A.S. was partially supported by grants from the National Institutes of Health (NIH) National Institute of Dental and Craniofacial Research (5R03DE021741-02) and the National Cancer Institute (1K08CA154963-01A1).&#160;
The Howard Hughes Medical Institute provided funding for M.L. through the HHMI Medical Research Fellows Program.

1. Egg Incubation <ol><li> Erhalten Sie 8 Tage alt spezifischen pathogenfreien befruchteten Eiern. </li><li> Zeigen Eier in rotierenden Eierablage, gestempelt Enden nach oben zeigen, und setzen Sie den Drehkorb in einem Ei-Inkubator. Eier Inkubieren für 48 Stunden bei 36 ° C und 50% Luftfeuchtigkeit. </li></ol> 2. Löschen Sie die CAM und Öffnen der Eier <ol><li> Sammeln Eier aus Inkubator. Platz Eier im Eierregal, gestempelt Seite nach oben und bringen Sie zu Sterilbank. </li><li> Schalten Sie die Zimmer und Kapuze Lichter. </li><li> Halten Sie die gestempelt Ende Ei leicht, um das Ei Candler, um die Gefäßsystem des CAM sowie die Luftsack freizulegen. HINWEIS: Das Ei candler ist ein verwendet, um den sich entwickelnden Embryo und zugehörigen Luftsack und Gefäßsystem zu visualisieren Lichtquelle. </li><li> Legen Sie einen Bleistiftstrich zwischen zwei großen Blutgefäße. </li><li> Schalten Sie das Licht und mit einem sterilen Push-Pin, um ein Loch an der Spitze des Eis über dem Luftsack (gestempelt Ende) und ein Loch an der pe machenNciI Marke. Schieben Sie die Push-Pin den ganzen Weg durch; ein Loch ca. 3 mm tief üblicherweise ausreichend. </li><li> Schalte das Licht aus. Squeeze Sicherheitskugel Drücken der offenen Ende fest gegen das Loch über dem Luftsack. Absaugen, um Luft in das Loch an der Bleistiftstrich zu ziehen, wodurch der CAM an der Bleistiftstrich weg von der Schale fallen. </li><li> Prüfen, ob der Luftsack aus dem Stanz Ende des Eis auf den Bleistift markierte Loch mit der candler bewegt. Wenn nicht, verwenden Sie die Push-Pin beide Löcher etwas tiefer zu machen und dann erneut bewerben Saug mit der Sicherheitskugel. </li><li> Schalten Sie das Licht. Mit dem Ei in einer Hand, schalten Sie den Dremel Rotationswerkzeug mit einer 15/16-Zoll-Trennscheibe angebracht und stellen zwei Querschnitte nur tief genug, um durch die Schale geschnitten, aber nicht tief genug, um den ganzen Weg hinunter zu der gedrückten geschnitten CAM. Stellen die Schnitte etwa 2 cm Länge und 1 cm voneinander entfernt sind. Nehmen Sie die Schnitte breit genug ist, so dass ein Silikonring 1 cm Durchmesser passieren kannaber dünner als die Breite der Standard-Klebeband. </li><li> Als nächstes stellen Sie 1 Längsschnitt zwischen und an den Enden der beiden Querschnitte durch leichtes Berühren der Trennscheibe auf die Schale. </li><li> Schieben einer sterilen Pinzette unter dem Mantelteil und parallel zur Schale. Besorgen Sie sich die Shell-Stück mit der Zange und das ganze Stück sauber zu entfernen. </li><li> Legen Sie Klebeband über dem neu geöffneten Fenster, so dass Sie sicher, dass an einem Ende zum leichteren Entfernen fach über sich selbst. </li><li> Die Eier zurück in Inkubator in der Eierschale (in den sich drehenden Eies Racks) bis zum Zeitpunkt der Impfung. </li></ol> 3. Impfung <ol><li> Halten Basalmembranprotein Gemisch, wie Matrigel, auf Eis in der Haube (um die Polymerisation zu verhindern) und Ort. </li><li> Verwenden 2 mM EDTA, um Zellen zu trennen (4-5 ml pro T75-Flasche) und bringe Kolben für 5 Minuten in Gewebekultur-Inkubator. </li><li> Resuspendieren der abgelösten Zellen in Medien und rechnen mit einer Zählkammer