This work was supported by a Grant-in-Aid for Scientific Research by the Japanese Society for the Promotion of Science (15K08060).

1. DNA-Extraktion Hinweis: Verwenden Sie einen separaten Raum für die DNA-Extraktion und Post-PCR-Untersuchungen wie Gelelektrophorese und LC / ESI-MS. Hinzufügen Ethanol-Waschpuffer 1 (mit Guanidin-Hydrochlorid) und Waschpuffer 2 (nicht Guanidinhydrochlorid enthält) nach der DNA Extraction Kit Protokoll. Fischproben wurden aus Fischgroßhändler und Einzelhandelsmärkte in Japan erhalten. <ol><li> Setzen Sie 30-50 mg Fischgewebe in einem 0,5 ml oder 1,5 ml Mikrozentrifugenröhrchen. Squash das Gewebe mit einem Mikro-Spatel (mit Ausnahme der Finne und Haut). Hinweis: Im Fall der Finne, mit einem 0,5-ml-Röhrchen zum Einweichen. </li><li> In 180 &amp; mgr; l des Lysepuffers und 40 ul Proteinase K und Wirbel kurz. bei 56 ° C inkubieren für 2 Stunden auf einem Blockheizung oder über Nacht. Mix von kurz alle 15 Minuten während der Inkubation verwirbelt. Hinweis: Vollständige Lyse nicht notwendig ist. </li><li> Zentrifuge für 5 min bei 13.000 x g. Nach Zentrifugation, wenn eine kleine amount von Öl an der Oberfläche in dem Fall einer Fettprobe wie Leber vorhanden ist, verwerfen. Überstand in ein neues 1,5 ml Mikrozentrifugenröhrchen. </li><li> In 200 ul des chaotropen Puffer, der Guanidinhydrochlorid und mischen durch Vortexen. In 200 ul Ethanol (99,5%) und Mischung wieder durch Vortexen. </li><li> Übertragen der Mischung in die Spin-Säule in ein Sammelröhrchen ml 2 platziert. Zentrifuge für 1 min bei 13.000 x g. Verwerfen Sie den Durchfluss durch. Achtung: Fügen Sie keine Bleichmittel auf den Abfall, da Guanidin hochreaktive Verbindungen mit Bleichmittel bilden können. </li><li> Hinzufügen 500 ul Waschpuffer 1 (mit Guanidin-Hydrochlorid) und zentrifugieren für 1 min bei 13.000 x g. Entsorgen Sie die Strömung durch und das Sammelrohr. </li><li> Legen Sie die Spin-Säule in ein neues 2 ml Sammelröhrchen mit dem Kit zur Verfügung gestellt. Hinzufügen, 500 &amp; mgr; l des Waschpuffers 2 und Zentrifuge für 3 Minuten bei 20.000 x g. Verwerfen Sie den Durchfluss durch und das Sammelrohr. Übertragen Sie die Spin-Säule in ein neues1,5 ml Mikrozentrifugenröhrchen. </li><li> Jeweils 200 ul des Elutionspuffers in die Mitte der Spinsäule Membran. Nach 1 min zentrifugieren für 1 min bei 6.000 x g. </li><li> Pipette 50 ul des Eluats auf einem wegwerfbaren UV Küvette und das UV-Spektrum des Eluats bei 220-300 nm und die Extinktion bei 260 nm unter Verwendung eines Spektrophotometers. </li><li> Überprüfen, das UV-Spektrum von DNA mit dem Peak bei 260 nm. die ungefähre DNA-Konzentration Berechnen Sie die einfache Gleichung &quot;DNA-Konzentration (ng / ul) = Absorption bei 260 nm x 50&quot; mit. Anmerkung: Typische DNA - Konzentration aus den Rippen der Kugelfisch extrahiert beträgt 63 ± 30 ng / &amp; mgr; l (n = 20). </li><li> Wenn die DNA-Konzentration höher ist als 10 ng / &amp; mgr; l, verdünnt die DNA-Proben mit Tris-EDTA (TE) -Puffer (pH 8) mit 5 ng / &amp; mgr; l. </li><li> Lagern Sie die Probe bei -20 ° C oder fahren Sie mit der PCR-Amplifikation (Abschnitt 2). </li></ol> 2. PCR <ol><li> Richten Sie 25 ul PCR für jeden Extrhandelten DNA - Probe, Positivkontrolle (0,2 uM synthetisierte Oligonucleotid mit der Zielsequenz in TE - Puffer , pH 8,0) gemäß Tabellen 1 und 2 auf eine saubere Bank Kontamination zu vermeiden und die negative Kontrolle (ultragereinigte Wasser anstelle von DNA - Probe) auf Eis. Hinweis: Für die einfache Bedienung, stellen ausreichende Menge an Cocktail alle Reagenzien ohne Template-DNA enthält, und verzichten sie. Verwenden DNA-Polymerase mit Korrekturleseaktivität Zugabe von 3 &#39;A-Überhang an dem PCR-Produkt zu vermeiden. </li><li> Durchführung der PCR - Amplifikation an einem Thermozykler den Zyklus - Programm in Tabelle 3 gezeigt. </li></ol> 3. Die enzymatische Verdauung <ol><li> Fügen Sie 2 ul der Lösung , enthaltend 100 mM Tris-HCl (pH 7,5), 100 mM MgCl 2, 10 mM Dithiothreitol und 500 mM NaCl zu der PCR - Lösung. </li><li> 1 ul jedes Restriktionsenzym (Dra I und Msp I) und vorsichtig mischen. bei 37 ° C für 30 min inkubieren auf der thermal Cycler. </li><li> Inkubieren Sie für 5 min bei 72 ° C die restliche DNA-Polymerase zu aktivieren, die das klebrige Ende von Msp I. erzeugt füllt </li><li> Optional: Analysieren jeweils 2,5 &amp; mgr; l der Reaktionslösung durch Polyacrylamid-Gelelektrophorese ein Vernetzungsverhältnis (% C, Prozentsatz der Bisacrylamid) von 3,33 (wt%) und eine Polyacrylamidgel-Konzentration (% T) von 15 unter Verwendung von (% w / v) 38. Stain das Gel die fluoreszierenden DNA-Farbstoff verwendet und beobachten Doppelstrang-DNA auf einem blauen Licht Transilluminator mit einem Bernstein-Bildschirm. </li><li> Filtern der Reaktionslösung mit einem 0,2-0,5 &amp; mgr; m Zentrifugalfilter Vorrichtung Verstopfen zu verhindern, die die analytische Säule beschädigen würde. </li><li> Das Filtrat zu einem konischen Polypropylen-Fläschchen und bei -20 ° C bis zur Analyse. </li></ol> 4. LC / ESI-MS-Analyse <ol><li> Wiegen 67,2 g (ca. 42 ml) von HFIP und 1,52 g (ca. 2,0 ml) von TEA in einer 1 L - Flasche. In 955 ml Wasser ultragereinigte (LC / MS grade) und unter Rühren mit einem Magnetrührer, bis die Reagenzien vollständig gelöst sind. Nehmen Sie einen aliquoten Teil der Lösung und den pH-Wert (zwischen 7,85 und 7,95; idealerweise pH = 7,9) unter Verwendung eines pH-Meter. Hinweis: Die Menge dieses Gemisches in die Flasche nicht wieder Verunreinigung durch Metallionen zu vermeiden. Wenn der pH-Wert nicht 7,9 ist, fügen Sie eine kleine Menge von entweder HFIP oder TEA den pH-Wert einzustellen und den pH-Wert wieder messen. </li><li> Schließen Sie die Flasche A des Flüssigkeitschromatographen mit Abkühlung der Flasche Linie eine direkte Kühlung tragbaren Kühlschrank mit (für den Haushalt) der Verdampfung zu verhindern. Schließen Sie eine weitere Flasche mit Methanol gefüllt B. der Leitung </li><li> Schließen Sie die Vorsäule und der analytischen Säule (2,0 x 50 mm, Mesoporengröße = 30 nm) mit dem Flüssigkeitschromatographen. Starten Sie den anfänglichen mobilen Phase (95% A und 5% B) fließt, um die Spalten zu äquilibrieren. </li><li> Bereiten 0,5 mg / ml Natrium trifluoracetat (pH 3,5) als Kalibriermittel 39. <ol><li> Man wiegt 50 mg (ca. 34 &amp; mgr; l) Trifluoressigsäure acID in einem