Dieses Protokoll eignet sich von der früheren Arbeit in unserem Labor (Huang Et al. 8). alle hier beschriebene Methoden von Animal Care und Nutzung Ausschuss (ACUC) vom Baylor College of Medicine genehmigt worden. Es wird von der McNair Medical Institute, NINDS Grant R01NS078294, B.R.A., NIH IDDRC Grant U54HD083092, NIDDK Stipendium F30DK112571 JMP und NINDS Grant F31NS092435, CKM unterstützt.

Alle Mäuse dienten unter ein Protokoll nach NIH-Standards vom Baylor College of Medicine institutionelle Animal Care und Use Committee genehmigt. In diesem Protokoll verwendeten Mäuse waren alle erwachsenen Mäusen (> 6 Wochen alt) auf C57BL6/j Hintergrundinformationen und enthalten sowohl männliche als auch weibliche Mäuse. Nach Ausbildung/Inszenierung Aufgaben sind Mäuse in ihre Heimat Käfig zurück.
1. Aufbau und allgemeine Regeln für die Verwendung von operantes Lernen Box (Abbildung 1B, C)
<ol><li>Montieren Sie eine Maus-Kammer mit Kammerboden. Halten Sie die Trainings-Box in einer verkehrsarmen, schwach beleuchteten Bereich um Ablenkungen zu vermeiden.</li>
	<li>Bohren Sie jedes Wasser-Anschluss mit einem kleinen Loch an der Spitze erlauben eine 18-Gauge-Nadel, Wasser im Hafen zu verzichten.</li>
	<li>Füllen Sie Glasflasche mit Geruchsstoff aufgelöst in Mineralöl (wöchentlich ersetzt), und ziehen Sie fest an der Kappe.</li>
	<li>Verbinden Sie 18-Gauge-Nadel mit Silikonschlauch. Stechen Sie Glassockel Fläschchen mit 18-Gauge-Nadel, und schließen Sie andere Silikonschlauch auf die Einnahme der Geruch Häfen.</li>
	<li>Platzieren Sie jedes Silikonschlauch in eine Geruch-Ventil.</li>
	<li>Die Vakuumleitung an die Geruch-Ports anschließen.</li>
	<li>Ein Stab aus Metall halten beimessen Sie zwei 10 mL Spritzen, und schließen Sie Schläuche an die Spritzen. Verbinden Sie die andere Seite des Schlauches mit einer Nadel 18 G. Passen Sie die Nadel in die Bohrung der Nase Poke-Port auf der Maus-Kammer. Verbinden Sie das andere Ende des Schlauches, das Wasserventil.</li>
	<li>Füllen Sie die zwei 10 mL Spritzen mit Nagetier Trinkwasser.</li>
	<li>Verbinden Sie eine Air-Flow-Meter mit dem Lufteinlass und erhalten Sie Luftstrom bei 3 – 5 L/min zu.</li>
	<li>2 Ventile, 2 Geruch Ventile, 2 Wasser-Anschlüsse, Geruch Port und macht auf das USB-Interface-System zu verbinden. Schließen Sie alle Ventile auf "Output" Ports, den Geruch und Wasser Häfen zu 'Input' Häfen. Schließen Sie alle Geräte Strom Ausgänge aus dem USB-Interface-Box an, und zu guter Letzt schließen die USB-Interface-Box an.</li>
	<li>Passen Sie die Vakuum-Saug zur Vermeidung von Kreuzkontamination von Gerüchen zwischen Studien.</li>
	<li>Verwenden Sie Geruch-spezifische Schlauch Verbindung Duftstoff Fläschchen an die Kammer.</li>
</ol>(2) Maus-Zubereitung: 1 – 3 Tage
<ol><li>Mäuse in 3 Gruppen unterteilen: Kontrolle (keine olfaktorische Schulung notwendig), Pseudo-ausgebildete (Mäuse, die Belohnung oder Bestrafung nach dem Zufallsprinzip erhalten), und Gruppen ausgebildet. Setzen Sie Pseudo-ausgebildete Mäuse auf die Ausbildung Box und Geruch Lieferung aus, sondern bieten Sie keine olfaktorische Ausbildung, weil das Ergebnis von Belohnung und Strafe nach dem Zufallsprinzip verbunden ist mit dem Geruch geliefert. Hinweis: Die Pseudo-ausgebildete Gruppe wird das Training Paradigma unter den "Pseudotraining"-Phasen durchlaufen. Ausgebildete Mäuse werden alle Stufen der Ausbildung abzuschließen. Pseudotraining ist optional, wenn der Zweck des Experiments ist es, assay für Verhaltensunterschiede Geruch Diskriminierung oder lernen. Das Protokoll vorausgesetzt, hier fügt dieser Gruppe, wenn der Experimentator neuronalen Unterschiede vor und nach dem Training untersuchen will. Die pseudotrained Gruppe würde dann für die passive Geruch Belichtung und nicht-olfaktorische Verwandte Training steuern.</li>
	<li>Beginnen Wasser Einschränkung bei Mäusen auf 40 mL/kg/Tag. Vermeiden Sie Körpergewicht Verlust mehr als 20 % der Tiere Grundlinie Gewicht zur Vermeidung von Stress (Abb. 2A).</li>
	<li>Wiegen Sie die Mäuse täglich, um sicherzustellen, dass sie über 80 % der Grundlinie Gewicht sind. Wenn eine Maus unterhalb dieser Schwelle fällt, entfernen Sie die Maus aus der Studie und ermöglichen Sie freien Zugang zu Wasser.</li>
	<li>Alle Umweltfaktoren im gesamten Protokoll einschließlich Temperatur, Lärm und streunende Gerüche (einschließlich persönliche Körper und Parfüm/Köln/Deodorant-Düfte) konstant zu halten. Hinweis: Wie bei allen Tierverhalten testen, können kleine Veränderungen der Umwelt stark Ergebnisse beeinflussen.</li>
</ol>3. Anleitung für alle Stufen
<ol><li>Trainingssoftware für jede Stufe unten Code. Starten Sie die Software auf der behavioral Software. Hinweis: Codierung für alle Stufen in zusätzliche Codierung Dateien enthalten sind. Daten für 20 Wanderwege sind gruppiert, wie eine einzelne Block und Maus Performance über Blöcke angezeigt wird. Darüber hinaus kann jede Stufe wiederholt werden auf einer Maus für eine Anzahl von Tagen bis Fertigstellungskriterien erfüllt sind.</li>
	<li>Halten Sie Mäuse nicht im Feld "Verhalten" für mehr als 60 min/Tag.</li>
	<li>Saubere Maus Abfälle aus dem Käfig, bevor jede Maus in den Käfig übertragen werden. Sprühen Sie und wischen Sie die Kammer mit 70 % Ethanol, Maus Geruch Ablenkung zu minimieren.</li>
