Edith Suss-Toby is thanked for her assistance in the time-lapse microscopy and image analysis. Nofar Rada is thanked for the artistic work.

nach der Vereinigung für die Bewertung und Zulassung von Labor Animal Care Spezifikationen Vier- bis Sechs-Wochen alte weibliche C57BL / CJ-Mäuse (Harlan, Jerusalem, Israel) wurden in dem Experiment verwendet. Alle experimentellen Verfahren wurden in Übereinstimmung mit Institutional Animal Care und Use Committee und das Ministerium für Landwirtschaft Vorschriften erfolgen. 1. Ernten der Spinal Cord <ol><li> Euthanize der Maus eine CO 2 Kammer mit. Vermeiden Sie Zervikaldislokation wie es Schäden an den Ganglion Wurzeln aufgrund von Scherkräften verursachen könnten. Von hier aus führen alle Schritte unter sterilen Bedingungen. </li><li> Soak Tier nach unten mit 70% Ethanol. Dieser Schritt ist wichtig für das Sterilisieren sowie für das Haar von Ziehen durch die inneren Organe zu verhindern. </li><li> Lassen Sie die Maus aus Ethanol, um zu trocknen. Vermeiden Sie den Kontakt von Ethanol mit den inneren Organen aufgrund Neurotoxizität. </li><li> Nach der Maus Trocknen positionieren sie Stifte in Bauchlage mit(Bedruckte Seite nach unten). Setzen Sie die Stifte auf beiden hinteren Gliedmaßen und forelimb. </li><li> Mit einer Pinzette, stellen einen Mittellinienschnitt kraniokaudal vom hinteren Hals zur Lendenwirbelsäule erstreckt. Dann heben Sie bilateral Pinzette dermale Klappen mit und des subkutanen Gewebes aus. </li><li> Ertasten Maus Schädel, bis die kraniozervikalen Kreuzung erreichen. Mit einer Schere senkrecht zum Tier, schneiden durch die Halsmuskulatur und der Wirbelsäule bei kraniozervikalen Übergang (der 7. Halswirbel), schwere Pinzette. Präparieren Sie die Wirbelsäule nach kaudal und die Wirbelsäule mit schweren Zange auszuschneiden, bis die Lenden- Niveau erreicht (Hinterextremitäten Ebene). </li><li> Führen Sie eine vollständige Schwanz transection an der Lendenwirbelsäule Ebene (der 5. Lendenwirbel) mit schweren Zange. </li><li> Rollen Sie mit der Maus über das (bedruckte Seite nach oben). Es besteht keine Notwendigkeit, den Einschnitt abzudecken, da die DRG vom unteren Wirbelniveaus extrahiert wird und nicht den Gebärmutterhals. </li><li> Reduzieren Sie auf der Mittellinie vom Hals bis zum Bauch, ziehen sich dieHaut seitlich und dann das Peritoneum geschnitten zu öffnen. </li><li> Entfernen Sie die inneren Organe im Inneren des Peritoneum (Leber, Milz, Bauchspeicheldrüse, Magen und Darm) en bloc. Dann entfernen Sie die retroperitonealen Organe (dh, Nieren und Bauchspeicheldrüse). Kranial, öffnen Sie die Brustwand. </li><li> Mit einer Pinzette und Skalpell, schneiden Sie die Rippen, so dass 5 mm von Rippen bilateral weg von der Wirbelsäule. An diesem Punkt wird die Wirbelsäule von dem Rest des Körpers getrennt sind. </li><li> Waschen Sie die Wirbelsäule aus Blut mit kaltem (4 ° C) frisch phosphatgepufferter Salzlösung (PBS) zweimal. </li></ol> 2. Isolierung des Dorsalwurzelganglien (DRG) <ol><li> Verwenden Sie ein Stereomikroskop mit 4-fache Vergrößerung. </li><li> Positionieren Sie die Wirbelsäule auf einer nicht-haft nicht absorbierenden Plattform (Telfa / Nylon). Positionieren Sie die Wirbelsäule Gesicht in der gleichen kraniokaudale Ausrichtung nach oben. </li><li> Entfernen Sie alle Wirbelsäulenmuskulatur und Bindegewebe. Verwenden Sie die Rippen als Orientierungspunkt für die Nerven, wie sielassen Sie die Wirbelsäule. Die Rippen auch die Nerven von den chirurgischen Instrumenten zu schützen. Die DRG sind an den Hals-, Brust- und Lendenwirbelsäule Standorten der Wirbel entfernt. </li><li> das Rückenmark und DRG Wurzeln durch sanfte seitliche Einfahren des Wirbelkörpers Als nächstes schneiden mit einer Schere die Wirbelkörper in der Mittellinie und aussetzen. </li><li> Im ICR, folgen Sie dem peripheren Nerven medial entlang der Rippe lateral der DRG. </li><li> Identifizieren Sie die DRG. Es sieht aus wie das Eigelb von &#39;Spiegelei&#39; auf die Nerven liegen. </li><li> Schneiden Sie den Intercostalnerven distal der DRG verlassen 2-3 mm von