The investigations were financially supported by the Division for Earth and Life Sciences of the Netherlands Organization for Scientific Research (grant 833.13.004), the Sci-Tech Landing Projection of Higher Education of Jiangxi Province (KJLD14030) and The Cultivation Plan for Young Scientists of Jiangxi Province (Jinggang star 20153BCB23014). We thank Daomeng Fu, Zhigang Li and Xiaolong Huang for their help in producing the movie.

1. Änderung eines Laubbläser-vac für Absaug- Sampling <ol><li> Sammeln Sie alle Teile in der Materialliste aufgeführt. </li><li> Schließen Sie alle Polyvinylchlorid (PVC) mit weichmacherfreiem Polyvinylchlorid (PVC-U) Kleber (Rohre 1-2-3-4-5 und 6-7). </li><li> Bohren Sie drei Löcher, die um den Saugmund der Maschine gleichmäßig verteilt sind. </li><li> Schließen Sie das Gerät an das Ende 1 von PVC-Rohr 1-5 durch Einsetzen einer Schraube in jede der drei Löcher. Verwenden Sie den Kleber nicht Rohrende 1 an das Gerät anzuschließen, weil die Verbindung reversibel sein sollte, den Lüfter zu reinigen. Anmerkung: Bei der Durchmesser der Ansaugöffnung der Maschine aus dem Modell hier beschriebenen unterscheidet, sollte der Durchmesser des Rohrendes 1 eingestellt werden, um die Maschine nahtlos zu passen. </li><li> In 2 Lagen Gewindedichtband zum Rohr 5 und 6 endet. </li><li> Legen Sie das Stück Metall Gaze zwischen dem Schlauch und dem Mundstück (PVC-Rohre 6 und 7) zu verhindern, dass die Sampling-Netz aus in die ma gesaugt wirdchine. Verwenden Metallgaze mit einer Maschenweite zwischen 0,5 mm und 0,5 cm. </li><li> Schließen Sie den Schlauch an Rohrenden 5 und 6 mit Metallklammer Reifen. </li></ol> 2. Bereiten Sie die Sampling-Gehäuse <ol><li> Entfernen Sie den Boden aus einem Plastikeimer (50 L, 40 cm Bodendurchmesser). Diese Größe des Gehäuses erstreckt sich 2-4 Reis Hügel in einem transplantierten Reisfeld, je nach Erntestufe 24. </li><li> Bringen Sie eine Nylon-Mesh-Ärmel, mit einer Länge von 1 m, an die Spitze der Schaufel ein Gummiband. Für diese Hülse, verwenden Sie eine Maschenweite, die das Entweichen der kleinsten Zielarthropoden zu verhindern, die klein genug ist. Verwenden einen Durchmesser von weniger als 0,5 mm. </li></ol> 3. Feld Anwendung der modifizierten Laubsauger-vac für Absaug- Sampling <ol><li> Verwenden zwei Personen, die die Vorrichtung in dem Bereich zu betreiben. Eine Person bedient das Gebläse-vac und der andere übernimmt die Eimer Gehäuse und die Probenahme Netze. </li><li> Starten Sie die Maschine. </li><li> Legen Sie eine Sampling-net in den Mund Teil des Gebläses-vac und befestigen Sie sie mit einem Gummiband. Für das Netz, verwenden Sie eine Maschenweite, die klein genug ist, um die kleinste Zielarthropoden zu fangen, aber nicht offensichtlich, Luftwiderstand erzeugen. Verwenden Sie das Licht Nylonmaterial mit einem Maschendurchmesser zwischen 0,2 bis 0,5 mm. </li><li> Legen Sie das Gehäuse schnell über die Pflanzen an einer beliebigen Stelle auf dem Feld und drücken Sie den Boden des Eimers fest in den Boden. Stellen Sie sicher, dass die Hülse Arthropoden geschlossen ist, um zu verhindern der Oberseite des Gehäuses entweicht. </li><li> Entfernen Sie alle Arthropoden aus dem Inneren des Gehäuses in einer Top-down-Spirale Art und Weise, für eine einheitliche Probenahme Dauer. Für Reiskulturen in den vegetativen und reproduktiven Stadien, Probenahme Dauer von 1 und 2 min bzw. verwenden. </li><li> Nach der Bearbeitungen, das Gummiband aus dem Sampling-Netz zu entfernen, schnell das Netz zu schließen und es aus dem Mund Teil des Gebläses-vac nehmen und es mit einem Knoten zu schließen, während die Maschine am Laufen zu halten. </li><li> Wiederholen Sie sTEPs 3.2 bis 3.5 an beliebigen Stellen im Bereich für die nächsten Proben. Die Anzahl der Wiederholungen hängt von der Variation der räumlichen Verteilung von Arthropoden in dem Feld, die erforderliche Genauigkeit der Schätzung und dem Zweck der Studie. Typischerweise werden sechs Wiederholungen einen guten Eindruck von der Arthropoden Gemeinschaft geben und Arten Abundanz. </li></ol>

