The authors would like to acknowledge the Netherlands Organization for Scientific Research (NWO, grant 17.106.329)

Tierversuche wurden von der Tierschutzausschusses des Leiden University Medical Center (LUMC) zugelassen. 1. Herstellung der Zellen, Instrumente und Mäuse <ol><li> Einen Tag vor der Operation, rasieren die NOD / SCID-gamma (NSG) Mäuse aus dem vierten Brustwarze bis zur Mittellinie und wiegen die Mäuse, um zu überprüfen, dass alle Mäuse haben in etwa vergleichbar Gewichte. </li><li> Autoklavieren eine Schere, zwei Pinzetten und zwei gerade Moskito Pinzette (Abbildung 1A). </li><li> Am Tag der Operation, wäscht den menschlichen Brustadenokarzinom (MDA-MB-231-Zellen), die einmal mit phosphatgepufferter Salzlösung (PBS) injiziert wird, pH 7,4 und trypsinize die Zellen. Quenche die Trypsin durch Zugabe von 10 ml Serum enthaltendem DMEM-Medium auf die Oberseite der Zellen. Zentrifugieren Sie die Zellen bei 1200 rpm für 7 Minuten bei Raumtemperatur, um das Serum durch Resuspendieren der Zellen entweder in PBS oder in Medium ohne Serum zu entfernen. Zentrifugieren wieder um Spuren von Serum vollständig zu entfernen. Resuspendieren der Zellen in PBS oderMedien. </li><li> Zähle die Zellen mit einem Hämozytometer und berechnet die Menge von Zellen. Verwenden 500.000 Zellen / Maus in nicht mehr als 150 &amp; mgr; l. Optional zu PBS oder Medien, die Zellen werden in Matrigel. HINWEIS: Bestimmen Sie die Anzahl der Zellen in Abhängigkeit von der verwendeten Zelltyp. </li><li> Zeigen Zellen in ein steriles Mikrozentrifugenröhrchen und halten sie auf Eis. </li><li> Füllen einer 50 ml konischen Zentrifugenröhrchen mit 35 ml PBS pH 7.4 und einem weiteren 50 ml konischen Zentrifugenröhrchen mit 70% Ethanol. Genießen Wattestäbchen in jedes Röhrchen. </li></ol> 2. Orthotopische Injection <ol><li> Führen Sie die Operation in einer sterilen Haube, um eine sterile Atmosphäre zu erhalten. Anesthetize die Maus durch subkutane Injektion von Xylazin / Ketamin-Mischung bei einer Dosis von 10 mg / kg, 100 mg / kg Körpergewicht auf. Befestigen Sie die Maus auf einem Heizkissen. Bestätigen den Erfolg der Anästhesie durch den Mangel an Reaktion auf Zehe Prise. HINWEIS: Wenn man nicht sehr vertraut mit chirurgischen Eingriffen, kann eine Operation länger dauern. Vereinbarendie Anästhesie Dosis entsprechend. </li><li> Anwenden Augensalbe für die Augen von Mäusen, um die Augen vor dem Austrocknen zu schützen. </li><li> Reinigen Sie die rasierte Fläche mit der Wattestäbchen in Ethanol in Schritt 1.6 vorbereitet getaucht. Wechselnde Peelings mit Betadin und Alkohol dreimal im Kreis dreht weg von der geplanten Einschnittstelle durchgeführt werden. Alternativ Ionophor verwendet als Desinfektionsmittel. </li><li> Machen Sie einen kleinen Schnitt zwischen dem vierten Brustwarze und der Mittellinie mit einer Schere und eine Tasche, indem Sie das Wattestäbchen mit PBS, pH 7,4, befeuchtet. </li><li> Verwenden Sie eine Pinzette, um das Brustfettpolster aus. Beachten Sie die Fettpolster durch ihre weiße Farbe. </li><li> Drücken Sie die Fettpolster mit der anderen Pinzette von ihrer Basis; durch diese Weise voll setzen die Fettpolster (1B), um Injektionen leicht durchführen. </li><li> Homogenisieren des Zellgemisch durch Auf- und Abpipettieren. Vorsichtig aspirieren 50 ul der Zellsuspension in einem Insulin Spritze aufgezogen und indas Brustfettpolster, indem Sie die Nadel horizontal. Bestätigen erfolgreiche Injektion, indem Sie für Schwellungen der