高产净化<em&gt;恶性疟原虫</em&gt;裂殖子适用于Opsonizing抗体检测

摘要

测量抗体功能的关键是了解免疫力恶性疟原虫疟疾。这个方法描述了可行的裂殖子的纯化和调理作用的依赖性吞噬作用通过流式细胞术测量。

摘要

恶性疟原虫裂殖子抗原正在开发作为潜在的疟疾疫苗。免疫抵抗疟疾的一个方面是消除游离裂殖子从血液吞噬细胞。然而评估裂殖子特异性opsonizing抗体的功能性功效是由于裂殖子的短半衰期和主吞噬细胞的变异性的挑战。本文详细描述的是这样一种方法，用于产生可行的裂殖子使用E64蛋白酶抑制剂和裂殖子的使用亲单核细胞系THP-1的测定调理素依赖性吞噬作用。 E64阻止裂殖体破裂，同时允许它们由处理裂殖体的过滤释放的裂殖子的发展。溴化乙啶标记的裂殖子被调理的与人的血浆样品，并添加到THP-1细胞。吞噬作用是通过一个标准化的高通量协议进行评估。可行的裂殖子是评估NUMER的宝贵资源P的项方面恶性生物学，包括免疫功能的评估。此法检测抗体水平与临床免疫疟疾的自然暴露的人有关。该法也可用于评价疫苗诱导的抗体。

引言

抗体的抗恶性疟原虫疟疾的重要性，表明40年前，从超免疫的成年人，当免疫球蛋白被动地被转移到儿童造成病情缓解¹重症疟疾。因此，相当大的努力一直试图确定的保护性疟疾免疫的目标，主要是通过测定抗体滴度，以用ELISA肽或细菌表达的蛋白质。基于ELISA的血清学检查也证明研究之间充满变数，并且不涉及抗体的功能^2。许多疟疾抗原诱导嗜细胞IgG1和IgG3抗体形象，特别是裂殖子表面抗原^3。本小类偏压表明与吞噬细胞的抗体的Fc受体（FcR的）相互作用对于opsonizing antimerozoite抗体⁴的效应子功能重要的。正在开发中的几个裂殖子抗原疫苗被设计引起巨噬细胞的效应功能^5，6，虽然对抗体Fc受体的相互作用在啮齿类动物疟疾模型的重要性显著证据^7-9，和最近的一些研究支持功能的抗体和吞噬细胞效应功能的免疫力疟疾在人类的重要性^10，11，这方面的研究仍然很差。研究成裂殖子的具体opsonizing抗体已经由两个因素受到限制;难度在隔离良好的品质裂殖子;从原代细胞和吞噬变量的反应。

直到最近，高速离心或Percoll密度梯度被用于从裂殖体破裂文化的培养上清液分离的裂殖子。这些裂殖子很少是可行的，而且往往是由密度梯度离心进一步处理和多次洗涤步骤^12，或者冷冻保存¹¹试验后方可使用。这些PROCS弯潜在的分离从裂殖子表面许多周边相关的蛋白质，称为是疟疾的免疫力¹³抗原的目标蛋白质。最近的半胱氨酸蛋白酶抑制剂反式Epoxysuccinyl-L-leucylamido（4 - 胍基）丁烷（E64）已被用来产生可行的裂殖子。 E64阻止裂殖体破裂，产生膜封闭的裂殖子^14，它可以通过过滤打乱解放可行的裂殖子^15，16。这种技术已导致许多蛋白质的红细胞浸润^15，17-19在空间分辨率和澄清的几个抗疟药^16,20的阶段特异性作用。然而，可行的裂殖子的生成保持在技术上具有挑战性。为了帮助这个技术和应用，以免疫功能分析，对可行的裂殖子净化和其使用的一个详细的协议的传播抗体的标准化功能测定:在调理作用和吞噬细胞的合作在这里描述。