<ol>
	<li>Dale, D., Heinrichs, E. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=.">.</a> Biology and management of rice insects. , (1994).</li><li>Settle, W. H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Managing+tropical+rice+pests+through+conservation+of+generalist+natural+enemies+and+alternative+prey.">Managing tropical rice pests through conservation of generalist natural enemies and alternative prey.</a> Ecology. 77 (7), 1975-1988 (1996).</li><li>Heong, K. L., Schoenly, K. G., Haskell, P. T., McEwen, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=.">.</a> Ecotoxicology. , 381-403 (1998).</li><li>Schellhorn, N. A., Bianchi, F., Hsu, C. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Movement+of+entomophagous+arthropods+in+agricultural+landscapes:+links+to+pest+suppression.">Movement of entomophagous arthropods in agricultural landscapes: links to pest suppression.</a> Annu Rev Entomol. 59, 559-581 (2014).</li><li>Zou, Y., Feng, J., Xue, D., Sang, W., Axmacher, J. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+comparison+of+terrestrial+arthropod+sampling+methods.">A comparison of terrestrial arthropod sampling methods.</a> J Resour Ecol. 3 (2), 174-182 (2012).</li><li>Saska, P., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Temperature+effects+on+pitfall+catches+of+epigeal+arthropods:+a+model+and+method+for+bias+correction.">Temperature effects on pitfall catches of epigeal arthropods: a model and method for bias correction.</a> J Appl Ecol. 50 (1), 181-189 (2013).</li><li>Vander Werf, W., Evans, E. W., Powell, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Measuring+and+modelling+the+dispersal+of+Coccinella+septempunctata+(Coleoptera+:+Coccinellidae)+in+alfalfa+fields.">Measuring and modelling the dispersal of Coccinella septempunctata (Coleoptera : Coccinellidae) in alfalfa fields.</a> Eur J Entomol. 97 (4), 487-493 (2000).</li><li>Rashid, T., Johnson, D. T., Bernhardt, J. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Sampling+rice+stink+bug+(Hemiptera+:+Pentatomidae)+in+and+around+rice+fields.">Sampling rice stink bug (Hemiptera : Pentatomidae) in and around rice fields.</a> Environ Entomol. 35 (1), 102-111 (2006).</li><li>Sarwshri, G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Aboveground+arthropod+pest+and+predator+diversity+in+irrigated+rice+(Oryza+sativa+L.)+production+systems+of+the+Philippines.">Aboveground arthropod pest and predator diversity in irrigated rice (Oryza sativa L.) production systems of the Philippines.</a> J Trop Agr. 45 (1/2), 1-8 (2007).</li><li>Wade, M. R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Temporal+variation+in+arthropod+sampling+effectiveness:+the+case+for+using+the+beat+sheet+method+in+cotton.">Temporal variation in arthropod sampling effectiveness: the case for using the beat sheet method in cotton.</a> Entomol Exp Appl. 120 (2), 139-153 (2006).</li><li>Dietrick, E. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=An+Improved+Backpack+Motor+Fan+for+Suction+Sampling+of+Insect+Populations.">An Improved Backpack Motor Fan for Suction Sampling of Insect Populations.</a> J Econ Entomol. 54 (2), 394-395 (1961).</li><li>Munyaneza, J. E., Crosslin, J. M., Upton, J. E., Buchman, J. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Incidence+of+the+beet+leafhopper-transmitted+virescence+agent+phytoplasma+in+local+populations+of+the+beet+leaf+hopper,+Circulifer+tenellus,+in+Washington+State.">Incidence of the beet leafhopper-transmitted virescence agent phytoplasma in local populations of the beet leaf hopper, Circulifer tenellus, in Washington State.</a> J Insect Sci. 10 (1), 1-10 (2010).</li><li>Finke, D. L., Denno, R. F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Intra-guild+predation+relaxes+natural+enemy+impacts+on+herbivore+populations.">Intra-guild predation relaxes natural enemy impacts on herbivore populations.</a> Ecol Entomol. 28 (1), 67-73 (2003).</li><li>Koss, A. M., Snyder, W. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Alternative+prey+disrupt+biocontrol+by+a+guild+of+generalist+predators.">Alternative prey disrupt biocontrol by a guild of generalist predators.</a> Biol Control. 32 (2), 243-251 (2005).</li><li>Elliott, N. C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=D-vac+sampling+for+predatory+arthropods+in+winter+wheat.">D-vac sampling for predatory arthropods in winter wheat.</a> Biol Control. 38 (3), 325-330 (2006).</li><li>Arida, G., Heong, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Blower-Vac:+a+new+suction+apparatus+for+sampling+rice+arthropods.">Blower-Vac: a new suction apparatus for sampling rice arthropods.</a> Int. Rice Res. New. 17, 30-31 (1992).</li><li>Domingo, I., Schoenly, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=An+improved+suction+apparatus+for+sampling+invertebrate+communities+in+flooded+rice.">An improved suction apparatus for sampling invertebrate communities in flooded rice.</a> Int. Rice Res. New. 23 (2), 38-39 (2012).</li><li>Moorman, C. E., Plush, C. J., Orr, D. B., Reberg-Horton, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Beneficial+Insect+Borders+Provide+Northern+Bobwhite+Brood+Habitat.">Beneficial Insect Borders Provide Northern Bobwhite Brood Habitat.</a> PLoS ONE. 8 (12), e83815 (2013).</li><li>Bambaradeniya, C. N. B., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Biodiversity+associated+with+an+irrigated+rice+agro-ecosystem+in+Sri+Lanka.">Biodiversity associated with an irrigated rice agro-ecosystem in Sri Lanka.</a> Biodivers Conserv. 13 (9), 1715-1753 (2004).</li><li>Whitehouse, M. E. A., Wilson, L. J., Fitt, G. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+comparison+of+arthropod+communities+in+transgenic+Bt+and+conventional+cotton+in+Australia.">A comparison of arthropod communities in transgenic Bt and conventional cotton in Australia.</a> Environ Entomol. 34 (5), 1224-1241 (2005).</li><li>Schoenly, K. G., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Fallowing+did+not+disrupt+invertebrate+fauna+in+Philippine+low-pesticide+irrigated+rice+fields.">Fallowing did not disrupt invertebrate fauna in Philippine low-pesticide irrigated rice fields.</a> J Appl Ecol. 47 (3), 593-602 (2010).</li><li>de Kraker, J., van Huis, A., van Lenteren, J. C., Heong, K. L., Rabbinge, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Identity+and+relative+importance+of+egg+predators+of+rice+leaffolders+(Lepidoptera+:+Pyralidae).">Identity and relative importance of egg predators of rice leaffolders (Lepidoptera : Pyralidae).</a> Biol Control. 19 (3), 215-222 (2000).</li><li>Hu, Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+comparative+study+on+population+development+patterns+of+Sogatella+furcifera+between+tropical+and+subtropical+areas.">A comparative study on population development patterns of Sogatella furcifera between tropical and subtropical areas.</a> J Asia-Pacif Entomol. 17 (4), 845-851 (2014).</li><li>Schoenly, K. G., Domingo, I. T., Barrion, A. T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Determining+optimal+quadrat+sizes+for+invertebrate+communities+in+agrobiodiversity+studies:+A+case+study+from+tropical+irrigated+rice.">Determining optimal quadrat sizes for invertebrate communities in agrobiodiversity studies: A case study from tropical irrigated rice.</a> Env Entomol. 32 (5), 929-938 (2003).</li><li>Marcos, T., Mew, T. W., Borromeo, E., Hardy, B., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=.">.</a> Exploiting Biodiversity for Sustainable Pest Management. , 23-24 (2001).</li><li>Kraker, d. J., Huis, v. A., Heong, K. L., Lenteren, v. J. C., Rabbinge, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Population+dynamics+of+rice+leaffolders+(Lepidoptera:+Pyralidae)+and+their+natural+enemies+in+irrigated+rice+in+the+Philippines.">Population dynamics of rice leaffolders (Lepidoptera: Pyralidae) and their natural enemies in irrigated rice in the Philippines.</a> Bull Entomol Res. 89 (5), 411-421 (1999).</li></ol>

The authors have nothing to disclose.

