Quer Aorten-Verengung in Mäuse

Zusammenfassung

Quer Aorta Verengung (TAC) in der Maus ist eine häufig verwendete experimentelle Modell zugrunde liegenden Mechanismen der Herzhypertrophie und Herzinsuffizienz Entwicklung zu studieren. Hier beschreiben wir Verfahren zur Einengung der Aorta zu einem reproduzierbaren Grad der Herzhypertrophie in Mäusen zu erzeugen.

Zusammenfassung

Quer Aorta Verengung (TAC) in der Maus ist eine häufig verwendete experimentelle Modell für Drucküberlastung-induzierte Herzhypertrophie und Herzinsuffizienz.

Protokoll

Teil 1: Vorbereitung der OP-Feld

1. Die OP-Feld ist mit 75% igem Alkohol desinfiziert.
2. Stellen Sie sicher, das Heizkissen ist und mit der richtigen Temperatur. Eine empfohlene System ist ein Gaymar Umwälzpumpe angeschlossen, eine Therapie Pad, das bei 37 ° C beträgt ± 1 ° C. Es ist wichtig, die normale Körpertemperatur während der Operation zu erhalten, als ein rasches Absinken der Herzfrequenz zu vermeiden.
3. Chirurgische Werkzeuge sind in einem heißen Perle Sterilisator vor der Operation sterilisiert. Für dieses Verfahren benötigen Sie die folgenden chirurgischen Instrumenten: stumpfe Schere, natürlich gebogenen Pinzette X 2, Fein 45 ° abgewinkelte Pinzette X 2, gewinkelt Frühjahr Schere, Brust Retraktor und Nadelhalter.
4. Cotton Applikatoren sollte auf der Hand im Falle von Blutungen werden.

Teil 2: Herstellung und Intubation der Mäuse

1. Mäuse sind in einer Induktion Kammer narkotisiert mit 2% Isofluran gemischt mit 0,5 -1,0 L / min 100% O _2.
2. Haarschneidemaschinen werden verwendet, um das Fell vom Halsausschnitt bis Mitte Brusthöhe rasieren.
3. Die Maus ist in Rückenlage auf einem Heizkissen gelegt, um die Körpertemperatur aufrecht zu erhalten.
4. Ein Gummiband wird über das Tier s Frontzähne platziert, um den Hals zu verlängern. Mit einer gebogenen Pinzette in der einen Hand, die Zunge sanft auf die Seite manipuliert. Mit der anderen Hand, ist endotracheale Intubation erfolgt mit PE 90 Rohre. Der Endotrachealtubus wird dann zu einem Harvard Volumen-und wieder eingeschaltet Nagetier Ventilator Radfahren auf 125-150 Atemzüge / Minute und einem Atemzugvolumen von 0,1-0.3ml verbunden. 1,0 l / min 100% O ₂ - Während des chirurgischen Eingriffs, wird die Narkose bei 1,5-2% Isofluran mit 0,5 gepflegt. Richtig Niveau der Anästhesie wird durch Druck auf die Maus Nagelbett (toe-Pinch-Reflex) verifiziert.
5. Die OP-Feld ist mit betadine Lösung von 70% igem Alkohol desinfiziert gefolgt. Dieser Vorgang wird dreimal wiederholt.
6. Um zu verhindern Kontamination des OP-Feldes während der Operation, ist ein steriles Tuch über der Maus platziert und nur der Betrieb Feld ausgesetzt.
7. Eine Reihe von sterilen Handschuhen wird für jede einzelne Maus.

Teil 3: Ligation des Transverse Aorta

1. Teilweise Thorakotomie auf der zweiten Rippe wird unter einem Operationsmikroskop durchgeführt und das Brustbein eingefahren mit einer Brust Retraktor.
2. Feine Spitze 45 ° abgewinkelt Pinzette werden verwendet, um sanft trennen die Thymus-und Fettgewebe aus dem Aortenbogen.
3. Nach der Identifizierung der Quer-Aorta, ist ein kleines Stück einer 6,0 Seidennaht zwischen Innominate und linken Arteria carotis (Abbildung 1) platziert.
4. Zwei lose Äste sind rund um die transversale Aorta gebunden und ein kleines Stück von einem 27 ½ gauge stumpfe Nadel wird parallel zu den Quer-Aorta platziert. Der erste Knoten ist schnell gegen die Nadel gebunden, gefolgt von der zweiten und die Nadel sofort entfernt werden, um eine Verengung von 0,4 mm im Durchmesser liefern. In sham Kontrollmäuse, ist das gesamte Verfahren identisch, außer für die Unterbindung der Aorta.
5. Die Brust-Haken wird entfernt und der Abfluss des Beatmungsgerätes abgeklemmt für 2 Sekunden, um wieder aufblasen der Lunge.
6. Der Brustkorb wird geschlossen mit einem 6,0 Prolene Naht mit einer unterbrochenen Naht Muster.
7. Die Haut wird geschlossen mit einem 6,0 Prolene Naht mit einer fortlaufenden Naht Muster.

Teil 4: Post-operative Wiederherstellung

1. Für die postoperative Analgesie ist die Maus mit Buprenorphin (0,1 mg / kg) intraperitoneal injiziert. Wenn es Anzeichen einer Dehydrierung nach der Operation sind, ist steriler Kochsalzlösung intraperitoneal gegeben.
2. Anästhesie wird schrittweise auf die Aus-Position abgesenkt und der Tubus entfernt werden, wenn Anzeichen von Spontanatmung auftreten.
3. Die Maus ist die Bauchlage bewegt und man ließ sie auf einem Heizkissen erholen.