这种技术表明了显著提前比以前的体外测定裂殖子调理作用，如嗜中性粒细胞呼吸爆发，抗体依赖性细胞抑制（ADCI），和替代裂殖子的吞噬作用测定。这些测定是由于变异寄生虫的输入和主吞噬细胞^11，21的活性重复性差。污染疟原虫色素也可能会深刻地影响吞噬细胞功能^22。最近报告的稳健和可重复的裂殖子的吞噬功能试验²³采用了前单核细胞株THP-1 ^24。这是一种理想的细胞类型用于高通量流式细胞仪检测，因为它是无粘性的具体执行的Fc-受体介导的吞噬作用^25,26。一个额外的复杂性，同时不变拟tigating吞噬作用是，吞噬作用的程度取决于相对于THP-1细胞和血浆浓度的裂殖子的数量。为了确保实验之间的重现性，裂殖子应列举和规定浓度使用。由于其体积小，流式细胞仪定量分析是必要的。

这里所描述的过程将删除疟原虫色素生成可行的裂殖子，并介绍了这些裂殖子的裂殖子后调理作用和吞噬作用的流式细胞计数的应用程序。虽然技术要求高，所描述的技术可在阐明的裂殖子表面特异性抗体应答的贡献，以自然获得与疫苗诱导的免疫证明是有用的。

研究方案

注:所有步骤，除了离心分离和流式细胞术，应该在层流罩内进行，以保持无菌。确保适当的预防措施，有关人体标本的处理。该法是少量的等离子非常敏感。提供的稀释液是最优的解决对策介乎5 - 78％，自巴布亚新几内亚（PNG）半儿童免疫血浆。最佳稀释度可以与等离子体套被测试而变化，因此，建议等离子体被滴定，以确定试验条件下对每一个应用程序。确保列入2阴性对照THP-1细胞在缺乏血浆的裂殖子;和THP-1细胞的裂殖子调理与血浆疟疾天真的个人池。这将允许控制对裂殖子粘附到THP-1细胞，并使细胞吞噬活动严格流式细胞门控。

使用PNG血浆样品是经医学研究咨询委员会，卫生巴布亚新几内亚部，瓦尔特和Eliza霍尔学院人类研究伦理委员会（项目编号04/04号）。书面同意从所有参与者的父母/监护人取得。

1，THP-1培养

1. 维持人类单核细胞系THP-1中添加了10％胎牛血清（FCS）和55μM2 - mercapthoethanol（THP-1培养基）的RPMI-1640培养基中，并在37℃下在5％CO ₂的湿润培养箱。
2. 维持细胞在低于5×10 ⁵细胞/ ml的密度。注意:过度生长会导致分化为粘附细胞和下调的Fc受体。一旦细胞已传代约10次，解冻一个新的小瓶，以保持细胞的表型。

2，抗体样品制备和稀释

1. 热灭活血浆孵育在56℃进行测试和疟疾天真控制等离子;℃30分钟
2. 连续稀释血浆样本的1/2，000 THP-1介质。
3. 在-20℃下存储稀释血浆

高度同步的P的3。文化恶性疟原虫

注:表达GFP的寄生虫线D10-PfPHG ²⁷是利用由于其48小时的生命周期这有助于寄生虫的同步和E64另外的控制时序。此外，因为该行的GFP表达在细胞质中，这条线可以检测寄生虫和免费裂殖子通过流式细胞仪检测GFP的。但是，GFP荧光强度是不够的THP-1细胞内提供的可视化，并且因此，裂殖子被counterstained用溴化乙锭（EtBr的）。其他寄生虫菌株可以利用，只要严格的同步性是可以实现的。使用山梨糖醇处理的组合以裂解成熟形式²⁸和肝素抑制侵袭¹⁵同步的寄生虫。

