这项工作得到了福田医疗技术基金会（ET和GN）和JSPS KAKENHI科学研究资助21K08047（ET）的研究资助。

该动物方案已获得机构动物护理和使用委员会的批准，并遵循东京大学动物实验和相关活动的规定。本研究以8-12周龄雄性C57/Bl6J小鼠为研究对象。这些动物是从商业来源获得的（见 材料表）。如前所述，通过与NG-硝基-L-精氨酸甲酯一起给予高脂肪饮食15周来建立HFpEF模型10。
1. 导管准备和压力/体积校准
<ol><li>将电导导管放入生理盐水中，并将其连接到由 PowerLab 8/35 和压力容积单元（MPVS 模块，参见 材料表）组成的模块上。</li>
	<li>通过在 MPVS 模块 3,11 上记录预定压力（0 mmHg 和 100 mmHg）和体积参数（这些因 MPVS 模块而异）以电子方式校准压力和体积（另请参阅制造商的说明）。</li>
</ol>2. 准备动物进行导尿
<ol><li>麻醉和通气<ol><li>插管前 5-10 分钟腹膜内注射 5 mg/kg 依托咪酯和 500 mg/kg 氨基甲酸乙酯（见 材料表）。 注：聚氨酯虽然在动物研究中作为麻醉剂有效，但被怀疑对人类致癌。因此，当氨基甲酸乙酯是实现实验目标所必需的，并且没有替代剂足以满足时，必须谨慎处理。必须采取适当的保护措施，例如戴手套和口罩以及在准备过程中使用通风柜。作为一种可能的替代方法，可以使用氯胺酮（80 mg/kg，ip）。</li>
		<li>将小鼠置于先前用2%异氟烷饱和的麻醉室中，并在麻醉诱导时将动物转移到保持在38°C至40°C之间的预热加热垫中。</li>
		<li>剃除手术区域。然后，用三轮交替的甜菜碱和酒精对手术部位进行消毒。</li>
		<li>在颈部做一个水平切口（1-2厘米），切除气管肌，露出气管。将手术 2-0 丝线缝合在气管下方，将其抬高，并做一个小切口（1-2 毫米）将其打开。</li>
		<li>将气管插管插入气管，并将其连接到呼吸机，呼吸机提供 100% 氧气和 2% 异氟烷的混合物（后来减少到 0.5% 至 1%）。</li>
	</ol></li>
	<li>中心静脉 （CV） 导管插入和液体注入<ol><li>找到胸锁乳突肌下方的颈内静脉3.</li>
		<li>将中心静脉导管插入颈静脉，该导管由连接到30G针头的PE-10硅橡胶管（参见 材料表）组成。</li>
		<li>在 3 分钟内推注 5-6 μL/g 体重的 10% 白蛋白/NaCl，然后以 5-10 μL/min 的恒定输注速率。 注意：此步骤对于预防麻醉引起的外周血管舒张引起的低血压至关重要。颈内静脉位于胸锁乳突肌和颈动脉之间，颜色比动脉深。</li>
	</ol></li>
</ol>3. 左心室导管插入术（开胸入路）的外科手术
<ol><li>剃除麻醉小鼠的手术区域。然后，用三轮交替的甜菜碱和酒精对手术部位进行消毒。</li>
	<li>通过捏脚趾来确认麻醉深度。然后，在剑突下方做一个水平切口（2-3厘米），并用钝剪刀将皮肤与胸壁分开。</li>
	<li>使用电烧术在两侧横向切开胸壁（参见 材料表）。</li>