und Trypanblau. Verwenden Sie zwischen 500.000 to 2.000.000 Zellen zum Pfropfen auf dem CAM, je nach Zelllinie. Optimieren Sie die richtige Zahl in Vorversuchen. </li><li> Maßnahme Volumen für geeignete Zellzahl und Zentrifuge bei 500 xg für 5 min benötigt. </li><li> Überstand verwerfen und dann resuspendieren Zellpellet in 40 μ l PBS ++ und 20 μ l der Basalmembran Mischung. HINWEIS: An diesem Punkt können die Zellen mit Arzneimitteln oder anderen Testmitteln für Experimente benötigt wird durch Resuspendieren in die Zelle / Basalmembran Gemisch Suspension behandelt. Alternativ können Mittel auf die Zelle / Basalmembran Mischung Suspension nach der Transplantation pipettiert werden. </li><li> Abrufen Eierregal mit Eier aus dem Inkubator und Platz in der Sterilbank. </li><li> Peel off Band des Fensters, rufen Sie eine 1 mm Silikonring von der Kappe eines kryogenen Fläschchen mit sterilisierten Pinzette und legen Sie den Ring durch das Fenster. </li><li> Pipettieren Sie die 60 μ l Zell Lösung von PBS ++ und Basalmembran Mixture direkt in das Zentrum des Silikonring auf der CAM ruht. </li><li> Re-Band das Fenster und verschieben Eierablage zurück zum Inkubator. An dieser Stelle seien Sie vorsichtig beim Bewegen der Eier als dem Ring und der Zellsuspension kann leicht verschoben werden. </li><li> Ermöglichen Tumoren, für 5-7 Tage wachsen gelassen. </li></ol> 4. Ernten Tumoren <ol><li> Zeigen under-Pad in der Haube. Vorbereitung 35 x 10 mm Platten und Paraformaldehyd als Container für die Histologie notwendig. Setzen Sie 1 ml PBS ++ je 35 x 10 mm Platte. </li><li> Zeigen BIOHAZARD Beutel in der Haube. Nehmen sterile Dissektion Schere und legen Sie das spitze Ende in das Ei in das Loch in der Nähe des Ende gestempelt. </li><li> Um den gesamten Ei längs geschnitten. Hinweis: Die CAM und der Tumor mit dem Ring sollte auf die obere Hälfte der Schale mit dem Fenster zu halten. </li><li> Verwendung Dissektion Schere und Pinzette, sezieren den Tumor von der CAM und legen Tumor in der 35 x 10 mm Platte. Messen und wiegen Tumoren. Festen Tumoren in paraformaldehyde und sie für die Verwendung in der Histologie und Immunhistochemie Experimenten in Paraffin eingebettet werden. </li></ol> 5. (Optional): Tumor Zelldissoziation <ol><li> Verwenden Sie Dissektion Schere, um den Tumor in der 35 x 10 mm Platten Blatt vor den Mund. Pour Hackfleisch Tumor in ein 15 ml Zentrifugenrohr entfernen und so viel PBS ++ wie möglich durch Pipettieren. </li><li> 2 ml Collagenase (1 mg / ml in PBS ++) biegen Rohr über mehrere Male, und inkubieren Rohr bei 37 ° C für mindestens 30 min (bis zu mehrere Stunden). </li><li> 5 ml Medium in jedes Röhrchen und gründlich resuspendieren durch Auf- und Abpipettieren 20 - 40x. Gründliche Pipettieren ist entscheidend für die komplette Zelle Dissoziation. </li><li> Erlauben Sediment zu begleichen, und den Überstand in ein frisches Röhrchen. Zentrifuge bei 500 × g für 5 min. Überstand entfernen und hinterlässt dissoziierten Zellpellet. HINWEIS: An diesem Punkt kann die Zellpellets für verschiedene Experimente verwendet werden (Durchflusszytometrie Lyse für die Verwendung in Western Blots, die RNA-Isolierung, usw.). Gesamttumorzellzahl kann auch mit einer Zählkammer und Trypanblaufärbung erhalten werden. Beachten, dass kleinere, oval geformte Zellen Hühnerzellen aus dem CAM und sollten nicht als Tumorzellen gezählt. Es sollte eine minimale Anzahl von verunreinigenden Nicht-Tumor (CAM-Zellen), wenn der Tumor vom CAM sorgfältig seziert. </li></ol>