1. 维护体育恶性疟原虫在RPMI-1640培养基3％的血细胞比容（pH 7.4）中添加了25毫克/毫升HEPES，50μg/ ml的次黄嘌呤，10％合并的人血清，2毫克/毫升碳酸氢钠寄生在O +人红细胞（RBC），及20微克/毫升的庆大霉素（寄生虫介质）。添加5毫克/毫升的杀稻瘟菌素S-盐酸加入到培养基中以选择的GFP +寄生虫。
2. 在1％的O _{2，4％CO 2}和95％N ₂的气氛中孵育培养物在气密箱或替代双密封培养瓶中，在37℃。
3. 制备薄涂片，在100％甲醇中，持续10秒固定，染色并在6.7毫米（pH值7.1）10分钟来监测寄生虫血症的磷酸缓冲液（吉姆萨液）10％吉姆萨溶液。染色后，冲洗幻灯片水和空气干燥。使用100X油镜评估原虫。
4. 维持寄生虫培养在5％以下感染的红细胞一个由原虫文化分裂和增加感染红细胞的要求。
5. 与肝素同步，加医疗级肝素20 IU / ml的响阶段的文化。
6. 当大部分寄生虫是在裂殖体阶段，沉淀细胞，在300×g离心5分钟，除去含有肝素的培养基中重悬在寄生虫介质，以允许裂殖体破裂和裂殖子侵入。
7. 4小时后，加入20 IU / ml的肝素回到文化，阻止任何进一步的裂殖子入侵。注:可能需要山梨醇和肝素治疗的几个周期之前寄生虫充分同步。要生成合适的数量裂殖子，准备150毫升寄生虫文化在3 - 5％寄生虫。

晚期P的4。隔离恶性疟原虫滋养体

1. 返回肝素培养后三十六个小时，沉淀培养的细胞在300×g离心5分钟，并在25％的血细胞比容重新悬浮颗粒在介质中的寄生虫。
2. 附上一个大的磁柱（6.3基质体积毫升），以一个磁体，并平衡与寄生虫介质的柱，并确保所有的气泡都被删除。
3. 添加悬浮体育恶性疟原虫文化柱，并调整流量，以每秒一滴。
4. 一旦培养已通过该柱，用寄生虫介质洗柱，直到流过运行清楚。
5. 从30毫升37℃寄生虫介质的柱中流出的寄生虫。
6. 准备一个薄寄生虫涂片，在100％甲醇，持续10秒修正，并与染色3分钟姬姆萨液。检查在显微镜下的幻灯片，并确保寄生虫几乎填补了红血细胞，而且似乎是在早期裂殖体阶段。如果寄生虫都没有达到相应的成熟阶段，回归纯净寄生虫到37℃培养箱中1％的O _{2，4％CO 2}和95％N ₂的气氛中，直到适当展开。是必需的纯度大于90％的受感染的红细胞，以确保注:注的BC不会污染裂殖子的准备。
7. 对待分离的裂殖用10μME64（Epoxysuccinyl-L-leucylamido（4 - 胍基）丁烷（E64）为6 - 10小时注:停止孵育时间与E64是可能的，但是产生的裂殖子将不再侵入。

5，隔离P的恶性疟原虫裂殖子

1. 温育后用E64，涂抹寄生虫，固定的细胞用100％甲醇中，染色用吉姆萨溶液以评估膜封闭的裂殖子的形成。注意:如果寄生虫大于50％已经形成膜封闭裂殖子裂殖子的一个很好的收益会得到。
2. 以1,900×g离心8分钟颗粒E64处理裂殖。用50毫升室温的RPMI-1640培养基（pH 7.4）中添加了25毫克/毫升HEPES，50μg/ ml的次黄嘌呤，2毫克/毫升的碳酸氢钠，和20微克/毫升庆大霉素（洗涤培养基）洗以除去剩余的人血清。
3. 重悬浮颗粒在2毫升的洗涤介质。注:使用FCS的THP-1媒体会产生过滤过程中起泡。
4. 通过1.2μm/32毫米注射器过滤器过滤器2毫升重悬E64-裂殖体。收集的滤液在10ml的试管中。注意:滤液含裂殖子和疟原虫色素晶体，具有收集在过滤器中未破裂的裂殖体和碎片。
5. 小磁列附加到一个磁体，并平衡用500μlTHP-1培养基中。
6. 通过滤液在磁列。收集流过。注:疟原虫色素会绑定到列，而裂殖子会通过。
7. 通过流过比该柱两次以除去疟原虫色素，通过每次收集的流动。
8. 用2毫升RT THP-1介质冲洗色谱柱，以收集任何剩余的裂殖子。
9. 加溴化乙锭在10微克/毫升（最终浓度）和染色30分钟，在RT。避光，防止漂白。注意:确保所有溴化乙锭污染液体和p城塑料废物在适宜的细胞毒性的化学物质的方式处置。裂殖子不再侵入下面的这个孵化。
10. 降速裂殖子在4000×g离心10分钟。
11. 弃上清到适当的废物容器。
12. 重悬裂殖子沉淀在4毫升的THP-1中和降速于4000×g离心10分钟。
13. 添加THP-1中型高达15毫升的体积，避光。