	<li>通过切开横膈膜暴露心脏，然后用镊子轻轻地从心脏中取出心包。</li>
	<li>将一根 27 G 针插入左心室 （LV） 的顶点，然后 通过 穿刺孔逆行将电导导管插入左心室。</li>
	<li>调整导管位置，以获得方形压力-容积环。</li>
	<li>通过检查下腔静脉 （IVC） 闭塞期间 PV 环的形状，验证当负荷条件发生变化时导管不会接触肌。 注意：充分的心脏暴露有助于手术并有助于获得清晰的视野。</li>
</ol>4. 记录PV回路数据，确定收缩末期压力-容积关系（ESPVR）和舒张末期压力-容积关系（EDPVR）
注意：通过 IVC 闭塞减少预紧力可以确定 ESPVR 和 EDPVR。
<ol><li>在信号稳定后（插管后5-10分钟），使用LabChart软件（参见 材料表），PowerLab和MPVS模块记录和分析基线压力 - 体积（PV）回路。</li>
	<li>通过用镊子按压IVC进行IVC闭塞，并在IVC闭塞期间记录至少20个心动周期的PV环。通过使用 LabChart 软件将曲线线拟合到 PV 环的收缩末点和 EDPVR 中，通过拟合一条曲线穿过 PV 环的舒张末期点来确定 ESPVR。 注意： 在 IVC 闭塞期间停止呼吸机以防止肺运动伪影。当肺运动过度时，泮库溴铵 （0.5-1 mg/kg） 等麻痹剂可能有帮助，只有在确认麻醉平面稳定后才应使用。</li>
</ol>5.经食管起搏
<ol><li>将 2-Fr 四极电极导管插入食管，将导管连接到脉冲刺激器（参见 材料表），并确定心房捕获阈值（通常，刺激幅度为 3 mA，脉冲宽度为 1 ms）。</li>
	<li>使用腹膜内给药的20mg / kg伊伐布雷定（参见 材料表）将HR减慢至400次/ min以下。</li>
	<li>稳定后，以 400 次/分钟至 700 次/分钟的不同起搏率获取 20 个连续心动周期的 PV 循环，增量为 100 次/分钟;以每个起搏率获得超过 5 分钟的周期。</li>
</ol>6. 生理盐水校准和主动脉血流校准
<ol><li>使呼吸机失活，并通过 CV 导管静脉注射 5-10 μL 高渗盐水溶液。</li>
	<li>记录盐水注射过程中压力和体积的波动，并使用 PowerLab 3,11 计算 Vp 值。</li>
	<li>重复盐水校准以提高准确性和可重复性。</li>
	<li>将鼠标转到左侧，以免干扰音量信号。</li>
	<li>在Th3至Th5之间朝向脊柱进行侧向开胸术，并用镊子轻轻解剖降主动脉的一小部分。</li>
	<li>在主动脉上放置一个血管流量探头（参见 材料表）以测量心输出量。 注意：绝对容积的准确计算需要使用两种类型的校准：盐水校准和主动脉血流校准。重要的是要认识到与动物受试者高渗盐水输注相关的潜在风险，因为过量的盐负荷会导致收缩力下降。</li>
</ol>7. 安乐死
<ol><li>研究结束后， 通过 颈椎脱位在麻醉剂过量下对小鼠实施安乐死。 注意：为确保生命功能完全停止，采用安乐死的辅助方法，例如在麻醉下放血，随后摘取心脏组织。</li>
</ol>