</ol>4. Ausbildung Stufe 1: Zuordnen von Wasser Belohnung mit einem Center Nase Poke, 1 – 3 Tage
<ol><li>Ordnen Sie in dieser Phase Mäuse mit einer Wasser-Belohnung bei der Auseinandersetzung mit den Wasser-Anschluss zu</li>
	<li>
Ausbildung Stufe 1 Programmieranleitung
	<ol>
<li>Programmieren Sie diese Phase nur Wasser Lieferung Port verwenden. Lassen Sie die Maus eine Wasser-Belohnung für jede Nase Poke. Hinweis: Das Programm gibt die Dauer des Verfahrens und die Gesamtzahl der Wasser belohnt die Maus erhalten.</li>
	</ol>
</li>
	<li>Legen Sie die pseudotraining Stufe 1 Programmierung Training Stufe 1 identisch.</li>
	<li>
Box-Konfiguration und Maus-setup
	<ol>
<li>Konfigurieren Sie Feld Verhalten mit einem Wasser-Anschluss in der Mitte und mit allen Seite Ports nicht zugegriffen werden. Legen Sie eine Maus in der Kammer. Schließen Sie die Maus-Kammer und beginnen Sie der Stufe 1-Programm zu.</li>
	</ol>
</li>
	<li>Betrachten dieser Phase als abgeschlossen, wenn die Maus 100 Versuche innerhalb von 60 min. entfernen erreicht die Maus aus der Kammer nach 60 min oder 100 Studien wurden abgeschlossen (Abbildung 2B). Hinweis: Aufgrund von individuellen Unterschieden, werden einige Mäuse natürlich unterlassen Feld zu erkunden.</li>
	<li>Wenn Unterstützung benötigt wird, liefern Sie manuell Wasser in den Wasser-Anschluss. Wiederholen Sie diese Bühne für bis zu 3 Tage. Hinweis: Mäuse, die bereits ausgebildet werden können weitere Parität zu halten und zu halten auf flüssige Beschränkung wiederholt werden. Es ist auch möglich, eine ganze Gruppe auf Stufe 2 zu fördern, wenn der Konzerndurchschnitt 100 Studien/60 min erreicht. Dadurch wird für alle Mäuse, Ausbildung am selben Tag fortzusetzen.</li>
</ol>5. Ausbildung Stufe 2: Seitenanschluss Wasser Belohnung zuordnen Zentrum Port Nase Poke, 1 – 5 Tage
<ol><li>Lassen Sie in dieser Phase die Mäuse stecken Sie ihre Nase in Zentrum Port und erhalten dann sofort eine Wasser-Belohnung auf der Seite-Häfen.</li>
	<li>
Box-Konfiguration und Maus-setup
	<ol>
<li>Konfigurieren Sie das und jeder nachfolgende Phase mit 2 Wasser Anschlüsse an den Seiten und dem Geruch-Hafen in der Mitte. Legen Sie eine Maus in der Kammer. Schließen Sie die Maus-Kammer und beginnen Sie der Stufe 2-Programm.</li>
	</ol>
</li>
	<li>
Ausbildung Stufe 2 Programmieranleitung
	<ol>
<li>Bieten Sie die Maus eine Belohnung sofort Wasser auf beiden Seiten nach einer Nase Poke ins Zentrum Geruch Druckstutzen. Ausgabeparameter für diese Stufe eingestellt, als die Dauer der Prüfung, die Anzahl der Versuche eingeleitet und die Anzahl der Wasser-Belohnungen erhalten innerhalb von 5 s von einer Nase Poke.</li>
	</ol>
</li>
	<li>Legen Sie die pseudotraining Stufe 2 Programmierung Ausbildung Stufe 2 identisch.</li>
	<li>Diesem Zeitpunkt als abgeschlossen zu betrachten, wenn ein Minimum von 40 Studien erfolgen in 60 min, mit mindestens 25 % Wasser Belohnungen erhalten innerhalb von 5 s von der Mitte Port Nase Poke. Entfernen Sie die Maus nach Abschluss dieser Phase (Abbildung 2C) hat. Hinweis: Das Trainingsprogramm berechnet den Prozentsatz von Wasser Belohnungen erhalten rechtzeitig um Abschluss dieser Phase zu bestimmen. Mäuse wie schnell unterscheiden sich zwar in Abschluss dieser Phase, die meisten Mäuse Fertigstellungskriterien innerhalb von 5 Tagen erreicht. Jedoch wenn eine Maus dieser Phase nicht innerhalb von 5 Tagen abgeschlossen wurde, nicht voraus die Maus in die nächste Phase. Diese Maus wird aus der Kohorte entfernt werden.</li>
</ol>6. Ausbildung Stufe 3: Zuordnen von Wasser Belohnung mit einem bestimmten Geruch und innerhalb eines bestimmten Zeitfensters, 1 – 3 Tage
<ol><li>Lassen Sie in dieser Phase die Mäuse, die einen gehen (s +) Geruch auf eine Nase Poke im Zentrum Port erhalten. Anschließend liefern Wasser Belohnung auf eine Nase Poke in die Seite Wasser Anschlüsse innerhalb von 5 s.</li>
	<li>
Ausbildung Stufe 3 Programmieranleitung
	<ol>
<li>Die s + Geruch in der Mitte Geruch Port zu liefern.</li>
		<li>Die Wasser-Belohnung zu liefern, wenn die Maus die Seite-Häfen innerhalb von 5 steckt s Lieferung einer Geruch. Hinweis: Das Programm beginnt mit nur erfordern ein 100ms Nase Stich ins Zentrum Port um eine Wasser-Belohnung zu erzielen. Sobald die Maus Zentrum Port für die richtige Menge an Zeit in 80 % der Studien stößt, die Zeitdauer von einer Nase Poke erforderlich für eine Wasser-Belohnung von 50 ms erhöht wird bis zu 400 ms.</li>
		<li>Legen Sie die Ausgabeparameter identisch mit Stufe 2.</li>
	</ol>
</li>
	<li>Festlegen der pseudotraining Stufe 3-Programmieranleitung als Training Stufe 3. Jedoch schließen Sie nicht die s + Geruch an den Geruch Anwendungsbereitstellungs-Controller, um sicherzustellen, dass die s + Geruch nicht mit Wasser Belohnung verbunden ist.</li>
	<li>
Box-Konfiguration und Maus-setup
	<ol>
<li>Die gleiche Konfiguration auf Stufe 2 eingestellt.</li>
		<li>Die s + Geruch an den Geruch Anwendungsbereitstellungs-Controller anschließen. Legen Sie eine Maus in der Kammer. Schließen Sie die Maus-Kammer und beginnen Sie der Stufe 3-Programm zu. Sobald diese Phase abgeschlossen ist, entfernen Sie die Maus.</li>
	</ol>
</li>