6，量化裂殖子浓度流式细胞仪

1. 把计数珠至室温。
2. 制备PBS与0.5％BSA稀释的裂殖子。
3. 裂殖子数为3的稀释; 1 100; 1 50和1 25。准备3 FACS管与940，930和910微升PBS +0.5％BSA的分别。加10，20和40微升每管纯化的裂殖子，分别为。
4. 涡流计数珠，持续30秒，然后加入50微升每含有稀释的裂殖子的FACS管珠。
5. 运行三稀上的流uted裂殖子样本流式细胞仪配备有488nm的激光。基于溴化乙锭和GFP荧光双荧光裂殖子，和栅极计数珠的荧光在一个单独的通道上设置一个严格的门。收购事件，直到2000珠被收集。注意:这些指令是指计数的GFP +裂殖子已被反沾上溴化乙锭。如果不利用绿色荧光蛋白表达的寄生虫然后设置基于侧向散射和溴化乙锭荧光裂殖子门。
6. 确定裂殖子的比率:通过分割的裂殖子事件的数量由2000计数珠事件珠，计算每个稀释度的比率。使用计数珠子批次规格来确定在50μl的珠子每管中加入小珠的数量。
7. 通过稀释因子和裂殖子倍增的小珠的数量在50微升:珠比率为稀释因子。这个数目相当于每毫升裂殖子的浓度。执行日ESE每个稀释步骤。
8. 平均跨越三个稀释度测定的裂殖子的浓度。注:超过10％的标准偏差为100，1 50确定为1的浓度，并在1 25稀释表明技术上的不准确编制计数样品。
9. 裂殖子悬浮于8×10 ⁶个裂殖子/在THP-1毫升培养基中，以确保每THP-1细胞的裂殖子4的最终比例。注:也可以使用其它裂殖子，以THP-1的比率，和浓度应作相应修改。

7，吞噬分析

1. 加入200μl每96孔U型底板以及散热无效的FCS，并在室温O / N离开阻断板。孵育后，取出FCS和200微升无菌PBS洗两次井。在4℃下除去PBS及储存板，直到需要。
2. 计算测试血浆样品和对照所需的THP-1细胞的数目，从而允许每个样品一式三份孔中以1×10 5 THP-1细胞以每孔。
3. 通过加载到血球滑板10微升培养物测定THP-1培养浓度。计数细胞中存在的4套的血球计16角落正方形，在显微镜下数，然后平均计数。乘以平均计数由万计算每毫升的细胞数。
4. 降速THP-1细胞所需数量的，在500×g离心5分钟，并重新悬浮于6.7×10 ⁵细胞/在THP-1培养基毫升。
5. 加入150μlTHP-1细胞以每孔THP-1培养基中，以一个FCS封闭96孔U型底的板，导致10 ⁵个细胞/孔。准备每个样品3井进行测试。返回板孵化器，直到准备添加裂殖子。
6. 在8×10 ⁶个/ ml的每加入150μl裂殖子的制备以及一个单独的FCS封闭96孔U型底的板。每个样品测试准备一台好
7. 加入10微升准备稀释的血浆样品，每孔，到t他板包含裂殖子，拌匀，以保证均匀的溶液。
8. 从培养箱中取出的THP-1块板，并加入50微升的裂殖子/血浆溶液，每孔含有THP-1细胞，以每血浆样品一式三份孔。
9. 拌匀，并在5％的CO _2，饱和湿度培养箱中培养40分钟，在37°C。盖上铝箔避光。
10. 40分钟后，在4℃下离心样品5分钟，在500 XG离心机预冷逮捕吞噬。
11. 除去上清液，并在冰冷的PBS 0.5％BSA 2毫摩尔EDTA（FACS缓冲液）洗涤细胞两次。注意:EDTA将有助于在维持单细胞悬浮液用于流式细胞术分析。
12. 修正了在PBS +0.5％BSA +2毫米EDTA（FACS固定液）90微升2％多聚甲醛（PFA）的细胞。置于冰上，直到采集，避光。

