Mehrere Techniker und Doktoranden an der Michigan State University haben dazu beigetragen, zu entwickeln, zu verfeinern und den DD-Falle-Entwurf in den Jahren, einschließlich Andrea Anulewicz, Robert McDonald und Nathan Siegert bewerten. James Wieferich und Jeremy Lowell (MSU) danken wir für ihre Unterstützung bei der Entwicklung von der Installationsanweisungen DD. James Wieferich und Molly Robinett (MSU) überprüft einen früheren Entwurf des Manuskripts und wir freuen uns über ihre Anregungen. Joseph Francese und Damon Crook (USDA APHIS) teilten großzügig ihre Beobachtungen auf EAB Reaktion auf Farbe und Host flüchtigen Bestandteile. DD-Falle-Entwicklung und Evaluation wurde durch Zuschüsse von der USDA Forest Service, Nordosten, Waldschutz Gesundheit finanziert.

1. vorbereiten, die grün und lila Platten <ol><li>Acquire grün und lila corrugated Kunststoffplatten (120 cm × 60 cm) für die EAB Trapping von einem gewerblichen Händler von Pest Management liefert. Verwenden Sie ein Teppichmesser oder Allzweckmesser zu zwei Punkten Falten Linien in jeder Gruppe durch teilweise schneiden durch den Kunststoff entlang der vertikalen Wellen, 40 cm von den zwei kurzen Kanten des Panels. Dadurch kann das Panel in einem 3-seitig Prisma gefaltet werden (jede Fläche werden 40 x 60 cm). Platten sind in der Regel durch den Händler zu erleichtern, Falten, erzielte, so dieser Schritt nicht notwendig sein kann.</li>
	<li>Bohrer zwei paar Löcher in jede Platte mit einem ½ Zoll (1,3 cm) etwas wie aus Abbildung 1 hervorgeht. Bohren Sie Löcher 4 Zoll (10 cm) von der Spitze des Panels und 4 Zoll beiderseits der linken Falte. Das zweite paar Löcher zu bohren, 19 Zoll (48 cm) von der Spitze des Gremiums und direkt unterhalb der oberen Öffnungen (d.h. 4 Zoll beiderseits der linken Falte).</li>
</ol> 2. Bereiten Sie das PVC-Rohr <ol><li>erhalten einen Teil der Schedule 40 Polyvinylchlorid (PVC) Rohr, 3 m lang und 10 cm im Durchmesser, aus einem kommerziellen Baumarkt oder anderer Anbieter für jede Falle. Bohren Sie vier Löcher in das PVC-Rohr, wie in Abbildung 2 dargestellt. Mit einem ½ Zoll (1,3 cm) Bohrer, Bohren Sie zwei Löcher 4 Zoll (10 cm) von der Spitze des PVC-Rohres und 3½ Zoll (8,9 cm) auseinander. Richten Sie die Löcher waagerecht.</li>
	<li>Ein zweites paar Löcher, 3½ Zoll auseinander und 52 Zoll (1,3 m) unterhalb der Oberkante des Rohres, direkt unter den ersten Satz der Löcher zu bohren.</li>
</ol> 3. Installieren Sie einen T-Post <ol><li>Einsatz einen Beitrag-Pfünder, einen t-Post an der gewünschten Stelle zu installieren. Fahren Sie die Post tief genug, so dass der Flansch befindet sich direkt unterhalb der Bodenoberfläche, aber es keine Notwendigkeit gibt, noch tiefer gehen. T-Post bieten viel Unterstützung für die DD-Falle, auch bei hohen Windgeschwindigkeiten. Guy Drähte oder zusätzliche Unterstützungen sind nicht notwendig. Obwohl die t-Post nicht tief in den Boden gesetzt werden muss, ist es eine gute Idee, für u-Dienstprogramme oder vergrabenen Rohre prüfen vor Fahrtantritt den Pfosten in den Boden.</li>
</ol> 4. Montieren Sie die DD-Falle <ol><li>Falte ein lila Modul in ein Prisma. Wenn Platten vorgeleimte sind, achten Sie darauf, dass die Klebeseite auf der Außenseite ist. Ernähren Sie die beiden kleinen Klappen durch die Schlitze zu und verwenden Sie zwei 8 Zoll (20 cm) Kabelbinder um die Verkleidungsenden zusammen zu befestigen. Wiederholen Sie dies mit einem grünen Panel.</li>
	<li>Unterstützen das PVC-Rohr horizontal über dem Boden. Schieben Sie das lila Prisma auf das PVC-Rohr und bis in der unteren Reihe von Löchern in das PVC-Rohr.</li>