Fettpolster. </li><li> Lassen Sie die Fettpolster sanft. </li><li> Naht der Einschnitt unter Verwendung einer Nadeltreiber. Make drei Würfe durch Drehen des Fadens um den Nadeltreiber im Uhrzeigersinn, gegen den Uhrzeigersinn und im Uhrzeigersinn. Zwei Knoten pro Naht verwendet werden. HINWEIS: Sicherstellen, dass die Äste dicht sind anders Mäusen eröffnen können die Nähte. </li><li> Nach der Operation injiziert ein Analgetikum, wie Temgesic bei 0,05-0,1 mg / kg Körpergewicht subkutan, um die Schmerzen zu lindern. </li><li> Die Tiere nicht unbeaufsichtigt lassen, bis sie das Bewusstsein gewinnen und zu erhalten sternalen recumbence. Zeigen alle Tiere in verschiedenen Käfigen, bis sie vollständig wiederhergestellt werden. </li><li> Um die Sterilität zu gewährleisten, verwenden autoklaviertem Käfigen und Wasser. Ändern Sie die Käfige alle drei Tage, um die Atmosphäre zu reinigen. </li></ol> 3. Organraub für Analysis <ol><li> An derTag der Ernte, 8 Wochen nach der Implantation der Zellen zu füllen 15 ml konischen Zentrifugenröhrchen mit 3 ml Bouin-Lösung für jede Maus. Darüber hinaus verwenden Sie zwei 15-ml-Röhrchen mit 5 ml Formalin-Lösung pro Maus gefüllt. </li><li> Betäuben der Tiere durch Injektion von Xylazin / Ketamin, bei einer Dosis von 10 mg / kg, 100 mg / kg Körpergewicht subkutan. Warten Sie, bis das Tier verliert toe Prise Rückzug Reflex. </li><li> Befestigen Sie das Tier mit Nadeln auf einem Sockel. Machen Sie einen langen, vertikalen Mittelschnitt mit einer Schere. Machen Sie zwei horizontale Schnitte direkt unter dem Vorderbein und über dem hinteren Bein. Setzen Sie den Tumor durch Pinning die Haut an der Basis. Messen des Tumorvolumens mit Hilfe einer Schieblehre. </li><li> Distanzieren, den Tumor von der Haut mit einer Schere. Schnellfrost einen Teil des Tumors in flüssigem Stickstoff für die RNA-Isolierung. Legen Sie das andere Teil, in den konischen Zentrifugenröhrchen mit Formalin gefüllten Immunhistochemie folgenden Paraffineinbettung durchzuführen. </li><li> Vorsichtig nehmen Sie in die Lunge. Platzieren Sie dielinke Lunge in Bouin-Lösung. Halten Sie die Lunge in Lösung für 3 Tage. Beachten oberflächliche Metastasenherde deutlich mit bloßem Auge. Wahlweise legen Sie die rechte Lunge in Formalin auf Mikrometastasen mit Hämatoxylin und Eosin (H &amp; E) Färbung zu überprüfen. Hinweis: Obwohl, Lungenmetastasen häufig bei Brustkrebs beobachtet, könnte man auch wünschen Knochen, Leber, Hirn und Milz sammeln, um Metastasen zu analysieren. Die Zellen an der metastatischen Bereich dichter und morphologisch verschieden sind und daher leicht von Lungengewebe zu unterscheiden. </li><li> Einen Tag nach der Ernte, saugen Sie den Formalin-Lösung von 15 ml-Röhrchen und ersetzen mit 70% Ethanol. Betten Sie das Gewebe in Paraffin und führen Immunhistochemie Studien. </li><li> Für Blutanalyse, die Öffnung des Brustkorbes mit einer Schere. Ziehen Sie 450 ul Blut über Herzpunktion. Platzieren Blutprobe in ein Mikrozentrifugenröhrchen, das 50 &amp; mgr; l 3,2% Natriumcitrat. Nach dem Blut gesammelt, drehen Sie es bei 2.000 × g für 10 kmn. Speichern die Plasmaproben bei -20 ° C bis zur weiteren Verwendung. HINWEIS: Es gibt mehrere andere Blutentnahme Techniken, die üblicherweise in der Praxis 20 verwendet, und die Technik, die verwendet werden muss, hängt von Versuchsaufbau und Wahl Wissenschaftlers. Wenn Blutprobe nicht erforderlich ist, das Tier einzuschläfern gemäß der Tier Protokoll oder gemäß den Richtlinien Institution. </li></ol>