Becher. </li><li> In 30 ml Wasser ultragereinigte und titriert auf pH 3,5 mit 10 mM Natriumhydroxid mit Hilfe eines pH-Meter. </li><li> Füllen Sie bis zu 50 ml mit ultragereinigte Wasser. In 50 ml Acetonitril (LC / MS-Klasse) und mischen. </li><li> Nehmen Sie einen Teil der Arbeitslösung und lagern Sie es bei Raumtemperatur. Lagern Sie den Rest der Lösung bei 4 ° C. </li></ol></li><li> Reduzieren Sie den Stickstoffdruck der C-Falle wie folgt. Hinweis: Bei neueren Fourier-Massenspektrometer-Transformation, die für intakte Proteinanalyse geeignet sind, haben Steuersoftware Druck zu steuern. <ol><li> Entfernen Sie die linke obere Abdeckung des Massenspektrometers. Die C-Trap Ventil ist an der Ecke von links im Vordergrund. </li><li> Überprüfen Hochvakuumdruckwert im Instrumentenstatusfenster der Steuerungssoftware. Anmerkung: Der Wert in der Regel ist, 3 x 10 -8 bar. </li><li> Ziehen Sie den Knopf, um den Knopf gegen den Uhrzeigersinn zu entriegeln und drehen sich sehr langsam die hohe Vakuumpresse zu reduzierenure bis 1/3 ( in der Regel 1 x 10 -8 bar). Der angezeigte Druck sollte nach und nach in einer verzögerten Art und Weise verändern. Ignorieren Sie die Warnmeldung über niedrigem Druck. Drücken Sie den Knopf zu sperren. </li><li> Stellen Sie die obere Abdeckung für die Sicherheit. </li></ol></li><li> Kalibrieren des Massenspektrometers Natriumtrifluoracetat 39. Hinweis: Tägliche Massenkalibrierung kann durch dieses Protokoll ersetzt werden jedoch die empfohlene Kalibrierung vom Hersteller vorgeschlagen sollte vor dieser Kalibrierung abgeschlossen sind. <ol><li> Stellen Sie Scan-Parameter und beheizte ESI-Quelle Parameter in der Instrumentensteuerkasten der Tuning-Software wie folgt: Scan-Typ voll MS; Scan - Bereich m / z 500-4000; Fragmentierung (in-Source - Kollision induzierte Dissoziation (CID) Spannung 60 eV; Polarität negativ, automatische Verstärkungsregelung (AGC) Ziel 1 x 10 6, maximal Inject Zeit 50 ms; Mantelgasflussrate 5; aux Gasflussrate 0; Spülgases Strömungsgeschwindigkeit 0; besprühen Spannung 3 kV; Kapillare Temperatur 320 ° C; S-Objektiv Radiofrequenz (RF) Ebene 100; Heizungstemperatur 30 ° C. <ol><li> Geben Sie die Liste der negativen Ionen überwacht werden als m / z 792,85908, 1064,80870, 1336,75832, 1608,70794, 1880,65755, 2152,60717, 2424,55679, 2696,50640, 2968,45602, 3376,38045. </li></ol></li><li> Bewegen der erwärmten ESI Sonde näher an der Grenzfläche des Massenspektrometers (Position B). Schließen Sie die Sonde und eine Spritze mit einem Rohr. </li><li> die Kalibriermittel konstant bei einer Flussrate von 10 ul / min unter Verwendung der eingebetteten Spritzenpumpe infundieren. Prüfen Sie nur die 6 geringere Masse Ionen (m / z 792,85908-2.152,60717) in der angepassten Kalibrierungstabelle. <ol><li> Fahren Sie mit der Kalibrierung nach der Intensität der Signale stabilisiert werden. Nach der Kalibrierung prüfen nur die sechs höheren Massenionen (m / z 1880,65755 bis 3376,38045) und mit der Kalibrierung fortzufahren. Vermeiden Sie alle Ionen die Kalibrierung mit auf einmal Ausfall zu vermeiden. </li></ol></li></ol></li><li> Bewegen Sie die Sonde mit dem? Fallte Position für eine Strömungsgeschwindigkeit von 0,4 ml / min (Position D) und mit einem inerten Metallrohr mit dem Flüssigkeitschromatographen verbinden. </li><li> Stellen Sie die beheizten ESI-Quelle Parameter in der Instrumentensteuerkasten der Tuning-Software wie folgt: Mantelgasflussrate 50; aux Gasflussrate 15; fegen Gasflussrate 1; besprühen Spannung 2,5 kV; Kapillar-Temperatur 350 ° C; S-Objektiv HF-Pegel 100; Heizertemperatur 350 ° C. </li><li> Stellen Sie Erfassungsparameter des Massenspektrometers im instrumentalen Fenster Setup wie folgt: Verfahrensdauer 8 min; umleiten Ventil, 3.5-6 min Massenspektrometer, 0-3,5 und 6-8 min zu verschwenden; Laufzeit 3,5 bis 6 min; Polarität negativ; in Quelle CID Spannung 15,0 eV; microscans 3; Nennauflösung Leistung (bei ​​m / z 200) 140000; AGC Ziel 1 x 10 &amp; sup6; maximale Ionenzeit 50 ms; Anzahl der Abtastungen 1; Scan - Bereich m / z 700-3,500; Spektrum-Datentyp-Profil. </li><li> Stellen Sie die Parameter des Flüssigkeitschromatographen wie folgt: Säule Ofentemperatur 20 ° C; sample Tablett Temperatur 10 ° C; Gradient Programm 0-0,5 min 5% B, 0,5-1 min 5-30% B, 1-3,5 min 30-40% B, 3,5-5 min 40-98% B, 5-6 min 98% B, 6- 6.05 min 98-5% B, 6,05 bis 8 min 5% B; Fließgeschwindigkeit 0,4 ml / min. </li><li> Purge Blasen durch die Böden der Fläschchen klopfen. Stellen Sie Probenfläschchen auf dem Probenrack und injizieren 1,0 ul einer Probe, die die Autosampler-Analyse zu starten. </li><li> Öffnen Sie Rohdaten-Dateien mit der Browser-Software und bestätigen Sie, dass alle Akquisitionen erfolgreich abgeschlossen sind, einschließlich der positiven und negativen Kontrollen. Anmerkung: In der Regel werden zwei oder drei Peaks würden im Gesamtionenstrom-Chromatogramm bei einer Retentionszeit von 4-5,5 min beobachtet werden, wenn Kugelfisch DNA erfolgreich amplifiziert und verdaut. </li></ol> 5. Dekonvolution und Interpretation <ol><li> Starten Sie die Entfaltungs Software. Wählen Sie Experiment Typ &quot;auto-Extrakt (isotopisch aufgelöst)&quot;. </li><li> Bearbeiten einer Methode unter Verwendung der folgenden Parameter: Ausgangsmasse M; S / N threshold 3, relative Häufigkeit Schwelle 0; negative Ladung ja; Ionenstrom - Chromatogramm (XIC) ja extrahiert berechnen; m / z - Bereich 700-3,500; Ladungsträger H +; Mindestzahl der erfassten Ladung 3; Isotopenverhältnis-Nukleotid; Fit-Faktor 80%; Rest Schwelle 0%; betrachten Überschneidungen ja; aufladen Bereich 3-50; Mindestintensität 1; erwartete Intensitätsfehler 3. <ol><li> Speichern Sie als eine neue Methode und wählen Sie es. </li></ol></li><li> Wählen Sie das Verzeichnis, in dem die Rohdaten-Dateien vorhanden sind. Wählen Sie die Rohdatendateien werden analysiert und klicken Sie auf &quot;Add to Queue &#39;Button. </li><li> Klicken Sie auf &quot;Ausführen&quot; Button &quot;Run Queue&quot; Tab Entfaltungs zu starten. </li><li> Nachdem der Warteschlange abgeschlossen ist, eine Zeile auswählen und &#39;Open Ergebnis&#39; in der oberen Beschriftung klicken, um die Ergebnisse von Entfaltungs erhalten. </li><li> Interpretieren der Ergebnisse der monoisotopischen Massen aus den Peaks bei einer Retentionszeit abgeleitet von 4-5,5 min unter Verwendung von Tabelle 4. </li></ol>

