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Method Article
Ein Mikrochip Herstellungsverfahren, die Plasmonen Pinzette umfasst wird hier vorgestellt. Der Mikrochip ermöglicht die Abbildung eines eingeschlossenen Teilchen maximal Trapping Kräfte zu messen.
Plasmonische Pinzette Oberflächenplasmon Polaritonen polarisierbaren nanoskaligen Objekten zu beschränken. Unter den verschiedenen Designs plasmonischer Pinzette, nur wenige können immobilisierte Teilchen beobachten. Darüber hinaus haben eine begrenzte Anzahl von Studien experimentell die ausübbaren Kräfte auf die Partikel gemessen. Die Entwürfe können als den vorstehenden Nanoscheibentyp oder unterdrückt nanohole Typ klassifiziert werden. Für letztere ist eine mikroskopische Beobachtung extrem anspruchsvoll. In diesem Beitrag wird ein neues System eingeführt plasmonic tweezer Partikel zu überwachen, die beide in Richtungen parallel und senkrecht zu der Symmetrieachse einer plasmonic nanohole Struktur. Diese Funktion ermöglicht es, die Bewegung der einzelnen Teilchen in der Nähe des Randes des nanohole zu beobachten. Darüber hinaus können wir quantitativ die maximalen Fangkräfte schätzen einen neuen fluidischen Kanal.
Die Fähigkeit mikroskaligen Objekte zu manipulieren, ist ein unverzichtbares Merkmal für viele Mikro- / Nano-Experimente. Der direkte Kontakt Manipulationen können die manipulierten Objekte beschädigen. die bisher gehaltenen Objekte Releasing ist auch wegen der Haft- Probleme herausfordernd. Unter Verwendung dieser Probleme, mehrere indirekte Verfahren fluidischen 1, 2 elektrische, magnetische 3 oder photonische Kräfte 4, 5, 6, 7, 8 zu überwinden , vorgeschlagen worden. Plasmonische Pinzette , die photonische Kräfte verwenden , wird auf der Grundlage der Physik der außergewöhnlichen Feldverstärkung mehr Aufträge größer als die Lichtintensität 9. Diese extrem starke Feldüberhöhung ermöglicht das Einfangen von extrem kleinen Nanopartikeln. Zum Beispiel hat es sich als nanoskalige gezeigt zu immobilisieren und zu manipulierenObjekte, wie Polystyrolteilchen 7, 10, 11, 12, 13, 14, 15 Polymerketten, Proteine 16, Quantenpunkte 17 und DNA - Molekül , 8, 18. Ohne plasmonic Pinzette ist es abzufangen Nanopartikeln schwierig, weil sie schnell verschwinden, bevor sie wirkungsvoll untersucht werden, oder weil sie aufgrund der hohen Intensität des Lasers beschädigt werden.
Viele plasmonic Studien haben verschiedene nanoskalige Goldstrukturen. Wir können die Goldstrukturen als vorstehende Nanoscheibentypen 12, 13, 14, 15, 19 kategorisieren , 20, 21 oder unterdrückt nanohole Typen 7, 8, 10, 11, 22, 23. In Bezug auf die Abbildungs Bequemlichkeit sind die Nanoscheibentypen besser geeignet als die nanohole Typen da, für die letztere, die Goldsubstraten die Beobachtung Sicht versperren können. Darüber hinaus tritt das Plasmonen-Trapping in der Nähe der Plasmonen Struktur und macht Beobachtung noch schwieriger. Nach bestem Wissen unserer Erkenntnisse wurde plasmonic Trapping auf nanohole Typen verifiziert nur indirekte Streusignale. Jedoch keine erfolgreichen direkten Beobachtungen, wie mikroskopische Aufnahmen, wurden berichtet. Nur wenige Studien haben die Position der gefangenen Partikel beschrieben. Ein solches Ergebnis wurde von Wang et al. Sie schufen eine Gold-Säule auf einem Goldsubstrat und beobachtet die pArtikel Bewegung eines Fluoreszenzmikroskops unter Verwendung von 24. Dies ist jedoch nur dann wirksam zur Überwachung seitliche Bewegungen nicht in Richtung parallel zur Strahlachse.
In diesem Beitrag stellen wir neue fluidischen Mikrochip-Design und Herstellungsprozeduren. Unter Verwendung dieses Chip demonstrieren wir die Überwachung von plasmonically eingeschlossenen Teilchen, sowohl in Richtungen parallel und senkrecht zu der Plasmonen Nanostruktur. Darüber hinaus messen wir die maximale Kraft des immobilisierten Partikel durch die Fluidgeschwindigkeit die Erhöhung der tipping Geschwindigkeit in dem Mikrochip zu finden. Diese Studie ist einzigartig, weil die meisten Studien auf Plasmonen Pinzette nicht quantitativ die maximalen Fangkräfte in ihren Versuchsaufbauten verwendet wurden, zeigen.