8，流式细胞仪

1. 使用流式细胞仪配备无线网络获得的样品TH 488 nm激光和高通量酶标仪附件。注意:这将使多达400血浆样品从一个裂殖子准备进行测试。细胞也可以转移到管手工上样。
2. 门上可行的THP-1细胞通过前向和侧向散射。
3. 设置EtBr的正栅极基于"THP-1细胞与裂殖子和没有等离子体的控制范围。
4. 获得至少每个样品10,000个事件。

9。数据分析

1. 用流式细胞仪分析软件，并设置严格的闸门溴化乙锭正面事件分析数据。
2. 计算百分比吞噬每个样品:溴化乙锭+细胞的样品减去与非免疫血浆的％阳性细胞％。
3. 跨越式三份的平均结果。注:标准偏差超过10％表示一式三份实验误差。一些背景EtBr的阳性事件可以被观察为merozoi的结果特密合性THP-1细胞的表面，但应该是一致的两端含有裂殖子的所有样品。设置栅极基于"THP-1细胞与裂殖子和没有等离子体'控制，然后减去"THP-1细胞与非免疫血浆'控制的任何背景将导致％吞噬作用，反映了荧光由于内在/吞噬仅裂殖子。

结果

之前E64治疗寄生虫的成熟阶段是用于产生膜封闭的裂殖子的关键。 图1AI显示可用于添加E64裂殖体的适当成熟阶段。寄生虫要大，几乎填满红细胞。姬姆萨染色的斑驳的外观表示裂殖生殖已经开始，和E64应该加入以产生膜封闭的裂殖子（ 图1Aii）。如果E64是较早加入滋养体阶段的寄生虫，即使经过12小时的E64不会产生膜封闭的裂殖子。相反寄生虫承担形态异常，如消化液泡（ 图1BI和1Bii）的扩大，和裂殖子都没有形成。如果E64是后来添加到裂殖体，不会产生膜封闭裂殖子的裂殖体破裂是不羁（ 图1CI和1Cii）。寄生虫同步高水平的要求，其他明智的一系列描述的所有三种结果都将E64治疗后可以看到。

去除疟原虫色素是用于净化裂殖子的另一个关键步骤。如果裂殖子不会从疟原虫色素纯化，然后裂殖子，疟原虫色素簇形成不能用移液被抛下。这些聚集体的流式细胞仪上运行的单个事件，虽然比单一的裂殖子不同的前向散射和侧散射特性，从 ​​而导致不准确的裂殖子的计数通过流式细胞术（ 图2A）。如THP-1细胞也可以吞噬疟原虫色素，这些裂殖子，疟原虫色素簇也可以吞噬（ 图2B）。这些总量是高度溴化乙锭荧光，因为它们包含多个裂殖子。吞噬作用的聚集体的结果等效于所观察到的多个单独的裂殖子的吞噬一个THP-1的EtBr荧光分布。因此，如果疟原虫色素不会被删除，THP-1细胞的溴化乙锭荧光将邻verestimate的opsonizing潜力被测试的血浆。疟原虫色素也被报告给显著改变巨噬细胞功能。 GFP阳性裂殖子被计数器沾上的EtBr增加裂殖子由THP-1细胞吞噬的可视化。使用本协议所述的条件，所有的GFP阳性裂殖子被counterstained用溴化乙锭其中有一个光明的荧光强度（ 图3A）。通过溴化乙锭荧光吞噬评估使裂殖子的吞噬作用比GFP荧光（ 图3B）优异的解析度。