使用心房起搏方案探索 HR 依赖性心脏功能

<ol>
	<li>Backhaus, S. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Exercise+stress+real-time+cardiac+magnetic+resonance+imaging+for+noninvasive+characterization+of+heart+failure+with+preserved+ejection+fraction.">Exercise stress real-time cardiac magnetic resonance imaging for noninvasive characterization of heart failure with preserved ejection fraction.</a> Circulation. 143 (15), 1484-1498 (2021).</li><li>Borlaug, B. A., Nishimura, R. A., Sorajja, P., Lam, C. S. P., Redfield, M. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Exercise+hemodynamics+enhance+diagnosis+of+early+heart+failure+with+preserved+ejection+fraction.+Circulation.">Exercise hemodynamics enhance diagnosis of early heart failure with preserved ejection fraction. Circulation.</a> Heart Failure. 3 (5), 588-595 (2010).</li><li>Pacher, P., Nagayama, T., Mukhopadhyay, P., B&#225;tkai, S., David, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Measurement+of+cardiac+function+using+pressure-volume+conductance+catheter+technique+in+mice+and+rats.">Measurement of cardiac function using pressure-volume conductance catheter technique in mice and rats.</a> Nature Protocols. 3 (9), 1422-1434 (2008).</li><li>Cingolani, O. H., Kass, D. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Pressure-volume+relation+analysis+of+mouse+ventricular+function.">Pressure-volume relation analysis of mouse ventricular function.</a> American Journal of Physiology - Heart and Circulatory Physiology. 301 (6), 2198-2206 (2011).</li><li>Numata, G., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+pacing-controlled+protocol+for+frequency-diastolic+relations+distinguishes+diastolic+dysfunction+specific+to+a+mouse+HFpEF+model.">A pacing-controlled protocol for frequency-diastolic relations distinguishes diastolic dysfunction specific to a mouse HFpEF model.</a> American Journal of Physiology - Heart and Circulatory Physiology. 323 (3), H523-H527 (2022).</li><li>Pi&#241;a, I. L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Exercise+and+heart+failure.">Exercise and heart failure.</a> Circulation. 107 (8), 1210-1225 (2003).</li><li>Georgakopoulos, D., Kass, D. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Minimal+force-frequency+modulation+of+inotropy+and+relaxation+of+in+situ+murine+heart.">Minimal force-frequency modulation of inotropy and relaxation of in situ murine heart.</a> Journal of Physiology. 534 (2), 535-545 (2001).</li><li>Takimoto, E., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Frequency-+and+afterload-dependent+cardiac+modulation+in+vivo+by+troponin+I+with+constitutively+active+protein+kinase+A+phosphorylation+sites.">Frequency- and afterload-dependent cardiac modulation in vivo by troponin I with constitutively active protein kinase A phosphorylation sites.</a> Circulation Research. 94 (4), 496-504 (2004).</li><li>Meyer, M., Lewinter, M. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Heart+rate+and+heart+failure+with+preserved+ejection+fraction:+Time+to+slow+&#946;-blocker+use?+Circulation.">Heart rate and heart failure with preserved ejection fraction: Time to slow &#946;-blocker use? Circulation.</a> Heart Failure. 12 (8), 006213 (2019).</li><li>Schiattarella, G. G., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Nitrosative+stress+drives+heart+failure+with+preserved+ejection+fraction.">Nitrosative stress drives heart failure with preserved ejection fraction.</a> Nature. 568 (7752), 351-356 (2019).</li><li>Abraham, D., Mao, L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Cardiac+pressure-volume+loop+analysis+using+conductance+catheters+in+mice.">Cardiac pressure-volume loop analysis using conductance catheters in mice.</a> Journal of Visualized Experiments. (103), e52942 (2015).</li><li>Zhang, B., Davis, J. P., Ziolo, M. T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Cardiac+catheterization+in+mice+to+measure+the+pressure+volume+relationship:+Investigating+the+Bowditch+effect.">Cardiac catheterization in mice to measure the pressure volume relationship: Investigating the Bowditch effect.</a> Journal of Visualized Experiments. (100), e52618 (2015).</li><li>Townsend, D. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Measuring+pressure+volume+loops+in+the+mouse.">Measuring pressure volume loops in the mouse.</a> Journal of Visualized Experiments. (111), e53810 (2016).</li><li>Georgakopoulos, D., Kass, D. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Estimation+of+parallel+conductance+by+dual-frequency+conductance+catheter+in+mice.">Estimation of parallel conductance by dual-frequency conductance catheter in mice.</a> American Journal of Physiology - Heart and Circulatory Physiology. 279 (1), H47 (2000).</li></ol>

没有相互竞争的经济利益。

我们提出了一种方法来评估压力-容积与经食管起搏应用的关系。运动不耐受是HFpEF的关键特征之一，但尚无技术可用于评估运动期间小鼠的心脏功能。我们的起搏方案为检测舒张功能障碍提供了有价值的工具，这在静息条件下可能并不明显。
为了获得准确和一致的质量的PV回路，必须仔细执行以下步骤3,4,5,7,8,11,12,13,14：（1）必须小心地<sup cl...