	<li>Ernähren eine große, 2 Fuß (60 cm) langen Kabelbinder horizontal durch die oben links Loch in das Prisma, dann durch die beiden Löcher in das PVC-Rohr, und schließlich durch das benachbarte Loch auf der rechten Seite des Prismas. Achten Sie darauf, das Prisma dicht an den festen Teil des PVC-Rohr, das zwischen den beiden Löchern liegt. Schließen und ziehen Sie den Kabelbinder, sicherstellen, dass die Kabelbinder nicht verdreht ist.</li>
	<li>Führen einen zweite große Kabelbinder durch das untere Loch in das Prisma, rund um das Rohr und durch das entsprechende Loch auf der angrenzenden Seite des Prismas. Schließen Sie den Kabelbinder und ziehen Sie, kümmert sich wieder um sicherzustellen die Kabelbinder nicht verdrehen, bevor es angezogen wird.</li>
	<li>Das grüne Prisma auf das PVC-Rohr schieben und befestigen Sie sie auf die oberen Löcher in das PVC-Rohr mit zwei 60 cm Kabelbinder, folgen die gleichen Schritte wie zuvor. Es werden ein 21 Zoll (54 cm) Abstand zwischen der oberen und unteren Prismen.</li>
</ol> 5. Insekt-Kleber und Set Up the Trap gelten <ol><li>anwenden klare Insekten fangen Leim zu Platten, die nicht vorgeklebten sind. Auch vorgeleimte Platten erfordern oft zusätzliche Kleber, EAB Käfer zu erfassen. Um Insekten fangen Klebstoff auftragen, legen Sie die Basis von PVC-Rohren auf dem Boden und die Innenseite der oberen Prisma auf dem t-Pfosten prop.</li>
	<li>Mit Latex (oder ähnlichen) Handschuhe, Scheffeln Sie zwei bis drei Handvoll Kleber und Abstrich, die es über die Oberfläche eines Panels, sicherstellen, dass die Oberfläche des Panels gründlich beschichtet ist. Drehen Sie das PVC-Rohr um alle drei Flächen auf beiden Prismen zu gelangen. Kleber muss nicht auf das PVC-Rohr angewendet werden.</li>
	<li>Nehmen Sie das PVC-Rohr, senkrecht halten und schieben Sie das untere Ende über die t-Post. Berühren Sie die klebrigen Tafeln.</li>
</ol> 6. Köder die DD-Falle <ol><li>vorgeleimte Prismen kommen in der Regel mit einem kleinen Loch (4 mm) in der Nähe von der Unterkante der ein Panel des Prismas, verwenden Sie einen 4 Zoll (10 cm) Kabelbinder, Anfügen einer Tasche in der Cis -3-Hexenol bis zur Unterkante des Prismas oben (grün). Wenn ein Loch nicht vorhanden ist, verwenden Sie einen handheld Locher oder ein Taschenmesser schneiden Sie ein kleines Loch oder Spalt in den Kunststoff, dann verwenden Sie die kleine Kabelbinder um den Köder zu befestigen. 
	Hinweis: Die Cis -3-Hexenol Verbindung in der Köder wird langsam über einen Zeitraum von ca. 10 Wochen freigesetzt. Wenn fallen für mehr als 10 Wochen wirksam müssen, ersetzen die Köder Bedarf.</li>
</ol> 7. EAB Käfer fallen gesucht <ol><li>Check um SNMP-traps in Abständen von 2-4 Wochen wenn möglich nicht zu verlieren erfassten Käfer, die gelegentlich-off fallen, Drop vor allem bei Starkregen. Prüfen Sie alle drei Seiten des unteren Prisma für EAB Käfer. Dann, mit Einweg Latex-Handschuhe, heben das PVC-Rohr nach oben und an den t-Pfosten und stützen die Innenseite der oberen Prisma auf dem t-Pfosten, ein Panel von beiden Prismen auszusetzen.</li>
	<li>Einsatz Pinzette entfernen vermuten EAB Käfer und legen Sie sie in einem wieder verschließbaren Kunststoff Probe Beutel.</li>
	<li>Drehen Sie das PVC-Rohr um alle drei Platten auf beiden Prismen für verdächtige EAB Käfer zu untersuchen, und schieben Sie das Rohr zurück über die t-Post. 
	Hinweis: Fliegen, klicken Sie auf Käfer und verschiedene andere Insekten werden unweigerlich auf die fallen eingefangen werden. Es braucht ein gutes Auge, eine EAB-Käfer vor Ort. Tragen eine Foto-Referenz-Karte kann hilfreich sein, beim Check-fallen zum ersten Mal.</li>
	<li>, Artenkenntnisse, bestätigen verdächtigen Käfer ins Labor zurück und genießen sie in eine ungiftige histologischen Clearing Agent für einen Tag oder zwei Insekten fangen Kleber zu entfernen. Käfer können dann unter dem sezierenden Mikroskop untersucht werden.</li>
</ol>

