Grundsätzlich sind alle Pilze uralte und essentielle Symbionten der pflanzlichen Nahrung, und sie verbessern die Nährstoffaufnahme des Wirts und sind auch wichtige Akteure für die Zellgesundheit. Während zelluläre Mikroorganismen schwer zu untersuchen sind, ermöglicht unser Protokoll eine Echtzeitüberwachung, digitale Beobachtung und effiziente Etablierung von Einzelspeichenkulturen. Derzeit werden AM-Pilze in Topfkulturen, im Gewächshaus oder in vitro unter Verwendung von Ri-T-DNA-Transformationswurzeln vermehrt.
Beide Technologien haben in den letzten zehn Jahren erheblich zum Wissen über diese AM-Pilze beigetragen, aber sie haben spezifische Einschränkungen. Die Beurteilung der erfolgreichen Etablierung des Pilzpartners hängt vom Vorhandensein von Arbuskulären in den Wurzeln oder Sporen im Boden ab. Die In-vitro-Vermehrung ermöglicht Leben, mehr Überwachung, erfordert jedoch Transformationswege und einen sterilen Zustand, der ihre Anwendbarkeit auf viele AM-Pilzarten einschränkt.
Die zur Untersuchung von AMF verwendeten Topfkultur- oder In-vitro-Kulturtechniken haben Einschränkungen in Bezug auf die Lebendbeobachtung und die erfolgreiche Vermehrung. Um diese Einschränkungen zu überwinden, haben wir dieses superabsorbierende, polymerbasierte autotrophe System, SAP-AS, entwickelt, eine einfache und kostengünstige Technik, die die Vorteile der In-vitro-Kultur und der Topfkultur kombiniert. Unser Labor wird sich darauf konzentrieren, die Etablierung neuer AM-Pilzarten in Einzelsporenkulturen zu verbessern und auch die Interaktion zu untersuchen, die wir bei Mikroorganismen beobachtet haben.
Diese Technik wird es uns ermöglichen, die Konkurrenzdynamik zwischen verschiedenen AM-Pilzarten, den Mechanismus der Ausbreitung hoher Verwerfungen und die Nährstoffaufnahmeprozesse zu untersuchen.