Absaug- Probenahme ist eine von vielen möglichen Methoden Arthropodengemeinschaften in Kulturen zu probieren. Für die wissenschaftliche Forschung in Reis-Systemen ist Saug Probenahme eine geeignete Option, da die Methode absolute Schätzungen von Arthropoden Dichten liefert, es ist nicht destruktiv, und - im Gegensatz zu visuellen zählt - ermöglicht die Sammlung und Lagerung von Proben für die spätere Verarbeitung. Im Vergleich zu dem im Handel erhältlichen D-vac ist das Gebläse-vac kleiner, leichter und einfacher zu in (überflutet) Reisfeldern handhaben und einfacher auch mit einem Gehäuse zu verbinden. Zum Beispiel wiegt ein Gebläse-vac ca. 6 kg, während der Rucksack D-vac - Modell, als internationaler Standard für Insektenstichproben präsentiert, hat ein Gewicht 12 kg 11. Noch wichtiger ist , ist die Sammeleffizienz des Gebläses-vac höher als die D-vac 16,17, während die Kosten des Gebläses-vac weniger ist. Die Modifikation eines Laubbläser-vac in einen Saug-Sampler erfordert keine speziellen Fähigkeiten oder Ausrüstungund dauert weniger als eine Stunde, nachdem alle weiteren Teile gesammelt worden sind. Das Gebläse-vac hier beschrieben ist , ist leichter zu konstruieren und zu betreiben , als Versionen beschrieben zuvor in der Literatur 16,17 und die erforderlichen Teile (Tabelle 1) sind Standardkonstruktionsmaterialien , die allgemein verfügbar sind. Dies macht das Gebläse-vac auch für Forscher mit kleinen Budgets in den Entwicklungsländern. Die Kraft und Verdrängung des Motors bestimmt die Saugkraft des Gebläses-vac. Hier empfehlen wir eine Maschine mit einer Leistung zwischen 0,7 bis 1,2 kW und einer Verschiebung zwischen 25-35 ccm, die zum Abtasten der Anlage lebenden Arthropoden Gemeinschaft in Reis ausreichend ist. Die Länge des flexiblen Kunststoffschlauch und der Durchmesser des saugende Mundteil (Leitung 7) sind von entscheidender Bedeutung für ein gutes Sampling-Leistung. Ein Schlauch, der zu lang ist, wird die Saugkraft, während ein Schlauch reduzieren, die zu kurz ist, wird unbequem während der Probenahme zu verwenden. Ähnlich,ein Mundstück mit einem zu großen Durchmesser wird die Saugleistung, während ein Durchmesser zu reduzieren, die zu klein ist, wird die Sampling-Effizienz aufgrund der geringen Fläche zu reduzieren. Die Sampling-Effizienz hängt entscheidend von der Sampling-Dauer. Wenn Probenentnahme während der Vegetationsperiode durchgeführt wird, kann die Dauer der Probenahme muss der Anlagengröße, Struktur angepasst werden und Pflanzdichte ein ähnliches Maß an Effizienz zu erhalten. Sampling Effizienz sollte durch sorgfältige visuelle Inspektion des umschlossenen Bereich nach der Probenahme kontrolliert werden. Wenn es noch Arthropoden vorhanden sind, muss die Probenahme Dauer erhöht werden. Die empfohlenen Probenahme- Dauern für Reiskulturen im vegetativen Stadium ist 1 Minute und in der reproduktiven und Reifestadien ist es 2 Minuten. Absaug- Probenahme mit dem Gebläse-vac in überfluteten Gebieten durchgeführt werden, während alternative Methoden, wie pitfall und schlagen Blatt Probenahme nicht durchführbar sind im Wasser stehen. Das Gebläse-vac kann auch sein,zu probieren Sie die Arthropoden Gemeinschaft auf der Wasseroberfläche von überfluteten Reisfeldern (zB räuberische Wasserkäfer) verwendet, wie die Maschine des Saugens in etwas Wasser fähig ist. Allerdings ist es nicht für die Probenahme Wasser Arthropoden als Motor laufen kann empfohlen stoppen, wenn das Mündungsteil tief in das Wasser eingeführt wird, und der Luftstrom blockiert wird. Abgesehen von Reis kann das Gebläse-vac auch in anderen Kulturen und Nichtkulturlebensraum verwendet werden, solange die Höhe und Struktur der Vegetation ermöglicht die richtige Platzierung des Gehäuses 25. Unsere Gebläse-vac Saug-Probenahmeverfahren ist nicht destruktiv. Fast alle Arthropoden in der Probenahme Netz gesammelt überlebt, einschließlich der weichen Körper wie Stechmücken und damselflies. Die Anwendung dieser Verfahren hat jedoch einige Einschränkungen und Nachteile. Das Gebläse-vac muss von zwei Personen bedient werden. das Gebläse-vac im Bereich Trage wird in einigen Störungen führen, und daher kann dieses Verfahren unterschätzenstörungsempfindlichen Arten wie Heuschrecken. Schnelle und abrupte Platzierung des Gehäuses in einem relativ ungestörten Bereich in der Vorwärtsbewegungsrichtung kann dieses Potential Vorspannung begrenzen. Das laute Geräusch des Gebläses-vac Maschine kann auch Störungen verursachen, und in Wohngebieten in der Nacht Probenahme wird nicht empfohlen. Das Verfahren ist nicht geeignet für die Probenahme hochmobilen fliegenden Insekten, wie räuberische Odonata oder größere hymenopterous Parasitoide. Wie bei jeder Probenahmeverfahren kann die Kombination des Gebläses-vac mit anderen Verfahren, wie Sweep net Probenahme oder destruktive Ernte von Pflanzen, bieten eine vollständige und ausgewogene Beurteilung der Arthropoden - Gemeinschaft 26.