	<li>Berücksichtigen Sie es gibt mehr als 60 Belohnungen innerhalb von 60 min (Abbildung 2D) dieser Phase als vollständig.</li>
</ol>7. Etappe 4A: Zuordnen von No-Go (s-) Geruch und Timeout Strafe, 1 – 2 Tage
<ol><li>Stellen Sie in dieser Phase die Mäuse ein No-Go-Geruch (s-). Bieten Sie eine Auszeit-Strafe für die Mäuse, die fälschlicherweise auf die Wasser-Anschlüsse gehen nach der No-Go-Geruch riechen.</li>
	<li>
Ausbildung Stufe 4A Programmieranleitung
	<ol>
<li>Liefern Sie nur den s + Geruchsstoff in dieser Phase zu Beginn identisch mit Stufe 3. Beginnen Sie nach Mäusen komplett 40 Studien random Lieferung der Gerüche, s + und S-Gerüche aufzunehmen. Programm 2-s Timeout Strafe, wenn die Maus versucht, eine Wasser-Belohnung suchen nach präsentiert die No-Go-Geruch. Hinweis: Um Hilfe bei der Unterscheidung von Go vs. No-Go, IR-Standlicht manipuliert werden können, so dass sie auf während Go Geruchsstoffe und berühren während No-Go-Geruchsstoffe. Die Lichter fungieren als sekundäre Cue, Mäuse in der Erstausbildung zu unterstützen. Wenn Mäuse mit den Lichtern ausgebildet sind, sollten sie unter Go Training ohne Licht zu bestätigen, dass sie die Aufgabe mit Gerüchen gelernt haben.</li>
		<li>Legen Sie die Ausgabeparameter als Dauer der Studie, Anzahl der Versuche eingeleitet, Anzahl der Versuche abgeschlossen, % richtig und Gesamtzahl der Belohnungen erhalten.</li>
	</ol>
</li>
	<li>Pseudotraining Stadium 4A Programmieranleitung dasselbe als Trainingsphase 4 mit Ausnahme von s + s und S-Gerüche werden von Anfang an nach dem Zufallsprinzip vorgestellt. Geben Sie Wasser Belohnung oder Timeout Strafen nach dem Zufallsprinzip, ungeachtet der Aufgabenleistung.</li>
	<li>
Box-Konfiguration und Maus-setup
	<ol>
<li>Set-Box-Konfiguration als vorherige Stufe 3.</li>
		<li>S + und S-Geruch, der Geruch Anwendungsbereitstellungs-Controller anschließen. Legen Sie eine Maus in der Kammer. Schließen Sie die Maus-Kammer und beginnen Sie das Bühnenprogramm 4A. Schalten Sie nach den Mäusen komplett 40 versuchen das Programm, nach dem Zufallsprinzip die Gerüche zu liefern. Sobald diese Phase abgeschlossen ist, entfernen Sie die Maus.</li>
	</ol>
</li>
	<li>Berücksichtigen Sie es gibt 40 Studien mit > 60 % richtigen Antworten dieser Phase als vollständig.</li>
</ol>8. Etappe 4 b: Zuordnen von No-Go (s-) Geruch und Time Out Strafe, 5 – 11 Tage
<ol><li>
Ausbildung Stufe 4 b Programmieranleitung
	<ol>
<li>Dieser Phase identisch mit Stufe 4A, zu machen, jedoch ist die Timeout-Strafe für Versuch Wasser Belohnung nach einer S-Geruch 4 s.</li>
	</ol>
</li>
	<li>Legen Sie die Pseudotraining Stufe 4 b Programmieranleitung identisch mit Stufe 4A, aber Wasser Belohnung und Auszeit Strafe werden nach dem Zufallsprinzip pro Testversion geliefert.</li>
	<li>
Box-Konfiguration und Maus-setup
	<ol>
<li>Set-Box-Konfiguration als vorherige Stufe 4A.</li>
		<li>S + und S-Geruch, der Geruch Anwendungsbereitstellungs-Controller anschließen. Legen Sie eine Maus in der Kammer. Schließen Sie die Maus-Kammer und beginnen Sie das Bühnenprogramm 4 b. Berücksichtigen diese Phase abgeschlossen gibt es > 100 Versuche innerhalb von 60 min mit Genauigkeit > 85 % (Abb. 2E)</li>
	</ol>
</li>
	<li>Überwachen Sie den maximalen und minimalen Prozentsatz korrekt für jede Sitzung, jede Maus Fortschritt in dieser Phase zu verfolgen. Ca. 85-90 % der Mäuse erreichen Fertigstellungskriterien für diese Phase. Schließen Sie Mäuse, die Fertigstellung dieser Phase für die Go/No-Go Testphase nicht erreichen.</li>
	<li>(Optional) Am Ende dieser Phase gelten Sie ein Umkehr-Training, wo der Geruch Fläschchen Plattform Go/No-Go Geruchsstoffe eingeschaltet sind. Stellen Sie sicher, dass die Mäuse nicht mit einen anderen Reiz, wie das Geräusch der Ventile die Seite Ports zugeordnet sind.</li>
</ol>9. Go/No-Go assay Aufgabe: 1 Tag, 20 Min per Mausklick pro Tag
<ol><li>Betrachten Sie dies als die letzte Etappe zur Genauigkeit der Geruch Verbände erkennen und lernen, Geruch Paare diskriminieren zu bestimmen. Hinweis: Neuartige Geruchsstoffe werden genutzt für S + / S-testen Sie wie lange Tiere nehmen, um neue Zusammenhänge zu lernen. Strukturell ähnlichen Geruchsstoff Paare werden verwendet, um die Aufgabe schwieriger. Beispiele hierfür sind 1-Butanol vs. 1-Pentanol, Isoamyl Acetat vs. Isoamyl Butyrat und + Carvon vs. - Carvon.</li>
	<li>
Programmieranleitung
	<ol>
<li>Lassen Sie die Trainings-Software die Länge der Nase Poke ermitteln. Programmieren Sie ein 300 ms Nase Stich ins Zentrum Geruch Port, die Aufgabe auszuführen.</li>
		<li>Setzen die Ausgabeparameter identisch mit Stadium 4 b, außer nicht mit jedem Licht geführt, Hinweise.</li>
	</ol>
</li>
	<li>
Box-Konfiguration und Maus-setup
	<ol>
<li>Set-Box-Konfiguration als vorherige Stufe 4 b.</li>
		<li>S + und S-Geruch, der Geruch Anwendungsbereitstellungs-Controller anschließen. Legen Sie eine Maus in der Kammer. Schließen Sie die Maus-Kammer und beginnen Sie der Bühne Go/No-Go-Programm zu. Setzen Sie die Mäuse, die das olfaktorische Lernaufgabe zu neuartigen Paare von chemisch ähnliche Gerüche gelernt haben. Hinweis: Wildtyp-Mäusen mit ausreichenden Geruch Diskriminierung erreichen > 85 % Genauigkeit mit neuartigen Geruchsstoffe nach ca. 10-20 Blöcke oder 200-400 Studien(Abbildung 3).</li>
	</ol>
</li>
</ol>