Die Autoren erklären, dass sie keine finanziellen Interessenkonflikte.

Die Gestaltung und die Platzierung von DD fallen nutzen die Anziehungskraft der EAB Käfer zu spezifischen Schattierungen von Farbe und Licht. Das grüne Prisma auf der Oberseite das PVC-Rohr ist sehr attraktiv für männliche Käfer, die Lebensspanne Fütterung auf Asche Blätter sowie die Paarung32,36,38,39verbringen. Das untere lila Prisma sorgt für fallen sind auch attraktive weibliche Kä...

Der Smaragd Asche Borer (EAB) (Agrilus Planipennis Fairmaire) (Coleoptera: Buprestidae) hat Hunderte von Millionen von Eschen (Fraxinus spp.) getötet, da es erstmals, im Jahr 2002 im Großraum Detroit, Michigan und in nachgewiesen wurde in der Nähe Windsor, Ontario, Kanada. Unbeabsichtigte Verbreitung von befallene Eschen, Protokolle und Brennholz, zusammen mit natürlichen Ausbreitung von Käfern, führten EAB Einrichtung in mindestens 27 Staaten und zwei kanadischen Provinzen Datum1. Jüngste Berichte zeigen, dass die EAB auch Moskau, Russland, wo es Landschaft Asche Bäume2,3 tötet, eingedrungen ist, erzeugen zusätzliche Besorgnis über das Potenzial in Europa zu verbreiten. Interspezifische Variation der EAB Gastgeber Präferenz und Widerstand unter den nordamerikanischen Asche wurde Arten dokumentiert4,5,6,7,8,9, aber praktisch alle Arten von Asche in Nordamerika werden voraussichtlich geeignete Gastgeber zu sein. Katastrophale Ebenen der Asche Sterblichkeit wurden in Bereichen von Michigan und Ohio10,11,12, mit damit verbundenen ökologischen und ökonomischen Auswirkungen13,14verzeichnet, 15,16.
Effektive Methoden zur EAB Neubefall erkennen und überwachen von geringer Dichte Bevölkerungen sind kritische Aspekte dieser invasiven Schädling in städtischen, Wohn- und bewaldeten Einstellungen zu verwalten. Früherkennung bietet Zeit, um eine Strategie zu entwickeln, Finanzierung und Umsetzung von Maßnahmen zur Reduzierung der Auswirkungen von der EAB. Zum Beispiel können städtische Beamte und Hausbesitzer beginnen Behandlung von wertvollen Asche in Landschaften mit systemischen Insektiziden vor Schäden durch Erhöhung der Larven dichten Grenzen Wirksamkeit dieser Produkte17,18. In ähnlicher Weise Identifikation eines neuen Befall und verlässliche Informationen über die räumliche Verteilung der EAB Förster und Eigentümer die Möglichkeit, Holz Vertrieb, Arten Konvertierung oder andere Aktivitäten zu wirtschaftlichen Kosten senken implementieren oder ökologische Auswirkungen der Asche-Sterblichkeit.
Früherkennung, Abgrenzung und wirksame Überwachung der Low-Density EAB Populationen bleiben jedoch schwierig. Visuelle Umfragen neu befallene Eschen zu identifizieren sind nicht zuverlässig, da Asche selten weisen externe Anzeichen oder Symptome der EAB Befall bis Larven dichten bis moderaten oder sogar hohen Niveaus4,19bauen. Die wirksamsten Mittel zur Erkennung von sehr geringer Dichte der EAB beinhalten mit geringelt Asche Erkennung Bäume19,20,21,22. Eschen sind im Frühling oder Frühsommer geringelt, durch das Entfernen einer Band der äußeren Rinde und Bast um den Umfang des Rumpfes, die Bäume, Steigerung der Anziehungskraft, Erwachsene EAB betont Käfer. Umhüllte Bäume können im Herbst oder Winter, EAB Larven Präsenz und Dichte zu identifizieren entrindet werden. Obwohl Ash geringelt, die EAB Erkennung19,23,24,25Bäume operativ eingesetzt haben, sind sie problematisch. Entrindung geringelt Bäume können arbeitsintensiv und Auffinden von geeigneten Bäumen umgeben kann schwierig sein, vor allem in städtischen oder Wohn- oder bei Umfragen für mehrere Jahre19geführt werden müssen.
Künstliche Köder mit EAB Lockstoffe fallen beseitigen viele Bedenken mit geringelt Erkennung Eschen zugeordnet. Im Gegensatz zu anderen wichtigen Forstschädlingen wie Schwammspinner (Lymantria Dispar L) und einige Scolytinae Borkenkäfer, die Langstrecken Sex oder Aggregation Pheromone produzieren, wurden bisher nicht wirksam fern Pheromone für EAB gefunden. Ein kurzer Reichweite Sex Pheromone, Cis-Lacton, kann Paarung26,27, erleichtern aber im Freiland, Cis-Lacton Köder haben nicht stetig gestiegen, EAB Anziehungskraft auf künstliche fallen28. Adulten Käfer verlassen sich auf flüchtige Verbindungen emittiert von Ash Blätter, Rinde und Holz zu identifizieren ihre Gastgeber Bäume29,30,31 und potenzielle Partnern zu begegnen. Einige flüchtige Verbindungen sind für den Einsatz in Köder zu Erwachsenen Meridian auf künstliche fallen27,32gewinnen bewertet worden. Derzeit fallen operativ für EAB Erkennung Umfragen in den USA sind geködert mit Ködern mit Cis-3-Hexenol, einem gemeinsamen grünes Blatt flüchtigen produziert von Asche Laub30,33. In den vergangenen Jahren haben EAB fallen für US-Umfragen auch mit Manuka-Öl, das aus der New Zealand Teebaum gewonnen wird geködert worden (Leptospermum Scoparium Forst und Forst) oder Phoebe Öl, einen Auszug aus dem brasilianischen Walnussbaum (Phoebe Porosa Mez.); Beide enthalten mehrere Sesquiterpene, die auch in Asche Rinde29vorhanden sind. Probleme mit inkonsistenten Lieferungen dieser natürliche Öle haben jedoch ihre Verwendung beschränkt.
Neben Gastgeber produziert flüchtige reagieren EAB Käfer auf visuelle Reize, einschließlich Farbe und Licht20,32,34,35. Frühe Studien zeigten EAB Erwachsene, die relativ agil Flieger sind, nur selten von schwarzen Trichter fallen mit verschiedenen Asche Volatiles Ködern gefangen genommen wurden (DGM und TMP, unveröffentlichte Daten). Anderen Falle Designs, wie Kreuz-Fahne fallen, wurden ausgewertet, aber die Abneigung der EAB Käfer, dunkle Räume und Schatten begrenzt die Wirksamkeit dieser fallen.
Entwicklung eines dreiseitigen Prismas, die mit beschichtet werden können klare Insekt Trapping Kleber35 um Käfer zu erfassen, wurde eine wesentliche Verbesserung im Falle Design. Attraktion des Erwachsenen Meridian, Farbe ist auch ausgiebig im Freiland und im Labor mit einem Retinograph34ausgewertet worden. Ergebnisse zeigen EAB Käfer konsequent zu spezifischen Schattierungen von Grün und lila32,36angezogen werden. Prisma fallen aus farbigem Kunststoff Wellpappe hergestellt sind jetzt in EAB-Umfrage-Aktivitäten in den USA und Kanada verbreitet.
Da EAB Erwachsene Licht stark angezogen werden, sind Käfer viel eher offen angebaute Baum besiedelns als schattige Bäume20,21. Richtlinien für die EAB Erkennung Umfragen in den USA erforderlich, einzelne Prisma fallen an einer Mitte Baldachin-Niederlassung in einer Esche wächst entlang einer Straße oder den Rand von einem Waldgebiet37aufgehängt werden. In der Theorie, damit soll sichergestellt werden, dass mindestens ein Panel des Prismas Sonnenlicht ausgesetzt ist. Operativ können jedoch Prisma fallen teilweise beschattet von Overhead Äste neben oder in der Nähe Bäume sein. Klebrige Panel Oberflächen sind häufig in Laub, Blätter festhalten an und zumindest einen Teil von einem oder mehreren Platten verdeckt was geblasen.
Doppeldecker (DD) fallen wurden entwickelt, um mehrere visuelle und olfaktorische Hinweise zur Verbesserung der Attraktivität der EAB Käfer zu integrieren. Jeder DD Falle besteht aus eine grüne und eine lila Wellpappe Kunststoff Prisma mit einem 3 m hohen Zeitplan 40 Polyvinylchlorid (PVC) Rohr (10 cm Durchmesser), die unterstützt wird durch Verschieben der PVC-Rohr über einen t-Post verbunden. Mit grünen und violetten Prismen sollen beide Geschlechter der EAB Käfer32,36,38,39zu gewinnen. Darüber hinaus anstatt aus einem Zweig in den Baumkronen einer Esche angehalten wird, sind die DD fallen platziert in voller Sonne, 5-10 m vom Eschen entlang der Kante von einem Waldgebiet oder mitten in der verstreut, offenen angebautes Eschen.