Nerven distal der Ganglien, um für den Rückzug verwendet werden. Dieses &quot;Schwanz&quot; wird nach der Ernte entfernt werden. </li><li> Fassen Sie den Nerv einer Pinzette. der DRG Körper Kneifen selbst wird neuronalen Zellschäden verursachen und sollten vermieden werden. </li><li> Nähern Sie sich dem DRG proximal entlang ihrer Befestigung an das Rückenmark über seinen vorderen und hinteren Wurzeln. </li><li> Bewerben sanfte Rückzug auf die DRG durch die ef ziehendene Nerv (Intercostalnerven Stumpf) seitlich, und schneiden Sie die vorderen und hinteren Wurzeln in der Nähe der DRG. </li><li> Halten Sie die DRG in einer 35 mm Petrischale gefüllt mit frischem, eiskaltem DMEM mit 10% fötalem Kälberserum (FCS) ergänzt, 1% Penicillin-Streptomycin, 1% nicht-essentielle Aminosäuren und 1% Natriumpyruvat. </li></ol> 3. Einpflanzung in der Petrischale <ol><li> Führen Sie die nächsten Schritte auf dem Eis unter Verwendung von vorgekühlten Pipettenspitzen ECM Erstarrung zu verhindern. </li><li> Unter einem Stereomikroskop bei 2-4x Vergrößerung, legen Sie eine 35 mm Glasboden Petrischale auf einem Papier Raster. WICHTIG: Arbeiten auf Eis, um das ECM in flüssigem Zustand zu halten. Erstellen Sie einen Durchmesser von 1 mm Spot (ca. 20 &amp; mgr; l) von Wachstumsfaktor-verarmten ECM in der Mitte des Gitters. </li><li> Unter direkte Visualisierung, legen Sie die DRG in der Mitte des ECM-Stelle nahe dem Boden der Schale. Hinweis: Die Krebs in diesem Protokoll verwendeten Zellen sind Maus-Pankreas-Krebszellen (KPC) established von frisch isolierten Tumorproben von Mäusen Kpc wie an anderer Stelle 19 beschrieben. </li><li> Ernte 40.000 Krebszellen aus konfluenten Kulturen, waschen Sie sie einmal mit PBS und Resuspendieren sie in 40 ul ECM auf Eis. </li><li> Unter direkten Visualisierung des Gitters ein Stereomikroskop Maßnahme 500 &amp; mgr; m in jeder Richtung von der DRG mit. An diesem Punkt Samen langsam 10.000 Zellen / 10 ul ECM. Verwenden Sie ein 2-10 ul vorgekühlten Spitze der Zellen nahe der Schalenboden zu injizieren, die Vermeidung ihrer Ausbreitung in der Matrix oder Ablösung der Matrix. (Abbildung 1). </li><li> Lassen Sie das Gericht in einem Laminar-Flow-Haube für 10-15 min zu verfestigen. Vermeiden Sie ECM Trocknung. </li><li> Langsam DMEM, hergestellt hinzufügen, wie bereits erwähnt, gegen die Seitenwand der Platte. Fügen Sie genug Medium, welches das ECM (etwa 2 ml) zu decken. </li><li> Setzen Sie die Schale wieder in den Inkubator bei 37 ° C. </li><li> Ersetzen Sie das Medium mit frischem Medium am nächsten Tag. </li><li> Ersetzen Sie das Medium alle 2 Tage. &lt;/ Li&gt; </ol> 4. Datenerfassung, Zeitraffer-Videomikroskopie <ol><li> Am 7. Tag nach der Implantation, nehmen Sie die Schale für Zeitraffer-Mikroskopie. Beachten Sie, dass bestimmte Zellen erforderlich machen könnten Erwerb früher durch schnellere Migration. </li><li> Während der Live - Bildgebung, die Schale in einer geschlossenen Umgebung bei einer mittleren Temperatur von 37 ± 0,1 ° C und 5% CO 2. </li><li> Notieren Sie die Zellen, die durch eine ladungsgekoppelte Vorrichtung Kamera auf das Mikroskop gelegt werden. </li><li> Nehmen Sie digitalisierte Bilder alle 10 Minuten bis zu 72 Stunden Zellbewegung von drei auf sechs verschiedenen Zellen zu folgen. </li><li> Ersetzen Medium nach 24 Stunden. </li><li> Führen Sie die Datenerfassung und einfache Analyse unter Verwendung des Mikroskop-Software. </li></ol> 5. Datenanalyse <ol><li> Für fortgeschrittene Anwendungen (dh Zellverfolgung in 2D oder 3D) verwenden spezielle Software (wie Imaris 4D). Hinweis: Diese Software bestimmt die xy - Koordinaten einer Zelle anzu jeder Zeit, zusammen mit der Entfernung vom Ursprung, und die Geschwindigkeit der Bewegung gegeben. </li><li> Berechne die mittlere Geschwindigkeit durch die Entfernung zwischen aufeinanderfolgenden Positionen in 10 min-Intervallen zu messen. Berechnen der Vorwärts Migration Index (FMI), die die Entfernung der Zelle von der Vorderseite Neuriten und beschreibt die unidirektionale Bewegung der Zellen in Richtung des DRG. </li></ol>

