JoVE Logo

登录

需要订阅 JoVE 才能查看此. 登录或开始免费试用。

本文内容

  • 摘要
  • 摘要
  • 引言
  • 研究方案
  • 结果
  • 讨论
  • 披露声明
  • 致谢
  • 材料
  • 参考文献
  • 转载和许可

摘要

质谱成像(MSI)是一种强大的工具,可用于在完整组织中发现和鉴定各化学物种,保护化合物中的其天然环境中,它可以提供新的见解的生物过程。用于本发明的小分子的分析开发出一种MSI方法进行说明。

摘要

用于研究小分子,如药物的药物或内源性代谢物,采用组织提取物需要所关注的组织的均匀化,可能潜在地会改变正在研究1中的代谢途径多数技术。质谱成像(MSI)是一种可以生物组织样品1-5的完整片内提供分析物的空间信息的强大的分析工具。这种技术已被广泛用于研究各种类型的化合物,包括蛋白,肽,脂质和小分子如内源性代谢物。用基质辅助激光解吸/电离(MALDI)的MSI,多个代谢物的空间分布,可以同时检测到。在此,特别为豆科植物的根和根瘤中进行非靶向代谢物组的MSI实验开发了一种方法,提出这可能揭示见解发生的生物过程。该方法,这里介绍显示了一个典型的MSI的工作流程,从样品制备到图像采集,并集中于矩阵的应用步骤,表明是用于检测小分子的有用的几种基质应用技术。一旦生成了多光谱图像,感兴趣代谢物的分析鉴定,讨论和论证。标准工作流程这里介绍可以很容易地修改为不同的组织类型,分子种类,和仪器仪表。

引言

代谢组学领域的发展具有许多重要的生物学应用,包括生物标志物的发现,破译代谢途径在植物和其他生物系统,和毒理学分析4,6-10。研究生物系统时,一个主要的技术挑战是研究代谢途径,而不破坏它们11。 MALDI-MSI允许完整的组织的直接分析,使敏感的检测分析物的单一器官12,13,甚至单个细胞14,15。

样品制备是生产重现性好,质量可靠的光谱图像的关键一步。的图像的质量极大地依赖于因素,例如组织包埋剂,切片厚度,MALDI基质和基质的应用技术。用于成像应用中,理想的部分的厚度是1小区(8-20微米取决于样品类型)的宽度。 MALDI需要有机,晶体沉积Ë基复合材料,通常是弱酸,对样本,以协助分析消融和电离,16个不同的矩阵提供不同的信号强度,干扰离子,以及不同类别的化合物的离子化效率。

矩阵应用技术也起着质谱图像和不同的技术质量的作用适用于不同类的分析物。三个矩阵应用方法载于本协议:喷枪,自动喷雾器,和升华。喷枪矩阵应用程序已被广泛应用于MALDI成像。喷枪矩阵应用的优点在于它是相对快速和容易的。然而,喷枪矩阵应用的质量在很大程度上取决于用户的技能,而且往往是较少重现性,并导致被分析物的扩散,特别是小分子17。自动喷雾系统也有类似的机制,以喷枪矩阵的应用,但甲肝Ë已经发展到去除看到与手动喷枪应用程序的多变性,使得喷雾更具有可重复性。这种方法有时会耗费更多的时间比传统喷枪矩阵的应用。手动喷枪,自动喷雾系统是溶剂型矩阵的应用方法。升华是,正成为越来越流行的代谢物和小分子的质谱成像,因为它减少分析物扩散的干基质的应用技术,但它缺乏必要的溶剂提取,并观察更高质量的化合物18。

自信鉴定代谢物通常需要精确质量测量,以获得公认的鉴定其次是串联质谱(MS / MS)的实验进行验证,与MS / MS谱图相比,目前的标准,文学,或理论光谱。在这个协议中高分辨率(质量分辨60,000 m / z为400的电源),液相色谱(LC)-MS连接到MALDI-MSI同时获得空间信息和内源性代谢物鉴定信心,用苜蓿根系和根瘤的生物系统。 MS / MS实验,可直接执行的组织与MALDI-MSI或组织提取物的LC-MS和用于代谢物的鉴定的验证。