<table><tbody><tr><td>Light green corrugated plastic panel: 120 cm x 60 cm</td><td>Great Lakes IPM; www.greatlakesipm.com</td><td>IPM-EAB GR</td><td>All three surfaces of each prism need to be covered with clear insect trapping glue, even if the panels are pre-glued. Pre-glued panels are often not sticky enough to consistently capture or retain EAB beetles.&amp;nbsp; Other clear insect trapping glue products are available but are considerably more difficult to apply.&amp;nbsp;&amp;nbsp;&amp;nbsp;</td></tr><tr><td>Light purple corrugated plastic panel: 120 cm x 60 cm</td><td>Great Lakes IPM; www.greatlakesipm.com</td><td>IPM-EAB&amp;nbsp; LP</td><td></td></tr><tr><td>Large cable tie (4): 60 cm with a 79 kg capacity</td><td>Cabletiesandmore.com; http://www.cabletiesandmore.com/cableties.php</td><td>CT-24-NU-100PK</td><td></td></tr><tr><td>Medium cable ties (4): 20 cm with a 22.7 kg capacity</td><td>Cabletiesandmore.com; http://www.cabletiesandmore.com/cableties.php</td><td>CT261</td><td></td></tr><tr><td>Small cable tie: 10 cm with a 8.2 kg capacity</td><td>Cabletiesandmore.com; http://www.cabletiesandmore.com/cableties.php</td><td>CT204</td><td></td></tr><tr><td>cis-3-hexanol pouch</td><td>Synergy Semiochemicals; http://www.semiochemical.com/html/buprestids.html)</td><td>3136</td><td>Lures used to bait DD traps consist of pouches containing cis-3-hexenol, a non-toxic compound present in ash leaves.&amp;nbsp; One pouch is attached to the lower edge of the top prism using a small cable tie.&amp;nbsp; Each pouch of cis-3-hexenol has a release rate of approximately 50 mg/day. Note that cis-3-hexenol is sometimes written as Z-3-hexenol.&amp;nbsp;</td></tr><tr><td>Aphinity Hexenol</td><td>Sylvar Technologies</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Lure GLV4 emerald ash borer</td><td>Chemtica, Heredia, Costa Rica</td><td></td><td></td></tr><tr><td>cis-3-hexanol pouch</td><td>WestGreen Global Technologies; http://www.westgreenglobaltechnologies.com/</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Clear insect trapping glue&amp;nbsp;</td><td>Hummert International; http://www.hummert.com/product-details/8196/pestick</td><td>01-3522-1&amp;nbsp;&amp;nbsp;</td><td></td></tr><tr><td>Histoclear II histological clearing agent</td><td>National Diagnostics; www.nationaldiagnostics.com</td><td>HS-202</td><td>Histoclear II will be needed to remove the sticky insect glue from suspect beetles.&amp;nbsp; Other histological clearing agents are available but may not remove the glue and some products dissolve plastic, an important consideration if plastic containers are used for soaking the beetles.&amp;nbsp;</td></tr><tr><td>Histoclear II histological clearing agent</td><td>Great Lakes IPM; www.greatlakesipm.com</td><td>10011</td><td>Histoclear II will be needed to remove the sticky insect glue from suspect beetles.&amp;nbsp; Other histological clearing agents are available but may not remove the glue and some products dissolve plastic, an important consideration if plastic containers are used for soaking the beetles.&amp;nbsp;</td></tr><tr><td>t-post: 1.5 m</td><td>multiple sources</td><td></td><td>A t-post (5 feet tall) (1.5 m) is used to support the PVC pipe.&amp;nbsp;&amp;nbsp;</td></tr><tr><td>post pounder</td><td>multiple sources</td><td></td><td>Use a post pounder to set t-posts into the ground. No additional support is necessary.</td></tr><tr><td>HDPE (high density polyethylene) PVC pipe : 3 m x 10 cm diameter</td><td>multiple sources</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Forceps (rigid)</td><td>multiple sources</td><td></td><td>Forceps (tweezers) will be needed to remove suspect beetles from the traps. Rigid forceps work better than flexible forceps.&amp;nbsp;</td></tr><tr><td>Latex gloves</td><td>multiple sources</td><td></td><td>Latex gloves are needed for applying the insect trapping glue to the prisms and for checking the traps to collect EAB beetles.&amp;nbsp;&amp;nbsp;&amp;nbsp;</td></tr><tr><td>Baby oil or baby wipes&amp;nbsp;</td><td>multiple sources</td><td></td><td>Baby oil or baby wipes are helpful for removing the trapping glue from hands and equipment.&amp;nbsp;</td></tr><tr><td>Re-sealable plastic specimen bags: 5 cm x 8 cm&amp;nbsp;</td><td>multiple sources</td><td></td><td>Small re-sealable plastic specimen bags are useful for collecting beetles from traps.&amp;nbsp; Each bag should be labelled, either with pre-made, adhesive labels or with soft felt pens.&amp;nbsp;&amp;nbsp;&amp;nbsp;</td></tr><tr><td>Guides to help with distinguishing EAB from beetles native to North America are available on the national EAB website at www.emeraldashborer.info. &amp;nbsp;</td><td></td><td></td><td></td></tr></tbody></table>

