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  • 转载和许可

摘要

人类皮肤作为抵御外部环境的第一条防线。我们提出了一种从成人皮肤中分离原代角质形成细胞的方法。这些孤立的角质形成细胞是有用的许多实验设置, 是一个非常适合的模型研究的分子机制在皮肤生物学体外.

摘要

角质形成细胞的主要功能是提供表皮的结构完整性, 从而保持对外部世界的机械屏障。此外, 角质形成细胞扮演一个重要的角色, 在启动, 维护和调节表皮免疫反应的一部分, 是先天免疫系统反应抗原刺激的快速, 非特异性的方式。在这里, 我们描述了一个从成人皮肤分离的初级人类角质形成的协议, 并证明这些细胞反应钙诱导的终端分化, 通过增加表达的分化标记 involucrin。此外, 我们表明, 孤立的角质形成细胞是响应 IL-1β-induced 活化的胞内信号通路, 通过 p38 MAPK 通路的活化测量。我们一起介绍了一种从成人皮肤中分离和培养原代角质形成细胞的方法。由于角质形成细胞是表皮中的主要胞型, 因此该方法对皮肤生物学的分子机制 (体外) 的研究是有益的。

引言

皮肤是人体最大的器官, 是抵御外界环境的屏障。皮肤由两个主要层组成: 真皮和表皮, 表皮构成皮肤最外层。表皮中最丰富的细胞类型是角质形成细胞, 它包含95% 以上的胞质1,2。角质形成细胞保持在不同阶段的分化在表皮, 并组织成基底, 棘, 颗粒, 和 cornified 层, 对应的特定阶段的差异3。角质形成细胞的主要功能是提供表皮的结构完整性, 从而产生一个完整的屏障, 外部世界。

角质形成细胞也代表了第一行防御病原体在皮肤, 因此发挥重要作用的先天免疫反应4,5。角质形成细胞对外界刺激的暴露导致胞内信号传导通路的活化, 随后产生多种炎症介质, 包括细胞因子、趋化因子和抗菌肽。这些角质形成细胞衍生的蛋白质参与炎症反应, 通过招募和激活免疫细胞, 如树突状组织, 嗜中性细胞, 和特定 T 淋巴细胞6,7。因此, 由于角质形成细胞在许多生物过程中扮演着重要的角色, 这里提出的技术背后的基本原理是生成一个体外模型来研究皮肤生物学。从新生儿包皮中获得的原代角质细胞培养物通常用于研究皮肤生物学8,9。然而, 根据这里所描述的技术, 来自两性的角质形成细胞得到了更高的生物多样性。

在这里, 我们提出了一个详细的协议, 从成人皮肤分离和生成原人角质形成细胞, 包括维持和冷冻的角质。该方法的总目标是生成主要的人角质形成细胞, 可以作为一个模型来研究皮肤生物学体外

研究方案

在接受整形手术的健康成人志愿者身上采集的皮肤样本需要得到所在机构伦理委员会的批准。该议定书得到了丹麦 Midtjylland 区域伦理委员会的批准 (M-20110027)。这里描述的方法来自 Maciaq et al.的类似研究10和刘和 Karasek11