该协议提供了一种简单的方法来映射内源性代谢物M。苜蓿 ,这可适应和应用于在各种组织类型和生物系统的小分子的MSI。

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

研究方案

1。仪器仪表

  1. MALDI-TOF/TOF微星。使用质谱仪配备了MALDI源小分子的分析(见表材料/设备)。在正或负离子模式取决于目标分析物进行收购。指定所关注的质量范围内,并在50微米的间隔在两个跨样本生成离子图像的表面的x和y维度收集500次激光发射/斑点。激光照射的光栅宽度和数量可以调节,分别得到更高的空间分辨率和最大信号强度。使用DHB基质峰或施加于滑动或直接向组织校准质谱内部标准。
  2. 高分辨率LC-MS。 (见表材料/设备)运行样品提取物使用任一反相(RP)的LC与C-18柱,或正相(NP)与HILIC柱根据相关分析物的LC-MS分析。用流动相和使之适用于特定样品类型梯度。在正或负的离子模式取决于样品类型进行采集。

2。组织准备

  1. 从修剪植物的根瘤,留下3-4毫米根部附着于结节。
  2. 立即解剖后,使用镊子将组织在低温恒温器杯和盖在明胶(100毫克/毫升的去离子水)。至关重要的是,所述组织被粘在杯的无气泡的底部。
  3. 闪光通过将杯子在干冰/乙醇浴中,直到明胶硬化并变得不透明冻结的组织。店内样品于-80℃直至使用。
  4. 从取出样品-80℃冰箱,剪去塑料低温恒温杯和修剪掉多余的明胶。安装包埋组织的低温恒温器与卡盘的最佳切割温度(OCT),媒体一角钱大小的量,而不是让华侨城触碰组织。放置在低温恒温器框,直到华侨城凝固。
  5. 允许所述卡盘和明胶在低温恒温器箱(设定为-20℃或-25℃)中平衡约15分钟。
  6. 使用低温恒温器(见表材料/设备),以部分组织1细胞的约的厚度(8-20微米取决于组织类型)和解冻温热的背面(非ITO装载每个片上ITO膜的玻璃涂在手上的背面涂有ITO的玻璃载片的一侧)。将冷冻组织切片靠近温热滑动的带ITO膜的一侧,并允许片粘到滑动。配售部分并拢的幻灯片将微星过程中提供更好的定位。

3。矩阵的应用

  1. MALDI基质的喷笔应用
    1. 所有的喷枪程序应在通风橱中进行。
    2. 彻底清洁喷枪液的容器和喷嘴(见表材料/设备),以甲醇和填充溶液的容器与DHB基质溶液(150毫克/毫升50%甲醇%TFA体积/体积)。
    3. 从样品约35厘米握住喷枪和应用10-15涂层基体的滑动表面上以10秒的喷射持续时间和在各涂层之间30秒的干燥时间。
    4. 彻底完成时,避免基质溶液堵塞用甲醇再次清洁喷枪。
  2. MALDI基质自动喷雾机的应用
    1. 遵循自动喷雾器系统的制造商提供的启动指令。
    2. 在使用40毫克/毫升的根瘤代谢物的MSI(在50%甲醇%TFA体积/体积)DHB作为基质,设定温度为〜80℃,速度到1250毫米/分钟,流速为50微升/分钟,并通到24的数。为了获得最佳覆盖,建议以旋转喷嘴90°和/或偏移每遍之间的喷嘴1.5毫米。启动喷雾器方法。
      作为SI去说明,这里使用的特定的喷雾器系统,加热喷嘴的溶剂的蒸发速度更快。作为溶剂蒸发时,该矩阵的浓度迅速增加。施加到样品的喷枪和自动喷雾器中的矩阵具有可比的浓度。
    3. 遵循由自动喷雾器系统的制造商提供的关机指令。
  3. MALDI基质的升华应用
    1. 称出300毫克DHB进入升华室的底部(见表的材料/设备)。
    2. 粘在载玻片上的指形冷冻器(在升华室的顶部部分)与组织切片朝下用双面导电胶带。盖在所述双面胶带的滑动,即使导电性的整个背面,产生甚至基质沉积。
    3. 夹紧升华室的顶部和底部两半连同C形夹。连接真空和广告ð冰和冷水顶端水库。
    4. 放置升华室中的加热套是在室温下。
    5. 打开真空泵。等待15分钟,然后打开加热套。加热套应达到120℃以上10分钟的过程。
    6. 10分钟后,关闭加热,关闭阀门,以真空(这样所述腔室的内部保持在真空条件下),然后将真空泵关闭。
    7. 允许该腔室,以恢复到室温,打开阀门释放真空压力,取出样品。在升华室的尺寸将确定矩阵的升华到载玻片上的量。较大的升华室(400毫升烧杯中的尺寸)将使用大约300毫克DHB的,而较小的腔室(150毫升烧杯中的尺寸)将使用大约100毫克DHB的,并且需要切割的玻璃载玻片,以便它适合在该腔室。