<ol>
	<li>Carleton, A., Petreanu, L. T., Lansford, R., Alvarez-Buylla, A., Lledo, P. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Becoming+a+new+neuron+in+the+adult+olfactory+bulb.">Becoming a new neuron in the adult olfactory bulb.</a> Nat Neurosci. 6 (5), 507-518 (2003).</li><li>Petreanu, L., Alvarez-Buylla, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Maturation+and+death+of+adult-born+olfactory+bulb+granule+neurons:+role+of+olfaction.">Maturation and death of adult-born olfactory bulb granule neurons: role of olfaction.</a> J Neurosci. 22 (14), 6106-6113 (2002).</li><li>Yamaguchi, M., Mori, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Critical+period+for+sensory+experience-dependent+survival+of+newly+generated+granule+cells+in+the+adult+mouse+olfactory+bulb.">Critical period for sensory experience-dependent survival of newly generated granule cells in the adult mouse olfactory bulb.</a> PNAS. 102 (27), 9697-9702 (2005).</li><li>Rochefort, C., Gheusi, G., Vincent, J. D., Lledo, P. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Enriched+odor+exposure+increases+the+number+of+newborn+neurons+in+the+adult+olfactory+bulb+and+improves+odor+memory.">Enriched odor exposure increases the number of newborn neurons in the adult olfactory bulb and improves odor memory.</a> J Neurosci. 22 (7), 2679-2689 (2002).</li><li>Arenkiel, B. R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Activity-induced+remodeling+of+olfactory+bulb+microcircuits+revealed+by+monosynaptic+tracing.">Activity-induced remodeling of olfactory bulb microcircuits revealed by monosynaptic tracing.</a> PloS one. 6 (12), 29423 (2011).</li><li>Alonso, M., Viollet, C., Gabellec, M. M., Meas-Yedid, V., Olivo-Marin, J. C., Lledo, P. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Olfactory+discrimination+learning+increases+the+survival+of+adult-born+neurons+in+the+olfactory+bulb.">Olfactory discrimination learning increases the survival of adult-born neurons in the olfactory bulb.</a> J Neurosci. 26 (41), 10508-10513 (2006).</li><li>Quast, K. B., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Developmental+broadening+of+inhibitory+sensory+maps.">Developmental broadening of inhibitory sensory maps.</a> Nat Neurosci. 20 (2), 189 (2017).</li><li>Huang, L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Task+learning+promotes+plasticity+of+interneuron+connectivity+maps+in+the+olfactory+bulb.">Task learning promotes plasticity of interneuron connectivity maps in the olfactory bulb.</a> J Neurosci. 36 (34), 8856-8871 (2016).</li><li>Arbuckle, E. P., Smith, G. D., Gomez, M. C., Lugo, J. 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K., Tanifuji, M., Mori, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Odor+maps+in+the+mammalian+olfactory+bulb:+domain+organization+and+odorant+structural+features.">Odor maps in the mammalian olfactory bulb: domain organization and odorant structural features.</a> Nat Neurosci. 3 (10), 1035 (2000).</li><li>Cang, J., Isaacson, J. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=In+vivo+whole-cell+recording+of+odor-evoked+synaptic+transmission+in+the+rat+olfactory+bulb.">In vivo whole-cell recording of odor-evoked synaptic transmission in the rat olfactory bulb.</a> J Neurosci. 23 (10), 4108-4116 (2003).</li><li>Parthasarathy, K., Bhalla, U. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Laterality+and+symmetry+in+rat+olfactory+behavior+and+in+physiology+of+olfactory+input.">Laterality and symmetry in rat olfactory behavior and in physiology of olfactory input.</a> J Neurosci. 33 (13), 5750-5760 (2013).</li><li>Rajan, R., Clement, J. P., Bhalla, U. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Rats+smell+in+stereo.">Rats smell in stereo.</a> Science. 311 (5761), 666-670 (2006).</li><li>Batista-Brito, R., Close, J., Machold, R., Fishell, G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+distinct+temporal+origins+of+olfactory+bulb+interneuron+subtypes.">The distinct temporal origins of olfactory bulb interneuron subtypes.</a> J Neurosci. 28 (15), 3966-3975 (2008).</li><li>Sakamoto, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Continuous+postnatal+neurogenesis+contributes+to+formation+of+the+olfactory+bulb+neural+circuits+and+flexible+olfactory+associative+learning.">Continuous postnatal neurogenesis contributes to formation of the olfactory bulb neural circuits and flexible olfactory associative learning.</a> J Neurosci. 34 (17), 5788-5799 (2014).</li><li>Resendez, S. L., Jennings, J. H., Ung, R. L., Namboodiri, V. M. K., Zhou, Z. C., Otis, J. M., Stuber, G. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Visualization+of+cortical,+subcortical,+and+deep+brain+neural+circuit+dynamics+during+naturalistic+mammalian+behavior+with+head-mounted+microscopes+and+chronically+implanted+lenses.">Visualization of cortical, subcortical, and deep brain neural circuit dynamics during naturalistic mammalian behavior with head-mounted microscopes and chronically implanted lenses.</a> Nat Protoc. 11 (3), 566 (2016).</li><li>Park, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=One-step+optogenetics+with+multifunctional+flexible+polymer+fibers.">One-step optogenetics with multifunctional flexible polymer fibers.</a> Nat Neurosci. 20 (4), 612 (2017).</li></ol>