The authors have nothing to disclose.

DNA, einem kommerziellen Kit zur Extraktion von DNA aus Blut und Gewebe zu extrahieren, wird in Übereinstimmung mit dem Protokoll des Herstellers mit geringfügigen Modifikation (Menge der Proteinase K und Zentrifugation der Lyse-Lösung) verwendet. Es kann jedoch jede Extraktions-Kits verwendet werden, solange die zelluläre DNA mit geeigneten Rückgewinnung und Reinheit für die PCR gewonnen werden kann. Dieses Verfahren wurde unter Verwendung von Muskel getestet, Flosse, Leber, Eierstock-, und die Haut 37. Fin ist besonders geeignet wegen der großen Oberfläche, die mit Proteinase K. frisch, tiefgefroren, getrocknet, gekocht und gebacken Kugelfisch Proben wurden erfolgreich schnelle Lyse ermöglicht 37 getestet. Die PCR - Primer - Set (Tabelle 1) für Kugelfisch entwickelt und verstärkt das mitochondriale ribosomale 16S - RNA - Gen von Kugelfisch. Die Ziel - DNA zu amplifizieren , ist 114-115 bp (genus Takifugu) und 86 bp (genus Lagocephalus) (Tabelle 5). Zur Erleichterung der Verfahren development, synthetisierte Oligonukleotide, die Zielsequenzen wurden für die Referenz anstelle des Sammelns authentische Kugelfisch Proben verwendet. Die Primer-Set kann durch einen anderen Primer in Reaktion auf den Zweck eingestellt ersetzt werden, jedoch sollte endgültige DNA-Länge nach dem enzymatischen Abbau weniger als 100 nt in Bezug auf die Qualität des Massenspektrums die für eine erfolgreiche Entfaltungs beibehalten wird. Zusätzlich sollte Stickstoffdruck in der C-Falle reduziert werden, wenn das Ziel-Oligonukleotid mehr als etwa 75 nt und die Qualität des Massenspektrums ist unzureichend für eine erfolgreiche Dekonvolution. Solche Beschränkungen können durch die jüngsten Entwicklungen in der Geräte-Software, da sonst das Ventil für die C-trap innerhalb des Chassis, wie in dem Protokoll beschrieben eingestellt werden muß gesteuert werden. Wie für die Probenvorbereitung, die Verwendung von Detergens-freien Reagenzien ist kritisch für die nachfolgende LC in Bezug auf die entsprechenden Peakform, eine ausreichende Spitzenintensität und stabile Haltezeit 31. 21,24-33, eine C 18 Umkehrphasen - partikulären Silica - Säule 23,40,41 und eine hydrophobe Wechselwirkung - Chromatographie (HILIC) Spalte 42 sind für den LC eingesetzt / ESI-MS-Analyse von Oligonukleotiden. Unter ihnen ist die Spalte kapillaren Monolithen zu den anderen in Bezug auf die Trennleistung überlegen ist, jedoch ist die kapillare Monolith Säule in früheren Studien verwendet wurde, in-house und betrieben bei einer niedrigen Strömungsrate (2 &amp; mgr; l / min), die Instrumentierung erfordert gemacht Mikro LC gewidmet ist. Um eine einfache Bedienung zu erleichtern, im Handel erhältlichen Säulen wurden für die Trennung von langen Oligonukleotiden bei höheren Strömungsraten ausgewertet (100-400 &amp; mgr; l / min). Drei Paare von DNA - Duplexen (26, 37 und 53 bp) wurden die oben erwähnten Spalten getrennt unter Verwendung werden jedoch die Zykluszeiten des C 18 -gebundene partikuläre Silicasäule und der PS-DVB - Monolith - Säule wurden 65 und 70 min, jeweils , während die der C <sub&gt; 18 -gebundene Silica - Monolith Kolonne betrug 8 min (Abbildung 1). Unter schnelle Analyse berücksichtigt wurde die C 18 -gebundene Silica - Monolith - Säule für unsere Zwecke trotz des begrenzten Abscheideleistung gewählt; jedoch die verbleibenden zwei Spalten verwendet werden kann, wenn verbesserte Trennung erforderlich ist. Theoretisch im Fall eines Monolithen Spalte gibt es keine Zwischenraumvolumen und die mobile Phase gezwungen wäre, die Poren der festen Phase zu durchströmen , während eine konsistente Weglänge aufrechterhalten wird , wodurch eine effiziente Trennung 27 ermöglicht. Solche Prozesse würden, insbesondere bei der Analyse von Biomakromolekülen, wie beispielsweise ein Oligonukleotid, wie die langsame Diffusion der großen Moleküle werden manifestiert. Eine der praktischen Vorteile einer Monolithsäule ist , dass der Gegendruck geringer ist als diejenige eines partikulären Silicasäule 27. Trotz der hohen Strömungsgeschwindigkeit (400 &amp; mgr; l / min) und niedriger Säulentemperatur (20 ° C), maximale Gegendruck desSystem betrug 12,5 MPa 37. Dies ist die erste Demonstration der Vorteile eines -gebundene 18 C Silica - Monolith Spalte für die schnelle Analyse eines langen Oligonucleotids. Aufgrund der hohen Strömungsgeschwindigkeit, ein dediziertes Gerät für die Mikro LC und präzise Ausrichtung an der Schnittstelle nicht erforderlich. Stattdessen wird ein beheizbarer ESI Sonde erforderlich, um die DNA-Duplex und unterstützen Ionisierung von DNA zu dissoziieren, wie später beschrieben. Ionenpaar-Chromatographie ist für die MS-kompatiblen Trennung von Oligonukleotiden verwendet. Stört jedoch ein Ionenpaar-Reagens im Allgemeinen mit dem ESI-Prozess und die Empfindlichkeit verringert ESI-MS. Daher wird HFIP häufig für die mobile Phase verwendet, um die Empfindlichkeit des Oligonukleotids zu verbessern. Jedoch verdampft HFIP (Siedepunkt 59 ° C) schnell an der Grenzfläche , bevor Methanol (Siedepunkt 65 ° C) , und deshalb dieser Verlust an Lösungsmittel erhöht pH und fördert die Dissoziation des Ionenpaar - Reagenz (dh TEA)von dem Oligonucleotid. Da das vorliegende Verfahren einen beheizten ESI-Sonde verwendet, die das Eluat mit heißem Stickstoffgas bei 350 ° C vernebelt, kann dieser Effekt überbetont werden. Anstelle von HFIP-TEA - Puffer, Erb und Oberacher empfohlen cyclohexyldimethylammonium acetat (CycHDMAA; pH 8,4) für die Genotypisierung Analyse aufgrund einer Reduktion in Adduktbildung mit Spurenmetallionen 33. Die Autoren schließen, dass CycHDMAA selbst die Bildung des Metall Addukts unterdrückt. Trotz der Literatur hat signifikante Adduktbildung nicht in dem vorliegenden Verfahren beobachtet. Darüber hinaus ist die bemerkenswert Vorteil der HFIP-TEA-Methanol - System , daß der Spitzenbereich mit dem erhaltenen HFIP-TEA-Methanol - System 17 Mal als die aus dem CycHDMAA-Acetonitril - System erhalten größer war , als ein 86 bp Amplikon von T. Analyse poecilonotus (Daten nicht gezeigt). Ein Nachteil der HFIP-TEA-Methanol-System ist jedoch die erhöhten Kosten relativ zum CycHDMAA-Acetonitril-System. Die Berechnung der monoisotopisch Masse erfordert die Trennung von Isotopen-Peaks von mehrfach geladenen Ionen. Daher ist die Auflösung von entscheidender Bedeutung für die vorliegende Analyse. Obwohl erforderliche Auflösungsvermögen auf der Basenpaarlänge des Analyten, konventionellen TOF-Analysatoren abhängig ist, die eine Auflösungsvermögen von mehreren Zehntausend haben, können für die Analyse von kurzen Oligonukleotiden beschränkt werden. Die theoretischen monoisotopischen Massen in Tabelle 4 gezeigt , wurden aus den entsprechenden Basiszusammensetzungen der Analyten berechnet. Alternativ Muddiman et al. Entwickelt eine Software - Anwendung der Grundzusammensetzung von der genauen Masse 43 zu berechnen. Ein ähnliches Programm wurde in das automatisierte ESI-MS - System integriert 16-18. Die Verwendung dieser Algorithmen kann die Robustheit des erfindungsgemßen Verfahrens verbessern, da eine gemessene monoisotopische Masse nicht immer zu einer einzigartigen Basiszusammensetzung o entsprechenFlügel auf die Massentoleranz von 3 ppm aus der unvermeidlichen Messfehler zur Folge hat. Leider konnten wir diese Software-Produkte für die vorliegende Studie nicht erhalten. Die vorliegende monoisotopischen Massenbasis Spezies Bestimmung kann geeignet sein, nicht nur für die Differenzierung von Kugelfisch, sondern auch zum Nachweis von anderen DNA-Polymorphismen, da das vorliegende Verfahren auf die Analyse der Basenzusammensetzung basiert und beinhaltet nicht die entsprechende Verfahrensweise für Kugelfisch gestaltet. Wie für den Nachweis von DNA - Polymorphismus, der dedizierte ESI-MS - System voll automatisiert und einfach zu bedienen, die für diagnostische Zwecke , wie beispielsweise Nachweis von Pathogenen 15,17,18,20,30 geeignet sein können. Im Gegensatz dazu ist das vorliegende Verfahren möglich mit gemeinsamen Forschungsinstrumente und -geräte und deshalb geeignet für die Forschung Anwendungen. ESI-MS wurde bereits für die menschliche DNA - Polymorphismus wie Einzel - Nukleotid - Polymorphismus 13,28,32, short tandem Wiederholung 26 angewendet wordenUnd der mitochondrialen DNA analsis 16,19. Micro - RNA wurde auch über Kapillar LC / ESI-MS 44 analysiert. Diese veröffentlichten Anwendungen können auch durch das vorliegende Verfahren realisiert werden. Darüber hinaus kann dieses Verfahren zur Überwachung der Wechselwirkung zwischen Oligonukleotid und niedermolekulare Verbindungen, wie die Wechselwirkung von Antibiotika und ribosomale RNA 45 aufgrund der Tieftemperaturtrennung geeignet sein. In solchen Fällen, Oligonucleotide und niedermolekulare Verbindungen sollten gleichzeitig erfasst werden, was ein Vorteil der LC / ESI-MS verwendet wird. Es gibt eine Einschränkung, dass die Instrumentierung zur Durchführung einer parallelen Analyse wie bei herkömmlichen Techniken, wie Sanger-Sequenzierung und Echtzeit-PCR nicht geeignet ist. Zusätzlich identifiziert das vorliegende Verfahren nur Basenzusammensetzung und jede Basensubstitution innerhalb desselben Moleküls kann nicht unterschieden werden. Allerdings haben die MS-basierte DNA-Analyse hier beschrieben ist, kann immer noch Verdienst in Ausdrucks Genauigkeit im Vergleich mit der DNA-bindenden Farbstoff-basierte Techniken wie Gelelektrophorese und Echtzeit-PCR.

