞被松散地聚集在各微孔的底部。注意，该簇被朝右下方在这种情况下，均匀地偏移。这是可以接受的簇大小保持在阵列中是一致的。如果显著簇大小的差异是从阵列的一侧看到对方，参见附注在步骤3.5。培养24小时后（B），细胞间粘附力所造成的簇聚集并形成连贯的球状体，然后可将其提取的（C）。

转/> 图3。在微孔板产生的球体。从球状体形成七百（A，C，E）或一千五百（B，D，F）的 HT29结肠癌细胞（A，B），前列腺癌细胞LNCaP（C，D）或TE6食管癌细胞（E，F）。注意球状体的稠度的制剂中，并且还细胞系之间的变化 - 尤其是宽松的LNCaP聚集体相比，更密集的HT29和TE6细胞。标尺为200微米。

	微孔格式
	AggreWell 400	AggreWell 40EX	AggreWell 800
微孔宽度（al;color:#000000;background-color:#ffffff;font-weight:normal;font-style:normal;font-variant:normal;text-decoration:none;vertical-align:baseline;">µm )	400	400	800
每平方厘米的微孔	625	625	156.25
每孔微孔	1,200	4,700	300
最小的细胞每微孔*	N / A	N / A	2000
每个微孔的最大细胞*	2,000	2,000	10,000
最小的细胞，每孔*	N / A	N / A	6×10 5个
每孔最大细胞*	2.4×10 6个	9.4×10 6个	3×10 6个
1.1.1 - 70％乙醇的体积（ml）	0.5	2.0	0。5
1.2.1 - 冲洗液体积（ml）	0.5	2.0	0.5
3.2 - 中预压量（ml）	0.4	1.6	0.4
3.5 - 电池装载量（ml）	0.4	1.6	0.4
*每微孔细胞的数量只是一个近似值作为该值将与所使用的特定细胞的大小而变化，并且应该根据经验确定

表1中。 AggreWell选择和协议的修改。

讨论

We have established a system whereby large numbers of uniform spheroids may be generated from multiple cell lines from different sources. We have yet to encounter an adherent cell line that does not form spheroids under these conditions. We have previously observed cell loss in populations prone to anoikis^5,8, however to date this issue has not arisen with tumor lines. The system is arbitrarily scalable with surface area, with behavior consistent across microwells in 24-well and 6-well format, as well as prototype bioreactors containing 50,000 microwells each presently under development.

Should spheroid asymmetry be a concern, the incubation time in step 4.8 may be increased to two or three days. Spheroids may also be incubated for a period after extraction from the microwells to increase symmetry, however in this case care must be taken to keep culture densities sufficiently low, as spheroids in contact with one another will often fuse into larger structures. For this reason, we have previously maintained cultures within the microwells in which the aggregates were formed, with the primary limitation being the size of the spheroid. This in turn is a function of both growth rate and initial size⁸, and if extended culture within the microwell plate is planned, this should be considered in advance. Options to prevent overgrowth, should it occur, include either starting with smaller spheroids, or employing the larger microwells of the AggreWell 800 plate.

Should spheroids fail to increase in coherence over time, one potential cause may be cell death. Particularly in larger aggregates of highly metabolically active cells, mass transport limitations on the delivery of oxygen and essential nutrients can result in a necrotic core² - thus a non-cohesive spheroid may simply be a consequence of excessive cell death. Alternatively, measurements of the mechanical cohesion of spheroids have been used to assess intercellular binding forces, in relationship to the metastatic potential of a given cell line¹³. It would be interesting to investigate the relationship between spheroid shape and metastatic potential, perhaps using morphometric parameters such as roundness and perimeter to area ratio.

In addition to investigating the mechanical and morphometric properties of spheroids, assembly in the microwell system permits large-scale production of mixed-composition spheroids, consisting of combinations of multiple cell types and / or biomaterials^6,7. The interactions of tumor cells with other cell types are important to more closely model the behavior of tumors in vivo¹⁴, thus it may be of interest to generate spheroids from tumor cells in combination with fibroblasts and endothelial cells, for example. Microparticles of various biomaterials may also be incorporated, and can affect spheroid properties both directly through their interactions with cells^7,15, and also as reservoirs for the controlled release of growth factors and cytokines into the interior of the spheroid¹⁶.

If there is any concern about sterility, for example when working with an microwell plate in which some wells have previously been used, that may have spent some time in an incubator as part of a previous experiment, the wells may be resterilized with 70% ethanol in water.

Once spheroids have been formed, they may also be separated from residual unincorporated cells by passing the suspension over a cell strainer. Individual cells will pass through, while the spheroids will be retained. If the spheroid is suspected of shedding potentially metastatic cells over the course of culture, it may be desirable to perform this procedure multiple times - initially to remove unincorporated cells, and subsequently to isolate purified populations of the cells given off by the spheroids.

材料

Name	Company	Catalog Number	Comments
AggreWell 400 plate	StemCell Technologies Inc.	27845/27945
Rinsing Solution	StemCell Technologies Inc.	07010
Cell strainer (37 µm)	StemCell Technologies Inc.	27215
PBS	VWR / LONZA	CA12001-676
Trypsin-Versene (EDTA)	VWR / LONZA	CA12001-660
DMEM	VWR / LONZA	CA12002-212
FBS	VWR / LONZA	CA-95042-112
TrypLE	Invitrogen / Life Technologies	12605010
Inverted microscope	VWR / Motic	CA19000-610
Allegra X15R centrifuge with carriers for standard well plates	VWR / Beckman	CABKA99465, CABK369704, CABK392806
Laminar flow biosafety cabinet	ESBE / Baker	BKR-SG603AHEUVSP