building double-decker traps for early detection of emerald ash borer

Smaragd Asche Borer (EAB) (Agrilus Planipennis Fairmaire), das zerstörendste Wald Insekt zu Nordamerika, eingedrungen hat Hunderte von Millionen von Wald und Landschaft (Fraxinus spp.) Eschen getötet. Mehrere künstliche Falle Designs zu gewinnen und erfassen EAB Käfer wurden entwickelt, um erkennen, beschreiben und parasitäre Erkrankungen zu überwachen. Doppeldecker (DD) fallen bestehen aus zwei gewellte Kunststoff Prismen, eine grüne und eine lila, verbunden mit einem 3 m hohen Polyvinylchlorid (PVC) Rohr durch ein t-Post unterstützt. Das grüne Prisma an der Spitze des PVC-Rohres ist mit GUS-3 geködert-Hexenol, eine Verbindung von Asche Laub produziert. Oberflächen der beiden Prismen sind beschichtet mit klebrigen Insekten kleben, EAB Käfer zu erfassen. Doppeldecker fallen sollte in der Nähe von Eschen aber in offenen Gebieten liegen Sonne ausgesetzt. Doppeldecker-Falle Bau- und Platzierung sind hier, zusammen mit einer Zusammenfassung von Feldexperimenten die Wirksamkeit von DD fallen bei der Erfassung von EAB Käfer vorgestellt. In einer neueren Studie an Standorten mit relativ geringer Dichte der EAB erfasst Doppeldecker fallen deutlich mehr EAB als grünen oder violetten Prisma fallen oder grüne Trichter fallen, die aus einem Zweig in den Baumkronen von Eschen ausgesetzt werden sollen. Ein größerer Anteil der Doppeldecker fallen waren positiv, d. h.mindestens ein EAB, als das Prisma fallen oder Trichter fallen, die in Asche Baumkronen gehängt wurden erfasst.

In einem großen Maßstab Studie, drei künstliche Falle Designs sowie als umhüllte Eschen wurden systematisch eingesetzt, 10-20 m voneinander entfernt, auf einem neu befallenen 16 ha Waldgebiet mit einer sehr geringen Dichte von EAB25. Künstliche Falle Designs getestet enthalten violette Prismen mit Manukaöl geködert und ausgesetzt &#62; 3 m hohe, aus einem Zweig in den Baumkronen der Asche Bäume, 3 m hoch DD fallen mit zwei grünen Platten und DD fallen mit ...

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Building Double-decker Traps for Early Detection of Emerald Ash Borer

Effektive fallen zu gewinnen und erfassen die Smaragd Asche Borer (EAB) sind ein Schlüsselelement zu erkennen und verwalten diese invasive Pest. Doppeldecker fallen, platziert in der vollen Sonne in der Nähe von Eschen, visuelle und olfaktorische Hinweise zu integrieren und waren wahrscheinlicher, EAB als andere Falle Designs im Freiland zu erfassen.