心力衰竭是全球住院和死亡的主要原因，射血分数保留型心力衰竭 （HFpEF） 约占所有心力衰竭诊断的 50%。HFpEF 的特征是舒张功能障碍和运动耐量受损，相关的血流动力学异常，如舒张功能障碍，可以通过运动应激血流动力学测试或 MRI 扫描 1,2 清楚地检测到。
然而，在实验模型中，用于评估与 HFpEF 相关的生理异常的可用模式是有限的 3,4。跑步机运动试验 （TMT） 用于确定跑步时间和距离，这可能反映运动应激心脏血流动力学;然而，这种方法容易受到体重、骨骼肌力量和精神状态等外来变量的干扰。
为了规避这些限制，我们设计了一种心房起搏方案，该方案根据心率 （HR） 检测舒张性能的细微但关键的变化，并验证了其在 HFpEF5 小鼠模型中的有用性。有几个生理因素会影响与运动相关的心脏功能，包括交感神经和儿茶酚胺反应、外周血管舒张、内皮反应和心率6.然而，其中，心率-压力关系（也称为鲍迪奇效应）被称为心脏生理特征的关键决定因素 7,8,9。
该方案涉及在基线时进行常规压力-容积分析，以评估收缩压和舒张功能，包括压力发展速率 （dp/dt）、收缩末期压力-容积关系 （ESPVR） 和舒张末期压力-容积关系 （EDPVR） 等参数。然而，应该注意的是，这些参数受心率的影响，由于动物的内在心率不同，心率可能因动物而异。此外，还应考虑麻醉对心率的影响。为了解决这个问题，通过与伊伐布雷定同时进行心房起搏来标准化心率，并以增量心率进行心脏参数测量。值得注意的是，HR依赖性心脏反应将HFpEF小鼠与对照组小鼠区分开来，而在基线PV环测量（使用固有心率）中未观察到显着差异5。
虽然这种起搏协议可能看起来相对复杂，但当它被充分理解时，它的成功率超过 90%。该协议将为研究HFpEF小鼠模型中舒张功能障碍的潜在机制提供有用的方法，并有助于开发针对这种情况的新疗法。

<table border="1" fo:keep-together.within-page="1" fo:keep-with-next.within-page="always">
	<tbody>
		<tr>
			<td>2-0 silk suture, sterlie</td>
			<td>Alfresa Pharma Corporation, Osaka, Japan</td>
			<td>62-9965-57</td>
			<td>Surgical Supplies</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>2-Fr tetrapolar electrode catheter</td>
			<td>Fukuda Denshi, Japan and UNIQUE MEDICAL, Japan</td>
			<td>custom-made</td>
			<td>Surgical Supplies</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Albumin Bovine Serum</td>
			<td>Nacalai Tesque, Inc., Kyoto, Japan</td>
			<td>01859-47</td>
			<td>Miscellaneous</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>C57/BI6J mouse</td>
			<td>Jackson Laboratory</td>
			<td></td>
			<td>animals</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Conductance catheter</td>
			<td>Millar Instruments, Houston, TX</td>
			<td>PVR 1035</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Electrical cautery, Electrocautery Knife Kit</td>
			<td>ellman-Japan,Osaka, Japan</td>
			<td>1-1861-21</td>
			<td>Surgical Supplies</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Etomidate</td>
			<td>Tokyo Chemical Industory Co., Ltd., Tokyo Japan</td>
			<td>E0897</td>
			<td>Anesthetic</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Grass Instrument S44G Square Pulse Stimulator</td>
			<td>Astro-Med, West Warwick, RI</td>
			<td></td>
			<td>Pacing equipment</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Isoflurane</td>
			<td>Viatris Inc., Tokyo, Japan</td>
			<td>8803998</td>
			<td>Anesthetic</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Ivabradine</td>
			<td>Tokyo Chemical Industory Co., Ltd., Tokyo Japan</td>
			<td>I0847</td>
			<td>Miscellaneous</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>LabChart software</td>
			<td>ADInstruments, Sydney, Australia</td>
			<td>LabChart 7</td>
			<td>Hemodynamic equipment</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>MPVS Ultra</td>
			<td>Millar Instruments, Houston, TX</td>
			<td>PL3516B49</td>
			<td>Hemodynamic equipment</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Pancronium bromide</td>
			<td>Sigma Aldrich Co., St. Louis, MO</td>
			<td>15500-66-0</td>
			<td>Anesthetic</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>PE10 polyethylene tube</td>
			<td>Bio Research Center&#160; Co. Ltd., Tokyo, Japan</td>
			<td>62101010</td>
			<td>Surgical Supplies</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>PowerLab 8/35</td>
			<td>ADInstruments, Sydney, Australia</td>
			<td>PL3508/P</td>
			<td>Hemodynamic equipment</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>PVR 1035</td>
			<td>Millar Instruments, Houston, TX</td>
			<td>842-0002</td>
			<td>Hemodynamic equipment</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Urethane (Ethyl Carbamate)</td>
			<td>Wako Pure Chemical Industries, Ltd., Osaka, Japan</td>
			<td>050-05821</td>
			<td>Anesthetic</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Vascular Flow Probe</td>
			<td>Transonic, Ithaca, NY</td>
			<td>MA1PRB</td>
			<td>Surgical Supplies</td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