Massenspektrometrie (MS) ist eine anerkannte Technik für schnelle und zuverlässige Identifizierung von Nukleinsäuren, Matrix-unterstützte Laser - Desorption / Ionisation (MALDI) und Elektrospray - Ionisation (ESI) für die Ionisation 1,2 verwendet wird. Die MALDI-Technik wird typischerweise mit einem time-of-flight (TOF) Analysator kombiniert; jedoch ist die Anwendung von MALDI-TOF MS beschränkt auf kurze Oligonukleotide (~ 25 Nukleotiden (nt)) aufgrund der anschließenden Fragmentierung Adduktbildung und niedrige Ionisationseffizienz 1,2. Im Gegensatz dazu ist ESI längere Oligonukleotide anwendbar (&gt; 100 nt), aber viele Ladungszustände von mehrfach geladenen Ionen ([M-nH] n-) von Biomakromolekülen gleichzeitig hergestellt und somit die Masse des Analyten die obere überschreiten Grenze des m / z - Bereich des Spektrometers. Dies erfordert die Interpretation der gewundenen Spektren, dh Umwandlung eines Ladungszustand Serie in die entsprechende Masseüber Entfaltungs. Im Fall der Massenmessung eines kleinen Moleküls, der Spitze der monoisotopischen Massen, das heißt die Masse des Moleküls nur die häufigsten Isotops jedes Element enthält , ist das häufigste und beobachtet natürlich 3. Wenn das Molekulargewicht zunimmt, wird durch Grundrauschen 3-5 verdeckt die Isotopenverteilung verschiebt sich zu höheren m / z und dem monoisotopischen peak. Sobald die monoisotopischen Peaks nicht mehr nachweisbar für Massen größer als 10 kDa 3, wobei das mittlere Molekularmasse wird für die Messung verwendet , anstatt die monoisotopische Masse 5. In solchen Fällen, in denen das Isotopenverteilung jeder der einzelnen Peaks von 1 Da getrennt ist , kann nur beobachtet werden , wenn eine hohe Auflösung Massenanalysator wie einem TOF, einen Fourier - Analysator Kingdon trap 6 modifizierten Transformierte oder eine Fouriertransformation-Ionenzyklotronresonanz-Massenspektrometer Analysator für die Analyse verwendet. Jedoch ist das häufigste peak sanchmal nicht mit der mittleren Molekularmasse 5. Diese Probleme können zu Schwierigkeiten führen zur genauen Bestimmung von Analyten. Aufgrund der Veränderung der natürlichen Häufigkeit von stabilen Isotopen und die Schwierigkeiten bei der die mittlere Molekularmasse zu bestimmen, die Messung der monoisotopisch Masse ist ideal für die Massen Charakterisierung von Biomolekülen 3,4. In der Praxis , ob ein monoisotop Peak beobachtet werden kann oder nicht, kann die monoisotopische Masse durch einen Vergleich des Musters der beobachteten Isotopenverteilung auf die theoretische man von einem Modell Analyten 4,7-10 berechnet abgeschätzt werden. Der Anpassungsalgorithmus 8 wird nun in proprietäre Software integriert. Im Zusammenhang mit ESI-MS, Dissoziation eines DNA - Duplexes, Reinigung und Entsalzung werden zur direkten Messung erforderlich 2,10-14 den Ausfall Ionisation aufgrund Ionensuppression und Adduktbildung zu vermeiden. Diese Verfahren sind troublesome jedoch vollautomatische Analysesysteme wurden 15-20 kommerziell denen Polymerase - Kettenreaktion (PCR), Probenvorbereitung und ESI-MS zum Nachweis von Pathogenen entwickelt. Ein weiterer Ansatz ist die Einführung der Flüssigchromatographie (LC) für die Trennung. LC stellt eine On-line - Trennung der Analyte von koexistierenden Substanzen und erfordert keine mühsame Probenvorbereitung vor der Ionisation 21,22. Die Abtrennung von Nucleinsäuren eine MS-kompatible mobile Phase ist schwieriger als für die meisten anderen Verbindungen, wie Arzneimittel, Peptide und Proteine ​​an die polyanionische Natur der Nukleotide zurückzuführen ist. Die erfolgreichsten Beispiele für LC / ESI-MS beinhalten die Verwendung von Ionenpaar-Umkehrphasen-LC. Eine mobile Phase von 1,1,1,3,3,3-Hexafluor-2-propanol (HFIP) -Triethylamin (TEA) -methanol wurde ursprünglich von Apffel et al. Zur Trennung und kurze Oligonucleotide 23 zu detektieren. Die Anwendung der LC / ESI-MS-Genotypisierung für differentiation der Erregerspezies, single-nucleotide polymorphisms und short tandem repeats wurde mit einem Kapillar - Polymer-Monolith - Säule berichtet , die länger Oligonukleotide 1,21,24-33 trennen kann. In Japan und den Vereinigten Staaten, schwere Lebensmittelvergiftung hat sich aufgrund einer falschen Identifizierung und unangemessenen Zubereitung von Kugelfisch aufgetreten ist , und dies trotz der Tatsache , dass die Verteilung und Herstellung von Kugelfisch streng durch die Lebensmittelsicherheit Gesetzgebung 34,35 gesteuert wird. Darüber hinaus ist eine vorsätzliche Tötung Extrakt unter Verwendung von Kugelfisch hat in Japan 36 auftreten. Daher Differenzierung von Arten Kugelfisch ist aus dem öffentlichen Gesundheit und forensischer Ermittlungs Standpunkte erforderlich. Darüber hinaus, da Takifugu rubripes weit teurer als andere Arten von Kugelfisch ist, wird eine Differenzierungsfähigkeit auch im Zusammenhang mit der Lebensmittelbetrug Untersuchungen notwendig. Hier wird eine detaillierte Verfahren zur Bestimmung der monoisotopic Masse eines PCR-Produkts durch LC / ESI-MS unter Verwendung einer Umkehrphasen-Silica-Monolith-Säule und eines hochauflösenden Massenspektrometer beschrieben. Spezifisch hat der Ansatz wurde Differenzierung von toxischen Kugelfisch - Spezies auf der Verwendung der PCR - Restriktionsfragmentlängen - Polymorphismus (RFLP) -Verfahren 37, basierend zuzulassen entwickelt , die das erste Beispiel ist MS für Arten Differenzierung von Tieren.