Aufbau Doppeldecker fallen zur frühzeitigen Erkennung von Emerald Ash Borer

Emerald ash borer (EAB) (Agrilus planipennis Fairmaire), the most destructive forest insect to have invaded North America, has killed hundreds of millions ...

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Research

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Environment

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Serie: Building Double-decker Traps for Early Detection of Emerald Ash Borer

Technique for Studying Arthropod and Microbial Communities within Tree Tissues

Phloem tissues of pine are habitats for many thousands of organisms. Arthropods and microbes use phloem and cambium tissues to seek mates, lay eggs, rear young, feed, or hide from natural enemies or harsh environmental conditions outside of the tree. Organisms that persist within the phloem habitat are difficult to observe given their location under bark. We provide a technique to preserve intact phloem and prepare it for experimentation with invertebrates and microorganisms. The apparatus is called a &#8216;phloem sandwich&#8217; and allows for the introduction and observation of arthropods, microbes, and other organisms. This technique has resulted in a better understanding of the feeding behaviors, life-history traits, reproduction, development, and interactions of organisms within tree phloem. The strengths of this technique include the use of inexpensive materials, variability in sandwich size, flexibility to re-open the sandwich or introduce multiple organisms through drilled holes, and the preservation and maintenance of phloem integrity. The phloem sandwich is an excellent educational tool for scientific discovery in both K-12 science courses and university research laboratories.

We provide a technique to preserve intact tree phloem and prepare it for observation. We create an apparatus called a phloem sandwich that allows for the introduction and observation of arthropods, microbes, and other organisms that inhabit phloem tissues.

Technik zur Untersuchung Gliederfüßer und Mikrobielle Gemeinschaften im Baum Tissues

Phloem tissues of pine are habitats for many thousands of organisms.  Arthropods and microbes use phloem and cambium tissues to seek mates, lay eggs, rear ...

Forschung

Umwelt

A Technique to Screen American Beech for Resistance to the Beech Scale Insect (Cryptococcus fagisuga Lind.)

Beech bark disease (BBD) results in high levels of initial mortality, leaving behind survivor trees that are greatly weakened and deformed.&#160;The disease is initiated by feeding activities of the invasive beech scale insect, Cryptococcus fagisuga, which creates entry points for infection by one of the Neonectria species of fungus.&#160;Without scale infestation, there is little opportunity for fungal infection. Using scale eggs to artificially infest healthy trees in heavily BBD impacted stands demonstrated that these trees were resistant to the scale insect portion of the disease complex1.&#160;Here we present a protocol that we have developed, based on the artificial infestation technique by Houston2, which can be used to screen for scale-resistant trees in the field and in smaller potted seedlings and grafts.&#160;The identification of scale-resistant trees is an important component of management of BBD through tree improvement programs and silvicultural manipulation.

A Technique to Screen American Beech for Resistance to the Beech Scale Insect Cryptococcus fagisuga Lind.

Beech bark disease is initiated by feeding activities of the beech scale insect that create fungal entry points in the bark.&#160;Trees that are resistant to the scale insect are also disease resistant.&#160;Here we present the protocol we have developed to screen individual beech trees for beech scale resistance.

Eine Technik, um Amerikanische Buche für Widerstand gegen die Buche Schildlaus (Bildschirm<em&gt; Cryptococcus fagisuga</em&gt; Lind.)

Beech bark disease (BBD) results in high levels of initial mortality, leaving behind survivor trees that are greatly weakened and deformed.&#160;The ...

Soil Sampling and Isolation of Entomopathogenic Nematodes (Steinernematidae, Heterorhabditidae)

Entomopathogenic nematodes (a.k.a. EPN) represent a group of soil-inhabiting nematodes that parasitize a wide range of insects. These nematodes belong to two families: Steinernematidae and Heterorhabditidae. Until now, more than 70 species have been described in the Steinernematidae and there are about 20 species in the Heterorhabditidae. The nematodes have a mutualistic partnership with Enterobacteriaceae bacteria and together they act as a potent insecticidal complex that kills a wide range of insect species.
Herein, we focus on the most common techniques considered for collecting EPN from soil. The second part of this presentation focuses on the insect-baiting technique, a widely used approach for the isolation of EPN from soil samples, and the modified White trap technique which is used for the recovery of these nematodes from infected insects. These methods and techniques are key steps for the successful establishment of EPN cultures in the laboratory and also form the basis for other bioassays that consider these nematodes as model organisms for research in other biological disciplines. The techniques shown in this presentation correspond to those performed and/or designed by members of S. P. Stock laboratory as well as those described by various authors.

Soil Sampling and Isolation of Entomopathogenic Nematodes Steinernematidae, Heterorhabditidae

Entomopathogenic nematodes are soil-inhabiting roundworms that parasitize a wide range of insects. We demonstrate sampling methods used for the isolation of these nematodes from the soil using two techniques: the insect baiting and the modified White trap, for the recovery of nematodes from soil samples and infected insect cadavers, respectively.

Bodenproben und Isolierung von Nematoden (Steinernematidae, Heterorhabditidae)

Entomopathogenic nematodes (a.k.a. EPN) represent a group of soil-inhabiting nematodes that parasitize a wide range of insects. These nematodes belong to ...

