JoVE Logo

登录

需要订阅 JoVE 才能查看此. 登录或开始免费试用。

本文内容

  • 摘要
  • 摘要
  • 引言
  • 研究方案
  • 结果
  • 讨论
  • 披露声明
  • 致谢
  • 材料
  • 参考文献
  • 转载和许可

摘要

This manuscript describes a technique for visualization of the developing vasculature. Here we utilized in utero intra-cardiac FITC-labeled tomato lectin microinjections on mouse embryos. Using this technique, we delineate the perfused and unperfused vessels throughout the embryonic kidney.

摘要

形成和发展肾脏血管(除了肾小球)灌注大大充分研究。作为脉管经由血管生成的发展(其为分支大血管的)和血管( 从头血管形成),如树脂管型, 在体内超声成像,和显微解剖灌注映射技术在证明之间的亲密关系被限制胚胎内这两个过程和显影肾结构。在这里,我们描述了在小鼠胚胎在子宫内的心内超声引导FITC标记番茄凝集素显微注射的方法,以评估肾灌注的个体发育。番茄凝集素(TL)被灌注在整个胚胎和肾脏收获。组织中共同染色关于各种肾结构,包括:肾祖细胞,肾单位的结构,输尿管上皮细胞,和血管。起始于E13.5大口径血管灌流,但是周边船只仍unperfused。由E15.5和E17.5,小末梢血管以及肾小球开始变得灌注。这个实验技术对于胚胎发育过程中学习脉管和血流的作用是至关重要的。

引言

在胚胎发育两个分立的,但同时,血管过程发生:血管生成,该过程从一个主要的预先存在的血管,和血管生成,这是一种新形成血管的来自住宅内皮祖1,2-由此容器增长。分别,前者是同义的血流量,而后者被认为主要是发生在没有它。

同时,以血管形成,肾脏祖细胞的合成,增殖和分化周期性和动态的过程开始展开上9.5天胚胎(E9.5)。在这一点上输尿管芽(UB)侵入背侧到包围后肾间质(MM),并继续直到出生3。反复分支UB进入快速冷凝后肾间质帽开始肾脏的功能单位,肾的形成。随着每一代新UB和NEPH的罗恩,老一辈流离失所到内皮层和髓质的地区,在那里他们再进行内主要血管密集的环境中进一步成熟和分化。就证明了德雷斯勒等人 3,此胚胎过程是由感应信令沉淀,如UB和MM,和细胞外因素3-6无数之间的串扰。最近的两个研究发展胰腺内的细胞外因素和肾脏包括氧张力和血流量7,8。后者将在更详细地相对于肾脏发育中讨论如下。

以暴露所述感应作用血流可能起着肾祖细胞的分化,以及在其他器官的过程,胚胎血流映射的精确和准确的方法是必要的。

计量血流的替代方法包括微升的处方trasound成像及树脂注塑9,10。决定性,这些模式已经被证明是固有地缺乏其能力,以同时地揭开血流之间的时间和空间的并置和干细胞的分化。树脂管型,例如,提供成人组织中血管形成图案的一个有效的模型,然而,在未成熟的血管,如与胚胎的时间点,容器是非常不发达和漏。因此,树脂注塑未能微小的,常常多孔,船内举行。

对于这些明显的障碍,除其他外,我们选择了把超声引导体内心内胚胎番茄凝集素(TL)显微注射到我们的肾发展的调查工作。在此过程中,我们利用超声波探头向同步引导装入微量针填充有2.5微升的TL溶液注入小鼠胚胎在E11.5,E13.5,E15.5和E17.5的时间点左心室。 E170.5是最新的发育年龄为针是没有强大到足以穿透更发达的胚胎。