<table><tbody><tr><td>DNeasy Blood &amp;amp; Tissue Kit (50)</td><td>Qiagen</td><td>69504</td><td>DNA extraction kit</td></tr><tr><td>Proteinase K</td><td>Qiagen</td><td>19131</td><td></td></tr><tr><td>Ethanol (99.5+ vol%)</td><td>Wako</td><td>054-07225</td><td>For dilution of wash buffers</td></tr><tr><td>TE buffer (pH 8.0)</td><td>Wako</td><td>310-90023</td><td>For dilution of DNA sample</td></tr><tr><td>PCR primer</td><td>Fasmac</td><td>NA</td><td>Purified with reverse-phase cartridge column by the supplier</td></tr><tr><td>Template DNA</td><td>Eurofins Genomics</td><td>NA</td><td>Purified by HPLC by the supplier</td></tr><tr><td>Ultrapurified water</td><td>NA</td><td>NA</td><td>Generated with a Milli-Q Direct water purification system (Merck Millipore), used for sample preparation</td></tr><tr><td>Detergent Free 5x Phusion HF Buffer</td><td>Thermo Fisher</td><td>F-520L</td><td>Use instead of the provided buffer of DNA polymerase</td></tr><tr><td>Pfu-X DNA polymerase</td><td>Jena Bioscience</td><td>PCR-207S</td><td></td></tr><tr><td>dNTP mix (20 mM each)</td><td>Jena Bioscience</td><td>NA</td><td>Supplied with the DNA polymerase</td></tr><tr><td>10&amp;times; Universal buffer M</td><td>Takara Bio</td><td>NA</td><td>Containing 100 mM Tris-HCl (pH 7.5), 100 mM MgCl&lt;sub&gt;2&lt;/sub&gt;, 10 mM dithiothreitol and 500 mM NaCl</td></tr><tr><td>Dra I</td><td>Thermo Fisher</td><td>FD0224</td><td>Restriction enzyme</td></tr><tr><td>Msp I</td><td>Thermo Fisher</td><td>FD0544</td><td>Restriction enzyme</td></tr><tr><td>1,1,1,3,3,3-hexafluoro-2-propanol (HFIP)</td><td>Fluka</td><td>42060-50ML</td><td>Eluent additive for LC-MS grade.</td></tr><tr><td>Triethylamine (TEA)</td><td>Fluka</td><td>65897-50ML</td><td>Eluent additive for LC-MS grade.</td></tr><tr><td>Trifluoroacetic acid</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>T6508</td><td>For preparation of calibrant.</td></tr><tr><td>Sodium hydroxide (1.0 M)</td><td>Fluka</td><td>72082</td><td>Dilute to 10 mM with ultrapurified water and use for titration of trifluoroacetic acid.</td></tr><tr><td>Acetonitrile</td><td>Fluka</td><td>34967</td><td>For preparation of calibrant, LC/MS grade.</td></tr><tr><td>Methanol</td><td>Kanto</td><td>25185-76</td><td>For mobile phase, LC/MS grade.</td></tr><tr><td>Water</td><td>Thermo Fisher</td><td>W6-1</td><td>For mobile phase, LC/MS grade.</td></tr><tr><td>Microcentrifuge tube (0.5 ml)</td><td>Eppendorf</td><td>0030123301</td><td>PCR clean grade</td></tr><tr><td>Microcentrifuge tube (1.5 ml)</td><td>Eppendorf</td><td>0030123328</td><td>PCR clean grade</td></tr><tr><td>UVette</td><td>Eppendorf</td><td>0030106300</td><td>Disposable UV cuvette.</td></tr><tr><td>Gel Green</td><td>Biotium</td><td>41004</td><td>Fluorescent DNA stain</td></tr><tr><td>Cosmospin filter G (0.2 &amp;mu;m)</td><td>Nakalai Tesque</td><td>06549-44</td><td>Made of hydrophilic polytetrafluoroethylene (PTFE) membrane. Any centrifugal filter unit (pore size, 0.2&amp;ndash;0.5 &amp;mu;m) made of hydrophilic PTFE or another low-binding membrane is applicable.</td></tr><tr><td>300 &amp;mu;l PP screw vial</td><td>American Chromatography Supplies</td><td>V0309P-1232</td><td></td></tr><tr><td>Preassembled screw cap and septa</td><td>Finneran</td><td>5395-09R</td><td></td></tr><tr><td>Monobis C18 analytical column (2.0&amp;times;50 mm, mesopore size = 30 nm)</td><td>Kyoto Monotech</td><td>2050H30ODS</td><td>Outside Japan, available for purchase from GL Sciences via its distributors. (http://www.glsciences.com/distributors/)</td></tr><tr><td>Monobis C18 guard column</td><td>Kyoto Monotech</td><td>GCSET-ODS3210</td><td>Holder included.</td></tr><tr><td>Cadenza CW-C18 (3.0&amp;times;250 mm)</td><td>Imtakt</td><td>CW036</td><td>C&lt;sub&gt;18&lt;/sub&gt;-bonded particulate silica column</td></tr><tr><td>ProSwift RP-4H (1.0&amp;times;250 mm)</td><td>Thermo Fisher</td><td>066640</td><td>Poly(styrene-divinylbenzene) monolith column</td></tr><tr><td>Themo Mixer C</td><td>Eppendorf</td><td>5382 000.023</td><td>For digestion of fish tissues.</td></tr><tr><td>Spectrophotometer</td><td>Shimadzu</td><td>UV-3150</td><td>Quantification of DNA concentration.</td></tr><tr><td>Thermal cycler</td><td>Bio-Rad</td><td>T100</td><td></td></tr><tr><td>Portable refrigerator</td><td>Twinbird</td><td>D-CUBE</td><td>For aqueous mobile phase to avoid evaporation of HFIP. This can be replaced by an ice box.</td></tr><tr><td>Ultimate 3000 liquid chromatograph</td><td>Thermo Fisher</td><td>NA</td><td></td></tr><tr><td>Q Exactive mass spectrometer</td><td>Thermo Fisher</td><td>NA</td><td>Fourier transform mass spectrometer equipped with the modified Kingdon trap analyzer.</td></tr><tr><td>Protein deconvolution 3.0</td><td>Thermo Fisher</td><td>NA</td><td>Use version 3.0 or higher having an isotopic patter model of nucleotide.</td></tr></tbody></table>

improved polymerase chain reaction-restriction fragment length polymorphism genotyping of toxic pufferfish by liquid chromatography/mass spectrometry

Eine verbesserte Version einer Polymerase-Kettenreaktion (PCR) -Beschränkung Fragmentlängen-Polymorphismus (RFLP) Verfahren zur Genotypisierung toxische Kugelfisch-Spezies durch Flüssigchromatographie / Elektrospray-Ionisations-Massenspektrometrie (LC / ESI-MS) beschrieben. DNA-Extraktion wird eine Silica-Membran-basierte DNA-Extraktions-Kits durchgeführt. Nach der PCR-Amplifikation ein Detergens-freien PCR-Puffer verwendet wird, werden Restriktionsenzyme zu der Lösung gegeben, die Reaktionslösung ohne Reinigung. Eine Umkehrphasen-Silica-Monolith-Säule und einer Fourier-Transformation für Trennung und Detektion eines modifizierten Kingdon trap Analysator mit Massenspektrometer hoher Auflösung verwendet, respectively. Die mobile Phase, bestehend aus 400 mM 1,1,1,3,3,3-Hexafluor-2-propanol, 15 mM Triethylamin (pH 7,9) und Methanol wird mit einer Strömungsgeschwindigkeit von 0,4 ml / min geliefert. Die Zykluszeit für LC / ESI-MS-Analyse ist 8 min einschließlich Äquilibrierung der Säule. Deconvolution Software ein Isotop Verteilungsmodell o mitf das Oligonukleotid wird verwendet, um die entsprechenden monoisotopische Masse aus dem Massenspektrum zu berechnen. Für die Analyse von Oligonukleotiden (Bereich 26 bis 79 Nukleotide) wurde die Massengenauigkeit von 0,62 ± 0,74 ppm (n = 280) und eine ausgezeichnete Genauigkeit und Präzision wurden für 180 h ohne die Verwendung eines Verriegelungsmassenstandard aufrechterhalten.