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This research was supported by the ICRF Barbara S. Goodman endowed research career development award (2011-601-BGPC) and a grant from the US-Israel Binational Science Foundation. No other financial disclosures from the authors are to be made.

Dieser Artikel stellt ein in vitro - Modell, das die Krebsmikroumgebung in der neuronalen Nische rekapituliert, die DRG - Modell. Das Video zeigt alle Schritte von der Anerkennung anatomische Orientierungspunkte wie die DRG in der Maus beginnt, seine Gewinnung und schließlich seine Kultivierung in ECM. Co-Kultivierung des DRG neben mit Krebszellen wird ebenfalls vorgestellt. Es gibt keine anderen Modelle für in - vitro - Forschung perineuralen Invasion in der Literatur beschrieben machen die...

Solide Tumoren verbreiten auf drei Arten: direkte Invasion, lymphatische Ausbreitung und hematogenic Verbreitung. Allerdings gibt es ein viertes Mittel der Ausbreitung von Krebs, die häufig außer Acht gelassen wird, die Verbreitung entlang der Nerven. Cancerous neuronale Invasion (CNI) ist ein bekannter Weg der Ausbreitung von Krebs, insbesondere bei Krebserkrankungen des Kopfes und des Halses, 1 Prostata 2, 3 und Bauchspeicheldrüse. 4-8 CNI in mehr als 80% der Personen mit Adenokarzinom des Pankreas auftritt, führt zu retroperitonealen Tumor Zöliakie Ganglion Nerven verbreiten durch. Diese neurotropen Krebszellen haben eine einzigartige Fähigkeit , unidirektional entlang der Nerven gegenüber dem zentralen Nervensystem (CNS) zu migrieren. 9 Dieser Befund legt nahe , dass die perineural Mikroumgebung kann durch Krebszellen ausgenutzt werden, vorausgesetzt , Faktoren , die malignes Wachstum. Einer der wenigen in - vitro - Modelle für CNI - Forschung ist die Dorsalwurzelganglien (DRG) / Krebszellmodell. Dieser model wird für die Untersuchung der parakrinen Interaktion zwischen neuronalen Stroma und Krebszellen. 10-18 In diesem Modell, Maus oder menschlichen Krebszelllinien gezüchtet in der extrazellulären Matrix (ECM) , benachbart zu Zubereitungen von frisch dissoziierten DRG kultiviert häufig verwendet. Dieser Video-Artikel zeigt die Anwendung von in vitro CNI in duktalen Adenokarzinom des Pankreas.