这种显微注射方法的优点是丰富的。超声引导下注射允许注射针的胚胎左心室内精确定位,被动和控制驱逐溶液进入动物,对心脏的损害最小和周围组织的心脏跳动,并避免突发性心脏衰竭而死亡胚胎前全身灌注。与使用FITC标记TL的,任何灌注脉管将保持沿着其内皮顶膜的标志物。与免疫相结合,利用粘附分子(CD31,血小板内皮细胞粘附分子)和其他各种血管标记,我们能够清楚地灌注和未灌注血管区分,以及表征周围组织中的任何异常染色。

研究方案

注:匹兹堡机构动物护理和使用委员会的批准大学的所有实验。

1.制备超声仪器显微注射和胚胎

  1. 建立阶段,安装,和探针( 图1)以及外科手术器械( 图2)。地方的磷酸盐缓冲盐水(PBS)溶液(pH7.4)的在37℃的暖浴。完全填充微注射针与矿物油,用1ml注射器附连到第二柔性地下25针,通过其基极。
  2. 固定针到旋转支架臂上,与矿物油溶液空针。重新填充2.5微升的TL解决方案。确保没有气泡注射针中存在。旋转针手臂朝着墙,离舞台。
  3. 通过异氟醚持续输注麻醉孕妈妈在麻醉室。当妈妈呈现昏迷,麻醉转移到鼻管放置在C舞台audal侧,并与炉鼻的鼻管仰卧位的地方母亲以允许延续的完全麻醉状态。
  4. 磁带肢体45°角,或手和脚休息和放置上层建筑ECG /温度显示器标签。重要的是,在怀孕的坝被连续监测,以确保麻醉足以并向眼睛软膏施加到降低干燥。
  5. 申请脱毛产品横跨母亲的下腹部,轻轻地用干棉签擦去,然后再次用70%的乙醇饱和棉签除去任何过量的产物和头发。确保现场切口( 图3)清洁腹部皮肤关闭所有的头发。
  6. 执行对孕妈妈用细手术镊子和剪刀剖腹探查术。请注意,以避免削减任何重大的血管或脏器。使第一,表皮直切口1.5-2厘米以上的阴道和继续削减对肋骨的approximat伊利2-3厘米。露出皮下膜,找到白线("白线")( 图3),并切平行于初始切口,沿着相同的长度,以露出内部的内脏器官和子宫saccules。

2.提取胚胎

  1. 使用6英寸棉签涂抹机动母亲和胚胎。轻轻推动(不要用力)对皮肤敷贴操纵第一胎出切口开放。提取第一胚胎球囊后,轻轻地,慢慢地,并到母亲的外部拉子宫角的其余部分。避免因切口在这个阶段拉肠或其他器官。
  2. 量化胚胎和轻轻地放在左宫角回妈妈。然后开始把右侧子宫角回母亲开始从喇叭阴道胚胎球囊最远和向下移动。继续,直到只有两个胚胎仍然暴露( 网络连接古尔4)。最后,在上述的柱,并平行的位置胚胎切口线,作为识别不切断子宫循环。
  3. 放置粘土块和位置手臂和身体,以及腿和尾部之间。确保粘土表面大约级别与开腹手术切口。湿窗孔的培养皿37℃PBS。
  4. 把握延伸钳子用右手和有孔培养皿左手(平行于胚胎开窗),并通过开窗术带来封闭镊子〜5厘米,从培养皿的顶部。打开钳完全没有撕裂开窗网。
  5. 操纵手以上的胚胎和视线集中在这两个胚胎saccules。如果没有(或轻度)触摸saccules与开窗啮合或镊子,透过缝隙滑到他们并设置培养皿到母亲的腹部。用钳子还在延续,操作有孔的网状座位它放在一边,并在每个胚胎的基地( 图5 )和拉镊子从切口开放。
  6. 下一步,将装有墙培养皿中的蓝色橡胶,而不会挤压或伤害胚胎( 图6)。确保黏土块坚决平衡培养皿中,胚胎,以及含有橡胶墙。最后,填充培养皿用37℃的PBS中直至胚完全淹没( 图6),同时控制用于 ​​在有孔啮合泄漏。