Drei im Handel erhältlichen Säulen wurden für die Trennung von langen Oligonukleotiden mit Strömungsgeschwindigkeiten von 100-400 &amp; mgr; l / min bewertet. Ein weitporigem Octadecyl Kohlenstoffkette (C 18) -gebundene partikulären Silica - Säule (a), ein im Handel erhältliches Poly (Styrol-Divinylbenzol) (PS-DVB) Monolith - Säule (b) und ein 18 C -gebundene Silica - Monolith - Säule ( c) verglichen wurden (Abbildung 1). Drei Paare von DNA - Duplexen (26, 37 und 53 bp) wurden alle Säulen getrennt verwendet, und die C 18 -gebundene Silica - Monolith - Säule wurde in nachfolgenden Studien verwendet. Repräsentative Ergebnisse für die Analyse einer DNA - Probe aus dem Muskel von T. extrahierte rubripes ist in Fig . 2 Isotopisch aufgelöste Peaks gezeigt wird , wie in 2a gezeigt ist , um die monoisotopische Masse erfolgreich Berechnung erforderlich sind. Die theoretische und Messfiguriert monoisotopisch Masse von T. rubripes sind in 2b gezeigt. Weil der Verdau mit den Endonukleasen unmittelbar nach der PCR-Amplifikation ohne Reinigung durchgeführt wird, das 3&#39;-klebriges Ende durch die Endonuklease Msp I erzeugt wird, mit der verbleibenden DNA-Polymerase aufgefüllt. Nach der Analyse von Amplicons von den synthetischen DNA - Matrizen abgeleitet sind , Distanzmassengenauigkeit von -2,48 bis 2,40 ppm (0,62 ± 0,74 ppm im Durchschnitt, n = 280). So wurde zum Differenzieren Spezies (Tabelle 4) eine Massentoleranz von 3 ppm verwendet. Mit Hilfe der Tabelle alle der Kugelfisch Proben erhalten von den Märkten und Geschäften wurden als spezifische Arten richtig unterschieden 37. Gemäß der periodischen Analyse der aus dem synthetischen DNA - Matrize von T. erhaltenen Probe chrysops alle monoisotopisch Massen der Analyten wurden erfolgreich bei le innerhalb von ± 3 ppm bestimmtast 180 Stunden ohne Massenkalibrierung (Abbildung 3). Dies bedeutet, dass Massenkalibrierung würde auf einer wöchentlichen Basis erforderlich. <img alt="Abbildung 1" src="/files/ftp_upload/54402/54402fig1.jpg" /> Figur 1: Gesamtionenstrom - Chromatogramm des PCR-RFLP Produkt aus dem synthetisierten DNA - Template , abgeleitet von T. pardalis unter Verwendung eines C 18 -gebundene partikuläre Silicasäule (a, 3 x 250 mm, Partikelgröße 3 &amp; mgr; m), ein Poly (styrol-divinylbenzol) (PS-DVB) Monolithsäule (b, 1,0 × 250 mm) und eine C 18 -gebundene Monolith Silica - Säule (c, vorliegende Verfahren) Bedingungen für die (a):. Fließgeschwindigkeit 0,2 ml / min; Verhältnis von Methanol, 0-2 min 5%, 2-5 min 5% -25%, 5-20 min 25% -40%, 20-35 min 40% -98%, 35-50 min 98%, 50- 51 min 98% -5%, 51-65 min 5%. Bedingungen für die (b):Fließgeschwindigkeit 0,1 ml / min; Verhältnis von Methanol, 0-2 min 5%, 2-5 min 5% -25%, 5-35 min 25% -40%, 35-40 min 40% -98%, 40-55 min 98%, 55- 56 min 98% -5%, 56-70 min 5%. Die Temperatur für beide Säulen betrug 20 ° C. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/54402/54402fig1large.jpg" target="_blank">Bitte hier klicken</a> , um <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/54402/54402fig1large.jpg" target="_blank">eine größere Version dieser Figur zu sehen.</a> <img alt="Figur 2" src="/files/ftp_upload/54402/54402fig2.jpg" /> Abbildung 2: Repräsentative Ergebnisse für rohe Muskel von T. Analyse rubripes. (a) Typische Gesamtionenstrom Chromatogramme und Massenspektrum. (B) Theoretische und gemessen monoisotopisch Massen der PCR-RFLP Produkte aus der synthetisierten DNA - Vorlage von T. abgeleitet rubripes. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/54402/54402fig2large.jpg" target="_blank">Bitte klicken Sie hier um ein großes zu sehen</a>r Version dieser Figur. <img alt="Figur 3" src="/files/ftp_upload/54402/54402fig3.jpg" /> Fig . 3: Stabilitätstest Verdaute Amplikons von der synthetischen DNA von T. abgeleiteten chrysops wurden alle 10 Stunden analysiert. Massenkalibrierung während des Tests nicht durchgeführt wurde. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/54402/54402fig3large.jpg" target="_blank">Bitte hier klicken</a> , um <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/54402/54402fig3large.jpg" target="_blank">eine größere Version dieser Figur zu sehen.</a> <table border="1" fo:keep-together.within-page="1" fo:keep-with-next.within-page="always"><tbody><tr><td> Name </td><td> Sequenz </td></tr><tr><td> lago86F </td><td> 5&#39;-3&#39;-CCATGTGGAATGAAAACACC </td></tr><tr><td> taki114F </td><td> 5&#39;-3&#39;-AAAAACAAGAGCCACAGCTCTAA </td></tr><tr><td> fugu86-114R </td><td> 5&#39;-3&#39;-CCCTAGGGTAACTCGGTTCG </td></tr></tbody></table>Tabelle 1: PCR - Primer. <table border="1" fo:keep-together.within-page="1" fo:keep-with-next.within-page="always"><tbody><tr><td> PCR-Reagens </td><td> Volume verwendet </td><td> Die Endkonzentration </td></tr><tr><td> Wasser ultragereinigte </td><td> 15.75 ul </td><td></td></tr><tr><td> Waschmittel frei 5x Puffer </td><td> 5,0 ul </td><td> 1x </td></tr><tr><td> dNTP-Mix (10 mM jeweils) </td><td> 0,5 ul </td><td> 0,2 mM </td></tr><tr><td> Primer-Mix (10 &amp; mgr; M jeweils von lago86F, taki114F und fugu86-114R in TE-Puffer pH 8.0) </td><td> 1,0 ul </td><td> 0,4 uM jeweils </td></tr><tr><td> DNA-Polymerase (2,5 Einheiten / ul) </td><td> 0,25 ul </td><td> 0,1 Einheiten / ul </td></tr><tr><td> Template-DNA in TE-Puffer pH 8.0 (5,0-10 ng / pl für extrahierten Probe, 0,2 uM für synthetische DNA als positive Kontrolle) </td><td> 2,5 ul </td><td> 0,5-1,0 ng / für extrahierten DNA und 20 nM für synthetische DNA &amp; mgr; l </td></tr><tr><td></td><td> Insgesamt wurden 25 &amp; mgr; l </td><td></td></tr></tbody></table> Tabelle 2: Komponenten einer 25 &amp; mgr; l Maßstab PCR. <table border="1" fo:keep-together.within-page="1" fo:keep-with-next.within-page="always"><tbody><tr><td> Zyklus </td><td> Bedingung </td><td> Funktion </td></tr><tr><td> 1 </td><td> 2 min bei 95 ° C </td><td> anfängliche Denaturierung </td></tr><tr><td> 2 </td><td> 30 s bei 95 ° C </td><td> Denaturierung </td></tr><tr><td> 3 </td><td> 30 s bei 56 ° C </td><td> Glühen </td></tr><tr><td> 4 </td><td> 30 s bei 72 ° C </td><td> Verlängerung </td></tr><tr><td> 5 </td><td> Wiederholen Sie 2-4 (total 30 Zyklen) </td><td></td></tr><tr><td> 6 </td><td> 7 min bei 72 ° C </td><td> Finale Elongation </td></tr><tr><td> 7 </td><td> Halten bei 12 ° C bis zur Entfernung der Probe </td><td></td></tr></tbody></table> Tabelle 3: PCR - Programm. <table border="1" fo:keep-together.within-page="1" fo:keep-with-next.within-page="always"><tbody><tr><td rowspan="2"> Peak-Zahl bei einer Retentionszeit von 4,0 bis 5,5 min </td><td colspan="2"> Monoisotopische Masse des dritten Peaks in den Bereich (Da) </td><td colspan="2"> Monoisotopisch Masse des zweiten Peak im Bereich (Da) </td><td rowspan="2"> Kugelfisch-Spezies </td></tr><tr><td> Kleinere Strang </td><td> Größere Strang </td><td> Kleinere Strang </td><td> Größere Strang </td></tr><tr><td rowspan="5"> 2 </td><td rowspan="5"> → </td><td rowspan="5"> → </td><td> 15.890,707 bis 15.890,803 </td><td> 16.177,531 bis 16.177,629 </td><td> L. inermis </td></tr><tr><td> 15.921,702 bis 15.921,797 </td><td> 16.146,537 bis 16.146,634 </td><td> L. gloveri </td></tr><tr><td> 15.930,713 bis 15.930,809 </td><td> 16.137,525 bis 16.137,622 </td><td> L. lunaris </td></tr><tr><td> 15.937,697 bis 15.937,792 </td><td> 16.131,537 bis 16.131,634 </td><td> L. wheeleri </td></tr><tr><td> 24.173,034 bis 24.173,179 </td><td> 24.566,905 bis 24.567,053 </td><td> T. chrysops </td></tr><tr><td rowspan="6"> 3 </td><td rowspan="2"> 16.295,706 bis 16.295,804 </td><td rowspan="2"> 16.467,610 bis 16.467,709 </td><td> 11.341,851 bis 11.341,919 </td><td> 11.466,875 bis 11.466,944 </td><td> T. pardalis T. snyderi T. ocellatus T. xanthopterus T. stictonotus </td></tr><tr><td> 11.654,908 bis 11.654,978 </td><td> 11.770,920 bis 11.770,991 </td><td> T. niphobles </td></tr><tr><td> 16.296,701 bis 16.296,799 </td><td> 16.468,605 bis 16.468,704 </td><td> → </td><td> → </td><td> T. rubripes </td></tr><tr><td> 16.311,701 bis 16.311,799 </td><td> 16.452,610 bis 16.452,709 </td><td> → </td><td> → </td><td> T. poecilonotus T. exascurus </td></tr><tr><td> 16.320,713 bis 16.320,811 </td><td> 16.443,599 bis 16.443,697 </td><td> → </td><td> → </td><td> T. porphyreus T. obscurus </td></tr><tr><td> 16.599,751 bis 16.599,851 </td><td> 16.780,667 bis 16.780,767 </td><td> → </td><td> → </td><td> T. vermicularis </td></tr></tbody></table> Tabelle 4: Differenzierung von Kugelfisch aus monoisotopisch Massen abgeleitet von LC / ESI-MS. <img alt="Tabelle 5" src="/files/ftp_upload/54402/54402tbl5.jpg" /> Tabelle 5: amplifizierte DNA - Sequenz (a) Die Sequenz ist identisch.die der anderen Spezies Kugelfisch , wie in Tabelle 4 beschrieben. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/54402/54402tbl5large.jpg" target="_blank">Bitte hier klicken</a> , um <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/54402/54402tbl5large.jpg" target="_blank">eine größere Version dieser Tabelle anzuzeigen.</a>

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Improved Polymerase Chain Reaction-restriction Fragment Length Polymorphism Genotyping of Toxic Pufferfish by Liquid Chromatography/Mass Spectrometry

Eine verbesserte Polymerase-Kettenreaktion-RFLP-Verfahren zur Genotypisierung Kugelfisch-Spezies durch Flüssigchromatographie / Massenspektrometrie beschrieben. Eine Umkehrphasen-Silica-Monolith Säule wird zur Trennung verdaut Amplikons eingesetzt. Dieses Verfahren kann die monoisotopisch Massen von Oligonukleotiden aufzuklären, die zur Identifizierung Basenzusammensetzung nützlich ist.