1. 从人的皮肤中分离角质形成细胞

  1. 首先提出以下解决方案:50 毫升溶液中0.25% 胰蛋白酶和0.1% 葡萄糖在 DPBS。混合和过滤消毒 (0.2 µm) 的解决方案。准备10毫升的 RPMI-1640 + 2% FBS 溶液, 50 毫升的 DPBS 和角质形成细胞无血清培养基 (KSFM)。添加 KSFM 补充剂和250µL 庆大霉素到500毫升的 KSFM。在使用前预热溶液至37° c。
  2. 从健康的成人志愿者那里收集皮肤, 接受整形手术。所使用的皮肤样本约10厘米 x 15 厘米, 但可以在大小上有所不同。通过在含有冷却元件的聚苯乙烯泡沫塑料盒中运输皮肤样品, 使皮肤保持凉爽。如有必要, 皮肤样品可在4° c 过夜贮存。
  3. 使用无菌剪刀、手术刀和镊子, 从皮肤底部取出脂肪。
  4. 将皮肤部分 (大约10厘米 x 15 厘米) 系在一个使用针头的盘子上面的无菌盖子上。首先, 用干燥的消毒纱布清洁皮肤。然后用70% 乙醇消毒的纱布垫清洁皮肤。
  5. 使用足部刨床, 切开皮肤部分的上层 (表皮), 并将其放入9厘米的培养皿中。然后, 立即添加25毫升的 DPBS/胰蛋白酶/葡萄糖溶液 (准备在步骤 1.1) 的培养皿。孵育30分钟, 在37° c。
  6. 使用吸管从培养皿中除去 DPBS/胰蛋白酶/葡萄糖溶液, 并添加10毫升的 RPMI-1640 + 2% FBS, 以使胰蛋白酶钝化。
  7. 使用两个钳, 现在将表皮细胞释放到培养基中, 通过轻轻地刮和搅动皮肤部分的表皮和真皮室。
  8. 过滤表皮细胞悬浮通过金属过滤器 (1 毫米孔大小) 和收集在50毫升管子。将其余的皮肤部分添加到50毫升管, 其中含有10毫升的 RPMI-1640, 没有 FBS 和漩涡十年代. 通过金属过滤器将悬浮液过滤成含有表皮细胞悬浮液的50毫升管。将 DPBS 添加到总容量为50毫升。
  9. 在室温下将细胞悬浮液离心10分钟, 450 x g。
  10. 在大约10毫升的37° c KSFM, 根据细胞颗粒的大小去除上清和重表皮细胞颗粒。在显微镜下使用台盼蓝染色法对细胞进行计数。从 10 cm x 15 cm 皮肤剖面获得的单元格数约为 50-100 x 106单元格。对每 75 cm2培养烧瓶, 将 8 x 106单元格与12毫升37° KSFM 传输到一起。轻轻摇动培养瓶, 确保细胞均匀分布。
  11. 在37° c 恒温箱中孵育角质形成细胞, 100% 湿度和 5% CO2。2天三次, 每周更换培养基。传代细胞时, 文化是 70-80% 汇合, 这需要大约2周, 取决于增殖率的角质形成。

2. 角质形成细胞的传代

  1. 将适当数量的0.05% 胰蛋白酶-EDTA 溶液加热到37° c 的恒温箱中。使用4.5 毫升0.05% 胰蛋白酶-EDTA 溶液为75厘米2培养烧瓶。
  2. 从细胞中取出培养基, 并在细胞中添加 4.5 mL/75 cm2培养烧瓶 5ml 0.05% 胰蛋白酶-EDTA 溶液。将培养烧瓶放在孵化箱中 (37 ° c), 在大约5分钟后, 在显微镜下检查细胞是否开始松动。
  3. 当大约50% 的细胞松动时, 轻轻地将培养瓶放在手上, 松开剩余的细胞。然后, 为了使胰蛋白酶钝化, 将6毫升的 RPMI-1640 + 2% FBS (37 ° c) 添加到 75 cm2培养烧瓶中, 并将该细胞悬浮液转移到50毫升管。
  4. 冲洗3毫升的 RPMI 1640 + 2% FBS 的培养烧瓶, 并添加到50毫升管。在室温下离心10分钟, 450 x 克。
    1. 重10毫升 KSFM (37 ° c) 的颗粒细胞。将单元格计数并将 3 x 106单元格转换为 150 cm2培养瓶, 并与20毫升的 KSFM (37 ° c) 一起进行计算。轻轻摇动培养瓶, 确保细胞均匀分布。当培养 80-90% 汇合时, 冻结细胞, 这需要大约4-6 天, 这取决于角质形成的增殖率 (见下面的 3, 冻结协议)。扩大角质形成细胞以产生适当的冷冻储存。