3.注射程序

  1. 较低的注射阶段与母亲和胚胎向下使用的Z-电平调整旋钮( 图1),然后旋转注射针及安装臂,并直接与超声波探头排队,以针半厘米的左侧和下探针尖端( 图7) 。推针臂(未针)45°远离探头。要小心,不要打了菜或超声探头的针尖。
  2. 提高注射阶段回到原来的高度,用超声波P长袍的正上方胚胎探头必须稍微淹没,并在3-4毫米的胚胎组织。利用X&Y阶段调节旋钮( 图8),修订胚/妈妈/舞台上的地位,有系统地找到跳动胚胎心脏。
  3. 直接超声波屏幕的中心观察到黑中心目标标记绘制(*)。找到左心室(最好)或中庭采用X&Y级调节旋钮( 图8),然后抬高或使用旋转旋钮,在舞台上通过超声波屏幕上的黑中心标记精确定位注入目标降低的阶段。
  4. 使用X级调节旋钮,将胚胎到右侧,关闭超声波屏。重新定位显微注射针和臂回原位,半厘米的距离和90°的超声探头( 图7)。
  5. 用显微注射装入调节旋钮( 图9C-G)的位置的针与尖端清楚人igned与中心标记。调整喷射角(使用旋钮在图9C和EG),并且X,Y,和微针的Z-载体,以确保针尖被聚焦在正确的平面。仅仅使用了"注入"旋钮( 图9F)收回显微注射针,注意不要调整其他尺寸。
  6. 同样,使用单独的X微调阶段旋钮招回胚胎探头下,用目标正好在超声屏幕上的中心标志。确保左心室现在正好在相同的X,Y和Z平面。
  7. 接着,只用"注入"的显微注射调节器架,慢慢穿刺胚胎与显微注射针和逐渐使前端进入左心室。注满2.5微升TL溶液进入左心室或直到空的警告提示音,通过举办"空",挖掘"补"一次( 图2A和B)。此时注射观察影子从它进入心脏腔室中的TL( 图10)的针的尖端发出。相反,快速收回注射针旋转的显微注射的"注入"按钮( 图9F)安装在注射完成。
  8. 继续到下一个胚胎,然后重复此步骤如下这一系列的步骤剩余的胚胎,最后将胚胎最终回大坝的腹部。改用麻醉室中,轻轻移动的母亲在这里15分钟从最后一次注射时间。

4.收获胚胎及分析

  1. 通过颈椎脱位牺牲大坝。展开开腹手术切口容易地从母亲子宫中删除角。保持内子宫囊的胚胎。将在PBS冷冻胚胎。
  2. 从解剖子宫的胚胎囊(如果进行基因分型需要收集组织),并把整个胚胎我ñ4%多聚甲醛(PFA)过夜,然后到30%蔗糖过夜,冻结在低温恒温器切片中。然后切冷冻切片,并将其放置到幻灯片免疫组化分析。任选地,使用的组织为通过脱水在100%的甲醇,在4%PFA以下定影整个安装。
  3. 免疫组化分析,将进入冰冻切片PBS去除十月然后方框,用10%正常驴血清的部分30分钟。然后添加PECAM一级抗体以1:100稀释过夜,在4℃。第二天,洗涤载玻片中的PBT 3次,每次10分钟,并添加驴抗鼠594仲和孵育1小时,在室温。
    注:这是一个非常苛刻的技术,需要超和显微注射的优化和协调。有一个非常陡峭的学习曲线,与此相关的技术,需要四到六周注射辅导就会有一个精通之前。

结果

血管的形成先于肾脏发育流

大多数胚胎组织(包括肾脏)中包含的致密脉管(包括unperfused和灌注),即使是在早期胚胎的时间点。到肾脏发育中更好地衡量和分析血流我们利用在宫内胚胎心内显微注射的方法。与使用一个高分辨率超声在E11.5通过E17.5识别胚胎心脏,并按照通过剖腹提取和单一子宫球囊的曝光,我们能够注入2.5微升TL的(异硫氰酸荧光素素(FITC)缀合)。

讨论

注射麻醉和时间框架

与关于母亲的麻醉,这是至关重要的,以保持气流不变(2-3升/分钟),并在低的PSI。镇静药流必须在约1.75-2升/分举行。同时,时间安排在注射发生必须密切监测和控制与每个垃圾。对于每一个垃圾注射过程应保持在45分。这一时限是极为重要的实验,因为每个胚胎必须保持恒定,正常的心脏速率的范围内,以促进在整个身体和感兴趣器官受控和恒定的灌?...