Wiederholte Beurteilung der Fülle und Vielfalt der phytophagous und entomophagous Arthropoden in Kulturen ist für ökologische Studien der Populationsdynamik und Interaktionen zwischen den Arten benötigt werden, einschließlich der Untersuchung der biologischen Kontrolle. Reis ist ein wichtiges Grundnahrungsmittel, die ein hohes Potenzial für die biologische Bekämpfung von entomophagous Arthropoden 1,2, aber die 3 durch Insektizide gestört werden kann. Die Vielfalt der Arthropoden in Reiskulturen kann hoch sein, und Arthropodenarten besetzen verschiedenen Kulturpflanzen Schichten (zB Boden, Stengel, Baldachin, Blumen), unterscheiden sich in der Art der Bewegung (zB Laufen, Springen, Fliegen) und Nahrungssuche Strategie (zB sessile Insekten, Jagd Raubtiere und Blumen besuchen Bestäuber) 4 zu saugen. Es gibt eine breite Palette von Arthropoden Stichprobenverfahren, die jeweils mit Stärken und Schwächen. Zum Beispiel Bodenfallen kann verwendet werden, am Boden lebende Arthropoden zu probieren, aber aktivitätsabhängigen rela bietentive Bevölkerung schätzt 5,6. Sweep - Netze können in dem Vordach 7-9, zur Probe schnell fliegenden Insekten verwendet werden , aber relativ Schätzungen von Arthropoden Fülle geben. Der Beat Blatt Methode kann verwendet werden , um die Pflanze lebende Gliederfüßer Gemeinschaft zu probieren und bietet absolute Schätzungen von Arthropoden Hülle und Fülle, aber es kann nicht effektiv in den überfluteten Getreidefeldern wie Reisfelder 10 verwendet werden. Saug-Probenahme, wenn in Kombination mit einem Gehäuse durchgeführt, eine standardisierte Fläche des Feldes bedeckt, bietet absolute Schätzungen der Dichten von Pflanzen lebenden Arthropoden. Dieses Verfahren kann auch in gefluteten Reis verwendet werden. Proben können für die spätere Verarbeitung und Identifikation gespeichert werden. Die Dietrick Vakuum (D-vac) 11 ist das erste kommerziell entwickelte Sog Sampler. Obwohl D-vacs noch weit 12-14 verwendet werden, sind sie relativ teuer, haben eine begrenzte Saugkraft 15 und sind relativ schwer, was sie schwer macht,in überfluteten Reisfeldern 16 handhaben . 16 Arida und Heong entwickelt einen Sog Sampler einen benzinbetriebenen Laubbläser-vac verwenden, und dieser Prototyp wurde weiter verfeinert durch Domingo und Schoenly 17. Vorteile der Gebläse-vac Saug sampler im Vergleich zum D-vac sind, dass es viel billiger und leichter zu handhaben. Obwohl die Saug - Sampling - Gebläse-vac Methode 18-23 in vielen ökologischen Studien verwendet wurde, wurden die Anweisungen für die Änderung und Anwendung nicht klar beschrieben. Hier präsentieren wir eine videobasierte, detaillierte Beschreibung der Modifizierung und Anwendung eines benzinbetriebenen Laubbläser-vac für die Absaugung Probenahme von Arthropoden Populationen in überfluteten Reisfeldern. Die Änderung wird inspiriert von Arida und Heong 16 und Domingo und Schoenly 17, aber das Design wurde weiter vereinfacht im Vergleich zu diesen Originalpublikationen, erleichtert Aufbau und die Verwendung.

<table border="1" fo:keep-together.within-page="1" fo:keep-with-next.within-page="always">
	<tbody>
		<tr>
			<td>Machine</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Leaf blower-vac</td>
			<td>We used Oleo-Mac BV300, Made in Italy</td>
			<td>Power: 1.0 kW, Displacement: 30.5 cc, Max air volume: 720 m&#179;/h, Max air speed: 70 m/sec, Weight: 4.5 kg, Diameter of suction mouth: 113 mm&#160;</td>
			<td>There are many different brands and models available. For comparable performance, the specifications concerning power and air speed should be similar to those presented here.&#160;</td>
		</tr>
		<tr>
			<td colspan="2">Additional parts for modification</td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>PVC pipe 1</td>
			<td></td>
			<td>Outer &#248; of end connected to the machine: 112 mm, Inner &#248; of end connected to PVC pipe 2: 110 mm</td>
			<td>This is the cover of a &#248; 110 mm PVC pipe</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>PVC pipe 2</td>
			<td></td>
			<td>Outer &#248;: 110 mm, Length: 10 cm</td>
			<td>Normal outer &#248; 110 mm PVC pipe; to connect PVC pipe 1 and 3</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>PVC pipe 3</td>
			<td></td>
			<td>Inner &#248; of big end: 110 mm, Inner &#248; of small end: 50 mm</td>
			<td>PVC &#248; 110 mm to &#248; 50 mm downpipe reducer</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>PVC pipe 4</td>
			<td></td>
			<td>Outer &#248;: 50 mm, Length: 5 cm</td>
			<td>Normal &#248; 50 mm PVC pipe; to connect PVC pipe 3 and 5</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>PVC pipe 5</td>
			<td></td>
			<td>Inner &#248;: 50 mm and 32 mm, Outer &#248; of small part: 38 mm</td>
			<td>PVC &#248; 50 mm to &#248; 32 mm downpipe reducer</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Hose</td>
			<td></td>
			<td>Outer &#248;: 40 mm</td>
			<td>Wire-fortified, flexible plastic hose&#160;</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Metal gauze</td>
			<td></td>
			<td>Mesh &#248;: 1 mm, &#248;: 60 mm</td>
			<td>Prevent the sampling net from being sucked into the machine</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>PVC pipe 6</td>
			<td></td>
			<td>Outer &#248; of small end: 38 mm, Inner &#248; of big end: 63 mm</td>
			<td>PVC &#248; 32 mm to &#248; 63 mm reducer</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>PVC pipe 7</td>
			<td></td>
			<td>Outer &#248;: 63 mm, Length: 25 cm</td>
			<td>Normal outer &#248; 63mm PVC pipe</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>U-PVC glue</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td>U-PVC glue; to connect PVC parts</td>
		</tr>
		<tr>
			<td colspan="2">Metal clamp hoops (2)</td>
			<td>Flexible between &#248; 35 mm - 51 mm</td>
			<td>To connect the hose with the PVC pipes</td>
		</tr>
		<tr>
			<td colspan="2">Thread seal tape</td>
			<td>Width: 18mm</td>
			<td>Seal the hose-PVC connections</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Screws (3)</td>
			<td></td>
			<td>Length: 25mm</td>
			<td>To connect PVC pipe 1 with the suction mouth of the machine</td>
		</tr>
		<tr>
			<td colspan="2">Sampling net and enclosure</td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td colspan="2">Sampling net</td>
			<td>Mesh size &#248;: 0.3 mm, Width of the mouth: 10 cm, Height: 30 cm</td>
			<td>The sampling net has a conical shape.</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Bucket</td>
			<td></td>
			<td>Bottom &#248;: 40 cm, Volume: 50 L</td>
			<td>Cut the bottom</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Nylon sleeve</td>
			<td></td>
			<td>Mesh size &#248;: 0.3 mm, Length: 1 m</td>
			<td>To cover the bucket as enclosure</td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