Die Autoren erklären keine Interessenkonflikte und keinen Interessenkonflikt.

Das Nagetiere olfaktorische System bietet ein einzigartiges Modell um sensorische abhängigen Plastizität zu studieren. Hier präsentieren wir eine olfaktorische lernen Paradigma um Mäuse zuzuordnende Geruchsstoff Paare entweder eine Belohnung oder Strafe zu trainieren. Durch diese Lernaufgabe können nachgeschalteten Stromkreis Änderungen in späteren Experimenten (Elektrophysiologie, in Vivo neuronale Bildgebung, usw.) untersucht werden. Nach der Fertigstellung werden Mäuse lernen, zur Durchführu...

Die Maus OB, wo Geruch Informationen zuerst das zentrale Nervensystem (ZNS) eingibt, liefert ein hervorragendes Modell um Erfahrung-abhängige strukturelle Veränderungen zu untersuchen. OB Schaltungs integriert kontinuierlich Erwachsenen geboren Neuronen in einer Aktivität-abhängigen Weise. Erwachsenen geboren Neuron Vorstufen Teilen aus von Vorfahren, die die subventricular Zone angrenzend an der seitlichen Ventrikel1Linie. Bei der Migration in den OB, diese neuronalen Vorstufen überleben, zu unterscheiden, und integrieren Sie als hemmende Granulat Zellen oder Apoptose2zu unterziehen. Auswahl für das Schicksal der Zelle wird durch olfaktorische Aktivitäten, einschließlich der olfaktorischen lernen3,4,5,6beeinflusst. Nach der Integration treten lernen-induzierte Synaptische Veränderungen in Granulat Zellen während einer zweiwöchigen kritische Periode7,-8. Somit eignen sich Assays für olfaktorische lernen für die Prüfung wie Erfahrung-abhängigen Plastizität Einflüsse strukturelle und funktionelle Reorganisation einer ausgereiften Gehirn-Schaltung.
Dieses Protokoll bietet eine olfaktorische Ausbildungsansatz mithilfe einer operanten Konditionierung Paradigmas. In dieser Aufgabe sind Wasser entzogen Mäuse ausgebildet, um eine Testversion Timeout-Strafe ein Geruch ("Go" Geruch) mit einer Wasser-Belohnung und einen anderen Geruch ("No-Go" Geruch) zugeordnet. Mäuse-Fortschritt durch eine abgestufte Reihe von Ausbildungsphasen im Laufe von 2-4 Wochen. Wenn die Ausbildung abgeschlossen ist, Mäuse reagieren auf den Go oder No-Go Geruch mit diskreten, entsprechende Verhaltensweisen (Suche nach Wasser Belohnung auf Go Studien und nicht der Suche nach Wasser Belohnung über No-Go-Studien) (Abb. 1A). Nach der Ausbildung abgeschlossen, ist Mäuse können weiter mit chemisch ähnlichen Geruch Paare in Frage gestellt werden, um Diskriminierung zu testen oder zu umgestellt werden Studien untersuchen wie olfaktorische lernen die Struktur oder Funktion des die OB. verändert Obwohl Geruch Diskriminierung Aufgaben zuvor beschrieben wurden, die meisten verlassen sich auf subjektive Messungen z. B. Anzahl der schnüffelt zwischen zwei Geruchsstoffe9,10. Darüber hinaus ist die Notwendigkeit für die menschliche Bewertung solcher Aufgaben auch zeitintensiv. Die Go/No-Go olfaktorische Lernaufgabe beschrieben in diesem Protokoll bietet eine unvoreingenommene, direkte Messung der Geruch Diskriminierung und olfaktorischen lernen.