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The authors declare that they have no competing financial interests.

Orthotopische Injektion von Brustkrebszellen ist ein leistungsfähiges Modell, alle Aspekte der Krebswachstum zu studieren. Implantation der Zellen in den Brustfettpolster der Mäuse sollte sorgfältig ausgewählt, um Variation in das Tumorwachstum zu verhindern durchgeführt werden. Am wichtigsten ist, ist entscheidend Injektion der gleichen Menge von Zellen jeder Maus. Um dies zu tun, sollte man die Zellen trypsinieren konsequent, ohne die Lebensfähigkeit der Zellen. Nicht lebensfähigen Zellen sollten bei der Zellz?...

Krebs ist eine sehr komplexe Krankheit, die seit über Jahrhunderte zogen worden Studien. Brustkrebs ist die häufigste Krebsart; sie tritt vorwiegend bei Frauen, kann aber vereinzelt auch bei Männern 27 auftreten. Die Erkrankung wird hauptsächlich durch den Verlust der Kontrolle der Zellteilung Verfahren gesteuert, die wiederum führt zu einer unendlichen Wachstum von Zellen im Körper verursacht. Diese Störungen können durch verschiedene Mechanismen verursacht werden: Zunächst müssen die gesunden Zellen Wachstumssignale aus den umliegenden Zellen, um sich zu vermehren, während Krebszellen ihre eigenen Wachstumsfaktoren und erhöhen die Expression von Wachstumsfaktor-Rezeptoren somit eine höhere Proliferationsrate 1 erhalten wird; zweitens sind die Krebszellen weniger anfällig für anti-proliferative Signale 8; drittens, um die Anzahl der Zellen im Körper Zelltod ist auch erforderlich, auszugleichen; aber Krebszellen Flucht aus den programmierten Zelltod, die Apoptose bezeichnet 14; vierten, Zellen an extrazelluläre Matrix haftenUm zu überleben, aber Tumorzellen ohne die Notwendigkeit von Befestigungs wachsen und zeigen Beständigkeit gegen anoikis 19; fünften, Aktivierung der Telomerase umgeht die Verkürzung der Telomere und verhindert die replikative Seneszenz 21; nicht zuletzt, das Überspringen von DNA-Qualitätskontrolle nach der Mitose resultiert eine neue genetische Inhalt 15,16. Um Onkogenen oder Tumorsuppressoren, die eine Rolle in dieser deregulierten Proliferation spielen zu identifizieren, sind Tumorwachstum Experimenten an Mäusen entscheidend. Primäre Tumorwachstum ist im allgemeinen nicht der Hauptgrund für den Tod. Migration von Krebszellen aus dem Primärstandort zu einer sekundären Seite, bezeichnet als Metastasen ist die häufigste Todesursache in den meisten Krebspatienten 22. Metastasen bringt Tumorzellinvasion, intravasation, sich durch den Kreislauf vermieden Immunangriff, Extravasation und das Wachstum an der Sekundärstation. Epithelial zu mesenchymale Transition (EMT) ist ein Schlüsselprozess inMetastasierung und beinhaltet einen Schalter in Genexpressionsprofile ergeben Zellen mit höheren Motilität und Invasivität, die Voraussetzungen für die metastasierenden Zelle 12 sind. Denn Krebsprozesses ist die Resultierende aus einer Kombination von verschiedenen Maßnahmen, einschließlich der gegenseitigen Wechselwirkungen zwischen Tumorzellen, Stromazellen und pro- und anti-inflammatorischen Zellen, ein in vitro Ansatz zur Krebs verleiht häufig keinen vollständigen Einblick in die Krebsprozess. Ähnlich Krebsbehandlungen beeinflussen die Tumorvaskulatur oft nicht in vitro untersucht werden, wodurch die Verwendung von in vivo-Ansätzen ist unvermeidlich. Um Brustkrebs Progression zu studieren, wurden verschiedene experimentelle Methoden entwickelt. Das am häufigsten verwendete Modell ist die subkutane Injektion von Brustkrebszellen in Mäuse 5. In diesem Versuchsaufbau kann der Forscher eine Vielzahl von Änderungen an einer Zelllinie der Wahl in vitro eingeführt (dhHochregulierung, die Herunterregulierung von Proteinen) und injizieren die Zellen unter die Haut. Dieses Verfahren ist zwar einfach und der Einspritzvorgang ist einfach, ohne dass eine Operation an den Mäusen durchgeführt, wird die Stelle, an der der Tumor injiziert nicht die lokale Mammatumorumgebung und das Fehlen dieser Umwelt darstellen kann in der Entwicklung von Brustkrebs Ergebnis, dass unterscheidet sich von dem in der menschlichen Pathologie beobachtet. Zweitens werden gentechnisch veränderte Mäuse häufig als in vivo Werkzeug Brustkrebsprogression Studie verwendet. In diesem Modell wird Onkogen (dh PyMT, Neu) Expression von einem Brustgewebe spezifischen Promotor, der zur Bildung von spontanen Brusttumor s angetrieben. Diese Versuchsanordnung ist nützlich, um die Behandlung Aspekt der Krankheit, die durch Injektion von Medikamenten oder Antikörper während der Überprüfung der Tumorgröße in der Zeit 3 studieren. Allerdings Zucht dieser Mäuse mit anderen Mausstämme mangelhaft oder in einem Gen von Interesse kann auch geben Ins mutiertights in die Rolle von verschiedenen Proteinen in Brusttumorwachstum 24. Der Nachteil dieses Modells ist, dass es anfällig für Schwankungen der Tumorgröße und Anzahl ist. Außerdem ist das Niveau der Expression des Transgens hängt von der Integrationsstelle im Genom und können von einem Mausstamm auf einen anderen 4 ändern. In diesem Modell kann die Expression des Transgens durch alle Zellen mit epithelialem Ursprung erreicht werden, während bei menschlichen Krankheiten, nur eine Subpopulation der Zellen das Onkogen oder herunterregulieren Tumorsuppressor Ebenen 26. Um Metastasen studieren kann Brustkrebszellen auch intravenös injiziert werden (ein Modell bezeichnet experimentelle Metastasierung) 25. Dieser Ansatz rekapituliert nur die metastatischen Prozess teilweise; er umgeht das Erfordernis für die Tumorzellen eindringen und intravasate und beginnt ab dem Punkt, an dem die Tumorzellen leicht in dem Blutkreislauf vor. In unserer Arbeit verwenden wir eine orthotope spritzenIonen-Modell, um die Beteiligung der Gene von Interesse bei Brustkrebs Progression 13 zu studieren. Wir überexprimieren das Protein in menschlichen Brustkrebszellen und injizieren sie in das Brustfettpolster von NOD / SCID gamma (NSG) Mäusen. Dieses Verfahren ist vorteilhaft in vielerlei Hinsicht: Sie ermöglicht sehr schnelle und vielfältige genetische Veränderungen in der injizierten Zelllinie deckt es den gesamten Prozess von Brustkrebs Progression von Primärtumorwachstum zur Metastasierung bei pathologisch relevanten Websites, und es bietet auch eine gute Versuchsmodell zur Untersuchung der Wirkung von therapeutischen Behandlungen zu frühen oder späten Stadien der Erkrankung. Zusätzlich unter Verwendung dieses Modells kann man die Rolle der Stromazellen gegen Krebszellen stammenden Proteinen in den Krankheitsverlauf unter Verwendung gentechnisch veränderten Mäusen oder Zellen zu untersuchen. Obwohl subkutane Injektionen sind einfacher durchzuführen, geben orthotope Modellen aber zu einer tumorigenen und metastatischen Krebszellpopulation. Somit wird mittels der subkutanen Injektion erhaltenen Ergebnisses kann entweder falsch-negative oder falsch-positive 6,17 Förderung der Verwendung von orthotopen Modelle, die das Tumorwachstum zu studieren.

