The authors would like to thank California Department of Food and Agriculture for funding of the project which led to the development of this protocol. CDFA SCB11019.

1. Das Einpflanzen <ol><li> Füllen Steckfächer (128 Zelle; 28 x 54 cm mit Zellen 3 cm im Quadrat und 5 cm tief) mit Stecker Erde-Mischung. Um eine gleichmäßige Befüllung der Zellen helfen komprimieren Boden in jedes Fach mit einem leeren Steckfach. </li><li> Pflanzensalatsaatgut ¼ Zoll in der Tiefe 2-3 Samen pro Zelle. Pflanzen alle experimentellen Linien in replizierten Tabletts, um sowohl eine Dürre gestresst und Steuersatz für die Dürre-Studie. </li><li> Zeigen Steckfächer in eine Bodenwanne ohne Löcher. </li><li> Wasser-Schalen und Deckel mit umgekehrten Schale oder Plastikhaube. Die Keimung erfolgt in der Regel in 48 bis 72 Stunden. Nach der Keimung nehmen Sie den Deckel und ziehen Tabletts in Gewächshaus. Hinweis: Dieses Protokoll kann auch in Klimakammern durchgeführt werden. </li></ol> 2. Wachstum und Pflanzenpflege <ol><li> Wasserschalen je nach Bedarf 1 bis 4 Wochen nach der Keimung, normalerweise ist 2-3 mal pro Woche, indem untere Fach und so Boden zu gesättigten (~ 1 h) Strahlen geworden, um für längere Zeit zu sitzens in Wasser, da dies negative Auswirkungen auf die Pflanzengesundheit und die Wurzelentwicklung und kann die Trockenheit Bildschirm auswirken. </li><li> Befruchten Schalen einmal wöchentlich mit einem kommerziellen löslichen 20-20-20 Düngemittel mit einer Rate von 1,5 TL / gal gemischt. </li><li> Dünne Tabletts auf eine Pflanze pro Zelle 1-2 Wochen nach der Keimung. </li></ol> 3. Initiieren Trockenstress- <ol><li> Wenn die Pflanzen vier Wochen alten separaten Kabelpritschen in 2 Gruppen. Vorbehaltlich einer Gruppe in hohem Wasserstress. Verwenden Sie die anderen Fächer sowie bewässert Kontrollen. Gießen Sie die Kontrollgruppe, wie in Schritt 2.1 während des gesamten Versuchs. Bei der Einleitung der Trockenstress suspend Düngen Sie alle Fächer für den Rest des Experiments. </li><li> Die experimentelle Dürreperiode erfolgt über eine Woche. Auf der ersten Tag des Trockenstress-Studie (Tag 0) fuellen unteren Böden mit Wasser und lassen Sie den Boden in den Steckfächer, sich vollständig gesättigt, dann lassen Sie das Wasser aus Trays. Tränken des Bodens unmittelbar vor der Einleitung der ter Stressperiode wird dazu beitragen, eine Variation der Bodenfeuchte zwischen einzelnen Zellen in den Steckfächer zu minimieren. </li></ol> 4. Durchführung der Grundtrockenstress-Bildschirm mit zu messenden Parameter Hinweis: Die folgenden Schritte beschreiben, wie die drei physiologische Messungen, die im Laufe der Dürre Bildschirm aufgezeichnet werden, während Tabelle 1 gibt einen Zeitplan der durchgeführten Messungen an jedem Tag der Dürre-Stress-Testzeitraum zu sammeln. <ol><li> Messen Sie das Blatt Relative Wassergehalt (RWC) an den Tagen 0, 2, 4 der Studie. <ol><li> Clip eine Salatpflanze aus dem Fach, und entfernen Sie 2 Blätter. </li><li> Lochen 3 Scheiben von jedem Blatt mit einem # 9 Korkbohrer (~ 1,6 cm Durchmesser). Kombinieren Blatt Schläge als eine Probe. </li><li> Wiegen Sie die Blattscheiben, das ist das Frischgewicht (FW) Wert für das RWC Berechnung verwendet, und legen Sie die Scheiben in einer Petrischale. </li><li> Fügen Sie gerade genug destilliertes Wasser auf die Platte, um alleow alle Blattscheiben zu schweben. Dies ist auf die Blattscheiben vollständig hydratisieren turgid Gewichte für RWC Analyse zu sammeln. Ermöglichen, dass die Blattscheiben für 24 h bei RT schweben. </li><li> Entfernen Sie die nun vollständig hydratisiert Blattscheiben von den Platten und vorsichtig das Äußere der Blattscheiben mit Papiertüchern trocknen vor dem Wiegen die Scheiben. Notieren Sie diese Gewichte als prall Gewicht (TW) für das RWC Berechnung. </li><li> Ort Blattscheiben auf einem Papiertuch oder Laborfilterpapier-Rondelle in eine offene Petrischale und trocken im Brutschrank bei 55 ° C für 24 Stunden. ANMERKUNG: Das Papier verhindert, daß die Blattscheiben von während des Trocknens auf die Petrischale anhaften. </li><li> Wiegen trockene Blattscheiben und Aufzeichnung als Trockengewicht (DW) für RWC Berechnung. </li><li> Berechnen RWC mit Weatherley-Formel, wie Smart und Bingham 11,12 beschrieben. RWC = (FW-DW / TW-DW) * 100 FW = Frischgewicht, TW = prall Gewicht, DW = Trockengewicht </li><li> Wiederholen Sie Schritt 4.1 für jede Keimplasma und Behandlung in der Studie. </li></ol></li><li> Notieren Sie die Anlage willst einmal täglich Beginn an Tag 1 des Trockenstress-Studie und endet, wenn 100% der Pflanzen sind verwelkt, normalerweise Tag 4 oder 5. </li><li> Erholungsphase und Wachstumsdifferenz <ol><li> An Tag 6 Abschluss der Dürre-Stress-Periode und die gestressten Pflanzen geben Sie die Erholungsphase der Studie. Füllen Sie die unteren Böden mit Wasser und lassen Sie die Dürre spannten Fächer für 24 Stunden einweichen vor dem Fortsetzen des Standardbewässerungsplan, Schritt 2.1, wie die Kontrollschalen. </li><li> Lassen Sie alle Pflanzen um 10 Tage zu erholen. </li><li> Bei 10 Tage nach der Dürre-Stress zu ernten die gesamte oberirdische Teil jeder Anlage und notieren Sie die Frischgewicht. </li></ol></li></ol>