<table><tbody><tr><td>Glass vial</td><td>Qorpak</td><td>GLC-01016</td><td></td></tr><tr><td>Silicon Tubing</td><td>Thermo Scientific</td><td>86000030</td><td></td></tr><tr><td>18 gauge needles</td><td>BD</td><td>305196</td><td></td></tr><tr><td>1-Butanol</td><td>Sigma Aldrich</td><td>437603</td><td></td></tr><tr><td>Propionic Acid</td><td>Sigma Aldrich</td><td>402907</td><td></td></tr><tr><td>Mouse Chamber</td><td>Med Associates</td><td>ENV-307W</td><td></td></tr><tr><td>Chamber Floor</td><td>Med Associates</td><td>ENV-307W-GFW</td><td></td></tr><tr><td>Water Port</td><td>Med Associates</td><td>ENV-313W</td><td>Need two</td></tr><tr><td>Odor stimulus</td><td>Med Associates</td><td>ENV-275</td><td>Contain 2 valves to gate odor delivery&amp;nbsp;</td></tr><tr><td>Odor Port</td><td>Med Associates</td><td>ENV-375W-NPP</td><td></td></tr><tr><td>USB Interface</td><td>Med Associates</td><td>DIG-703A-USB</td><td></td></tr><tr><td>Desktop Computer with Windows 2000, XP, Vista, or 7</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Flow meter</td><td>VWR</td><td>97004-952</td><td></td></tr><tr><td>Behavioral software</td><td>Med Associates</td><td>SOF-735</td><td>This software, which runs each training stage, has now been replaced with Med-PC V</td></tr><tr><td>Data Transfer software</td><td>Med Associates</td><td>SOF-731</td><td>This software formats the data to Excel</td></tr><tr><td>Training Software</td><td>Med Associates</td><td>DIG-703A-USB</td><td>This software is used to program each training stage</td></tr><tr><td>Water Valve</td><td>Neptune Research</td><td>225P012-11</td><td>This valve is used to gate the water delivery. Need Two</td></tr><tr><td>Odor Valve</td><td>Neptune Research</td><td>360P012-42</td><td>This valve is used to gate the odor delivery. Need Two</td></tr></tbody></table>

an objective and reproducible test of olfactory learning and discrimination in mice

Geruchssinn ist die vorherrschende sensorische Modalität bei Mäusen und beeinflusst viele wichtige Verhaltensweisen, einschließlich der Nahrungssuche, Raubtier-Erkennung, Paarung und Elternschaft. Wichtig ist, können Mäuse zuordnen neue Gerüche mit bestimmten Verhaltensreaktionen Einblick in olfaktorische Schaltung Funktion trainiert werden. Dieses Protokoll beschreibt das Verfahren für die Ausbildung Mäuse auf ein Go/No-Go operant Lernaufgabe. Bei diesem Ansatz Mäuse sind auf Hunderten von automatisierten Tests täglich für 2 – 4 Wochen trainiert und können dann auf neuartige Go/No-Go Geruch Paare beurteilen olfaktorische Diskriminierung, oder verwendet werden, für Studien über wie Geruch lernen die Struktur oder Funktion des die olfaktorischen verändert getestet werden Stromkreis. Darüber hinaus bietet die Maus Riechkolben (OB) Integration von Erwachsenen geboren Neuronen. Interessanterweise erhöht olfaktorische lernen das Überleben und die synaptischen Verbindungen dieser Neuronen Erwachsenen geboren. Dieses Protokoll ist daher, kombinierbar mit anderen biochemischen, elektrophysiologischen und bildgebenden Techniken Lernende und Tätigkeit-abhängige Faktoren zu untersuchen, die neuronale überleben und Plastizität zu vermitteln.

Wenn Mäuse die olfaktorischen Lernaufgabe gelernt haben, können sie jetzt neuartige Geruch Paare mit Belohnung und Bestrafung verknüpfen. Diese ausgebildeten Mäuse beginnen normalerweise mit etwa 50 % Genauigkeit auf die Go/No-Go-Aufgabe. Der richtigen Prozentsatz kann durch Test Block als eine Lernkurve für neuartige Geruch Paare(Abbildung 3)dargestellt. Innerhalb 10 Block-Studien, die meisten Mäuse weniger als 30 min durchführen zu n...

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An Objective and Reproducible Test of Olfactory Learning and Discrimination in Mice

Hier trainieren wir Mäuse auf eine assoziative Lernaufgabe Geruch Diskriminierung zu testen. Dieses Protokoll ermöglicht auch Studien zu lernen-induzierten strukturellen Veränderungen im Gehirn.

Eine objektive und reproduzierbare Test der olfaktorischen Lern- und Diskriminierung bei Mäusen

Olfaction is the predominant sensory modality in mice and influences many important behaviors, including foraging, predator detection, mating, and ...

an-objective-reproducible-test-olfactory-learning-discrimination

Research

JoVE Journal

Neuroscience

8.5K Aufrufe.  Baylor College of Medicine. Hier trainieren wir Mäuse auf eine assoziative Lernaufgabe Geruch Diskriminierung zu testen. Dieses Protokoll ermöglicht auch Studien zu lernen-induzierten strukturellen Veränderungen im Gehirn.

Serie: An Objective and Reproducible Test of Olfactory Learning and Discrimination in Mice

Low-stress Route Learning Using the Lashley III Maze in Mice

Many behavior tests designed to assess learning and memory in rodents, particularly mice, rely on visual cues, food and/or water deprivation, or other aversive stimuli to motivate task acquisition. As animals age, sensory modalities deteriorate. For example, many strains of mice develop hearing deficits or cataracts. Changes in the sensory systems required to guide mice during task acquisition present potential confounds in interpreting learning changes in aging animals. Moreover, the use of aversive stimuli to motivate animals to learn tasks is potentially confounding when comparing mice with differential sensitivities to stress. To minimize these types of confounding effects, we have implemented a modified version of the Lashley III maze. This maze relies on route learning, whereby mice learn to navigate a maze via repeated exposure under low stress conditions, e.g. dark phase, no food/water deprivation, until they navigate a path from the start location to a pseudo-home cage with 0 or 1 error(s) on two consecutive trials. We classify this as a low-stress behavior test because it does not rely on aversive stimuli to encourage exploration of the maze and learning of the task. The apparatus consists of a modular start box, a 4-arm maze body, and a goal box. At the end of the goal box is a pseudo-home cage that contains bedding similar to that found in the animal&#x2019;s home cage and is specific to each animal for the duration of maze testing. It has been demonstrated previously that this pseudo-home cage provides sufficient reward to motivate mice to learn to navigate the maze1. Here, we present the visualization of the Lashley III maze procedure in the context of evaluating age-related differences in learning and memory in mice along with a comparison of learning behavior in two different background strains of mice. We hope that other investigators interested in evaluating the effects of aging or stress vulnerability in mice will consider this maze an attractive alternative to behavioral tests that involve more stressful learning tasks and/or visual cues.