<table><tbody><tr><td>Bouin&#039;s solution</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>HT10132</td><td>Used for investigating the metastasis on lungs</td></tr><tr><td>Formalin solution</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>HT501128</td><td>Used to fix the tissues</td></tr><tr><td>Matrigel, growth factor reduced</td><td>Corning</td><td>356230</td><td>Cells can be resuspended in matrigel for injection</td></tr><tr><td>Mosquito forceps</td><td>Fine Science Tools</td><td>13008-12</td><td>Used for stiching</td></tr><tr><td>Angled forceps</td><td>Electron microscopy sciences</td><td>72991-4c</td><td>These make the exposure of mammary fat pad easier</td></tr><tr><td>Scissors</td><td>B Braun Medicals</td><td>BC056R</td><td>Used to cut open the mice</td></tr><tr><td>Straight forceps</td><td>B Braun Medicals</td><td>BD025R</td><td>This is used to open up the skin to expose mammary fat pad</td></tr><tr><td>NOD scid gamma mice</td><td>Charles River</td><td>005557</td><td>Experimental animal used for experiment</td></tr><tr><td>MDA-MB-231</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>92020424</td><td>Experimental cells used for injections</td></tr><tr><td>Oculentum simplex</td><td>Teva Pharmachemie</td><td></td><td>Opthalmic ointment used to prevent drying out of eyes</td></tr><tr><td>Betadine</td><td>Fischer Scientific</td><td>19-898-859</td><td>Ionophore, used to disinfect the surgical area</td></tr><tr><td>Xylazin/Ketamine</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>X1251, K2753</td><td>Use injected anesthesia as 10mg/kg and 100mg/kg body weight respectively</td></tr><tr><td>Temgesic</td><td>Schering-Plough</td><td></td><td>Use the painkiller as 0.05-0.1 mg/kg body weight</td></tr><tr><td>DMEM</td><td>Life sciences</td><td>11995</td><td>For trypsin neutralization,use media with serum(FBS:media 1:10 volume); for injection, use media with no serum</td></tr><tr><td>Buffered sodium citrate</td><td>Aniara</td><td>A12-8480-10</td><td>Use the volume ratio as citrate:blood; 1:9</td></tr></tbody></table>