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The authors declare that they have no competing financial interests.

Überlegungen der Probennummer für Bildschirm. Die Anzahl der Proben erforderlich ist von der gewünschten Verwendung der Daten aus diesem Bildschirm erfolgen. Bei Veröffentlichung hochwertige Ergebnisse gewünscht werden, wird empfohlen, 3 Einzelanlagen (3 biologischen Replikaten) aus jeder Zeile zu ernten, und führen Sie ein Minimum 2 Experimentwiederholungen angemessene Punkte für Qualität der statistischen Analyse zu geben. Wenn das gewünschte Ergebnis ist einfach,...

Water availability for irrigation has been a concern across much of the United States and globally for decades, but research into the response to drought-stress, along with other abiotic stresses, has lagged behind work in the areas of disease and insect resistance, at the industrial, academic, and governmental levels largely due to a lack of funding. Water availability for agriculture has historically been only an afterthought at the level of policy makers. Recently, due to several severe droughts in important agricultural production regions in both the United States and Australia1,2 fresh water availability has been thrust into the spotlight at both the national and international levels leading to many more resources being directed towards research into developing drought-tolerant cultivars of the major grain crops. While this shifting focus toward the development of drought-tolerant major crops is beneficial, like many areas of plant research specialty crops have largely been left behind. 
A severe drought is currently limiting vegetable production in California, the largest production region for Lettuce (Lactuca sativa L.) in the United States3. These short-term weather patterns coupled with legislative and judicial action along with long-term climate change4,5 have combined to reduce water available for agriculture in many of the most productive regions of California. Lettuce production in California represents a 1.5 billion dollar industry accounting for nearly 80% of lettuce production in the United States3. Leafy vegetables have high leaf water content and lettuce, in particular, has a shallow root system6,7 which leaves the crop vulnerable to water-stress. In lettuce, as in all crops the development of drought-tolerant varieties will become increasingly important as fresh water supplies for irrigation become more constrained8.
This protocol lays out a method by which an initial screen was performed on a large collection of lettuce germplasm in order to identify a pool of potentially drought-tolerant candidate lines for use in physiological, molecular, and genetic studies to identify specific drought-tolerance traits. These candidates can also be used directly as sources of drought-tolerance in breeding programs to improve water use efficiency in commercial cultivars. This protocol was developed specifically to address the challenges that arise during the course of any screen of an extensive germplasm collection, especially issues of space availability and labor. Also, the protocol as presented was developed for use in lettuce, but has been successfully adapted for use in the screening of a germplasm collection of spinach (Spinacia oleracea) for potential drought-tolerance and could be modified simply to screen any leafy vegetable crop. 
An important consideration before initiating a drought-tolerance screen is to understand what this method is and is not. This protocol is meant to represent a rapid method by which a large germplasm pool can be quickly and efficiently narrowed to a manageable number of candidate germplasm for use in more focused and thorough studies to identify individual tolerance traits. This protocol subjects the plants to a rapidly induced severe water-stress in contrast to a more natural slowly-induced moderate continuous drought-stress that would be observed under field conditions. The type of response induced within the plant during these two types of water-stress events (rapid dehydration versus natural drought) is not identical9 which could lead to the exclusion of some materials from future trials. These two stress events are not without overlap though10 and this protocol should serve as an effective way to identify potentially drought-tolerant germplasm contained within a large collection. This protocol alone should not be considered sufficient to identify with a high degree of certainty germplasm that contains durable drought-tolerance under field water-stress conditions, but it represents a significant step forward in the rapid screening of leafy green vegetables for potential drought-tolerance traits.