modification and application of a leaf blower-vac for field sampling of arthropods

Reisfelder beherbergen eine große Vielfalt von Arthropoden, aber ihre Populationsdynamik und Wechselwirkungen zu untersuchen ist eine Herausforderung. Hier beschreiben wir die Änderung und Anwendung eines Laubbläser-vac für die Absaugung Probenahme von Arthropoden Populationen in Reis. Wenn sie in Kombination mit einem Gehäuse verwendet, Anwendung dieser Probenahmevorrichtung bietet absolute Schätzungen der Populationen von Arthropoden als Zahlen pro standardisierte Probenahmebereich. Die Sampling-Effizienz hängt entscheidend von der Sampling-Dauer. In einer reifen Reisernte, eine Zwei-Minuten - Abtastung in einem Gehäuse von 0,13 m 2 ergibt mehr als 90% der Arthropoden Bevölkerung. Das Gerät ermöglicht auch Probenahme von Arthropoden auf der Wasseroberfläche oder den Boden, in Reisfeldern bleiben, aber es ist nicht geeignet für die Probenahme schnell Insekten, wie räuberische Odonata oder größere hymenopterous Parasitoide fliegen. Das modifizierte Gebläse-vac ist einfach zu konstruieren und billiger und leichter zu handhaben als herkömmliche Saug sampling Vorrichtungen, wie D-vac. Die niedrigen Kosten macht das modifizierte Gebläse-vac auch für Forscher in den Entwicklungsländern.

<html> Insgesamt 295 Arthropoden wurden in 8 Drei-Minuten-Gebläse-vac Proben aus einer Reisernte in der Reifungsstufe in der Provinz Jiangxi, China, im September gesammelt 2015. Um die Beziehung zwischen der relativen Ausbeute (Anteil der Arthropoden in der Probe gesammelt bestimmen ) und Dauer Probenahme wurde jede Probe in sechs Teilproben von jeweils 30 Sekunden unterteilt. Die mittlere Anzahl der Individuen pro Probe betrug 36,9 ± 4,1 (Mittelwert ± SEM). Insgesamt acht Arthropodenordnungen gefunden wurden, mit Hemiptera (28,8%), Araneae (27,5%) und Diptera (17,6%) dominant (Abbildung 1). Die relative Ausbeute, ausgedrückt als Prozentsatz der Anzahl der gesammelten Arthropoden nach drei Minuten betrug 52,9% ± 5,1, 92,4 ± 1,9% und 97,3% ± 0,9 nach 30 Sekunden, 2 und 2,5 Minuten, bzw. (Abbildung 2). <html> 5 / 54655fig1.jpg &quot;/&gt; Abbildung 1. Artenzusammensetzung (auf Auftragsebene) von Arthropoden Proben in den Vororten von Nanchang Stadt in der Provinz Jiangxi, China. Acht Proben wurden jeweils mit einem Gebläse-vac von drei Minuten gedauert. Fehlerbalken stellen den Standardfehler des Mittelwerts. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/54655/54655fig1large.jpg" target="_blank">Bitte klicken Sie hier</a> , um <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/54655/54655fig1large.jpg" target="_blank">eine größere Version dieser Figur zu sehen.</a> <img alt="Figur 2" src="/files/ftp_upload/54655/54655fig2.jpg" /> Abbildung 2. Kumulierte relative Ausbeute in Abhängigkeit von der Gesamtdauer Abtastung basierend auf dem Teilproben von jeweils 30 Sekunden. Die Gesamtzahl der Arthropoden eine Probenahme Dauer von drei Minuten gesammelt über wird auf 100% gesetzt. Keine Arthropoden wurden bei Sichtprüfung nach dem letzten Gebläse-vac Probe gefunden. Fehlerbalken stellen Standardfehler des Mittelwerts von acht Drei-Minuten-Proben.= &quot;Https://www.jove.com/files/ftp_upload/54655/54655fig2large.jpg&quot; target = &quot;_ blank&quot;&gt; Bitte klicken Sie hier, um eine größere Version dieser Figur zu sehen.

Watch this Scientific Journal Video about Modification and Application of a Leaf Blower-vac for Field Sampling of Arthropods at JoVE.com

Modification and Application of a Leaf Blower-vac for Field Sampling of Arthropods

Beurteilung der Arthropoden Fülle in Kulturen ist von entscheidender Bedeutung für die Populationsdynamik zu untersuchen und Interaktionen zwischen den Arten. Hier haben wir die Änderung und Anwendung eines Laubbläser-vac für die Absaugung Probenahme von Arthropoden in Reis zu beschreiben.