披露声明

The authors declare that they have no competing financial interests.

致谢

The authors would like to thank Dr. George Gittes for advice and expertise throughout this study. SSL was supported by an American Heart Association fellowship (11POST7330002). Further to this SSL and this study was supported by an NIDDK Mentored Research Scientist Development Award (DK096996) and by the Children’s Hospital of Pittsburgh.

材料

NameCompanyCatalog NumberComments
DAPISigma Aldrich022M4004Vconcentration 1:5,000
PecamBD Biosciences553370concentration 1:100
FITC-Tomato LectinVector LaboratoriesFL-1321concentration 2.5 µl / embryo
Alexa Fluor-594 (Donkey Anti-Rat)Jackson Immunoresearch712-585-150concentration 1:200
Microinjection NeedleOrigio Mid Atlantic DevicesC060609
Mineral OilFisher ScientificBP26291
1 ml syringeFisher Scientific03-377-20
Clay BlocksFisher ScientificHR4-326
Surgical TapeFisher Scientific18-999-380
PBSFisher ScientificNC9763655
Hair Removal ProductFisher ScientificNC0132811
Surgical ScissorsFine Science tools14084-08
Fine ForcepsFine Science tools11064-07
Surgical Marking PenFine Science tools18000-30
Right angle forceps (for hysterectomy)Fine Science tools11151-10

参考文献

  1. Abrahamson, D. R., Robert, B., Hyink, D. P., St John, P. L., Daniel, O. P. Origins and formation of microvasculature in the developing kidney. Kidney international. Supplement. 67, S7-S11 (1998).
  2. Sims-Lucas, S., et al. Endothelial Progenitors Exist within the Kidney and Lung Mesenchyme. PloS one. 8 (6), e65993 (2013).
  3. Dressler, G. R. Advances in early kidney specification, development and patterning. Development. 136 (23), 3863-3874 (2009).
  4. Costantini, F. Genetic controls and cellular behaviors in branching morphogenesis of the renal collecting system. Wiley Interdiscip Rev Dev Biol. 1 (5), 693-713 (2012).
  5. Costantini, F., Kopan , R. Patterning a complex organ: branching morphogenesis and nephron segmentation in kidney development. Dev Cell. 18 (5), 698-712 (2010).
  6. Das, A., et al. Stromal-epithelial crosstalk regulates kidney progenitor cell differentiation. Nat Cell Biol. 15 (9), 1035-1044 (2013).
  7. Rymer, C., et al. Renal blood flow and oxygenation drive nephron progenitor differentiation. Am J Physiol Renal Physiol. , (2014).
  8. Shah, S. R., et al. Embryonic mouse blood flow and oxygen correlate with early pancreatic differentiation. Developmental biology. 349 (2), 342-349 (2011).
  9. Andres, A. C., et al. EphB4 receptor tyrosine kinase transgenic mice develop glomerulopathies reminiscent of aglomerular vascular shunts. Mech Dev. 120 (4), 511-516 (2003).
  10. Wagner, R., et al. High-resolution imaging of kidney vascular corrosion casts with Nano-CT. Microsc Microanal. 17 (2), 215-219 (2011).

转载和许可

请求许可使用此 JoVE 文章的文本或图形

请求许可

探索更多文章

96

This article has been published

Video Coming Soon

JoVE Logo

政策

使用条款

隐私

科研

教育

关于 JoVE

版权所属 © 2025 MyJoVE 公司版权所有,本公司不涉及任何医疗业务和医疗服务。