<table><tbody><tr><td>&lt;strong&gt;Equipment:&lt;/strong&gt;</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Operating microscope</td><td>Leica</td><td>M205</td><td></td></tr><tr><td>Time Lapse System</td><td>Zeiss</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Forceps</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>F4142&amp;nbsp;</td><td></td></tr><tr><td>Surgical blade</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>Z309036</td><td></td></tr><tr><td>Scissors</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>S3271</td><td></td></tr><tr><td>35 mm Petri dishes, glass bottom</td><td>de groot</td><td>60-627860</td><td></td></tr><tr><td>&lt;strong&gt;Name&lt;/strong&gt;</td><td>&lt;strong&gt;Company&amp;nbsp;&lt;/strong&gt;</td><td>&lt;strong&gt;Catalog Number&lt;/strong&gt;</td><td>&lt;strong&gt;Comments&lt;/strong&gt;</td></tr><tr><td>&lt;strong&gt;Materials:&lt;/strong&gt;</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>70% ethanol</td><td>Sigma</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Cold PBS</td><td>Biological industries</td><td>02-023-1A</td><td></td></tr><tr><td>DMEM</td><td>Biological industries</td><td>01-055-1A</td><td></td></tr><tr><td>FCS</td><td>Rhenium</td><td>10108165</td><td></td></tr><tr><td>Penicillin and streptomycin</td><td>Biological industries</td><td>01-031-1B</td><td></td></tr><tr><td>Sodium Pyruvate</td><td>Biological industries</td><td>03-042-1B</td><td></td></tr><tr><td>L-Glutamine</td><td>Biological industries</td><td>03-020-1B</td><td></td></tr><tr><td>Growth factor-depleted matrigel</td><td>Trevigen</td><td>3433-005-01</td><td></td></tr></tbody></table>

in vitro modeling of cancerous neural invasion: the dorsal root ganglion model

One way that solid tumors disseminate is through neural invasion. This route is well-known in cancers of the head and neck, prostate, and pancreas. These neurotropic cancer cells have a unique ability to migrate unidirectionally along nerves towards the central nervous system (CNS). The dorsal root ganglia (DRG)/cancer cell model is a three dimensional (3D) in vitro model frequently used for studying the interaction between neural stroma and cancer cells. In this model, mouse or human cancer cell lines are grown in ECM adjacent to preparations of freshly dissociated cultured DRG. In this article, the DRG isolation protocol from mice, and implantation in petri dishes for co-culturing with pancreatic cancer cells are demonstrated. Five days after implantation, the cancer cells made contact with the DRG neurites. Later, these cells formed bridgeheads to facilitate more extensive polarized, neurotropic migration of cancer cells.

<html> Mit Video-Mikroskopie kann die DRG sprießen Neuriten 5-7 Tage nach der Implantation zu erkennen, während die Krebszellen aus ihren Kolonien in Richtung der DRG Migration weg. Vom 7. Tag nach der Implantation kommen die Krebszellen in Kontakt mit den Neuriten (Abbildung 2). Der Vorwärts - Migration Index der Bauchspeicheldrüsenkrebszellen in das verwendete Protokoll ist 3-4 - fach höher al...

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In Vitro Modeling of Cancerous Neural Invasion: The Dorsal Root Ganglion Model

This video article shows the use of the dorsal root ganglia (DRG)/cancer cell model in pancreatic ductal adenocarcinoma.

In - vitro - Modellierung von Cancerous Neural Invasion: The Dorsalwurzelganglion Modell

One way that solid tumors disseminate is through neural invasion. This route is well-known in cancers of the head and neck, prostate, and pancreas. These ...

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Research

JoVE Journal

Neuroscience

In Vitro Modeling of Cancerous Neural Invasion: The Dorsal Root Ganglion Model

9.0K Aufrufe.  Rambam Medical Healthcare Campus. This video article shows the use of the dorsal root ganglia (DRG)/cancer cell model in pancreatic ductal adenocarcinoma.