<table border="0" cellpadding="0" cellspacing="0" width="791">
	<tbody>
		<tr height="54">
			<td height="54" style="height:54px;width:171px;">Name of Material/ equipment</td>
			<td style="width:135px;">Manufacturer</td>
			<td style="width:121px;">Catalog number</td>
			<td style="width:188px;">Comments</td>
		</tr>
		<tr height="63">
			<td height="63" style="height:63px;">plug tray 128</td>
			<td>T.O. Plastics 
			Hummert International</td>
			<td>11-8595-1</td>
			<td style="width:188px;">Any brand plug tray will work, but use the same style of trays for all trials.</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">lower tray (Display tray)</td>
			<td>T.O. Plastics 
			Hummert International</td>
			<td>11-3305-1</td>
			<td style="width:188px;"></td>
		</tr>
		<tr height="126">
			<td height="126" style="height:126px;width:171px;">plug/planting mix (Sunshine Mix #5)</td>
			<td>Sunshine 
			Hummert International</td>
			<td>10-0467-1</td>
			<td style="width:188px;">A different mix may need to be substituted if adapting this protocol to a different crop.&#160; Sunshine mix #4 was used in spinach trials.</td>
		</tr>
		<tr height="84">
			<td height="84" style="height:84px;">fertilizer (20-20-20)</td>
			<td>Jack&#39;s: Professional water-soluble fertilizer 
			Hummert International</td>
			<td>07-5915-1</td>
			<td style="width:188px;">Any fertilizer can be used, adjust type as needed for adapting this protocol to specific crop needs.</td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

semi-high throughput screening for potential drought-tolerance in lettuce (lactuca sativa) germplasm collections

This protocol describes a method by which a large collection of the leafy green vegetable lettuce (Lactuca sativa L.) germplasm was screened for likely drought-tolerance traits. Fresh water availability for agricultural use is a growing concern across the United States as well as many regions of the world. Short-term drought events along with regulatory intervention in the regulation of water availability coupled with the looming threat of long-term climate shifts that may lead to reduced precipitation in many important agricultural regions has increased the need to hasten the development of crops adapted for improved water use efficiency in order to maintain or expand production in the coming years. This protocol is not meant as a step-by-step guide to identifying at either the physiological or molecular level drought-tolerance traits in lettuce, but rather is a method developed and refined through the screening of thousands of different lettuce varieties. The nature of this screen is based in part on the streamlined measurements focusing on only three water-stress indicators: leaf relative water content, wilt, and differential plant growth following drought-stress. The purpose of rapidly screening a large germplasm collection is to narrow the candidate pool to a point in which more intensive physiological, molecular, and genetic methods can be applied to identify specific drought-tolerant traits in either the lab or field. Candidates can also be directly incorporated into breeding programs as a source of drought-tolerance traits.

Bei der Durchführung einer großen Bildschirm, um eine Bevölkerung durch die gewünschte experimentelle Merkmal zu trennen, im Falle dieses Protokolls Dürre-Stress-Reaktion, die erzeugt werden, entsprechend von sehr variiert werden Daten betonen anfällig für wahrscheinlich trockentoleranten und alle Punkte dazwischen. Abbildung 1 enthält Graphen, die die Art der Ergebnisse, die von diesem Protokoll erwartet werden kann. Vertreter von drei verschiedenen Sorten Salat-Typen (romaine (cos), crisphead ...

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Semi-High Throughput Screening for Potential Drought-tolerance in Lettuce Lactuca sativa Germplasm Collections

This protocol was developed to screen a large germplasm collection of the leafy vegetable lettuce (Lactuca sativa L.) for drought-tolerance, in order to identify a small candidate pool of lettuce for use in physiological, molecular, and genetic studies to identify underlying drought-tolerance traits along with breeding programs.

Semi-High Throughput Screening für potentielle Dürre-Toleranz in Kopfsalat (<em&gt; Lactuca sativa</em&gt;) Keimplasmasammlungen

This protocol describes a method by which a large collection of the leafy green vegetable lettuce (Lactuca sativa L.) germplasm was screened for likely ...

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