Verbesserte Polymerase-Kettenreaktion-RFLP Genotypisierung von Toxic Kugelfisch durch Flüssigchromatographie / Massenspektrometrie

An improved version of a polymerase chain reaction (PCR)-restriction fragment length polymorphism (RFLP) method for genotyping toxic pufferfish species by ...

improved-polymerase-chain-reaction-restriction-fragment-length

Research

JoVE Journal

Genetics

11.1K Aufrufe.  National Research Institute of Police Science.  Eine verbesserte Polymerase-Kettenreaktion-RFLP-Verfahren zur Genotypisierung Kugelfisch-Spezies durch Flüssigchromatographie / Massenspektrometrie beschrieben. Eine Umkehrphasen-Silica-Monolith Säule wird zur Trennung verdaut Amplikons eingesetzt. Dieses Verfahren kann die monoisotopisch Massen von Oligonukleotiden aufzuklären, die zur Identifizierung Basenzusammensetzung nützlich ist. 

Serie: Improved Polymerase Chain Reaction-restriction Fragment Length Polymorphism Genotyping of Toxic Pufferfish by Liquid Chromatography/Mass Spectrometry

Laboratory Estimation of Net Trophic Transfer Efficiencies of PCB Congeners to Lake Trout (Salvelinus namaycush) from Its Prey

A technique for laboratory estimation of net trophic transfer efficiency (&#947;) of polychlorinated biphenyl (PCB) congeners to piscivorous fish from their prey is described herein. During a 135-day laboratory experiment, we fed bloater (Coregonus hoyi) that had been caught in Lake Michigan to lake trout (Salvelinus namaycush) kept in eight laboratory tanks. Bloater is a natural prey for lake trout. In four of the tanks, a relatively high flow rate was used to ensure relatively high activity by the lake trout, whereas a low flow rate was used in the other four tanks, allowing for low lake trout activity. On a tank-by-tank basis, the amount of food eaten by the lake trout on each day of the experiment was recorded. Each lake trout was weighed at the start and end of the experiment. Four to nine lake trout from each of the eight tanks were sacrificed at the start of the experiment, and all 10 lake trout remaining in each of the tanks were euthanized at the end of the experiment. We determined concentrations of 75 PCB congeners in the lake trout at the start of the experiment, in the lake trout at the end of the experiment, and in bloaters fed to the lake trout during the experiment. Based on these measurements, &#947; was calculated for each of 75 PCB congeners in each of the eight tanks. Mean &#947; was calculated for each of the 75 PCB congeners for both active and inactive lake trout. Because the experiment was replicated in eight tanks, the standard error about mean &#947; could be estimated. Results from this type of experiment are useful in risk assessment models to predict future risk to humans and wildlife eating contaminated fish under various scenarios of environmental contamination.

Laboratory Estimation of Net Trophic Transfer Efficiencies of PCB Congeners to Lake Trout Salvelinus namaycush from Its Prey

A technique for laboratory estimation of net trophic transfer efficiency of polychlorinated biphenyl (PCB) congeners to piscivorous fish from their prey is presented. To maximize applicability of the laboratory results to the field, the piscivorous fish should be fed prey fish that are typically eaten in the field.

Labor Schätzung der Netto Trophic Transfereffizienz von PCB auf Seeforelle (<em&gt; Salvelinus namaycush</em&gt;) Von seiner Beute

A technique for laboratory estimation of net trophic transfer efficiency (&#947;) of polychlorinated biphenyl (PCB) congeners to piscivorous fish from ...

Forschung

Umwelt

Deep Proteome Profiling by Isobaric Labeling, Extensive Liquid Chromatography, Mass Spectrometry, and Software-assisted Quantification

Many exceptional advances have been made in mass spectrometry (MS)-based proteomics, with particular technical progress in liquid chromatography (LC) coupled to tandem mass spectrometry (LC-MS/MS) and isobaric labeling multiplexing capacity. Here, we introduce a deep-proteomics profiling protocol that combines 10-plex tandem mass tag (TMT) labeling with an extensive LC/LC-MS/MS platform, and post-MS computational interference correction to accurately quantitate whole proteomes. This protocol includes the following main steps: protein extraction and digestion, TMT labeling, 2-dimensional (2D) LC, high-resolution mass spectrometry, and computational data processing. Quality control steps are included for troubleshooting and evaluating experimental variation. More than 10,000 proteins in mammalian samples can be confidently quantitated with this protocol. This protocol can also be applied to the quantitation of post translational modifications with minor changes. This multiplexed, robust method provides a powerful tool for proteomic analysis in a variety of complex samples, including cell culture, animal tissues, and human clinical specimens.

We present a protocol to accurately quantitate proteins with isobaric labelling, extensive fractionation, bioinformatics tools, and quality control steps in combination with liquid chromatography interfaced to a high-resolution mass spectrometer.

Tiefen Proteom Profilierung durch isobare Kennzeichnung, umfangreiche Flüssigchromatographie-Massenspektrometrie und softwaregestützte Quantifizierung

Many exceptional advances have been made in mass spectrometry (MS)-based proteomics, with particular technical progress in liquid chromatography (LC) ...

Biochemie

High-throughput DNA Extraction and Genotyping of 3dpf Zebrafish Larvae by Fin Clipping

Zebrafish (Danio rerio) possess orthologues for 84% of the genes known to be associated with human diseases. In addition, these animals have a short generation time, are easy to handle, display a high reproductive rate, low cost, and are easily amenable to genetic manipulations by microinjection of DNA in embryos. Recent advances in gene editing tools are enabling precise introduction of mutations and transgenes in zebrafish. Disease modeling in zebrafish often leads to larval phenotypes and early death which can be challenging to interpret if genotypes are unknown. This early identification of genotypes is also needed in experiments requiring sample pooling, such as in gene expression or mass spectrometry studies. However, extensive genotypic screening is limited by traditional methods, which in most labs are performed only on adult zebrafish or in postmortem larvae. We addressed this problem by adapting a method for the isolation of PCR-ready genomic DNA from live zebrafish larvae that can be achieved as early as 72 h post-fertilization (hpf). This time and cost-effective technique, improved from a previously published genotyping protocol, allows the identification of genotypes from microscopic fin biopsies. The fins quickly regenerate as the larvae develop. Researchers are then able to select and raise the desired genotypes to adulthood by utilizing this high-throughput PCR-based genotyping procedure.

Zebrafish have been used as reliable genetic model organisms in biomedical research, especially with the advent of gene-editing technologies. When larval phenotypes are expected, DNA extraction and genotype identification can be challenging. Here, we describe an efficient genotyping procedure for zebrafish larvae, by tail clipping, as early as 72-h post-fertilization.

Hochdurchsatz-DNA-Extraktion und Genotypisierung von 3dpf Zebrafischlarven durch Fin Clipping

Zebrafish (Danio rerio) possess orthologues for 84% of the genes known to be associated with human diseases. In addition, these animals have a short ...

Genetik

Multi-locus Variable-number Tandem-repeat Analysis of the Fish-pathogenic Bacterium Yersinia ruckeri by Multiplex PCR and Capillary Electrophoresis

Yersinia ruckeri is an important pathogen of farmed salmonids worldwide, but simple tools suitable for epizootiological investigations (infection tracing, etc.) of this bacterium have been lacking. A Multi-Locus Variable-number tandem-repeat Analysis (MLVA) assay was therefore developed as an easily accessible and unambiguous tool for high-resolution genotyping of recovered isolates. For the MLVA assay presented here, DNA is extracted from cultured Y. ruckeri samples by boiling bacterial cells in water, followed by use of supernatant as template for PCR. Primer-pairs targeting ten Variable-number tandem-repeat (VNTR) loci, interspersed throughout the Y. ruckeri genome, are distributed equally amongst two five-plex PCR reactions running under identical cycling conditions. Forward primers are labelled with either of three fluorescent dyes. Following amplicon confirmation by gel electrophoresis, PCR products are diluted and subjected to capillary electrophoresis. From the resulting electropherogram profiles, peaks representing each of the VNTR loci are size-called and employed for calculating VNTR repeat counts in silico. Resulting ten-digit MLVA profiles are then&#160;used to generate Minimum spanning trees enabling epizootiological evaluation by cluster analysis. The highly portable output data, in the form of numerical MLVA profiles, can rapidly be compared across labs and placed in a spatiotemporal context. The entire procedure from cultured colony to epizootiological evaluation may be completed for up to 48 Y. ruckeri isolates within a single working day.