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A Model for Perineural Invasion in Head and Neck Squamous Cell Carcinoma

Perineural invasion (PNI) is found in approximately 40% of head and neck squamous cell carcinomas (HNSCC). Despite multimodal treatment with surgery, radiation, and chemotherapy, locoregional recurrences and distant metastases occur at higher rates, and overall survival is decreased by 40% compared to HNSCC without PNI. In vitro studies of the pathways involved in HNSCC PNI have historically been challenging given the lack of a consistent, reproducible assay. Described here is the adaptation of the dorsal root ganglion (DRG) assay for the examination of PNI in HNSCC. In this model, DRG are harvested from the spinal column of a sacrificed nude mouse and placed within a semisolid matrix. Over the subsequent days, neurites are generated and grow in a radial pattern from the cell bodies of the DRG. HNSCC cell lines are then placed peripherally around the matrix and invade preferentially along the neurites toward the DRG. This method allows for rapid evaluation of multiple treatment conditions, with very high assay success rates and reproducibility.

Perineural invasion (PNI) is a common feature of head and neck squamous cell carcinoma (HNSCC), conferring lower survival rates. Its mechanisms are poorly understood. Utilizing neurites generated from murine dorsal root ganglia confined to a semisolid matrix, the pathways involved in the PNI of HNSCC cell lines can be investigated.

Ein Modell für Perineurale Invasion in Kopf- und Hals-Plattenepithelkarzinom

Perineural invasion (PNI) is found in approximately 40% of head and neck squamous cell carcinomas (HNSCC). Despite multimodal treatment with surgery, ...

Forschung

Krebsforschung

An In Vivo Murine Sciatic Nerve Model of Perineural Invasion

Cancer cells invade nerves through a process termed perineural invasion (PNI), in which cancer cells proliferate and migrate in the nerve microenvironment. This type of invasion is exhibited by a variety of cancer types, and very frequently is found in pancreatic cancer. The microscopic size of nerve fibers within mouse pancreas renders the study of PNI difficult in orthotopic murine models. Here, we describe a heterotopic in vivo model of PNI, where we inject syngeneic pancreatic cancer cell line Panc02-H7 into the murine sciatic nerve. In this model, sciatic nerves of anesthetized mice are exposed and injected with cancer cells. The cancer cells invade in the nerves proximally toward the spinal cord from the point of injection. The invaded sciatic nerves are then extracted and processed with OCT for frozen sectioning. H&amp;E and immunofluorescence staining of these sections allow quantification of both the degree of invasion and changes in protein expression. This model can be applied to a variety of studies on PNI given its versatility. Using mice with different genetic modifications and/or different types of cancer cells allows for investigation of the cellular and molecular mechanisms of PNI and for different cancer types. Furthermore, the effects of therapeutic agents on nerve invasion can be studied by applying treatment to these mice.

An In Vivo Murine Sciatic Nerve Model of Perineural Invasion

We describe an in vivo murine model of perineural invasion by injecting syngeneic pancreatic cancer cells into the sciatic nerve. The model allows for quantification of the extent of nerve invasion, and supports investigation of the cellular and molecular mechanisms of perineural invasion.

Eine In Vivo murinen Ischiasnerv Modell Perineural Invasion

Cancer cells invade nerves through a process termed perineural invasion (PNI), in which cancer cells proliferate and migrate in the nerve ...

Dorsal Root Ganglion Injection and Dorsal Root Crush Injury as a Model for Sensory Axon Regeneration

Achieving axon regeneration after nervous system injury is a challenging task. As different parts of the central nervous system (CNS) differ from each other anatomically, it is important to identify an appropriate model to use for the study of axon regeneration. By using a suitable model, we can formulate a specific treatment based on the severity of injury, the neuronal cell type of interest, and the desired spinal tract for assessing regeneration. Within the sensory pathway, DRG neurons are responsible for relaying sensory information from the periphery to the CNS. We present here a protocol that uses a DRG injection with a viral vector and a concurrent dorsal root crush injury in the lower cervical spinal cord of an adult rat as a model to study sensory axon regeneration. As demonstrated using a control virus, AAV5-GFP, we show the effectiveness of a direct DRG injection in transducing DRG neurons and tracing sensory axons into the spinal cord. We also show the effectiveness of the dorsal root crush injury in denervating the forepaw as an injury model for evaluating axon regeneration. Despite the requirement for specialized training to perform this invasive surgical procedure, the protocol is flexible, and potential users can modify many parts to accommodate their experimental requirements. Importantly, it can serve as a foundation for those in search of a suitable animal model for their studies. We believe that this article will help new users to learn the procedure in a very efficient and effective manner.