orthotopic injection of breast cancer cells into the mammary fat pad of mice to study tumor growth.

<html> Das Wachstum von Brustkrebs in Mäusen mit einer Vielzahl von Modellen untersucht werden. Genetische Manipulation von Brustkrebszellen können Einblicke in die Funktion von Proteinen in onkogenen Progression oder consequat liefern neue Tumorsuppressoren entdecken. Zusätzlich Injektion von Krebszellen in Mäusen, die mit verschiedenen Genotypen liefern ein besseres Verständnis der Bedeutung der Stroma. Viele Modelle nützlich, um bestimmte Aspekte der Progression der Erkrankung untersucht, aber nicht die gesamte Krebsprozess wiederholen. Im Gegensatz dazu Brustkrebszellen Transplantation in die Brustfettpolster von Mäusen besser rekapituliert den Ort der Erkrankung und die Präsenz der richtigen Stromatumoren Fach und daher besser imitiert menschliche Krebserkrankung. In diesem Artikel, wie Sie Brustkrebszellen orthotop in Mäuse implantiert werden und erklären, wie man Gewebe, um die Analyse zu sammeln beschreiben wir: 14px; line-height:. 28px; &quot;&gt; Tumormilieu und Metastasierung in entfernte Organe Unter Verwendung dieses Modells vielen Aspekten (Wachstum, Angiogenese und Metastasierung) von Krebs kann einfach durch eine günstige Umgebung für die Tumorzellen wachsen untersucht werden.

Erfolgreiche Anwendung des &quot;orthotopen Brustkrebsmodell&quot; auf ordnungsgemäße Injektion von Zellen in das Brustfettpolster basieren. Experimentelle Fehler wie ungenaue Inokulation von Zellen oder undicht sein, um Variationen in der Größe des Tumors oder sogar die Abwesenheit eines Tumors, der zur Bildung einer Struktur führt sucht ähnlich einer Brustfettpolster mit einem Steuerungspuffer (2A) injiziert führen. Die Wachstumsrate des Tumors ist abhängig von der Art des injizierten Zelllini...

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Orthotopic Injection of Breast Cancer Cells into the Mammary Fat Pad of Mice to Study Tumor Growth.

Krebs ist eine komplexe Erkrankung, die durch den den Tumor umgebenden Gewebes sowie lokale pro- und anti-inflammatorischen Mediatoren beeinflusst wird. Daher kann orthotrope Pritzer, anstatt subkutanen Modellen nützlich sein, um Krebsprogression in einer Weise, dass eine bessere ahmt menschlichen Pathologie studieren.

Orthotopische Injektion von Brustkrebszellen in das Brustfettpolster von Mäusen, das Tumorwachstum zu studieren.

Breast cancer growth can be studied in mice using a plethora of models. Genetic manipulation of breast cancer cells may provide insights into the ...

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Research

JoVE Journal

Medicine

78.8K Aufrufe.  Leiden University Medical Center.  Krebs ist eine komplexe Erkrankung, die durch den den Tumor umgebenden Gewebes sowie lokale pro- und anti-inflammatorischen Mediatoren beeinflusst wird. Daher kann orthotrope Pritzer, anstatt subkutanen Modellen nützlich sein, um Krebsprogression in einer Weise, dass eine bessere ahmt menschlichen Pathologie studieren. 

Serie: Orthotopic Injection of Breast Cancer Cells into the Mammary Fat Pad of Mice to Study Tumor Growth.