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Achtung: Bitte beachten Sie alle relevanten Materialsicherheitsbestimmungen vor dem Gebrauch. Einige der Chemikalien in Mikrochipherstellung verwendet werden, sind akut toxisch und krebserregend. Bitte verwenden Sie alle geeigneten Sicherheitspraktiken bei der Photolithographie und Ätzverfahren durchgeführt wird, einschließlich der Verwendung von technischen Kontrollen (Abzugshaube, Kochplatte, und Aligner) und persönliche Schutzausrüstung (Schutzbrille, Handschuhe, Kittel, in voller Länge Hosen und geschlossen -Zehenschuhe).
1. Herstellung des PDMS Microchannel-
2. Etching Verfahren der Goldplatte
3. Montage des Microchip
4. Verbesserung der Microchip Seiten Oberflächenrauheit von PDMS-Beschichtung
HINWEIS: Die Goldplatte mit festen Abmessungen von 400 x 150 & mgr; m 2 ist relativ schwieriger zu schneiden ist als das PDMS - Material. Daher wird die PDMS Mikrokanal von dem Wafer abzulösen, wird eine Rasierklinge ein größeres Stück als die Goldplatte auszuschneiden verwendet. Nachdem die beiden Teile verbindet, müssen die überschüssigen Teile des PDMS , bezogen auf die Goldplatte dann geschnitten werden , so dass das Innere des Kanals von der Seite unter Verwendung eines Mikroskops (4a) beobachtet werden. Jedoch kann die Schnittfläche, die als Fenster verwendet wird, hat eine hohe Oberflächenrauhigkeit und somit erzeugt trübe Bilder des Partikels , die in dem Kanal (Abbildung fließen4b). Die Beschichtung mit der PDMS-Lösung wird erneut durchgeführt, um dieses Problem zu lösen.
5. Lasereinkopplung die SMF-Kabel an den Microchip einfügen
HINWEIS: Für das plasmonic tweezer System wird ein optische Faser auftreffende Laser mit einer 1.064-nm Wellenlänge verwendet wird. Das SMF-Kabel ist, weil der Durchmesser des verwendeten inciDent Laser (5 mm) zu immensem dem Laserstrahl an der nanohole auf dem Gold - Block (400 x 150 & mgr; m 2) in dem Mikrochip zu fräse zu emittieren. Das Manteldurchmesser des SMF Kabels beträgt 125 & mgr; m. Somit muß der einfallende Laser und SMF-Kabel gekoppelt werden.
6. Plasmonische Trapping einzelner fluoreszierender Polystyrolteilchengröße im Microchip
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Der Herstellungsprozess der PDMS Mikrokanal und nanohole Goldplatte ist in den 1 und 2 dargestellt. Das Verfahren zum Kombinieren der beiden Teile und der tatsächliche Mikrochip ist in Abbildung 3 dargestellt. Das PDMS wurde geschnitten, um das Innere des Kanals von der Seite des Mikrochips zu offenbaren. Jedoch war es schwierig, die Teilchen fließen in dem Kanal aufgrund der Oberflächenrauhigkeit der Schnittebene zu beobachten. Daher...
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Das SMF - Kabel wurde in dem SMF Kabelloch auf dem Mikrochip eingesetzt ist , wie es in dem rechteckigen Punkt der 6a gezeigt. Da das SMF Kabelloch größer als das Kabeldurchmesser ist, wurde Epoxidkleber verwendet, um den Spalt abzudichten das Austreten der fließenden Partikellösung zu blockieren. Vor der Anwendung von Epoxidkleber, sollte der Goldblock und Kabelrand koaxial mit der Hand unter Verwendung eines Mikroskops ausgerichtet werden. Obwohl es für die eingelegte Kabelkante und der nanohole ...
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Die Autoren haben nichts zu offenbaren.
Diese Arbeit wurde von dem ICT-F & E-Programm von MSIP / IITP (R0190-15-2040, Entwicklung eines Inhalt Konfigurationsmanagementsystem und ein Simulator für die 3D-Druck mit intelligenten Materialien) unterstützt.
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Name | Company | Catalog Number | Comments |
Negative photoresist | MicroChem | SU-8 2075 | |
Developer | MicroChem | SU-8 Developer | |
Positive photoresist | Merck Ltd. | AZ GXR-601 | |
AZ Photoresist Developers | Merck Ltd. | AZ 300 MIF | |
HMDS | Merck Ltd. | AZ Adhesion Promoter | |
Aligner | Midas System | MDA 400M | |
Atmospheric plasma machine | Atmospheric Process Plasma Co. | IDP-1000 | |
Polydimethylsiloxane (PDMS) | Dow Corning | Sylgard 184 A/B | |
Gold coated test slides | EMF Co. | TA124(Ti/Au) | |
Au etchant | Transene Inc. | TFA | |
Ti etchant | Transene Inc. | TFT | |
40X objective lens | Edmund Optics | 40X DIN | |
60X water immersion objective lens | Olympus | LUMPLFLN 60XW | |
Optical fiber incident laser | IPG Photonic | YLR 10 | |
SMF coupler | Thorlabs | MBT612D/M | |
Syringe micropump | Harvard | PC2 70-4501 | |
Fluorescent microscope | Olympus | IX-51 | |
Plasma system | Femto Science Inc | CUTE-MPR |
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