<ol>
	<li>Sangiovanni, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Increased+survival+of+cirrhotic+patients+with+a+hepatocellular+carcinoma+detected+during+surveillance.">Increased survival of cirrhotic patients with a hepatocellular carcinoma detected during surveillance.</a> Gastroenterology. 126 (4), 1005-1014 (2004).</li><li>Lopez, P. M., Villanueva, A., Llovet, J. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Systematic+review:+evidence-based+management+of+hepatocellular+carcinoma--an+updated+analysis+of+randomized+controlled+trials.">Systematic review: evidence-based management of hepatocellular carcinoma--an updated analysis of randomized controlled trials.</a> Aliment Pharmacol Ther. 23 (11), 1535-1547 (2006).</li><li>Llovet, J. M., Burroughs, A., Bruix, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Hepatocellular+carcinoma.">Hepatocellular carcinoma.</a> Lancet. 362 (9399), 1907-1917 (2003).</li><li>Folkman, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=What+is+the+evidence+that+tumors+are+angiogenesis+dependent.">What is the evidence that tumors are angiogenesis dependent.</a> J Natl Cancer Inst. 82, 4-6 (1990).</li><li>Hagedorn, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Accessing+key+steps+of+human+tumor+progression+in+vivo+by+using+an+avian+embryo+model.">Accessing key steps of human tumor progression in vivo by using an avian embryo model.</a> Proc Natl Acad Sci U S A. 102 (5), 1643-1648 (2005).</li><li>Dumartin, L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Netrin-1+mediates+early+events+in+pancreatic+adenocarcinoma+progression,+acting+on+tumor+and+endothelial+cells.">Netrin-1 mediates early events in pancreatic adenocarcinoma progression, acting on tumor and endothelial cells.</a> Gastroenterology. 138 (4), 1595-1606 (2010).</li><li>Aguirre-Ghiso, J. A., Estrada, Y., Liu, D., Ossowski, L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=ERK(MAPK)+activity+as+a+determinant+of+tumor+growth+and+dormancy;+regulation+by+p38(SAPK).">ERK(MAPK) activity as a determinant of tumor growth and dormancy; regulation by p38(SAPK).</a> Cancer Res. 63 (7), 1684-1695 (2003).</li><li>Baroni, T. E., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Ribonomic+and+short+hairpin+RNA+gene+silencing+methods+to+explore+functional+gene+programs+associated+with+tumor+growth+arrest.">Ribonomic and short hairpin RNA gene silencing methods to explore functional gene programs associated with tumor growth arrest.</a> Methods Mol Biol. 383, 227-244 (2007).</li><li>Lopez-Rivera, E., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Inducible+nitric+oxide+synthase+drives+mTOR+pathway+activation+and+proliferation+of+human+melanoma+by+reversible+nitrosylation+of+TSC2.">Inducible nitric oxide synthase drives mTOR pathway activation and proliferation of human melanoma by reversible nitrosylation of TSC2.</a> Cancer Res. 74 (4), 1067-1078 (2014).</li><li>Balke, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+short-term+in+vivo+model+for+giant+cell+tumor+of+bone.">A short-term in vivo model for giant cell tumor of bone.</a> BMC Cancer. 11, 241 (2011).</li><li>Balke, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Morphologic+characterization+of+osteosarcoma+growth+on+the+chick+chorioallantoic+membrane.">Morphologic characterization of osteosarcoma growth on the chick chorioallantoic membrane.</a> BMC Res Notes. 3, 58 (2010).</li><li>Sys, G. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+in+ovo+CAM-assay+as+a+xenograft+model+for+sarcoma.">The in ovo CAM-assay as a xenograft model for sarcoma.</a> J Vis Exp. (77), e50522 (2013).</li><li>Dohle, D. S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Chick+ex+ovo+culture+and+ex+ovo+CAM+assay:+how+it+really+works.">Chick ex ovo culture and ex ovo CAM assay: how it really works.</a> J Vis Exp. (33), (2009).</li><li>Ossowski, L., Reich, E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Experimental+model+for+quantitative+study+of+metastasis.">Experimental model for quantitative study of metastasis.</a> Cancer Res. 40 (7), 2300-2309 (1980).</li><li>Ghanekar, A., Ahmed, S., Chen, K., Adeyi, O. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Endothelial+cells+do+not+arise+from+tumor-initiating+cells+in+human+hepatocellular+carcinoma.">Endothelial cells do not arise from tumor-initiating cells in human hepatocellular carcinoma.</a> BMC Cancer. 13, 485 (2013).</li><li>Ho, J. W., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Effects+of+a+novel+immunomodulating+agent,+FTY720,+on+tumor+growth+and+angiogenesis+in+hepatocellular+carcinoma.">Effects of a novel immunomodulating agent, FTY720, on tumor growth and angiogenesis in hepatocellular carcinoma.</a> Mol Cancer Ther. 4 (9), 1430-1438 (2005).</li><li>Hagedorn, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=VEGF+coordinates+interaction+of+pericytes+and+endothelial+cells+during+vasculogenesis+and+experimental+angiogenesis.">VEGF coordinates interaction of pericytes and endothelial cells during vasculogenesis and experimental angiogenesis.</a> Dev Dyn. 230 (1), 23-33 (2004).</li></ol>