a pacing-controlled procedure for the assessment of heart rate-dependent diastolic functions in murine heart failure models

射血分数保留型心力衰竭 （HFpEF） 是一种以舒张功能障碍和运动不耐受为特征的疾病。虽然运动应激血流动力学测试或 MRI 可用于检测舒张功能障碍和诊断人类的 HFpEF，但这种方式在使用小鼠模型的基础研究中受到限制。跑步机运动试验通常用于小鼠的此目的，但其结果会受到体重、骨骼肌力量和精神状态的影响。在这里，我们描述了一种心房起搏方案，用于检测舒张性能的心率（HR）依赖性变化，并验证其在HFpEF小鼠模型中的有用性。该方法包括麻醉、插管和进行压力-容积 （PV） 环分析，同时进行心房起搏。在这项工作中， 通过 左心室心尖入路插入电导导管，并在食管中放置心房起搏导管。在用伊伐布雷定减慢心率之前收集基线 PV 环。 通过 心房起搏以 400 bpm 至 700 bpm 的 HR 增量收集和分析 PV 环路。使用该协议，我们在代谢诱导的HFpEF模型中清楚地证明了HR依赖性舒张功能障碍。与对照组小鼠相比，弛豫时间常数（Tau）和舒张末期压力-容积关系（EDPVR）均随着HR的增加而恶化。总之，这种心房起搏控制方案可用于检测 HR 依赖性心功能障碍。它为研究HFpEF小鼠模型中舒张功能障碍的潜在机制提供了一种新方法，并可能有助于开发针对这种情况的新疗法。

Heart failure represents a leading cause of hospitalization and death across the globe, and heart failure with preserved ejection fraction (HFpEF) accounts for around 50% of all heart failure diagnoses. HFpEF is characterized by diastolic dysfunction and impaired exercise tolerance, and the associated hemodynamic abnormalities, such as diastolic dysfunction, can be clearly detected through exercise-stressed hemodynamic testing or MRI scans1,2.
In experimental models, however, available modalities for assessing the physiological abnormalities related to HFpEF are limited3,4. Treadmill exercise testing (TMT) is used to determine running time and distance, which might reflect exercise-stress cardiac hemodynamics; however, this method is susceptible to interference from extraneous variables such as the body weight, skeletal muscle strength, and mental status.
To circumvent these limitations, we have devised an atrial-pacing protocol that detects subtle but crucial changes in diastolic performance based on the heart rate (HR) and have validated its usefulness in a mouse model of HFpEF5. Several physiological factors contribute to exercise-related cardiac function, including the sympathetic nerve and catecholamine response, peripheral vasodilation, the endothelial response, and the heart rate6. Among these, however, the HR-pressure relationship (also called the Bowditch effect) is known as a critical determinant of cardiac physiological features7,8,9.
The protocol involves performing a conventional pressure-volume analysis at baseline to assess the systolic and diastolic function, including parameters such as the rate of pressure development (dp/dt), the end-systolic pressure-volume relationship (ESPVR), and the end-diastolic pressure-volume relationship (EDPVR). However, it should be noted that these parameters are influenced by the HR, which can vary between animals due to differences in their intrinsic heart rate. Additionally, the effects of anesthesia on the HR should also be considered. To address this, the HR was standardized by administering atrial pacing concomitantly with ivabradine, and cardiac parameter measurements were performed at incremental heart rates. Notably, the HR-dependent cardiac response distinguished HFpEF mice from the control group mice, while no significant differences were observed in the baseline PV loop measurements (using the intrinsic heart rate)5.
While this pacing protocol may seem relatively complicated, its success rate exceeds 90% when it is well understood. This protocol would provide a useful way to study the underlying mechanisms of diastolic dysfunction in HFpEF mouse models and help in the development of new treatments for this condition.