Orthotopic Injection of Breast Cancer Cells into the Mice Mammary Fat Pad

A proper animal model is crucial for a better understanding of diseases. Animal models established by different methods (subcutaneous injections, xenografts, genetic manipulation, chemical reagents induction, etc.) have various pathological characters and play important roles in investigating certain aspects of diseases. Although no single model can totally mimic the whole human disease progression, orthotopic organs disease models with a proper stromal environment play an irreplaceable role in understanding diseases and screening for potential drugs. In this article, we describe how to implant breast cancer cells into the mammary fat pad in a simple, less invasive, and easy-to-handle way, and follow the metastasis to distant organs. With the proper features of primary tumor growth, breast and nipple pathological changes, and a high occurrence of other organs&#39; metastasis, this model maximumly mimics human breast cancer progression. Primary tumor growth in situ, long-distant metastasis, and the tumor microenvironment of breast cancer can be investigated by using this model.

Here, we present a protocol to implant breast cancer cells into the mammary fat pad in a simple, less invasive, and easy-to-handle way, and this mouse orthotopic breast cancer model with a proper mammary fat pad environment can be used to investigate various aspects of cancer.

Orthotopen Injektion von Brustkrebs-Zellen in den Mäusen Mamma Fettlappen

A proper animal model is crucial for a better understanding of diseases. Animal models established by different methods (subcutaneous injections, ...

Forschung

Krebsforschung

Modeling Breast Cancer via an Intraductal Injection of Cre-expressing Adenovirus into the Mouse Mammary Gland

Breast cancer is a heterogeneous disease, possibly due to complex interactions between different cells of origins and oncogenic events. Mouse models are instrumental in gaining insights into these complex processes. Although many mouse models have been developed to study contributions of various oncogenic events and cells of origin to breast tumorigenesis, these models are often not cell-type or organ specific or cannot induce the initiation of mammary tumorigenesis in a temporally controlled manner. Here we describe a protocol to generate a new type of breast cancer mouse models based on the intraductal injection of Cre-expressing adenovirus (Ad-Cre) into mouse mammary glands (MGs). Due to the direct injection of Ad-Cre into mammary ducts, this approach is MG specific, without any unwanted cancer induction in other organs. The intraductal injection procedure can be performed in mice at different stages of their MG development (thus, it permits temporal control of cancer induction, starting from ~3-4 weeks of age). The cell-type specificity can be achieved by using different cell-type-specific promoters to drive Cre expression in the adenoviral vector. We show that luminal and basal mammary epithelial cells (MECs) can be tightly targeted for Cre/loxP-based genetic manipulation via an intraductal injection of Ad-Cre under the control of the Keratin 8 or Keratin 5 promoter, respectively. By incorporating a conditional Cre reporter (e.g., Cre/loxP-inducible Rosa26-YFP reporter), we show that MECs targeted by Ad-Cre, and tumor cells derived from them, can be traced by following the reporter-positive cells after intraductal injection.

The goal of this protocol is to describe a new breast cancer modeling approach based on the intraductal injection of Cre-expressing adenovirus into mouse mammary glands. This approach allows both cell-type- and organ-specific manipulation of oncogenic events in a temporally controlled manner.

Modellierung von Brustkrebs über eine intraduktive Injektion des Cre-expressingAvirus in die Maus-Mammary Drüse

Breast cancer is a heterogeneous disease, possibly due to complex interactions between different cells of origins and oncogenic events. Mouse models are ...

Studying Triple Negative Breast Cancer Using Orthotopic Breast Cancer Model

Triple-negative breast cancer (TNBC) is an aggressive breast cancer subtype with limited therapeutic options. When compared to patients with less aggressive breast tumors, the 5-year survival rate of TNBC patients is 77% due to their characteristic drug-resistant phenotype and metastatic burden. Toward this end, murine models have been established aimed at identifying novel therapeutic strategies limiting TNBC tumor growth and metastatic spread. This work describes a practical guide for the TNBC orthotopic model where MDA-MB-231 breast cancer cells suspended in a basement membrane matrix are implanted in the fourth mammary fat pad, which closely mimics the cancer cell behavior in humans. Measurement of tumors by caliper, lung metastasis assessment via in vivo and ex vivo imaging, and molecular detection are discussed. This model provides an excellent platform to study therapeutic efficacy and is especially suitable for the study of the interaction between the primary tumor and distal metastatic sites.

This work presets an advanced protocol to accurately assess tumor loading by detection of green fluorescent protein and bioluminescence signals as well as the integration of quantitative molecular detection technique.

Studieren von dreifach negativem Brustkrebs mit orthotopischem Brustkrebsmodell

Triple-negative breast cancer (TNBC) is an aggressive breast cancer subtype with limited therapeutic options. When compared to patients with less ...