4。图像采集

  1. 标记样品的每一个角落+模式与WiteOut涂改液笔被用来作为“教点”。将载玻片放入MALDI滑接板,并用扫描仪取的样品的光学图像。
  2. 使用仪器公司为50μm的光栅的步长和激光直径等于或小于光栅的步长越小提供的软件设置的图像获取的文件。在这个特殊的仪器,最小激光设置给出的约10微米的和小的激光设置一个激光直径具有40-50微米的直径。
  3. 加载光学图像进入软件并与光学图像对准板。
  4. 使用常见的矩阵簇离子,内部标准,或校准组合开始收购前对仪器进行校准。
  5. 组织指定的区域与MSI进行分析,包括纯矩阵的投影片上的斑点被用来作为一个“空白”。
  6. 交流开始quisition。

5。图像生成

  1. 在由供应商提供的商业软件打开成像文件并提取离子图像。其他开源软件是供微星数据处理19。

6。代谢物鉴定

  1. 选择特定米/利息,自质谱使用供应商特定的软件Z(见表材料/设备)。分析物可以从一个矩阵离子进行区分时被分析物峰的质谱选择和产生离子的图像特异性定位于组织部分。
  2. 生成感兴趣的分析物的列表,并执行MS / MS实验。 见表1表2中的分析物的样品清单代表性的成果。
  3. 进行有针对性的LC-MS分析在高分辨率质谱仪(或高分辨率MALDI-MS如果有的话),以获得准确感兴趣的分析物的质量测量,并进行目标分析物的LC-MS/MS得到的特征裂解方式。
  4. 搜索以确定假定的标识为目标分析物进行数据库。代谢物数据库的例子包括:METLIN,ChemSpider,PubChem数据库,KEGG和HMDB。
  5. 以确认从精确质量数据库检索推定的标识,匹配的MS / MS的目标分析物的标准文献,和/或碎裂预测软件MS / MS谱图。

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

结果

MSI的实验概述示于图1。在实验的开始,样品制备是关键的一步。结节是从植物根修剪和嵌入在明胶。该组织必须被压平的低温恒温器茶杯中,用无气泡,而它被冻结,这将确保组织更容易和正确对齐,而它被切开。当组织已经被切片,重要的是要切断的组织在适当的厚度;太薄部分撕裂,搞坏了组织的完整性,而过厚的部分会降低分析物提取的,并从组织检测到的数量。选择矩阵和?...

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

讨论

如上所述,样品的准备是在MSI的工作流程中最关键的步骤。不均匀地嵌入组织将导致切片是在某些情况下难于或不可能的。截面尺寸和足够的平衡时间是至关重要的维持组织的完整性,避免折叠和泪水。选择矩阵和应用技术将在确定待检测的分析物的种类的作用,空间分辨率,其结果的再现性。使用矩阵或应用技术的组合可以提供互补的结果。

这个方法是专门为内源性代谢?...