作者聚焦：通过新型心房起搏方法研究小鼠模型中的 HR 依赖性心脏功能 

用于评估小鼠心力衰竭模型心率依赖性舒张功能的起搏控制程序

The heart rate-related relationship is important for determining cardiac characteristics, particularly, in HFpEF. This protocol aims to assess heart rate-dependent cardiac function. Any experimental models, available modalities for assessing heart rate-related cardiac function, are limited to treadmill exercise testing.The treadmill test, however, is influenced by variables such as body weight. To overcome these limitations, we have developed around atrial-pacing protocol to detect subtle, yet significant changes in the later performance that are linked to heart rate. Our protocol offers a variable tool for identifying cardiac dysfunction, manifested by heart rate changes.It also presents a number approach to studying diastolic dysfunction in mirroring heart failure models, particularly in HFpEF.

基线PV环路数据如图1和表1所示。在基线（没有起搏的情况下），对照组和HFpEF小鼠之间的舒张期参数（如弛豫时间常数（Tau）、最小压力变化率（dP / dt min）和EDPVR没有显着差异。然而，HFpEF小鼠表现出更高的血压和动脉弹性（Ea），如图1所示，并在心室收缩期间表现出典型的山形PV环。这应与心室肌肉直接接触压力传感器引起的尖峰区分开...

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本方案描述了通过经食管起搏获得压力-容积关系，这是评估心力衰竭小鼠模型舒张功能的宝贵工具。

Heart failure with preserved ejection fraction (HFpEF) is a condition characterized by diastolic dysfunction and exercise intolerance. While ...

心率相关关系对于确定心脏特征很重要，尤其是在 HFpEF 中。该协议旨在评估心率依赖性心脏功能。任何实验模型，用于评估心率相关心脏功能的可用模式，仅限于跑步机运动测试。然而，跑步机测试会受到体重等变量的影响。为了克服这些局限性，我们围绕心房起搏方案进行了开发，以检测与心率相关的后期表现的细微但显着的变化。我们的方案提供了一种用于识别心功能障碍的可变工具，表现为心率变化。它还提出了一种研究舒张功能障碍的多种方法，用于镜像心力衰竭模型，特别是在 HFpEF 中。

a-pacing-controlled-procedure-for-assessment-heart-rate-dependent

Research

JoVE Journal

Biology

A Pacing-Controlled Procedure for the Assessment of Heart Rate-Dependent Diastolic Functions in Murine Heart Failure Models

772 次观看.  The University of Tokyo Hospital. 心率相关关系对于确定心脏特征很重要，尤其是在 HFpEF 中。该协议旨在评估心率依赖性心脏功能。任何实验模型，用于评估心率相关心脏功能的可用模式，仅限于跑步机运动测试。然而，跑步机测试会受到体重等变量的影响。为了克服这些局限性，我们围绕心房起搏方案进行了开发，以检测与心率相关的后期表现的细微但显着的变化。我们的方案提供了一种用于识别心...