Orthotopic Transplantation of Breast Tumors as Preclinical Models for Breast Cancer

Preclinical models that faithfully recapitulate tumor heterogeneity and therapeutic response are critical for translational breast cancer research. Immortalized cell lines are easy to grow and genetically modify to study molecular mechanisms, yet the selective pressure from cell culture often leads to genetic and epigenetic alterations over time. Patient-derived xenograft (PDX) models faithfully recapitulate the heterogeneity and drug response of human breast tumors. PDX models exhibit a relatively short latency after orthotopic transplantation that facilitates the investigation of breast tumor biology and drug response. The transplantable genetically engineered mouse models allow the study of breast tumor immunity. The current protocol describes the method to orthotopically transplant breast tumor fragments into the mammary fat pad followed by drug treatments. These preclinical models provide valuable approaches to investigate breast tumor biology, drug response, biomarker discovery and mechanisms of drug resistance.

Patient-derived xenograft (PDX) models and transplantable genetically engineered mouse models faithfully recapitulate human disease and are preferred models for basic and translational breast cancer research. Here, a method is described to orthotopically transplant breast tumor fragments into the mammary fat pad to study tumor biology and evaluate drug response.

Orthotope Transplantation von Brusttumoren als präklinische Modelle für Brustkrebs

Preclinical models that faithfully recapitulate tumor heterogeneity and therapeutic response are critical for translational breast cancer research. ...

Ultrasound Imaging-guided Intracardiac Injection to Develop a Mouse Model of Breast Cancer Brain Metastases Followed by Longitudinal MRI

Breast cancer brain metastasis, occurring in 30% of breast cancer patients at stage IV, is associated with high mortality. The median survival is only 6 months. It is critical to have suitable animal models to mimic the hemodynamic spread of the metastatic cells in the clinical scenario. Here, we are introducing the use of small animal ultrasound imaging to guide an accurate injection of brain tropical breast cancer cells into the left ventricle of athymic nude mice. Longitudinal MRI is used to assessing intracranial initiation and growth of brain metastases. Ultrasound-guided intracardiac injection ensures not only an accurate injection and hereby a higher successful rate but also significantly decreased mortality rate, as compared to our previous manual procedure. In vivo high resolution MRI allows the visualization of hyperintense multifocal lesions, as small as 310 &#181;m in diameter on T2-weighted images at 3 weeks post injection. Follow-up MRI reveals intracranial tumor growth and increased number of metastases that distribute throughout the whole brain.

A breast cancer brain metastasis mouse model is established with ultrasound imaging-guided intracardiac injection of MDA-MB231/Br-GFP cells. Development of multifocal intracranial metastases has been monitored longitudinally using high-resolution 9.4 T MRI.

Ultraschall-Imaging-guided Intra Injection zur Entwicklung eines Mausmodells von Brustkrebs Hirnmetastasen durch Längs MRI Gefolgt

Breast cancer brain metastasis, occurring in 30% of breast cancer patients at stage IV, is associated with high mortality. The median survival is only 6 ...

Medizin

In Vivo Imaging to Measure Spontaneous Lung Metastasis of Orthotopically-injected Breast Tumor Cells

Metastasis remains the primary cause of cancer-related death. The succession of events that characterize the metastatic cascade presents multiple opportunities for therapeutic intervention, and the ability to accurately model them in mice is critical to evaluate their effects. Here, a step-by-step protocol is presented for the establishment of orthotopic primary breast tumors and the subsequent monitoring of the establishment and growth of metastatic lesions in the lung using in vivo bioluminescence imaging. This methodology allows for the evaluation of treatment or its biological effects along the entire range of metastatic development, from primary tumor escape to outgrowth in the lungs. Breast orthotopic tumors are generated in mice via injection of a luciferase-labeled cell suspension in the 4th mammary gland. Tumors are allowed to grow and disseminate for a specific amount of time and are then surgically resected. Upon resection, spontaneous lung metastasis is detected, and the growth over time is monitored using in vivo bioluminescence imaging. At the desired experimental endpoint, lung tissue can be collected for downstream analysis. The treatment of established, clinically evident metastasis is critical to improve outcomes for stage IV cancer patients, and it can be evaluated through tail vein models of experimental lung metastasis. However, metastatic dissemination occurs early in breast cancer, and many patients have latent, subclinical disseminated disease after surgery. Utilization of spontaneous models such as this one provides the opportunity to study the whole spectrum of the disease, especially the systemic effects driven by treatment of the primary tumor such as pre-metastatic niche priming, and evaluate treatments on dormant and subclinical disease after surgery.