Modifizierung und Anwendung eines Laubbläser-vac für Feld Probenahme von Arthropoden

Rice fields host a large diversity of arthropods, but investigating their population dynamics and interactions is challenging. Here we describe the ...

modification-application-leaf-blower-vac-for-field-sampling

Research

JoVE Journal

Environment

8.7K Aufrufe.  Wageningen University.  Beurteilung der Arthropoden Fülle in Kulturen ist von entscheidender Bedeutung für die Populationsdynamik zu untersuchen und Interaktionen zwischen den Arten. Hier haben wir die Änderung und Anwendung eines Laubbläser-vac für die Absaugung Probenahme von Arthropoden in Reis zu beschreiben. 

Serie: Modification and Application of a Leaf Blower-vac for Field Sampling of Arthropods

Integrated Field Lysimetry and Porewater Sampling for Evaluation of Chemical Mobility in Soils and Established Vegetation

Potentially toxic chemicals are routinely applied to land to meet growing demands on waste management and food production, but the fate of these chemicals is often not well understood. Here we demonstrate an integrated field lysimetry and porewater sampling method for evaluating the mobility of chemicals applied to soils and established vegetation. Lysimeters, open columns made of metal or plastic, are driven into bareground or vegetated soils. Porewater samplers, which are commercially available and use vacuum to collect percolating soil water, are installed at predetermined depths within the lysimeters. At prearranged times following chemical application to experimental plots, porewater is collected, and lysimeters, containing soil and vegetation, are exhumed. By analyzing chemical concentrations in the lysimeter soil, vegetation, and porewater, downward leaching rates, soil retention capacities, and plant uptake for the chemical of interest may be quantified. Because field lysimetry and porewater sampling are conducted under natural environmental conditions and with minimal soil disturbance, derived results project real-case scenarios and provide valuable information for chemical management. As chemicals are increasingly applied to land worldwide, the described techniques may be utilized to determine whether applied chemicals pose adverse effects to human health or the environment.

Field lysimetry and porewater sampling allow researchers to evaluate the fate of chemicals applied to soils and established vegetation. The goal of this protocol is to demonstrate how to install required instrumentation and collect samples for chemical analysis during integrated field lysimetry and porewater sampling experiments.

Integrierte Feld Lysimetrie und Porenwasserprobennahme für die Bewertung von Chemical Mobilität in Böden und Vegetation Gegründet

Potentially toxic chemicals are routinely applied to land to meet growing demands on waste management and food production, but the fate of these chemicals ...

Forschung

Umwelt

Soil Sampling and Isolation of Entomopathogenic Nematodes (Steinernematidae, Heterorhabditidae)

Entomopathogenic nematodes (a.k.a. EPN) represent a group of soil-inhabiting nematodes that parasitize a wide range of insects. These nematodes belong to two families: Steinernematidae and Heterorhabditidae. Until now, more than 70 species have been described in the Steinernematidae and there are about 20 species in the Heterorhabditidae. The nematodes have a mutualistic partnership with Enterobacteriaceae bacteria and together they act as a potent insecticidal complex that kills a wide range of insect species.
Herein, we focus on the most common techniques considered for collecting EPN from soil. The second part of this presentation focuses on the insect-baiting technique, a widely used approach for the isolation of EPN from soil samples, and the modified White trap technique which is used for the recovery of these nematodes from infected insects. These methods and techniques are key steps for the successful establishment of EPN cultures in the laboratory and also form the basis for other bioassays that consider these nematodes as model organisms for research in other biological disciplines. The techniques shown in this presentation correspond to those performed and/or designed by members of S. P. Stock laboratory as well as those described by various authors.

Soil Sampling and Isolation of Entomopathogenic Nematodes Steinernematidae, Heterorhabditidae

Entomopathogenic nematodes are soil-inhabiting roundworms that parasitize a wide range of insects. We demonstrate sampling methods used for the isolation of these nematodes from the soil using two techniques: the insect baiting and the modified White trap, for the recovery of nematodes from soil samples and infected insect cadavers, respectively.

Bodenproben und Isolierung von Nematoden (Steinernematidae, Heterorhabditidae)

Entomopathogenic nematodes (a.k.a. EPN) represent a group of soil-inhabiting nematodes that parasitize a wide range of insects. These nematodes belong to ...

Calibrated Passive Sampling - Multi-plot Field Measurements of NH3 Emissions with a Combination of Dynamic Tube Method and Passive Samplers

Agricultural ammonia (NH3) emissions (90% of total EU emissions) are responsible for about 45% airborne eutrophication, 31% soil acidification and 12% fine dust formation within the EU15. But NH3 emissions also mean a considerable loss of nutrients. Many studies on NH3 emission from organic and mineral fertilizer application have been performed in recent decades. Nevertheless, research related to NH3 emissions after application fertilizers is still limited in particular with respect to relationships to emissions, fertilizer type, site conditions and crop growth. Due to the variable response of crops to treatments, effects can only be validated in experimental designs including field replication for statistical testing. The dominating ammonia loss methods yielding quantitative emissions require large field areas, expensive equipment or current supply, which restricts their application in replicated field trials. This protocol describes a new methodology for the measurement of NH3 emissions on many plots linking a simple semi-quantitative measuring method used in all plots, with a quantitative method by simultaneous measurements using both methods on selected plots. As a semi-quantitative measurement method passive samplers are used. The second method is a dynamic chamber method (Dynamic Tube Method) to obtain a transfer quotient, which converts the semi-quantitative losses of the passive sampler to quantitative losses (kg nitrogen ha-1). The principle underlying this approach is that passive samplers placed in a homogeneous experimental field have the same NH3 absorption behavior under identical environmental conditions. Therefore, a transfer co-efficient obtained from single passive samplers can be used to scale the values of all passive samplers used in the same field trial. The method proved valid under a wide range of experimental conditions and is recommended to be used under conditions with bare soil or small canopies (&#60;0.3 m). Results obtained from experiments with taller plants should be treated more carefully.

Calibrated Passive Sampling - Multi-plot Field Measurements of NH3 Emissions with a Combination of Dynamic Tube Method and Passive Samplers

Ammonia emissions are a major threat to the environment by eutrophication, soil acidification and fine particle formation and stem mainly from agricultural sources. This method allows ammonia loss measurements in replicated field trials enabling statistical analysis of emissions and of relationships between crop development and emissions.