A Push-pull Protocol to Reduce Colonization of Bird Nest Boxes by Honey Bees

Introduction of the invasive Africanized honey bee (AHB) into the Neotropics is a serious problem for many cavity nesting birds, specifically parrots. These bees select cavities that are suitable nest sites for birds, resulting in competition. The difficulty of removing bees and their defensive behavior makes a prevention protocol necessary. Here, we describe a push-pull integrated pest management protocol to deter bees from inhabiting bird boxes by applying a bird safe insecticide, permethrin, to repel bees from nest boxes, while simultaneously attracting them to pheromone-baited swarm traps. Shown here is an example experiment using Barn Owl nest boxes. This protocol successfully reduced colonization of Barn Owl nest boxes by Africanized honey bees. This protocol is flexible, allowing adjustments to accommodate a wide range of bird species and habitats. This protocol could benefit conservation efforts where AHB are located.

Preventing colonization of bird nest boxes by invasive Africanized honey bees is important for conservation efforts of nest-site limited birds. We provide an integrated pest management approach to &#34;push&#34; bees away from nest boxes with a repellant insecticide, permethrin, and &#34;pull&#34; them toward pheromone baited swarm traps.

Push-Pull-Protokoll zur Reduzierung der Kolonisierung von Nistkästen von Honig-Bienen

Introduction of the invasive Africanized honey bee (AHB) into the Neotropics is a serious problem for many cavity nesting birds, specifically parrots. ...

The Hawaii Protocol for Scientific Monitoring of Coffee Berry Borer: a Model for Coffee Agroecosystems Worldwide

Coffee berry borer (CBB) is the most devastating insect pest for coffee crops worldwide. We developed a scientific monitoring protocol that is aimed at capturing and quantifying the dynamics and impact of this invasive insect pest as well as the development of its host plant across a heterogeneous landscape. The cornerstone of this comprehensive monitoring system is timely georeferenced data collection on CBB movement, coffee berry infestation, mortality by the fungus Beauveria bassiana, and coffee plant phenology via a mobile electronic data recording application. This electronic data collection system allows field records to be georeferenced through built-in global positioning systems, and is backed by a network of weather stations and records of farm management practices. Comprehensive monitoring of CBB and host plant dynamics is an essential part of an area-wide project in Hawaii to aggregate landscape-level data for research to improve management practices. Coffee agroecosystems in other parts of the world that experience highly variable environmental and socioeconomic factors will also benefit from implementing this protocol, in that it will drive the development of customized integrated pest management (IPM) to manage CBB populations.

Comprehensive monitoring of coffee berry borer and host plant dynamics is essential for aggregating landscape-level data to improve management of this invasive pest. Here, we present a protocol for scientific monitoring of coffee berry borer movement, infestation, mortality, coffee plant phenology, weather, and farm management via a mobile electronic data recording application.

Das Hawaii-Protokoll für die wissenschaftliche Begleitung des Kaffee Berry Borer: ein Modell für Kaffee Agrarökosystemen weltweit

Coffee berry borer (CBB) is the most devastating insect pest for coffee crops worldwide. We developed a scientific monitoring protocol that is aimed at ...

A Precise and Autonomous System for the Detection of Insect Emergence Patterns

Existing systems to measure insect emergence patterns have limitations; they are only partially automated and are limited in the maximum number of emerging insects they can detect. In order to obtain precise measurement of insect emergence, it is necessary for systems to be semi-automated and able to measure large numbers of emerging insects. We addressed these issues by designing and building a system that is automated and can measure emergence of up to 1200 insects. We modified the existing &#34;falling-ball&#34; system using Arduino microcontrollers to automate data collection and expand the sample size through multiple data channels. Multiple data channels enable the user to not only increase their sample size, but also allows for multiple treatments to be run simultaneously in a single experiment. Furthermore, we created an R script to automatically visualize the data as a bubble plot, while also calculating the median day and time of emergence. The current system was designed using 3D printing so the user can modify the system to be adjusted for different species of insects. The goal of this protocol is to investigate important questions in chronobiology and stress physiology, using this precise and automated system to measure insect emergence patterns.

Measurement of insect emergence patterns requires precision. Existing systems are only semi-automated and sample size is limited. We addressed these issues by designing a system using microcontrollers to precisely measure the time of emergence of large numbers of emerging insects.

Eine präzise und autonomen System zur Erkennung von Insekten entstehen Muster

Existing systems to measure insect emergence patterns have limitations; they are only partially automated and are limited in the maximum number of ...

A Method for Quantifying Foliage-Dwelling Arthropods

Terrestrial arthropods play an important role in our environment. Quantifying arthropods in a way that allows for a precise index or estimates of density requires a method with high detection probability and a known sampling area. While most described methods provide a qualitative or semi-quantitative estimate adequate for describing species presence, richness, and diversity, few provide an adequately consistent detection probability and known or consistent sampling areas to provide an index or estimate with adequate precision to detect differences in abundance across environmental, spatial, or temporal variables. We describe how to quantify leaf-dwelling arthropods by sealing the leaves and end of branches in a bag, clipping and freezing the bagged material, and rinsing the previously frozen material in water to separate arthropods from the substrate and quantify them. As we demonstrate, this method can be used at a landscape scale to quantify leaf-dwelling arthropods with adequate precision to test for and describe how spatial, temporal, environmental, and ecological variables influence arthropod richness and abundance. This method allowed us to detect differences in density, richness, and diversity of leaf-dwelling arthropods among 5 genera of trees commonly found in southeastern deciduous forests.