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

披露声明

作者宣称,他们有没有竞争的财务权益。

致谢

作者要感谢让-米歇尔·ANE博士农艺学系威斯康星大学麦迪逊分校提供蒺藜苜蓿样品。这项工作是由美国国家科学基金会(NSF)提供资金支持部分补助CHE-0957784,威斯康星大学的研究生院和威斯康星校友研究基金会(WARF)和Romnes学院研究奖学金计划(以当地雇员)。 EG承认了美国国家科学基金会研究生研究奖学金(DGE-1256259)。

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

材料

NameCompanyCatalog NumberComments
GelatinDifco214340heat to dissolve
Cryostat- HM 550Thermo Scientific956564A
Indium tin oxide (ITO)-coated glass slides Delta TechnologiesCB-90IN-S10725 mm x 75 mm x 0.8 mm (width x length x thickness)
2,5-Dihydroxybenzoic acid (DHB) matrix ICN BiomedicalsPI90033
AirbrushPaasche Airbrush CompanyTG-100Dcoupled with 75 ml steel container
Automatic matrix sprayer system- TM-SprayerHTX Technologies, LLCHTX.TMSP.H021-USpecific start-up and shut-down instructions will be given when the instrument is installed
Sublimation apparatus Chemglass Life ScienceCG-3038-01
Vaccum pump- Alcatel 2008 AIdeal Vacuum ProductsP10976Ultimate Pressure = 1 x 10-4 Torr
ultrafleXtreme MALDI-TOF/TOFBruker Daltonics276601
FlexImagingBruker Daltonics269841One example of "vender specific software"
MALDI LTQ OrbitrapThermo ScientificIQLAAEGAAPFADBMASZHigh resolution MALDI instrument for accurate mass measurements
Q ExactiveThermo ScientificIQLAAEGAAPFALGMAZRHigh resolution LC-MS instrument for accurate mass measurements