加入到测定裂殖子的数目将调制吞噬观察到的量。出于这个原因，精确计数通过流式细胞术是至关重要的。增加裂殖子的比率:THP-1，将导致裂殖子的增加粘附到THP-1细胞在无等离子体的（ 图4A）。增加裂殖子:THP-1的比率也导致增加的pH值agocytosis反应时裂殖子被调理（ 图4B）。 4:1裂殖子:THP-1的比例，建议稳健的吞噬反应。使用这种比例，血浆指示的稀释，该测定是能够解决opsonizing抗体的低，中和高的水平。使用PNG血浆样本和说明的其他条件介于0和78％的吞噬反应已被观察到。例如响应近来显示出与天然获得的临床免疫疟疾^10。 图5示出的4个四分位数从PNG个体的吞噬反应的实例相关联。

图1的时序E64加入是用于产生膜封闭的裂殖子的关键。 （一）适当maturatio不生成的n个级i）之前，E64治疗寄生虫，以及ii）6小时E64治疗后产生的膜封闭裂殖子（B）的膜封闭的裂殖子，如果E64加到未成熟的寄生虫。; ⅰ）晚期滋养体，以及ii）12小时E64的后（C）的裂殖破裂不如果E64被添加到末分段裂殖抑制。; I）晚期裂殖体，以及ii）后6小时E64的。标尺为10微米。

，裂殖子，疟原虫色素聚集体形式以下的膜封闭裂殖子过滤，除疟原虫色素被磁力从裂殖子中分离如图2所示。疟原虫色素去除是重要的，以产生单细胞裂殖子悬浮液（A）前向散射和侧向散射图裂殖子带疟原虫色素移除和疟原虫色素保留（B）疟原虫色素-裂殖子聚集体可以通过THP-1细胞进行吞噬。 THP-1细胞培养与PNG等离子的差异，快速染色的细胞质自旋幻灯片调理裂殖子准备带或不带疟原虫色素。标尺为10微米。

图3。溴化乙锭染色允许裂殖子的吞噬作用的优良的分辨率。D10-GFP纯化的裂殖子被counterstained用溴化乙锭，以提高荧光强度（A）流式细胞术纯化的裂殖子histrogram与浇口对GFP阳性的裂殖子，和斑点印迹示出的EtBr这门GFP阳性人群中荧光（B）前向散射与GFP和前向散射与THP-1细胞的下面的GFP和溴化乙锭双荧光裂殖子吞噬溴化乙锭。盖茨是ð rawn基于THP-1细胞与裂殖子和没有等离子体控制。

图4中的裂殖子:THP-1比值影响吞噬作用的观察到的程度。 （一）五裂殖子:THP-1的比例被描绘; 50:1，20:1，10:1，4:1，1:1。细胞只控制表示背景荧光是由于THP-1细胞。 THP-1的EtBr荧光每个比表示为裂殖子调理与PNG血浆池或与非免疫澳大利亚等离子（B）的平均数荧光THP-1细胞进行不同的裂殖子的强度:将THP-1的比例，并调理带游泳池PNG等离子或非免疫澳大利亚等离子（平均值±SEM）的。 请点击此处查看该图的放大版本。

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图5。可测大范围opsonizing抗体。裂殖子的调理与来自巴布亚新几内亚的个人血浆和孵育THP-1细胞。显示四个有代表性的吞噬反应。的基础上，THP-1细胞盖茨被画与裂殖子，并没有等离子控制和数字表示的THP-1细胞与非免疫等离子控制的减法后的％吞噬。 请点击此处查看该图的放大版本。