We describe how to quantify leaf dwelling arthropods by sealing the leaves and end of branches in a bag, clipping and freezing the bagged material, and rinsing the previously frozen material in water to separate arthropods from the substrate for quantification.

Eine Methode zur Quantifizierung von Laub-Behausungs-Arthropoden

Terrestrial arthropods play an important role in our environment. Quantifying arthropods in a way that allows for a precise index or estimates of density ...

Quantifying Corticolous Arthropods Using Sticky Traps

Terrestrial arthropods play an important role in our environment. Quantifying arthropods in a way that allows for a precise index or estimate of density requires a method with high detection probability and a consistent sampling area. We used manufactured sticky traps to compare abundance, total length (a surrogate for biomass), richness, and Shannon diversity of corticolous arthropods among the boles of 5 tree species. Efficacy of this method was adequate to detect variation in corticolous arthropods among tree species and provide a standard error of the mean that was &#60;20% of the mean for all estimates with sample sizes from 7 to 15 individual trees of each species. Our results indicate, even with these moderate sample sizes, the level of precision of arthropod community metrics produced with this approach is adequate to address most ecological questions regarding temporal and spatial variation in corticolous arthropods. Results from this method differ from other quantitative approaches such as chemical knockdown, visual inspection, and funnel traps in that they provide an indication of corticolous arthropod activity over a relatively long-term, better including temporary bole residents, flying arthropods that temporarily land on the tree bole and crawling arthropods that use the tree bole as a travel route from the ground to higher forest foliage. Furthermore, we believe that commercially manufactured sticky traps provide more precise estimates and are logistically simpler than the previously described method of directly applying a sticky material to tree bark or applying a sticky material to tape or other type of backing and applying that to the tree bark.

We describe a semi-quantitative approach of measuring characteristics of corticolous (bark-dwelling) arthropod communities. We placed commercially manufactured sticky traps on tree boles to estimate abundance, total length (a surrogate to biomass), richness, and Shannon diversity for comparison among tree species.

Quantifizierung von Corticolous Arthropoden mit Haftfallen

Terrestrial arthropods play an important role in our environment. Quantifying arthropods in a way that allows for a precise index or estimate of density ...

Low-Cost Automated Flight Intercept Trap for the Temporal Sub-Sampling of Flying Insects Attracted to Artificial Light at Night

Sampling methods are selected depending on the targeted species or the spatial and temporal requirements of the study. However, most methods for passive sampling of flying insects have a poor temporal resolution because it is time-consuming, costly and/or logistically difficult to perform. Effective sampling of flying insects attracted to artificial light at night (ALAN) requires sampling at user-defined time points (nighttime only) across well-replicated sites resulting in major time and labor-intensive survey effort or expensive automated technologies. Described here is a low-cost automated intercept trap that requires no specialist equipment or skills to construct and operate, making it a viable option for studies that require temporal sub-sampling across multiple sites. The trap can be used to address a wide range of other ecological questions that require a greater temporal and spatial scale than is feasible with previous trap technology.

To study the impacts of artificial light at night (ALAN) on nocturnal flying insects, sampling needs to be confined to nighttime. The protocol describes a low-cost automated flight intercept trap that allows researchers to sample at user-defined periods with increased replication.

Kostengünstige automatisierte Flugabfangfalle für die zeitliche Teilprobenahme von fliegenden Insekten, die nachts von künstlichem Licht angezogen werden

Sampling methods are selected depending on the targeted species or the spatial and temporal requirements of the study. However, most methods for passive ...

Analysis of Gene Expression in Emerald Ash Borer (Agrilus planipennis) Using Quantitative Real Time-PCR

Emerald ash borer (EAB, Agrilus planipennis) is an exotic invasive pest, which has killed millions of ash trees (Fraxinus spp) in North America. EAB continues to spread rapidly and attacks ash trees of different ages, from saplings to mature trees. However, to date very little or no molecular knowledge exists for EAB. We are interested in deciphering the molecular-based physiological processes at the tissue level that aid EAB in successful colonization of ash trees. In this report we show the effective use of quantitative real-time PCR (qRT-PCR) to ascertain mRNA levels in different larval tissues (including midgut, fat bodies and cuticle) and different developmental stages (including 1st-, 2nd-, 3rd-, 4th-instars, prepupae and adults) of EAB. As an example, a peritrophin gene (herein named, AP-PERI1) is exemplified as the gene of interest and a ribosomal protein (AP-RP1) as the internal control. Peritrophins are important components of the peritrophic membrane/matrix (PM), which is the lining of the insect gut. The PM has diverse functions including digestion and mechanical protection to the midgut epithelium.

Analysis of Gene Expression in Emerald Ash Borer Agrilus planipennis Using Quantitative Real Time-PCR

Quantitative real-time PCR (qRT-PCR) is an effective tool to diagnose mRNA levels in different insect tissues and developmental stages. In this report we show the use of qRT-PCR to ascertain mRNA levels in different larval tissues and developmental stages of the invasive insect species, emerald ash borer.

Analysis of Gene Expression in Emerald Ash Borer ( Agrilus planipennis) Mittels quantitativer Real Time-PCR

Emerald ash borer (EAB, Agrilus planipennis) is an exotic invasive pest, which has killed millions of ash trees (Fraxinus spp) in North America. EAB ...