参考文献

  1. Seeley, E. H., Schwamborn, K., Caprioli, R. M. Imaging of Intact Tissue Sections: Moving beyond the Microscope. J. Biol. Chem. 286, 25459-25466 (2011).
  2. van Hove, E. R. A., Smith, D. F., Heeren, R. M. A. A concise review of mass spectrometry imaging. J. Chromatogr. A. 1217, 3946-3954 (2010).
  3. Lietz, C. B., Gemperline, E., Li, L. Qualitative and quantitative mass spectrometry imaging of drugs and metabolites. Adv. Drug Deliv. Rev. 65, 1074-1085 (2013).
  4. Ye, H., et al. MALDI mass spectrometry-assisted molecular imaging of metabolites during nitrogen fixation in the Medicago truncatula-Sinorhizobium meliloti symbiosis. Plant J. 75, 130-145 (2013).
  5. Ye, H., Gemperline, E., Li, L. A vision for better health: mass spectrometry imaging for clinical diagnostics. Clin. Chim. Acta. 420, 11-22 (2013).
  6. Wei, R. Metabolomics and Its Practical Value in Pharmaceutical Industry. Curr. Drug Metab. 12, 345-358 (2011).
  7. Kobayashi, T., et al. A Novel Serum Metabolomics-Based Diagnostic Approach to Pancreatic Cancer. Cancer Epidem. Biomar. 22, 571-579 (2013).
  8. West, P. R., Weir, A. M., Smith, A. M., Donley, E. L. R., Cezar, G. G. Predicting human developmental toxicity of pharmaceuticals using human embryonic stem cells and metabolomics. Toxicol. Appl. Pharm. 247, 18-27 (2010).
  9. Spegel, P., et al. Time-resolved metabolomics analysis of beta-cells implicates the pentose phosphate pathway in the control of insulin release. Biochem. J. 450, 595-605 (2013).
  10. Pendyala, G., Want, E. J., Webb, W., Siuzdak, G., Fox, H. S. Biomarkers for neuroAIDS: The widening scope of metabolomics. J. Neuroimmune. Pharm. 2, 72-80 (2007).
  11. Prell, J., Poole, P. Metabolic changes of rhizobia in legume nodules. Trends Microbiol. 14, 161-168 (2006).
  12. Kutz, K. K., Schmidt, J. J., Li, L. J. In situ tissue analysis of neuropeptides by MALDI FTMS in-cell accumulation. Anal. Chem. 76, 5630-5640 (1021).
  13. Stemmler, E. A., et al. High-mass-resolution direct-tissue MALDI-FTMS reveals broad conservation of three neuropeptides (APSGFLGMRamide, GYRKPPFNGSIFamide and pQDLDHVFLRFamide) across members of seven decapod crustaean infraorders. Peptides. 28, 2104-2115 (2007).
  14. Rubakhin, S. S., Churchill, J. D., Greenough, W. T., Sweedler, J. V. Profiling signaling peptides in single mammalian cells using mass spectrometry. Anal. Chem. 78, 7267-7272 (1021).
  15. Neupert, S., Predel, R. Mass spectrometric analysis of single identified neurons of an insect. Biochem. Bioph. Res. Co. 327, 640-645 (2005).
  16. Caprioli, R. M., Farmer, T. B., Gile, J. Molecular imaging of biological samples: localization of peptides and proteins using. MALDI-TOF MS. Anal. Chem. 69, 4751-4760 (1997).
  17. Baluya, D. L., Garrett, T. J., Yost, R. A. Automated MALDI matrix deposition method with inkjet printing for imaging mass spectrometry. Anal. Chem. 79, 6862-6867 (2007).
  18. Hankin, J. A., Barkley, R. M., Murphy, R. C. Sublimation as a method of matrix application for mass spectrometric imaging. J. Am. Soc. Mass Spectrom. 18, 1646-1652 (2007).
  19. Robichaud, G., Garrard, K. P., Barry, J. A., Muddiman, D. C. MSiReader: an open-source interface to view and analyze high resolving power MS imaging files on Matlab platform. J. Am. Soc. Mass Spectrom. 24, 718-721 (2013).
  20. Northen, T. R., et al. Clathrate nanostructures for mass spectrometry. Nature. 449, (2007).
  21. Shrivas, K., Hayasaka, T., Sugiura, Y., Setou, M. Method for simultaneous imaging of endogenous low molecular weight metabolites in mouse brain using TiO2 nanoparticles in nanoparticle-assisted laser desorption/ionization-imaging mass spectrometry. Anal. Chem. 83, 7283-7289 (2011).
  22. Thomas, A., Charbonneau, J. L., Fournaise, E., Chaurand, P. Sublimation of new matrix candidates for high spatial resolution imaging mass spectrometry of lipids: enhanced information in both positive and negative polarities after 1,5-diaminonapthalene deposition. Anal. Chem. 84, 2048-2054 (2012).
  23. Chen, S., et al. 2,3,4,5-Tetrakis(3',4'-dihydroxylphenyl)thiophene: a new matrix for the selective analysis of low molecular weight amines and direct determination of creatinine in urine by MALDI-TOF MS. Anal. Chem. 84, 10291-10297 (2012).
  24. Shroff, R., Rulisek, L., Doubsky, J., Svatos, A. Acid-base-driven matrix-assisted mass spectrometry for targeted metabolomics. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 106, 10092-10096 (2009).
  25. Shroff, R., Svatos, A. Proton sponge: a novel and versatile MALDI matrix for the analysis of metabolites using mass spectrometry. Anal. Chem. 81, 7954-7959 (2009).
  26. Shimma, S., Setou, M. Mass Microscopy to Reveal Distinct Localization of Heme B (m/z 616) in Colon Cancer Liver Metastasis. J. Mass Spectrom. Soc. Jpn. 55, 145-148 (2007).
  27. Paschke, C., et al. Mirion-A Software Package for Automatic Processing of Mass Spectrometric Images. J. Am. Soc. Mass Spectrom. 24, 1296-1306 (2013).
  28. Parry, R. M., et al. omniSpect: an open MATLAB-based tool for visualization and analysis of matrix-assisted laser desorption/ionization and desorption electrospray ionization mass spectrometry images. J. Am. Soc. Mass Spectrom. 24, 646-649 (2013).

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

转载和许可

请求许可使用此 JoVE 文章的文本或图形

请求许可

探索更多文章

85 MALDI TOF TOF

This article has been published

Video Coming Soon

JoVE Logo

政策

使用条款

隐私

科研

教育

关于 JoVE

版权所属 © 2025 MyJoVE 公司版权所有,本公司不涉及任何医疗业务和医疗服务。