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In diesem Artikel

  • Zusammenfassung
  • Zusammenfassung
  • Protokoll
  • Offenlegungen
  • Materialien
  • Referenzen
  • Nachdrucke und Genehmigungen

Zusammenfassung

Zusammenfassung

Protokoll

NIH3T3-Zellen der Zubereitung:

A. Zellen für Ejection

  1. Trypsinize Zellen, dann verdünnt 1:1 mit Zell-Medien und Übertragung von einem T75 Kolben in ein 15 ml Falcon-Röhrchen
  2. Spin down-Zellen zu einem Pellet durch Zentrifugation, Absaugen des Überstandes und waschen Sie die Zellen mit DPBS
  3. Spin down-Zellen zu einem Pellet erneut, und saugen Überstand
  4. Die Zellen in den Medien
  5. Bestimmen Sie die Zelldichte mit Zählkammer (~ 200 X 10 4 Zellen / ml pro Flasche T75)
  6. Zentrifugenzelle Lösung absaugen Überstand und resuspendieren in entsprechender Höhe von Medien für unterschiedliche Zell-Konzentrationen

B. Zell-Ausstoß

  1. Vortex-Zellen, bevor Sie zum Auswerfen
  2. Transfer-200 ul der Zell-Lösung in die Spritze
  3. Festlegen geeigneter Modus Impulsgeber
    1. Zum Auswerfen einzelner Tropfen und mehrere Tröpfchen (Bursts), setzen Impulsgeber zu "E. BUR"-Modus
    2. Für die kontinuierliche Tröpfchenausstoß setzen Impulsgeber auf "NORM"-Modus
  4. Ändern Signal-Einstellungen
    1. Set hohen und niedrigen Ausgangsspannung: HIL bis 5 V und LOL auf 0 V und sicherstellen, dass die "LIM" LED ist an
    2. Set-Signal als Rechteckimpuls
    3. Ändern Sie die Höhe der Zeit das Magnetventil ist offen für Tröpfchenausstoß indem Sie den Wert für "WID" oder Ändern Einschaltdauer ("Pflicht")
    4. Ändern Sie die Frequenz eines Rückschlags indem Sie den Wert für "PRO"
    5. Ändern Sie die Anzahl der Tropfen in einem Ausbruch, indem der Wert für "BUR" ausgeworfen
  5. Eject Zelle Lösung auf den vorbereiteten Untergrund für die Bildgebung mit Mikroskop

C. Färbung

  1. Make up Farbstofflösung mit 0,5 ul Calcein-AM und 2 ul Ethidium Homodimer pro ml DPBS
  2. Tauchen vorbereiteten Untergrund in Farbstofflösung
  3. Lassen Sie Probe für 10 Minuten bei 37 ° C inkubieren, bevor Bildgebung

Experiment Validation

  1. Auf einem Nikon Eclipse TE-2000 U Fluoreszenzmikroskop
    1. Spot fortschrittliche Software (Diagnostics, Inc.)
    2. Live / Dead Assay

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Offenlegungen

The authors have nothing to disclose.

Materialien

NameCompanyCatalog NumberComments
Fluorescent MicroscopeNikon InstrumentsEclipse TE-2000 U
Solenoid valve cell ejectorOperation frequency: 1 KHz, 30psi, 50nl~0.5ul. 12V Valve Driver: 2.5 Amp drive current
5-Gallon Portable air tankColemanPowermate CT5Pressurized air: 30 PSI
Pressure regulatorsMarsh Bellofram
Pulse GeneratorHP8112AActuation frequency generation: 50 MHz
XYZ-stageNewmark SystemsWith Stepping motor: 6inch travel xy-stage(NLS4-6-25), 2.5inch travel z-stage(NLS4-2.5-25), 3axis controller(NSC-G3), 0.1um resolution
NIH 3T3Cell-linefibroblasts
Trypsin0.05% solution
NIH 3T3 cell medium
DPBSBuffer
T75Tissue culture flasks
Plastic conical tubes15 ml, for tissue culture

Referenzen

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Nachdrucke und Genehmigungen

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