讨论

为了测量裂殖子的吞噬能力，​​熟练掌握两种技术是必需的:裂殖子和THP-1细胞吞噬功能测定的净化。为结合这两种技术中最关键的步骤是:1）高度同步的寄生虫; 2）添加E64在正确的时间，得到膜封闭的裂殖子; 3）删除疟原虫色素，避免聚集; 4）用流式细胞仪精确的裂殖子计数; 5）用于血浆的稀释;和6）保持低的细胞密度和THP-1细胞的传代次数。仔细考虑这些关键方面将确保强大的吞噬反应观察。

虽然，这里描述的是制备裂殖子用于评估吞噬作用，该技术可被用于广泛的应用范围。不论往下流的方法，最优裂殖子制剂依赖于正确的定时E64除了以产生裂殖子。这里所描述的E64方法已被证明为yIELD侵入的裂殖子的入侵事件及药物敏感试验^15-20高分辨率显微镜的使用。而裂殖子生存能力不是吞噬必不可少的，裂殖子表面涂层的完整性是必需的。因此，这里所描述的E64方法允许产生用于评估抗体应答的表面涂层高质量的裂殖子。作为概括在图1中，如果E64加入太早或太晚膜封闭裂殖子不形成。出于这个原因，高度同步的寄生虫培养物是必需的。这里，使用山梨糖醇及肝素治疗，以紧密地同步D10-GFP的寄生虫培养物，以2小时的窗口进行说明。肝素能促进gametocytogenesis在其他实验室分离，因此应谨慎使用。替代同步方法，例如丙氨酸也可使用，其前提是紧密同步的寄生虫产生^29。如果E64添加到异步的寄生虫，较低的道具膜封闭裂殖子钮用来将生产和剩余的寄生虫感染的红细胞要么常破裂或发展形态异常。寄生虫还没有发展成膜包围的裂殖子的存在将导致在过滤器的堵塞和显著降低得到的裂殖子产率。

中的膜封闭裂殖子过滤，疟原虫色素是从消化液泡解放，是作为游离的晶体在溶液中。疟原虫色素是高度致炎和已报道调节单核细胞和巨噬细胞吞噬反应^30,31。除了 ​​调节的吞噬作用， 如图2中 ，疟原虫色素可以形成聚集体与溶液中的裂殖子。由于THP-1细胞可以吞噬这些聚集，这可能是抗体介导的吞噬作用的分辨率的主要混杂因素。因此，清除疟原虫色素是必要的，这个实验到AV疟原虫色素对巨噬细胞生物学OID额外的复杂性。此外，未能消除疟原虫色素也可以使用这种技术时，产生游离的裂殖子用于其他应用，尤其是在裂殖子的定量要求是有害的。

如在图4中概述的，加入到测定裂殖子的数目可以由THP-1细胞吞噬作用的影响的程度。虽然流式细胞术允许裂殖子浓度，小心吸液和复制裂殖子的计数列举有必要以提高准确性。如果多个寄生虫线侧由端进行测试，这一点尤为重要。以前已经证明，从PNG半免疫儿童等离子体可显著稀释反应下降²³之前。这里描述的是等离子体的最佳稀释度（1/120，等离子体000最终稀释度）为5队列 - 12岁的儿童，PNG，产生的大范围phagocyt的，在图5中描述的尘埃沉着病回应此范围允许的响应分层分为四组（0 - 19％，20 - 39％，40 - 59％，和60 - 79％的吞噬作用），以及回归建模显示，opsonizing反应进行关联从临床疾病和高密度的寄生虫血症¹⁰保护对于不同的队列研究，可能有必要调节血浆稀释，以保证吞噬细胞引起的THP-1细胞中不饱和或低于检测水平。