3. 冷冻角质形成细胞

  1. 将适当数量的0.05% 胰蛋白酶-EDTA 溶液加热到37° c 的恒温箱中。使用9毫升0.05% 胰蛋白酶-EDTA 溶液为150厘米2培养烧瓶。
  2. 从细胞中取出培养基, 并在细胞中添加 9 mL/150 cm2培养烧瓶 5ml 0.05% 胰蛋白酶-EDTA 溶液。将培养烧瓶放在孵化箱中 (37 ° c), 在大约5分钟后, 在显微镜下检查细胞是否开始松动。
  3. 当大约50% 的细胞松动时, 轻轻地将培养瓶放在手上, 以便松开剩余的细胞。然后, 为了使胰蛋白酶钝化, 将12毫升的 RPMI-1640 + 2% FBS (37 ° c) 添加到 150 cm2培养烧瓶中, 并将细胞悬浮液吸入50毫升管。
  4. 冲洗6毫升的 RPMI 1640 + 2% FBS 的培养烧瓶, 并添加到50毫升管。离心管为10分钟在 450 x g 在4° c。制备 ice-cold 细胞冷冻培养基 (KSFM + 10% 亚砜)。
  5. 重 KSFM + 10% 亚甲基亚砜中的细胞团, 计数细胞, 并冻结细胞在密度为 6 x 106细胞/毫升使用标准慢冷冻冷冻方法12
  6. 将角质形成细胞储存在液氮中 (蒸气相), 直至使用。

4. 解冻和培养冰冻角质形成细胞

  1. 在37° c 水浴中迅速解冻适当的冷冻瓶。用70% 的乙醇清洁 cryovial 的外部。将适当数量的细胞 (大约1.5万细胞/cm2) 转移到培养烧瓶中, 并立即将5ml 生长培养基 (KSFM) 添加到培养瓶中。
    根据实验的设置, 可以使用任何大小的培养烧瓶。
  2. 使用5毫升培养基为 25 cm2培养瓶。
添加了培养烧瓶的细胞数量可能会有所不同, 因为细胞的生长会因捐献者而异。孵育37° c 恒温箱中的细胞, 100% 湿度和 5% CO2
  • 2天和三次, 每周使用新鲜 5ml KSFM。
    注意: 我们的数据表明, 在这里所描述的协议所隔离的细胞中, 平均有95% 是阳性的角质-标记 cytokeratine-1413
  • 结果

    钙诱导的末端分化
    人角质形成细胞接受治疗后, 钙14,15,16。主要的人角质形成细胞被隔离和培养, 如上述协议所述。当大约 50-60% 汇合, 细胞被刺激了与钙 (1.2 毫米) 或车和细胞的图片在天 0, 1 和2被采取了。图 1显示了在钙刺激下观察到的角质形成细胞的形态学变化。

    讨论

    在这里, 我们描述了如何很容易地分离成人皮肤角质形成细胞, 以及如何培养他们在体外。该模型可以广泛应用于表皮细胞生物学的研究, 对研究皮肤疾病的研究有一定的参考价值。

    这里所描述的协议的一些优点是, 与从接受包皮环切手术的新生儿包皮中分离出来的角质形成细胞相比, 成年患者的原始人角质产生者与男性和女性都是分离的。可以包括任何年龄≥18年。因?...

    披露声明

    .作者没有利益冲突。

    致谢

    作者希望感谢安妮特布拉克拉斯穆森和汀穆勒的技术支持

    材料

    NameCompanyCatalog NumberComments
    KSFMThermoFisher Scientific17005-034Cell culture medium
    KSFM supplementsThermoFisher Scientific37000-015Supplements for KSFM
    DPBSThermoFisher Scientific14190-144DPBS without Calcium and Magnesium
    DMSOSigma-AldrichD8418Dimethyl sulfoxid
    GentamycinThermoFisher Scientific15710-049Cell culture medium additive
    Sterilization filterSartorius16534Syringe filter with a pore size of 0.2 µm
    TrypsinSigma-AldrichT7409Used to trypsinize cells
    GlucoseSigma-AldrichG7528-
    RPMI-1640ThermoFisher Scientific61870-010-
    FBSThermoFisher Scientific16000044Used to inactivate trypsin
    Forceps--Forceps from any company can be used
    Scissors--Scissors from any company can be used
    ScalpelSwann Morton0501Scalpels from any company can be used
    70% ethanol---
    Gauze padsNOBAMED875420Gauze pads from any provider can be used
    Foot planerCredo Solingen1510Foot planer from any provider can be used
    Petri dishesTPP93100Petri dishes from any provider can be used
    Metal filter--In-house 1 mm hole size metal filter
    75 cm2 culture flasksNUNC156499-
    150 cm2 culture flasksTTP90151-
    0.05% Trypsin-EDTA solutionThermoFisher Scientific25300-062Used to trypsinize cells when passaging