This protocol presents the use of a dorsal root ganglion (DRG) injection with a viral vector and a concurrent dorsal root crush injury in an adult rat as a model to study sensory axon regeneration. This model is suitable for investigating the use of gene therapy to promote sensory axon regeneration.

Dorsalwurzelganglion Injection und dorsale Wurzel Quetschverletzungen als Modell für Sensory Axonregeneration

Achieving axon regeneration after nervous system injury is a challenging task. As different parts of the central nervous system (CNS) differ from each ...

Neurowissenschaften

The Chick Chorioallantoic Membrane In Vivo Model to Assess Perineural Invasion in Head and Neck Cancer

Perineural invasion is a phenotype in which cancer surrounds or invades the nerves. It is associated with poor clinical outcome for head and neck squamous cell carcinoma and other cancers. Mechanistic studies have shown that the molecular crosstalk between nerves and tumor cells occurs prior to physical interaction. There are only a few in vivo models to study perineural invasion, especially to investigate early progression, before physical nerve-tumor interactions occur. The chick chorioallantoic membrane model has been used to study cancer invasion, because the basement membrane of the chorionic epithelium mimics that of human epithelial tissue. Here we repurposed the chick chorioallantoic membrane model to investigate perineural invasion, grafting rat dorsal root ganglia and human head and neck squamous cell carcinoma cells onto the chorionic epithelium. We have demonstrated how this model can be useful to evaluate the ability of cancer cells to invade neural tissue in vivo.&#160;

The Chick Chorioallantoic Membrane In Vivo Model to Assess Perineural Invasion in Head and Neck Cancer

Perineural invasion is an aggressive phenotype for head and neck squamous cell carcinomas and other tumors. The chick chorioallantoic membrane model has been used for studying angiogenesis, cancer invasion, and metastasis. Here we demonstrate how this model can be utilized to assess perineural invasion in vivo.

Das Chick Chorioallantoic Membrane In Vivo Modell zur Beurteilung der perineuralen Invasion bei Kopf- und Halskrebs

Perineural invasion is a phenotype in which cancer surrounds or invades the nerves. It is associated with poor clinical outcome for head and neck squamous ...

Medizin

Fortschrittliches In-vitro-Modell zur Untersuchung der neuronalen Überempfindlichkeit in DRG-Kulturen

Harvesting, Embedding, and Culturing Dorsal Root Ganglia in Multi-compartment Devices to Study Peripheral Neuronal Features

The most common peripheral neuronal feature of pain is a lowered stimulation threshold or hypersensitivity of terminal nerves from the dorsal root ganglia (DRG). One proposed cause of this hypersensitivity is associated with the interaction between immune cells in the peripheral tissue and neurons. In vitro models have provided foundational knowledge in understanding how these mechanisms result in nociceptor hypersensitivity. However, in vitro models face the challenge of translating efficacy to humans. To address this challenge, a physiologically and anatomically relevant in vitro model has been developed for the culture of intact dorsal root ganglia (DRGs) in three isolated compartments in a 48-well plate. Primary DRGs are harvested from adult Sprague Dawley rats after humane euthanasia. Excess nerve roots are trimmed, and the DRG is cut into appropriate sizes for culture. DRGs are then grown in natural hydrogels, enabling robust growth in all compartments. This multi-compartment system offers anatomically relevant isolation of the DRG cell bodies from neurites, physiologically relevant cell types, and mechanical properties to study the interactions between neural and immune cells. Thus, this culture platform provides a valuable tool for investigating treatment isolation strategies, ultimately leading to an improved screening approach for predicting pain.

Autor im Rampenlicht: In-vitro- und In-vivo-Modelle zur Verbesserung der Wirksamkeit der Behandlung chronischer Schmerzen

This protocol provides a technique to harvest and culture explanted dorsal root ganglion (DRG) from adult Sprague Dawley rats in a multi-compartment (MC) device.

Ernte, Einbettung und Kultivierung von dorsalen Wurzelganglien in Geräten mit mehreren Kompartimenten zur Untersuchung peripherer neuronaler Merkmale

The most common peripheral neuronal feature of pain is a lowered stimulation threshold or hypersensitivity of terminal nerves from the dorsal root ganglia ...