Kalibrierte Passive Sampling - Multi-Plot Feldmessungen von NH<sub&gt; 3</sub&gt; Emissionen mit einer Kombination von Dynamic Tube-Methode und Passive Samplers

Agricultural ammonia (NH3) emissions (90% of total EU emissions) are responsible for about 45% airborne eutrophication, 31% soil acidification and 12% ...

Administering and Detecting Protein Marks on Arthropods for Dispersal Research

Monitoring arthropod movement is often required to better understand associated population dynamics, dispersal patterns, host plant preferences, and other ecological interactions. Arthropods are usually tracked in nature by tagging them with a unique mark and then re-collecting them over time and space to determine their dispersal capabilities. In addition to actual physical tags, such as colored dust or paint, various types of proteins have proven very effective for marking arthropods for ecological research. Proteins can be administered internally and/or externally. The proteins can then be detected on recaptured arthropods with a protein-specific enzyme-linked immunosorbent assay (ELISA). Here we describe protocols for externally and internally tagging arthropods with protein. Two simple experimental examples are demonstrated: (1) an internal protein mark introduced to an insect by providing a protein-enriched diet and (2) an external protein mark topically applied to an insect using a medical nebulizer. We then relate a step-by-step guide of the sandwich and indirect ELISA methods used to detect protein marks on the insects. In this demonstration, various aspects of the acquisition and detection of protein markers on arthropods for mark-release-recapture, mark-capture, and self-mark-capture types of research are discussed, along with the various ways that the immunomarking procedure has been adapted to suit a wide variety of research objectives.

Proteins are often used to mark arthropods for dispersal research. Methods for administering internal and external protein marks on arthropods are demonstrated. Protein mark detection techniques, either through indirect or sandwich enzyme-linked immunosorbent assays (ELISAs), are also illustrated.

Verwaltung und Nachweis von Protein-Kennzeichen auf Arthropoden für Dispersal Forschung

Monitoring arthropod movement is often required to better understand associated population dynamics, dispersal patterns, host plant preferences, and other ...

Clean Sampling and Analysis of River and Estuarine Waters for Trace Metal Studies

Most of the trace metal concentrations in ambient waters obtained a few decades ago have been considered unreliable owing to the lack of contamination control. Developments of some techniques aiming to reduce trace metal contamination in the last couple of decades have resulted in concentrations reported now being orders of magnitude lower than those in the past. These low concentrations often necessitate preconcentration of water samples prior to instrumental analysis of samples. Since contamination can appear in all phases of trace metal analyses, including sample collection (and during preparation of sampling containers), storage and handling, pretreatments, and instrumental analysis, specific care needs to be taken in order to reduce contamination levels at all steps. The effort to develop and utilize "clean techniques" in trace metal studies allows scientists to investigate trace metal distributions and chemical and biological behavior in greater details. This advancement also provides the required accuracy and precision of trace metal data allowing for environmental conditions to be related to trace metal concentrations in aquatic environments.
This protocol that is presented here details needed materials for sample preparation, sample collection, sample pretreatment including preconcentration, and instrumental analysis. By reducing contamination throughout all phases mentioned above for trace metal analysis, much lower detection limits and thus accuracy can be achieved. The effectiveness of "clean techniques" is further demonstrated using low field blanks and good recoveries for standard reference material. The data quality that can be obtained thus enables the assessment of trace metal distributions and their relationships to environmental parameters.

Special care using "clean techniques" is required to properly collect and process water samples for trace metal studies in aquatic environments. A protocol for sampling, processing, and analytical procedures with the aim of obtaining reliable environmental monitoring data and results with high sensitivity for detailed trace metal studies is presented.

Saubere Probenahme und Analyse von River und Estuarine Waters für Spurenmetallforschung

Most of the trace metal concentrations in ambient waters obtained a few decades ago have been considered unreliable owing to the lack of contamination ...

Reliable Method for Assessing Seed Germination, Dormancy, and Mortality under Field Conditions

We describe techniques for approximating seed bank dynamics over time using Helianthus annuus as an example study species. Strips of permeable polyester fabric and glue can be folded and glued to construct a strip of compartments that house seeds and identifying information, while allowing contact with soil leachate, water, microorganisms, and ambient temperature. Strips may be constructed with a wide range of compartment numbers and sizes and allow the researcher to house a variety of genotypes within a single species, different species, or seeds that have experienced different treatments. As opposed to individual seed packets, strips are more easily retrieved as a unit. While replicate packets can be included within a strip, different strips can act as blocks or can be retrieved at different times for observation of seed behavior over time. We used a high temperature glue gun to delineate compartments and sealed the strips once the seed and tags identifying block and removal times were inserted. The seed strips were then buried in the field at the desired depth, with the location marked for later removal. Burrowing animal predators were effectively excluded by use of a covering of metal mesh hardware cloth on the soil surface. After the selected time interval for burial, strips were dug up and seeds were assessed for germination, dormancy and mortality. While clearly dead seeds can often be distinguished from ungerminated living ones by eye, dormant seeds were conclusively identified using a standard Tetrazolium chloride colorimetric test for seed viability.

Here we present a protocol for assessing seed survivorship, germination and dormancy under field conditions using buried, labeled seed strips and tetrazolium chloride (TZ) viability testing.

Zuverlässige Methode zur Beurteilung der Samenkeimung Dormanz und Mortalität unter Feldbedingungen

We describe techniques for approximating seed bank dynamics over time using Helianthus annuus as an example study species. Strips of permeable polyester ...

Wastewater Irrigation Impacts on Soil Hydraulic Conductivity: Coupled Field Sampling and Laboratory Determination of Saturated Hydraulic Conductivity

Since the early 1960s, an alternative wastewater discharge practice at The Pennsylvania State University has been researched and its impacts monitored. Rather than discharging treated wastewater to a stream, and thereby directly impacting the stream quality, the effluent is applied to forested and cropped land managed by the University. Concerns related to reductions in soil hydraulic conductivity occur when considering wastewater reuse. The methodology described in this manuscript, matching soil sample size with the size of the laboratory-based hydraulic conductivity measurement apparatus, provides the benefits of a relatively rapid collection of samples with the benefits of controlled laboratory boundary conditions. The results suggest that there may have been some impact of wastewater reuse on the soil&#39;s ability to transmit water at deeper depths in the depressional areas of the site. Most of the reductions in the soil hydraulic conductivity in the depressions appear to be related to the depth from which the sample was collected, and by inference, associated with the soil structural and textural differences.