A.S.&#160;receives&#160;funding from the Advaxis Pharmaceutical company to support an investigator-initiated clinical trial.&#160;

Mehrere wichtige Schritte in diesem Protokoll wahrscheinlichste Konto für die verbesserte Lebensrate der Embryonen sowie erhöhte Zuverlässigkeit des Tumorwachstums. Fallenlassen der CAM weg von der Schale durch eine Saugwirkung auf den Luftsack ist weniger invasiv als andere bestehende Methoden (mit einer Nadel an Albumin aus dem Ei, stumpf, usw. zu entfernen). Mit einem sterilen Push-Pin, um die beiden kleinen Löcher für dieses Verfahren erforderlich zu schaffen, ist der schwierigste Teil des Protokolls. Mit zu vi...

Das Leberzellkarzinom (HCC) ist die 3. häufigste Ursache der Krebssterblichkeit in der Welt 1. Derzeit werden nur 30% der HCC-Patienten sind für potenziell kurative chirurgische Behandlungen 2 und systemische Chemotherapie nicht wirksam ist 3. Daher besteht ein dringender ungedeckten klinischen Bedarf nach neuen HCC-Therapien, und die Entwicklung von Modellsystemen für eine effiziente Prüfung von neuen Wirkstoffen. Hühnchen-Chorioallantois-Membran (CAM) Assay liefert eine reproduzierbare und kosteneffiziente und schnelle mittleren Durchsatz Verfahren zum Testen potentiellen Antitumormedikamenten in vivo. Das CAM-Assay wurde ausgiebig verwendet, um die Angiogenese 4 studieren. Es wurde auch erfolgreich in einem Tumor-Xenotransplantat-Modell von Krebs entwickelt, einschließlich Glioblastom 5, Bauchspeicheldrüsenkrebs 6, Melanom 7-9 und Osteosarkom 10-11. Sowohl in ovo 12 und ex ovo13 Techniken sind in der Literatur verwendet worden, mit Details variierend von Protokoll zu Protokoll. Eine große Herausforderung für die CAM-Xenograft-Modell ist die relativ hohe Inzidenz von embryonalen Tod nach Manipulation des Ei, mit veröffentlichten Hühnerembryosterblichkeit reicht von 25 bis 50 Prozent 11-14. In diesem Artikel beschreiben wir die Entwicklung eines in-ovo-Xenograft-Modell des HCC, die zuverlässig das Wachstum von dreidimensionalen, vaskularisierten Tumoren, die histologisch ähnlich undifferenziert HCC produziert. Wir haben ein Protokoll zuerst von Ossowski et al. 14 beschrieben angepasst und chick embryonale Überlebensraten von bis zu 93% mit extrem hoher Tumor engraftment erreicht.

<table border="0" cellpadding="0" cellspacing="0" width="1094">
	<tbody>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:401px;">Name of Reagent/ Equipment</td>
			<td style="width:108px;">Company</td>
			<td style="width:119px;">Catalog Number</td>
			<td style="width:467px;">Comments/Description</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:401px;">Premium incubated eggs</td>
			<td style="width:108px;">Charles River</td>
			<td style="width:119px;">N/A</td>
			<td>http://www.criver.com/files/pdfs/avian/av_c_spf_egg_price_list.aspx</td>
		</tr>
		<tr height="42">
			<td height="42" style="height:42px;width:401px;">Egg incubators</td>
			<td style="width:108px;">GQF</td>
			<td style="width:119px;">Hova-Bator 2362N</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="42">
			<td height="42" style="height:42px;width:401px;">Rotating egg trays</td>
			<td style="width:108px;">GQF</td>
			<td style="width:119px;">1611 Automatic Egg Turner</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="42">
			<td height="42" style="height:42px;width:401px;">Egg candler</td>
			<td style="width:108px;">Lyon</td>
			<td style="width:119px;">Hi-Power 950-070</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:401px;">Dremel 100 rotary tool with 15/16 cut-off wheel</td>
			<td style="width:108px;">Dremel</td>
			<td style="width:119px;">100-N/7</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:401px;">Sterile forceps, push pin, dissection scissors, Scotch tape</td>
			<td style="width:108px;"></td>
			<td style="width:119px;"></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:401px;">Matrigel</td>
			<td style="width:108px;">BD Biosciences</td>
			<td style="width:119px;">356234</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:401px;">Cryogenic vials, external thread with silicone washer</td>
			<td style="width:108px;">Corning</td>
			<td style="width:119px;">430659</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:401px;">Collagenase from Clostridium histolyticum</td>
			<td style="width:108px;">Sigma</td>
			<td style="width:119px;">C9891</td>
			<td></td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