The Lashley III maze is a route-learning task that does not rely on aversive stimuli or visual cues. It is thus a highly attractive option for evaluating learning and memory, especially in aging mice or otherwise where stress is a consideration.

Low-Stress-Route Learning Mit dem Lashley III Maze in Mäuse

Many behavior tests designed to assess learning and memory in rodents, particularly mice, rely on visual cues, food and/or water deprivation, or other ...

Forschung

Neurowissenschaften

Testing for Odor Discrimination and Habituation in Mice

This video demonstrates a technique to establish the presence of a normally functioning olfactory system in a mouse. The test helps determine whether the mouse can discriminate between non-social odors and social odors, whether the mouse habituates to a repeatedly presented odor, and whether the mouse demonstrates dishabituation when presented with a novel odor. Since many social behavior tests measure the experimental animal&#8217;s response to a familiar or novel mouse, false positives can be avoided by establishing that the animals can detect and discriminate between social odors. There are similar considerations in learning tests such as fear conditioning that use odor to create a novel environment or olfactory cues as an associative stimulus. Deficits in the olfactory system would impair the ability to distinguish between contexts and to form an association with an olfactory cue during fear conditioning. 
In the odor habitation/dishabituation test, the mouse is repeatedly presented with several odors. Each odor is presented three times for two minutes. The investigator records the sniffing time directed towards the odor as the measurement of olfactory responsiveness. A typical mouse shows a decrease in response to the odor over repeated presentations (habituation). The experimenter then presents a novel odor that elicits increased sniffing towards the new odor (dishabituation). After repeated presentation of the novel odor the animal again shows habituation. This protocol involves the presentation of water, two or more non-social odors, and two social odors. In addition to reducing experimental confounds, this test can provide information on the function of the olfactory systems of new knockout, knock-in, and conditional knockout mouse lines.

This manuscript describes a protocol to examine the olfactory system of rodents. The olfactory habituation/dishabituation test will allow investigators to determine whether a mouse habituates to a repeatedly presented odor and whether the mouse demonstrates dishabituation when presented a novel odor.

Die Prüfung auf Geruch Diskriminierung und Habituation in Mice

This video demonstrates a technique to establish the presence of a normally functioning olfactory system in a mouse. The test helps determine whether the ...

Verhalten

Simple and Computer-assisted Olfactory Testing for Mice

Olfaction is highly conserved among species and is required for reproduction and survival.
In humans, olfaction is also one of the senses that is affected with aging and is a strong predictor of neurodegenerative diseases. Thus, olfaction testing is used as a non-invasive diagnostic method to detect neurological deficits early on. In order to understand the mechanisms underlying olfactory network susceptibility, olfactory research in rodents has gained momentum in the past decade.
Here, we present a very simple, time efficient and reproducible olfactory testing method of innate odor perception and sensitivity in mice without the need of any prior food or water restriction. The tests are performed in a familiar environment to the mice, require only the scents and a 2 min session of odorant exposure. The analysis is performed, post-hoc, using computer-assisted commands on ImageJ and can be, therefore, carried out from start to end by one researcher.
This protocol does not require any special hardware or setup and is indicated for any laboratory interested in testing olfactory perception and sensitivity.

We present a simple and unbiased olfactory test in mice. With this protocol olfactory discrimination, preference, avoidance and sensitivity to a novel odor as compared to water can be assessed in single behavioral sessions. This method is indicated for a single experimenter and analysis is based on computer-assisted video processing.

Einfache und Computergestützte Riechtests für Mäuse

Olfaction is highly conserved among species and is required for reproduction and survival.
In humans, olfaction is also one of the senses that is affected ...

Morris Water Maze Test for Learning and Memory Deficits in Alzheimer&#39;s Disease Model Mice

The Morris Water Maze (MWM) was first established by neuroscientist Richard G. Morris in 1981 in order to test hippocampal-dependent learning, including acquisition of spatial memoryand long-term spatial memory 1. The MWM is a relatively simple procedure typically consisting of six day trials, the main advantage being the differentiation between the spatial (hidden-platform) and non-spatial (visible platform) conditions 2-4. In addition, the MWM testing environment reduces odor trail interference 5. This has led the task to be used extensively in the study of the neurobiology and neuropharmacology of spatial learning and memory. The MWM plays an important role in the validation of rodent models for neurocognitive disorders such as Alzheimer&#x2019;s Disease 6, 7. In this protocol we discussed the typical procedure of MWM for testing learning and memory and data analysis commonly used in Alzheimer&#x2019;s disease transgenic model mice.

Morris Water Maze Test for Learning and Memory Deficits in Alzheimer's Disease Model Mice

The Morris Water Maze is a behavioral task to test hippocampal-dependent learning and memory. It has been widely used in the study of neurobiology, neuropharmacology and neurocognitive disorders in rodent models.

Morris Water Maze-Test für Lern-und Gedächtnisstörungen bei Alzheimer-Modell Mäuse

The Morris Water Maze (MWM) was first established by neuroscientist Richard G. Morris in 1981 in order to test hippocampal-dependent learning, including ...

Olfactory Behavioral Testing in the Adult Mouse

The rodent olfactory system is of increasing interest to scientists, studied, in part, in systems biology because of its stereotyped, yet accessible circuitry. In addition, this area's unique ability to generate new neurons throughout an organism's lifetime makes it an attractive system for developmental and regenerative biologists alike. Such interest necessitates a means for a quick, yet reliable assessment of olfactory function. Many tests of olfactory ability are complex, variable or not specifically designed for mice. Also, some tests are sensitive to memory deficits as well as defects in olfactory abilities, confounding obtained results.
Here, we describe a simple battery of tests designed to identify defects in olfactory sensitivity and preference. First, an initial general health assessment allows for the identification of animals suitable for further testing. Second, mice are exposed to various dilutions of scents to ascertain whether there is a threshold difference. Third, mice are presented with various scents, both attractive and aversive, that allow for the assessment of olfactory preference. These simple studies should make the initial characterization of olfactory behavior accessible for labs of varied resources and expertise.