Here we present a methodology which matches a soil sample size and a hydraulic conductivity measurement device to prevent the so-called wall flow along the inside of the soil container from being erroneously included in water flow measurements. Its use is demonstrated with samples collected from a wastewater irrigation site.

Abwasser Bewässerung Auswirkungen auf Boden hydraulische Leitfähigkeit: Bereich Probenahme und Labor-Bestimmung der gesättigten hydraulischen Leitfähigkeit in Verbindung

Since the early 1960s, an alternative wastewater discharge practice at The Pennsylvania State University has been researched and its impacts monitored. ...

Construction of a Low-cost Mobile Incubator for Field and Laboratory Use

Incubators are essential for a range of culture-based microbial methods, such as membrane filtration followed by cultivation for assessing drinking water quality. However, commercially available incubators are often costly, difficult to transport, not flexible in terms of volume, and/or poorly adapted to local field conditions where access to electricity is unreliable. The purpose of this study was to develop an adaptable, low-cost and transportable incubator that can be constructed using readily available components. The electronic core of the incubator was first developed. These components were then tested under a range of ambient temperature conditions (3.5 &#176;C - 39 &#176;C) using three types of incubator shells (polystyrene foam box, hard cooler box, and cardboard box covered with a survival blanket). The electronic core showed comparable performance to a standard laboratory incubator in terms of the time required to reach the set temperature, inner temperature stability and spatial dispersion, power consumption, and microbial growth. The incubator set-ups were also effective at moderate and low ambient temperatures (between 3.5 &#176;C and 27 &#176;C), and at high temperatures (39 &#176;C) when the incubator set temperature was higher. This incubator prototype is low-cost (&lt; 300 USD) and adaptable to a variety of materials and volumes. Its demountable structure makes it easy to transport. It can be used in both established laboratories with grid power or in remote settings powered by solar energy or a car battery. It is particularly useful as an equipment option for field laboratories in areas with limited access to resources for water quality monitoring.

This paper describes a method for building an adaptable, low-cost and transportable incubator for microbial testing of drinking water. Our design is based on widely available materials and can operate under a range of field conditions, while still offering the advantages of higher-end laboratory-based models.

Bau eines Low-Cost mobilen Inkubator für Feld und Labor

Incubators are essential for a range of culture-based microbial methods, such as membrane filtration followed by cultivation for assessing drinking water ...

A New Portable In Vitro Exposure Cassette for Aerosol Sampling

This protocol introduces a new in vitro exposure system, capable of being worn, including its characterization and performance. Air-liquid interface (ALI) in vitro exposure systems are often large and bulky, making transport to the field and operation at the source of emission or within the breathing zone difficult. Through miniaturization of these systems, the lab can be brought to the field, expediting processing time and providing a more appropriate exposure method that does not alter the aerosol prior to contacting the cells. The Portable In vitro Exposure Cassette (PIVEC) adapts a 37 mm filter cassette to allow for in vitro toxicity testing outside of a traditional laboratory setting. The PIVEC was characterized using three sizes of copper nanoparticles to determine deposition efficiency based on gravimetric and particle number concentration analysis. Initial cytotoxicity experiments were performed with exposed lung cells to determine the ability of the system to deposit particles while maintaining cell viability. The PIVEC provides a similar or increased deposition efficiency when comparing to available perpendicular flow in vitro exposure devices. Despite the lower sample throughput, the small size gives some advantages to the current in vitro ALI exposure systems. These include the ability to be worn for personal monitoring, mobility from the laboratory to the source of emission, and the option to set-up multiple systems for spatial resolution while maintaining a lower user cost. The PIVEC is a system capable of collecting aerosols in the field and within the breathing zone onto an air-interfaced, in vitro model.

A New Portable In Vitro Exposure Cassette for Aerosol Sampling

Here, we present a protocol to perform portable cellular aerosol exposures and measure cellular response. The method uses cells, grown at the air-liquid interface, mimicking in vivo physiology. Cellular response to copper nanoparticle aerosols was observed as oxidative stress through reactive oxygen species generation and cytotoxicity as lactate dehydrogenase release.

Eine neue Portable In-vitro- Exposition Kassette für Aerosol-Sampling

This protocol introduces a new in vitro exposure system, capable of being worn, including its characterization and performance. Air-liquid interface (ALI) ...

Sampling for Estimating Frankliniella Species Flower Thrips and Orius Species Predators in Field Experiments

The western flower thrips, Frankliniella occidentalis (Pergande), is a polyphagous pest that has been spread worldwide. The extensive use of insecticides in attempts to control its populations eliminates natural enemies and competitor flower thrips species, thereby increasing its populations. An unsustainable situation develops with concomitant resistant pest populations, secondary pest outbreaks, and environmental degradation. Integrated pest management utilizes knowledge of pest and natural enemy relationships to implement tactics that are environmentally friendly and sustainable. Minute pirate bugs are the most important worldwide predators of thrips. They can suppress and ultimately control Frankliniella species flower thrips. Flower samples taken at least weekly are needed to understand predator-prey dynamics. Shown here is the sampling of the flowers of fruiting vegetables and companion plants to estimate the densities of individual thrips and minute pirate bug species. Representative data illustrates how the protocol is used to determine the efficacy of management tactics over time and how to evaluate the benefits of predation by minute pirate bugs. The sampling protocol is similarly adaptable to sampling thrips and minute pirate bugs in other plant species hosts.

Sampling for Estimating Frankliniella Species Flower Thrips and Orius Species Predators in Field Experiments

Presented here is a protocol to determine the number of thrips and minute pirate bug predators in crops over multiple dates in field experiments. Also illustrated is how to determine the efficacy of management tactics against thrips and evaluate the benefits of predation by minute pirate bugs.

Probenahme zur Schätzung von Frankliniella-Arten Blumenthrips und Orius-Arten-Raubtiere in Feldversuchen

The western flower thrips, Frankliniella occidentalis (Pergande), is a polyphagous pest that has been spread worldwide. The extensive use of insecticides ...