    参考文献

    1. Barker, J. N., Mitra, R. S., Griffiths, C. E., Dixit, V. M., Nickoloff, B. J. Keratinocytes as initiators of inflammation. Lancet. 337 (8735), 211-214 (1991).
    2. Nickoloff, B. J., Turka, L. A. Keratinocytes: key immunocytes of the integument. Am J Pathol. 143 (2), 325-331 (1993).
    3. Fuchs, E., Raghavan, S. Getting under the skin of epidermal morphogenesis. Nat Rev Genet. 3 (3), 199-209 (2002).
    4. Bos, J. D., Kapsenberg, M. L. The skin immune system Its cellular constituents and their interactions. Immunol Today. 7 (7-8), 235-240 (1986).
    5. Nestle, F. O., Di Meglio, P., Qin, J. Z., Nickoloff, B. J. Skin immune sentinels in health and disease. Nat Rev Immunol. 9 (10), 679-691 (2009).
    6. Albanesi, C., Scarponi, C., Giustizieri, M. L., Girolomoni, G. Keratinocytes in inflammatory skin diseases. Curr Drug Targets Inflamm Allergy. 4 (3), 329-334 (2005).
    7. Gilliet, M., Lande, R. Antimicrobial peptides and self-DNA in autoimmune skin inflammation. Curr Opin Immunol. 20 (4), 401-407 (2008).
    8. Rohani, M. G., Pilcher, B. K., Chen, P., Parks, W. C. Cdc42 inhibits ERK-mediated collagenase-1 (MMP-1) expression in collagen-activated human keratinocytes. J Invest Dermatol. 134 (5), 1230-1237 (2014).
    9. Meephansan, J., Tsuda, H., Komine, M., Tominaga, S., Ohtsuki, M. Regulation of IL-33 expression by IFN-gamma and tumor necrosis factor-alpha in normal human epidermal keratinocytes. J Invest Dermatol. 132 (11), 2593-2600 (2012).
    10. Maciag, T., Nemore, R. E., Weinstein, R., Gilchrest, B. A. An endocrine approach to the control of epidermal growth: serum-free cultivation of human keratinocytes. Science. 211 (4489), 1452-1454 (1981).
    11. Liu, S. C., Karasek, M. Isolation and growth of adult human epidermal keratinocytes in cell culture. J Invest Dermatol. 71 (2), 157-162 (1978).
    12. Naaldijk, Y., Friedrich-Stockigt, A., Sethe, S., Stolzing, A. Comparison of different cooling rates for fibroblast and keratinocyte cryopreservation. J Tissue Eng Regen Med. 10 (10), E354-E364 (2016).
    13. Otkjaer, K., et al. IL-20 gene expression is induced by IL-1beta through mitogen-activated protein kinase and NF-kappaB-dependent mechanisms. J Invest Dermatol. 127 (6), 1326-1336 (2007).
    14. Watt, F. M. Involucrin and other markers of keratinocyte terminal differentiation. J Invest Dermatol. 81 (1 Suppl), 100s-103s (1983).
    15. Boyce, S. T., Ham, R. G. Calcium-regulated differentiation of normal human epidermal keratinocytes in chemically defined clonal culture and serum-free serial culture. J Invest Dermatol. 81 (1 Suppl), 33s-40s (1983).
    16. Hennings, H., et al. Calcium regulation of growth and differentiation of mouse epidermal cells in culture. Cell. 19 (1), 245-254 (1980).
    17. Carlson, M. W., Alt-Holland, A., Egles, C., Garlick, J. A. Three-dimensional tissue models of normal and diseased skin. Curr Protoc Cell Biol. , (2008).
    18. Kamsteeg, M., et al. Type 2 helper T-cell cytokines induce morphologic and molecular characteristics of atopic dermatitis in human skin equivalent. Am J Pathol. 178 (5), 2091-2099 (2011).
    19. van den Bogaard, E. H., et al. Crosstalk between keratinocytes and T cells in a 3D microenvironment: a model to study inflammatory skin diseases. J Invest Dermatol. 134 (3), 719-727 (2014).
    20. Raaby, L., et al. Langerhans cell markers CD1a and CD207 are the most rapidly responding genes in lesional psoriatic skin following adalimumab treatment. Exp Dermatol. , (2017).

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