Biotechnik

Establishing a Three-dimensional Co-culture Model of Murine Dorsal Root Ganglia and Cancer Cells: An In Vitro Model to Study Perineural Cancer Cell Invasion

Source: Huyett, P. et al. <a href="https://www.jove.com/video/55043" target="_blank">A Model for Perineural Invasion in Head and Neck Squamous Cell Carcinoma.</a> J. Vis. Exp. (2017)
In this video, we demonstrate the procedure for developing an in vitro perineural cancer cell invasion model by co-culturing mouse dorsal root ganglion and neurotropic cancer cells. The model can be utilized to conduct cancer assays, producing rapid and reproducible results.

Etablierung eines dreidimensionalen Co-Kulturmodells von murinen Spinalganglien und Krebszellen: Ein In-vitro-Modell zur Untersuchung der perineuralen Invasion von Krebszellen

Source: Huyett, P. et al. A Model for Perineural Invasion in Head and Neck Squamous Cell Carcinoma. J. Vis. Exp. (2017)
In this video, we demonstrate the ...

JoVE Encyclopedia of Experiments

Head and Neck Cancer

Assays & techniques

Murine Perineural Invasion Model: Generating an In Vivo Model to Simulate Perineural Invasion in Mouse Sciatic Nerve

Source: Deborde, S. et al. <a href="https://www.jove.com/video/56857" target="_blank">An In Vivo Murine Sciatic Nerve Model of Perineural Invasion.</a> J. Vis. Exp. (2018)
In this video, we develop an in vivo mouse model for perineural invasion by injecting pancreatic cancer cells into the sciatic nerve. This model helps quantify the extent of invasion and study the interactions between cancer cells and nerves.

Maus-Perineurales Invasionsmodell: Generierung eines In-vivo-Modells zur Simulation einer perineuralen Invasion im Ischiasnerv der Maus

Source: Deborde, S. et al. An In Vivo Murine Sciatic Nerve Model of Perineural Invasion. J. Vis. Exp. (2018)
In this video, we develop an in vivo mouse ...

Cancers of the Nervous System

In vivo studies

Modeling Cancerous Neural Invasion In Vitro: A Method to Co-culture Dorsal Root Ganglia and Cancer Cells

Source: Na&#39;ara, S. et al. <a href="https://www.jove.com/video/52990" target="_blank">In Vitro Modeling of Cancerous Neural Invasion: The Dorsal Root Ganglion Model.</a> J. Vis. Exp. (2016)
In this video, we demonstrate an in vitro method for co-culturing DRG and cancer cells to study neurotropism and neural invasion.

Modellierung der krebsartigen neuronalen Invasion in vitro: Eine Methode zur Co-Kultur von Spinalganglien und Krebszellen

Source: Na&#39;ara, S. et al. In Vitro Modeling of Cancerous Neural Invasion: The Dorsal Root Ganglion Model. J. Vis. Exp. (2016)
In this video, we ...

In - vitro - Modellierung von Cancerous Neural Invasion: The Dorsalwurzelganglion Modell

Zusammenfassung

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Kapitel in diesem Video

Ein Modell für Perineurale Invasion in Kopf- und Hals-Plattenepithelkarzinom

Eine In Vivo murinen Ischiasnerv Modell Perineural Invasion

Dorsalwurzelganglion Injection und dorsale Wurzel Quetschverletzungen als Modell für Sensory Axonregeneration

Das Chick Chorioallantoic Membrane In Vivo Modell zur Beurteilung der perineuralen Invasion bei Kopf- und Halskrebs

Ernte, Einbettung und Kultivierung von dorsalen Wurzelganglien in Geräten mit mehreren Kompartimenten zur Untersuchung peripherer neuronaler Merkmale

Ernte, Einbettung und Kultivierung von dorsalen Wurzelganglien in Geräten mit mehreren Kompartimenten zur Untersuchung peripherer neuronaler Merkmale

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Etablierung eines dreidimensionalen Co-Kulturmodells von murinen Spinalganglien und Krebszellen: Ein In-vitro-Modell zur Untersuchung der perineuralen Invasion von Krebszellen

Maus-Perineurales Invasionsmodell: Generierung eines In-vivo-Modells zur Simulation einer perineuralen Invasion im Ischiasnerv der Maus

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