Multi-locus Variable-number Tandem-repeat Analysis of the Fish-pathogenic Bacterium Yersinia ruckeri by Multiplex PCR and Capillary Electrophoresis

The Multi-Locus Variable-number tandem-repeat Analysis (MLVA) assay presented here enables inexpensive, robust and portable high-resolution genotyping of the fish-pathogenic bacterium Yersinia ruckeri. Starting from pure cultures, the assay employs multiplex PCR and capillary electrophoresis to produce ten-loci MLVA profiles for downstream applications.

Multi-locus Variable-number Tandem-repeat Analyse des Fischpathogenen Bakteriums Yersinia ruckeri durch Multiplex-PCR und Kapillarelektrophorese

Yersinia ruckeri is an important pathogen of farmed salmonids worldwide, but simple tools suitable for epizootiological investigations (infection tracing, ...

Identifying Per- and Polyfluorinated Chemical Species with a Combined Targeted and Non-Targeted-Screening High-Resolution Mass Spectrometry Workflow

Historical and emerging per- and polyfluoroalkyl substances (PFASs) have garnered significant interest from the public and government agencies from the local to federal levels. The continuing evolution of PFAS chemistries presents a challenge to the environmental monitoring, where ongoing development of targeted methods necessarily lags the discovery of new chemical compounds. There is a need, therefore, to have forward-looking methodologies that can detect emerging and unexpected compounds, monitor these species over time, and resolve details of their chemical structure to enable future work in human health. To this end, non-targeted analysis by high-resolution mass spectrometry offers a broad base detection approach that can be combined with almost any sample preparation scheme and provides significant capabilities for compound identification after detection. Herein, we describe a solid-phase extraction (SPE) based sample concentration method tuned for shorter chain and more hydrophilic PFAS chemistries, such as per fluorinated ether acids and sulfonates, and describe analysis of samples prepared in this fashion in both targeted and non-targeted modes. Targeted methods provide superior quantification when reference standards are available but are intrinsically limited to expected compounds when performing analysis. In contrast, a non-targeted approach can identify the presence of unexpected compounds and provide some information about their chemical structure. Information about chemical features can be used to correlate compounds across sample locations and track abundance and occurrence over time.

Here, we present a protocol for the sequential targeted quantification and non-targeted analysis of fluorinated compounds in water by mass spectrometry. This methodology provides quantitative levels of known fluorochemical compounds and identifies unknown chemicals in related samples with semi-quantitative estimates of their abundance.

Identifizierung von pro- und Polyfluorinated chemische Spezies mit einem kombinierten gezielte und nicht gezielte Screening hochauflösende Massenspektrometrie-Workflow

Historical and emerging per- and polyfluoroalkyl substances (PFASs) have garnered significant interest from the public and government agencies from the ...

Development and Testing of Species-specific Quantitative PCR Assays for Environmental DNA Applications

New, non-invasive methods for detecting and monitoring species presence are being developed to aid in fisheries and wildlife conservation management. The use of environmental DNA (eDNA) samples for detecting macrobiota is one such group of methods that is rapidly becoming popular and being implemented in national management programs. Here we focus on the development of species-specific targeted assays for probe-based quantitative PCR (qPCR) applications. Using probe-based qPCR offers greater specificity than is possible with primers alone. Furthermore, the ability to quantify the amount of DNA in a sample can be useful in our understanding of the ecology of eDNA and the interpretation of eDNA detection patterns in the field. Careful consideration is needed in the development and testing of these assays to ensure the sensitivity and specificity of detecting the target species from an environmental sample. In this protocol we will delineate the steps needed to design and test probe-based assays for the detection of a target species; including creation of sequence databases, assay design, assay selection and optimization, testing assay performance, and field validation. Following these steps will help achieve an efficient, sensitive, and specific assay that can be used with confidence. We demonstrate this process with our assay designed for populations of the mucket (Actinonaias ligamentina), a freshwater mussel species found in the Clinch River, USA.

Environmental DNA assays require rigorous design, testing, optimization and validation before the collection of field data can begin. Here, we present a protocol to take users through each step of designing a species-specific, probe-based qPCR assay for the detection and quantification of a target species DNA from environmental samples.

Entwicklung und Prüfung artspezifischer quantitativer PCR-Assays für Umwelt-DNA-Anwendungen

New, non-invasive methods for detecting and monitoring species presence are being developed to aid in fisheries and wildlife conservation management. The ...

DNA-based Fish Species Identification Protocol

We have developed a fast, simple, and accurate DNA-based screening method to identify the fish species present in fresh and processed seafood samples. This versatile method employs PCR amplification of genomic DNA extracted from fish samples, followed by restriction fragment length polymorphism (RFLP) analysis to generate fragment patterns that can be resolved on the Agilent 2100 Bioanalyzer and matched to the correct species using RFLP pattern matching software.
The fish identification method uses a simple, reliable, spin column- based protocol to isolate DNA from fish samples. The samples are treated with proteinase K to release the nucleic acids into solution. DNA is then isolated by suspending the sample in binding buffer and loading onto a micro- spin cup containing a silica- based fiber matrix. The nucleic acids in the sample bind to the fiber matrix. The immobilized nucleic acids are washed to remove contaminants, and total DNA is recovered in a final volume of 100 &mu;l. The isolated DNA is ready for PCR amplification with the provided primers that bind to sequences found in all fish genomes. The PCR products are then digested with three different restriction enzymes and resolved on the Agilent 2100 Bioanalyzer. The fragment lengths produced in the digestion reactions can be used to determine the species of fish from which the DNA sample was prepared, using the RFLP pattern matching software containing a database of experimentally- derived RFLP patterns from commercially relevant fish species.

This publication describes how to use the Agilent Fish Species Identification System to identify the species of a fish by extracting DNA and performing PCR and RFLP analysis.

DNA-basierte Fischarten Identification Protocol

We have developed a fast, simple, and accurate DNA-based screening method to identify the fish species present in fresh and processed seafood samples. ...

Biologie

<meta charset="utf8"></head><body>Harvesting der Orthogonalität von LC und TIMS-TOF MS/MS zum Screening von Fentanyl-Analoga

Fentanyl Analog Screening using LC-TIMS-TOF MS/MS

The use of fentanyl and the emergence of fentanyl analogs over recent decades has become an increasing concern to the community at large. Fentanyl and its analogs are the major contributors to fatal and nonfatal overdoses in the United States. Most recent cases of fentanyl-related overdose are linked to illicitly manufactured fentanyl and its associated extreme potency. In the present work, we describe a high-throughput analytical protocol for the screening of fentanyl analogs. The use of complementary liquid chromatography, trapped ion mobility spectrometry, and tandem mass spectrometry allow for the separation and assignment of hundreds of fentanyl analogs from a single sample in a single scan. The described approach takes advantage of the recent development of data-dependent acquisition and data-independent acquisition using parallel accumulation in the mobility trap followed by sequential fragmentation using collision-induced dissociation. The fentanyl analogs are confidently assigned based on their retention time, mobility, and MS fragmentation pattern.

<meta charset="utf8"></head><body>Autor im Rampenlicht: Eine effiziente Methodik zur sicheren Differenzierung und Charakterisierung von Fentanyl-Analoga

A method for the screening of fentanyl analogs based on their retention time, mobility, and mass spectrometry fragmentation pattern.

Fentanyl-Analog-Screening mit LC-TIMS-TOF MS/MS

The use of fentanyl and the emergence of fentanyl analogs over recent decades has become an increasing concern to the community at large. Fentanyl and its ...

Verbesserte Polymerase-Kettenreaktion-RFLP Genotypisierung von Toxic Kugelfisch durch Flüssigchromatographie / Massenspektrometrie

Zusammenfassung

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Kapitel in diesem Video

Labor Schätzung der Netto Trophic Transfereffizienz von PCB auf Seeforelle (

Tiefen Proteom Profilierung durch isobare Kennzeichnung, umfangreiche Flüssigchromatographie-Massenspektrometrie und softwaregestützte Quantifizierung

Hochdurchsatz-DNA-Extraktion und Genotypisierung von 3dpf Zebrafischlarven durch Fin Clipping

Multi-locus Variable-number Tandem-repeat Analyse des Fischpathogenen Bakteriums Yersinia ruckeri durch Multiplex-PCR und Kapillarelektrophorese

Identifizierung von pro- und Polyfluorinated chemische Spezies mit einem kombinierten gezielte und nicht gezielte Screening hochauflösende Massenspektrometrie-Workflow

Entwicklung und Prüfung artspezifischer quantitativer PCR-Assays für Umwelt-DNA-Anwendungen

DNA-basierte Fischarten Identification Protocol

Fentanyl-Analog-Screening mit LC-TIMS-TOF MS/MS

Fentanyl-Analog-Screening mit LC-TIMS-TOF MS/MS

Fentanyl-Analog-Screening mit LC-TIMS-TOF MS/MS