Fundamental, yet unique properties of the rodent olfactory system have led to its increasing study among biologists. A relatively simple assessment of its function is then also needed. Here we describe sensitive tests for the characterization of mouse olfactory sensitivity and preference.

Olfaktorische Behavioral Testing in der adulten Maus

The rodent olfactory system is of increasing interest to scientists, studied, in part, in systems biology because of its stereotyped, yet accessible ...

Biologie

A Low-Cost, Odor-Reward Association Task for Tests of Learning and Memory

Robust and simple behavioral paradigms of appetitive, associative memory are crucial for researchers interested in cellular and molecular mechanisms of memory. In this paper, an effective and low-cost mouse behavioral protocol is described for examining the effects of physiological manipulation (such as the infusion of pharmacological agents) on the learning rate and duration of odor-reward memory. Representative results are provided from a study examining the differential role of tyrosine kinase receptor activity in short-term (STM) and long-term memory (LTM). Male mice were conditioned to associate a reward (sugar pellet) with one of the two odors, and their memory for the association was tested 2 or 48 h later. Immediately prior to the training, a tyrosine kinase (Trk) receptor inhibitor or vehicle infusions were delivered into the olfactory bulb (OB). Although there was no effect of the infusion on the learning rate, blockade of the Trk receptors in the OB selectively impaired LTM (48 h), and not short-term memory (STM; 2 h). The LTM impairment was attributed to the diminished odor selectivity as measured by the length of the digging time. The culmination of the results of this experiment showed that Trk receptor activation in the OB is the key in olfactory memory consolidation.

An odor-reward, associative learning task was used to investigate the differential effects of physiological manipulation on long-term and short-term memory.

Robust and simple behavioral paradigms of appetitive, associative memory are crucial for researchers interested in cellular and molecular mechanisms of ...

Beurteilung der Geruchsbeeinträchtigung bei Mäusen durch eingeatmete Umweltschadstoffe

Studying the Effects of Inhaled Environmental Pollutants on Olfactory Function in Mice

Olfactory impairment is a significant public health problem and independently predicts the risk of neurodegenerative diseases. Inhaled environmental pollutants exposure may impair olfaction; thereby, there is an urgent need for methods to evaluate the effects of inhaled environmental pollutants exposure on olfaction. Mice are ideal models for olfactory experiments because of their highly developed olfactory system and behavioral characteristics. To assess the effects of inhaled environmental pollutants exposure on olfactory function in mice, a detailed buried food test and social odor discrimination experiment is provided, including the experiment preparation, the selection and construction of experimental facilities, the testing process, and indexes of time. Meanwhile, timekeeping equipment, operational details, and the experimental environment are discussed to ensure the success of the assay. Zinc sulfate is used as the treatment to demonstrate the feasibility of the experimental approach. The protocol provides a simple and clear operational process for assessing the effects of inhaled environmental pollutants on olfactory function in mice.

Autor im Rampenlicht: Bewertung der olfaktorischen Wirkung von Luftschadstoffen - Tests für vergrabene Lebensmittel und soziale Gerüche

This paper provides a detailed description of the buried food test and social odor discrimination experiment to assess the effects of inhaled environmental pollutants exposure on olfactory function in mice.

Untersuchung der Auswirkungen von eingeatmeten Umweltschadstoffen auf die Geruchsfunktion bei Mäusen

Olfactory impairment is a significant public health problem and independently predicts the risk of neurodegenerative diseases. Inhaled environmental ...

Umwelt

Assessment of Mouse Judgment Bias through an Olfactory Digging Task

Judgment biases (JB) are differences in the way that individuals in positive and negative affective/emotional states interpret ambiguous information. This phenomenon has long been observed in humans, with individuals in positive states responding to ambiguity 'optimistically' and those in negative states instead showing 'pessimism'. Researchers aiming to assess animal affect have taken advantage of these differential responses, developing tasks to assess judgment bias as an indicator of affective state. These tasks are becoming increasingly popular across diverse species and fields of research. However, for laboratory mice, the most widely used vertebrates in research and a species heavily relied upon to model affective disorders, only one JB task has been successfully validated as sensitive to changes in affective state. Here, we provide a detailed description of this novel murine JB task, and evidence of its sensitivity to mouse affect. Though refinements are still necessary, assessment of mouse JB opens the door for answering both practical questions regarding mouse welfare, and fundamental questions about the impact of affective state in translational research.

This article provides a detailed description of a novel mouse judgment bias protocol. Evidence of this olfactory digging task's sensitivity to affective state is also demonstrated and its utility across diverse research fields is discussed.

Bewertung der Mausurteilsverzerrung durch eine olfaktorische Grabaufgabe

Judgment biases (JB) are differences in the way that individuals in positive and negative affective/emotional states interpret ambiguous information. This ...

Eine objektive und reproduzierbare Test der olfaktorischen Lern- und Diskriminierung bei Mäusen

Zusammenfassung

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Kapitel in diesem Video

Low-Stress-Route Learning Mit dem Lashley III Maze in Mäuse

Die Prüfung auf Geruch Diskriminierung und Habituation in Mice

Einfache und Computergestützte Riechtests für Mäuse

Morris Water Maze-Test für Lern-und Gedächtnisstörungen bei Alzheimer-Modell Mäuse

Olfaktorische Behavioral Testing in der adulten Maus

A Low-Cost, Odor-Reward Association Task for Tests of Learning and Memory

Untersuchung der Auswirkungen von eingeatmeten Umweltschadstoffen auf die Geruchsfunktion bei Mäusen

Untersuchung der Auswirkungen von eingeatmeten Umweltschadstoffen auf die Geruchsfunktion bei Mäusen

Untersuchung der Auswirkungen von eingeatmeten Umweltschadstoffen auf die Geruchsfunktion bei Mäusen

Bewertung der Mausurteilsverzerrung durch eine olfaktorische Grabaufgabe