Teil 5: Bestätigung der erfolgreichen Ligation der Transverse Aorta

1. Eine Woche nach TAC ist die Maus wieder betäubt, um den Grad der Druck Überlastung durch Unterbindung der Aorta quer induzierte bestimmen. 1,0 l / min 100% O ₂ und die Körpertemperatur auf 37 ° C ± 1 ° C - Wie oben beschrieben, ist die Anästhesie bei 1,5-2% Isofluran mit 0,5 gepflegt
2. Ein 20 MHz-Doppler-Sonde befindet sich auf der linken und rechten Seite des Halses in einem 45 ° Winkel aufgestellt, um Strömungsgeschwindigkeiten zu erkennen. Ein Computer-based-Doppler-Signal-Prozessor (Indus Instruments, Houston, TX) wurde verwendet, um anzuzeigen und zu speichern Doppler-Signale. ⁵
3. Je nach dem Grad der Drucküberlastung für die experimentelle Protokoll benötigt, werden nur Mäuse mit einer rechten Carotis (RC) / linken Halsschlagader (LC) Flow-Verhältnis in einem bestimmten Bereich für die weitere Analyse mit einbezogen. Zum Beispiel führt ein gewisses Maß an Druck Überlastung zu einem Verhältnis von 5-8, wobei eine engere Einschnürung resulting in schweren Drucküberlastung führt zu einem Verhältnis von 8-10 (Abbildung 5.3A). Ein Schein-Tier (betrieben, aber nicht ligiert), jedoch wird erwartet, dass ein Verhältnis von ~ 1 (Abbildung 5.3b) zu haben.

6: Repräsentative Ergebnisse

Die typischen chirurgischen Überleben nach TAC in Wildtyp-Mäusen ist etwa 80-90%. Erfolgreiche chirurgische Ligatur der Aorta quer zu einer Doppler Strömungsgeschwindigkeit Verhältnis zwischen rechten und linken Halsschlagader (RC / LC) von 5-10 (Abbildung 1) führen. Im Vergleich zu scheinoperierten Mäusen (Abbildung 2a), sind Mäuse mit Drucküberlastung erwartet Herzhypertrophie innerhalb von 1-2 Wochen und Dilatation entwickeln sich nach 6-8 Wochen, je nach der Dichtigkeit der Einschnürung (Abbildung 2B). Sterblichkeit im ersten Monat nach TAC ist in der Regel gering (<20%) in Wildtyp-Mäusen, obwohl genetisch veränderten Mäusen unterschiedliche Überlebensraten aufweisen können. ^6,7

Abbildung 1. Bestätigung der Transverse Aorta Ligation mittels Doppler-Geschwindigkeitsmessung. Representative Dopplergeschwindigkeit Signale der rechten Seite (RC) und linken Halsschlagader (LC) Arterien 6 Tage post-TAC. Diese Aufnahmen zeigen eine erfolgreiche Ligation mit einem RC / LC Flow-Verhältnis von ~ 6,8.

Abbildung 2. Vertreter von ganzem Herzen Images Nach TAC. A. Sham-betrieben Wildtyp-Maus Herzen. B. Wildtyp-Maus Herz 16 Wochen post-TAC. Jede Zeile = 1mm.

Diskussion

TAC, die die menschliche Aortenstenose imitiert, ist eine gängige Methode, um Herzhypertrophie und Herzinsuffizienz in Mäusen zu induzieren. Alternative Standorte für Aorten-Verengung sind die aufsteigenden und abdominalen Aorta. Aufsteigende Aorta Verengung bietet eine extreme und schnellere Überlastung des linken Ventrikels (LV). Im Gegensatz dazu lässt Bauchaorta Verengung intakte einen größeren Teil des Kreislaufs als Mittel der möglichen Entschädigung. ⁸ Darum, TAC oft ist das bevorzugte Modell,...

Materialien

Name	Company	Catalog Number	Comments
Gaymar T/pump	Harvard Apparatus	Model TP-500	Circulating water pump
Temp. therapy pads	Harvard Apparatus	60-3414
Hot bead sterilizer	Fine Science Tools	18000-45
Blunt scissors	Roboz Surgical Instruments Co.	RS-5980
Angled spring scissors	Roboz Surgical Instruments Co.	RS-5668
Chest retractor	Fine Science Tools	17002-02
Course curved forceps	Roboz Surgical Instruments Co.	RS-5138
Dumont fine 45° angled forceps	Fine Science Tools	11253-25
Needle holder	Fine Science Tools	12565-14
Electric shaver	GE Healthcare		For shaving mouse fur
PE 90 tubing	BD Biosciences	427420	For intubation
MiniVent (ventilator)	Harvard Apparatus	Type 845
Betadine	Fisher Scientific	19-027132	May be purchased at medical supply store
Sterile gloves	Mckesson	20-1565
Stereo microscope	Unico	ZM186
6-0 silk suture	Fine Science Tools	18020-60
27 ½ gauge needle	BD Biosciences	305109
6-0 prolene suture	Mckesson	3286
Buprenorphine	Institutional Animal Facility