the in ovo chick chorioallantoic membrane (cam) assay as an efficient xenograft model of hepatocellular carcinoma

Die Hühner-Chorioallantoismembran (CAM) beginnt am Tag 7 nach der Befruchtung zu entwickeln und reift bis zum Tag 12. Die CAM ist natürlich immungeschwächten und gefäßreiche, so dass es ein ideales System für die Tumorimplantation. Weiterhin enthält der CAM extrazelluläre Matrixproteine ​​wie Fibronektin, Laminin, Kollagen, Integrin alpha (v) beta3 und MMP-2, so dass es ein attraktives Modell zur Tumorinvasion und Metastasenbildung zu untersuchen. Wissenschaftler haben lange Vorteil der Physiologie des CAM durch Verwendung als ein Modell der Angiogenese gemacht. Vor kurzem hat der CAM-Assay wurde geändert, um als ein in vivo-Xenotransplantat-Modellsystem für verschiedene Krebsarten, die die Lücke zwischen Grundlagenarbeit in vitro und komplexere Tierkrebsmodellen überbrückt zu arbeiten. Der CAM-Test ermöglicht die Untersuchung von Tumorwachstum, Anti-Tumor-Therapien und pro-Tumor molekularen Wege in einem biologisch relevanten System, das sowohl kosten- und zeiteffektiv ist. Hier die Entwicklung von CAM xen beschreiben wirograft Modell des hepatozellulären Karzinoms (HCC) mit embryonalen Lebensraten von bis zu 93% und zuverlässigen Tumor nehmen, um das Wachstum von dreidimensionalen, vaskularisierten Tumoren führt.

Repräsentative Abbildungen der wichtigsten Schritte in dem Protokoll werden hier gezeigt. 1A zeigt die Verwendung des candler um den sich entwickelnden Embryo, den Luftsack und das Gefäßsystem des CAM zu visualisieren. 1B-1C zeigen den Vorgang des Fallenlassens der CAM indem die beiden Löcher und dann Anlegen eines Unterdrucks unter Verwendung der Sicherheitskugel und 1D zeigt eine erfolgreich fiel CAM mit einer großen Luftblase unter dem Bleistift markierte Loch. ...

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The In Ovo Chick Chorioallantoic Membrane CAM Assay as an Efficient Xenograft Model of Hepatocellular Carcinoma

The chick chorioallantoic membrane (CAM) is immunodeficient and highly vascularized, making it a natural in vivo model of tumor growth and angiogenesis. In this protocol, we describe a reliable method of growing three-dimensional, vascularized hepatocellular carcinoma (HCC) tumors using the CAM assay.

Das<em&gt; In Ovo</em&gt; Chick Chorioallantoismembran (CAM) Assay als effiziente Xenograftmodell des hepatozellulären Karzinoms

The chick chorioallantoic membrane (CAM) begins to develop by day 7 after fertilization and matures by day 12. The CAM is naturally immunodeficient and ...

the-ovo-chick-chorioallantoic-membrane-cam-assay-as-an-efficient

Research

JoVE Journal

Medicine

The In Ovo Chick Chorioallantoic Membrane (CAM) Assay as an Efficient Xenograft Model of Hepatocellular Carcinoma

34.9K Aufrufe.  Icahn School of Medicine at Mount Sinai. The chick chorioallantoic membrane (CAM) is immunodeficient and highly vascularized, making it a natural in vivo model of tumor growth and angiogenesis. In this protocol, we describe a reliable method of growing three-dimensional, vascularized hepatocellular carcinoma (HCC) tumors using the CAM assay.