<meta charset="utf8"></head><body>In-vivo-Bildgebung zur Messung spontaner Lungenmetastasen von orthotopisch injizierten Brusttumorzellen

The manuscript describes a methodology for the establishment as well as longitudinal growth monitoring of spontaneous lung metastasis from orthotopically-injected breast tumors, amenable to intervention at all stages of the metastatic cascade.

Im lebenden Organismus Bildgebung zur Messung der spontanen Lungenmetastasierung von orthotopisch injizierten Brusttumorzellen

Metastasis remains the primary cause of cancer-related death. The succession of events that characterize the metastatic cascade presents multiple ...

<meta charset="utf8"></head><body>Hochdurchsatz-Dissoziation und orthotope Implantation von Xenotransplantaten von Brustkrebspatientinnen

High-Throughput Dissociation and Orthotopic Implantation of Breast Cancer Patient-Derived Xenografts

Patient-derived xenografts (PDXs) provide a clinically relevant method for recapitulating tumor-involved cell types and the tumor microenvironment, which is essential for advancing knowledge of breast cancer (BC). Additionally, PDX models enable the study of BC systemic effects, which is not possible using in vitro models. Traditional methods for implanting BC xenografts typically involve anesthesia and sterile surgical procedures, which are time-consuming, invasive, and limit the scalability of PDX models in BC research. This protocol describes a simple and scalable method for the orthotopic implantation of BC PDXs in mice. The immunodeficient mouse strain NOD.Cg-PrkdcscidIl2rgtm1Wjl/SzJ (NSG) was used for PDX engraftment. Human BC samples obtained from IRB-consented patients were mechanically and enzymatically dissociated, then resuspended in a solution of basement membrane extract (BME) and RPMI 1640. Animals were restrained by scruffing, and depilatory cream was applied to remove hair from the fat pads at the fourth inguinal nipple, followed by injection. Approximately 2 million cells in a 100 &#181;L suspension were bilaterally injected orthotopically into the mammary fat pads using a 26 G needle. Notably, no anesthetic was required, and the total procedure time was under 5 min, from cell preparation to injection. After a growth period of several months, tumors were excised and processed for authentication. Validation included receptor status assessment using immunohistochemistry with specific antibodies for traditional BC receptors (i.e., ER, PR, HER2). Tumor morphology was confirmed with hematoxylin and eosin (H&amp;E) staining, which was interpreted by a pathologist. Genetic similarity to the patient sample was verified through bulk RNA sequencing and short tandem repeat (STR) analysis. This approach to PDX engraftment and validation supports the rigorous development of models and high-throughput tumor implantation, enabling well-powered studies across various BC subtypes.

This protocol describes an efficient, non-surgical method for the orthotopic implantation of breast cancer patient-derived xenografts in mice. The technique involves enzymatic tumor dissociation followed by direct injection into the mammary fat pads, enabling high-throughput implantation. Comprehensive validation ensures model fidelity, facilitating rigorous studies across various breast cancer subtypes.

Hochdurchsatz-Dissoziation und orthotope Implantation von Xenotransplantaten von Brustkrebspatientinnen

Patient-derived xenografts (PDXs) provide a clinically relevant method for recapitulating tumor-involved cell types and the tumor microenvironment, which ...

Orthotopische Injektion von Brustkrebszellen in das Brustfettpolster von Mäusen, das Tumorwachstum zu studieren.

Zusammenfassung

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Kapitel in diesem Video

Orthotopen Injektion von Brustkrebs-Zellen in den Mäusen Mamma Fettlappen

Modellierung von Brustkrebs über eine intraduktive Injektion des Cre-expressingAvirus in die Maus-Mammary Drüse

Studieren von dreifach negativem Brustkrebs mit orthotopischem Brustkrebsmodell

Orthotope Transplantation von Brusttumoren als präklinische Modelle für Brustkrebs

Ultraschall-Imaging-guided Intra Injection zur Entwicklung eines Mausmodells von Brustkrebs Hirnmetastasen durch Längs MRI Gefolgt

Im lebenden Organismus Bildgebung zur Messung der spontanen Lungenmetastasierung von orthotopisch injizierten Brusttumorzellen

Im lebenden Organismus Bildgebung zur Messung der spontanen Lungenmetastasierung von orthotopisch injizierten Brusttumorzellen

Hochdurchsatz-Dissoziation und orthotope Implantation von Xenotransplantaten von Brustkrebspatientinnen

Hochdurchsatz-Dissoziation und orthotope Implantation von Xenotransplantaten von Brustkrebspatientinnen

Hochdurchsatz-Dissoziation und orthotope Implantation von Xenotransplantaten von Brustkrebspatientinnen