流式细胞仪可以快速和可量化的吞噬作用与提高精度超过显微镜。这个协议是一种高通量，基于板和自动采集的96孔板来研究自然获得的体液免疫。该方法需要裂殖子用溴化乙锭染色，但是替代的DNA污渍如SYBRgreen，D​​API和碘化丙啶，膜的污渍或蛋白质的污渍可以被利用。此法是服从PRIMARÝ单核细胞或嗜中性粒细胞，并可以适应如吞噬细胞或生物的FcR是感兴趣的。 体外分化用PMA的原代细胞或THP-1细胞可用于研究吞噬作用于疟疾和其他病原体^{12，32-34。}然而，使用原代细胞可以是具有挑战性的，因为这些细胞是贴壁，并显示非抗体介导的吞噬作用^35。此外，变异纯度，活力和功能的一些主要限制的使用主要吞噬细胞。参与裂殖子的吞噬Fc受体依然未知，因此采用封闭抗体对特定的Fc受体可以阐明各自的Fc受体，以裂殖子吞噬的贡献。由于THP-1细胞吞噬功能的Fc受体依赖，这使得观察到的吞噬简单的解释。该测定也适合于寻址opsonizing可被util的实现抗体的抗原特异性定义敲除寄生于裂殖子表面抗原，或用亲和纯化的人抗体的裂殖子表面蛋白。此外，在深度细胞因子应答的下列裂殖子的吞噬作用研究缺乏，并且可以使用该测定法来实现。

这两项技术构成，以功能antimerozoite抗体的研究相当大的进展。高品质的裂殖子的净化是有利的，使用冷冻裂殖子，或涂裂殖子抗原荧光微球。虽然该试验中已被用作用于评价自然获得性免疫的一个工具，它可能被证明为处理采集的免疫响应于免疫接种的重要工具。而最近已表明，吞噬作用或opsonised裂殖子被保护免于临床疟疾相关联，这是不可能得出结论直接从体外的THP-1细胞吞噬到体内 phagocyto裂殖子吞噬作用在这个实验的SIS静态条件下，并在没有竞争的红血细胞的发生。因此，这个实验的潜在适应可提供一个多功能的工具，进一步了解疟疾和裂殖子吞噬。

材料

Name	Company	Catalog Number	Comments
THP-1 cell line	American Type Culture Collection	TIB-202
RPMI-1640	Gibco	31800-089
Fetal Calf Serum (FCS)	Invitrogen	10099-141
2-mercapthoethanol	Sigma-Aldrich	M6250-100ML	Use in Fume Hood
Pen/Strep Solution (100x)	Sigma	P0781
HEPES	SAFC	90909C	Cell culture grade
hypoxanthine	Calbiochem	4010
Human Serum	Donation from Autralian Red Cross		Available commercially (i.e. Invitrogen)
sodium bicarbonate (NaHCO3)	Merck	1.06329.0500
gentamycin	Pfizer	61022027	Injection Quality
heparin Sodium BP (5000IU/mL)	Pfizer		procine origin
Blasticidin S-hydrochloride	Sigma-Aldrich	15205
D-sorbitol	Sigma-Aldrich	50-70-4
E64 Protease Inhibitor	Sigma-Aldrich	E3132-10MG
KH2PO4	Sigma-Aldrich	98281-100G	Use for phosphate buffer
Na2HPO4.2H20	Merck	10383.4G	Use for phosphate buffer
Giemsa's azur eosin methylene blue solution	Merck	1.09204.0500	1:10 dilution in 6.7mN Phosphate buffer (make fresh each stain)
EDTA disodium salt	Merck	10093.5V	0.1M, pH 7.2
Acrodisc Syringe Filters 1.2-μm/32-mm	Pall Life Sciences	4656
QuadroMACS Separator (for small column)	MACS Miltenyi BioTec	130-091-051	Interchangeable with MidiMACS
VarioMACS Separator (for large columns)	MACS Miltenyi BioTec	130-090-282
MACS MultiStand	MACS Miltenyi BioTec	130-042-303
LS Column (small magnetic column)	MACS Miltenyi BioTec	130-042-401
large magnetic column	MACS Miltenyi BioTec	130-041-305
Ethidium Bromide	Bio-Rad	1510433	Cytotoxic
CountBright Absolute Counting Beads	Invitogen	C36950
BD FACSCalibur Flow Cytometer with HTS plate reader	BD Biopsciences
EDTA disodium salt	Merck	10093.5V	0.1M, pH 7.2
FlowJo cytometry analysis software	Tree Star