La producción de disulfuro estabilizados complejos transmembrana de péptidos de Estudios Estructurales

Resumen

Estudios biofísicos y bioquímicos de las interacciones entre los dominios de la proteína de membrana integrados se enfrentan a muchos desafíos técnicos, la primera de las cuales es la de conseguir material de estudio adecuado. En este artículo se describe un protocolo para producir y purificar estabilizadas por puentes disulfuro complejos de péptidos transmembrana que son adecuados para el análisis estructural por la solución de resonancia magnética nuclear (RMN) y otras aplicaciones analíticas.

Resumen

Interacciones físicas entre las incrustados lípido-alfa-helicoidales dominios de proteínas de membrana juegan un papel crucial en el plegamiento y ensamblaje de los complejos de proteínas de membrana y en procesos dinámicos tales como transmembrana (TM) de señalización y regulación de los niveles de proteína de la superficie celular. Descripción de las características estructurales que impulsan la asociación de secuencias particulares requiere sofisticados análisis biofísicos y bioquímicos de los complejos de péptido de TM. Sin embargo, la hidrofobia extrema de dominios TM hace que sean muy difíciles de manipular utilizando técnicas estándar de la química de péptidos, y la producción de material de estudio adecuado a menudo resulta prohibitivamente difícil. La identificación de condiciones bajo las cuales los péptidos pueden adoptar conformaciones helicoidales estables y complejos se forman espontáneamente añade un nivel más de dificultad. Aquí presentamos un procedimiento para la producción de homo-o hetero-dímeros complejos de péptido de TM a partir de materiales que se expresan en E. columnai, permitiendo así la incorporación de etiquetas de isótopos estables para resonancia magnética nuclear (RMN) o no naturales de aminoácidos para otras aplicaciones relativamente económica. La innovación clave de este método es que los complejos de TM son producidos y purificados como covalentemente asociados (disulfuro de reticulado) ensamblados que pueden formar estructuras estables, estequiométrica y homogénea, cuando se reconstituye en detergente, lípidos u otros materiales miméticos de membrana. También presentamos los procedimientos cuidadosamente optimizados para la expresión y purificación que son igualmente aplicables ya sea para producir un solo TM dominios o complejos entrecruzados y proporcionar asesoramiento para adaptar estos métodos a las nuevas secuencias de TM.

Introducción

Este protocolo detalla un procedimiento que hemos desarrollado para producir complejos estabilizados con disulfuro de péptidos transmembrana (TM) para los estudios estructurales mediante RMN solución. El procedimiento tiene la ventaja de la expresión robusta que ofrece el sistema de fusión ΔtrpLE1413 (ver más abajo) y permite que los complejos de péptidos de TM composición definida para ser generados usando sofisticadas técnicas de isótopos estables de etiquetado para los modernos experimentos de RMN multidimensionales. Hemos empleado estas técnicas para determinar varias estructuras de RMN que revelaron nueva información importante sobre cómo linfocitos activadores de immunoreceptors se ensambla a partir de múltiples subunidades de proteínas de membrana a través de interacciones entre sus dominios TM (recientemente revisado en ^1). Estas técnicas son aplicables a muchos otros sistemas de proteínas de membrana, así como una amplia gama de métodos de análisis aguas abajo, además de RMN solución. Mientras que el ejemplo dado aquí utiliza residuos de cisteína nativospara crear un complejo que imita la forma natural unido por puentes disulfuro de proteínas, el diseño es igualmente adecuado para la creación de enlaces disulfuro de ingeniería para estabilizar complejos que normalmente se mantienen juntas por más débiles, interacciones no covalentes, tales como homo-y hetero-dímeros de complejos TM receptor de factor de crecimiento epidérmico (EGFR)-proteínas de la familia ^2-4 o αβ heterodimeric complejos integrina ^5,6.

Extremadamente hidrófobos secuencias de péptidos tales como los derivados de la bicapa lipídica que abarca porciones de proteínas TM son sujetos excesivamente difícil para los estudios bioquímicos y biofísicos. Además de ser muy difícil de manipular usando proteína estándar y técnicas de química de péptidos, a menudo son muy tóxicos para las células y son por lo tanto difíciles de producir recombinantemente. Nosotros y otros ^{7,8 9-11} han tenido un éxito significativo expresar esas secuencias de péptidos difíciles en bacterias como en marco carboxi-terminalfusiones con una versión modificada de la secuencia ΔtrpLE1413 derivado de la E. coli trp operón ^12. El polipéptido de ~ 13 kDa trpLE codificada por esta secuencia se puede producir en niveles elevados en virtud de un promotor T7 y está totalmente localizada en los cuerpos de inclusión donde los problemas relacionados con la toxicidad y / o la inestabilidad son eludidas. Modificación de la secuencia de la adición de un amino-terminal 9-histidina ¹³ y la eliminación de los residuos internos de metionina y cisteína de la secuencia trpLE ¹⁴ permitidos trpLE-péptido fusiones de ser purificada por metal-ion cromatografía de afinidad y digerido usando bromuro de cianógeno (CNBr ) para liberar la secuencia peptídica deseada. Hemos utilizado con éxito este sistema para expresar más de una docena de diferentes secuencias como fusiones TrpLE que representan fragmentos de proteínas de membrana que contienen hasta cuatro dominios TM ^(7,8 y resultados no publicados, véase también el apartado de discusión).

Lainnovación clave en este protocolo es la identificación de las condiciones en las que los no estructurados y muy poco soluble en trpLE-TM fusiones pueden ser eficientemente disulfuro de reticulado en el contexto de un flujo de trabajo optimizado. Varios aspectos de alto rendimiento de expresión, la manipulación y la purificación de los productos peptídicos también se han optimizado a fondo, y las recomendaciones que aquí se presentan son igualmente relevantes para la producción de no reticulados disulfuro productos (monomérica) TM peptídicos.

Protocolo

1. Clonación y Diseño Construct

Clonar las secuencias de interés en el vector de PMM-péptido (que se puede proporcionar a petición) usando HindIII y sitios de restricción BamHI (véase la Figura 1). El inserto de ADN de doble hebra deben incorporar, en el orden siguiente: un sitio HindIII; un solo codón metionina para la escisión con CNBr, la E. coli codón optimizado péptido secuencia de codificación, un codón de parada, un sitio BamHI. Todas las metioninas otros en el péptido debe ser eliminada y la secuencia de dipéptido asp-pro se debe evitar ya que también se puede escindir en condiciones ácidas.

Un único residuo de cisteína debe ser introducido en cada secuencia de péptido de acuerdo con el posicionamiento deseado de la reticulación de disulfuro en el complejo final, y todas las otras cisteínas debe ser mutado a serina. El plásmido lleva un casete de resistencia a kanamicina para la selección.

2. Expresión de trpLE-Peptide Fusión

1. Maquillaje y filtro estéril medio M9/Kan mínimo crecimiento (0,1 mM CaCl _2, 2 mM MgSO _4, 3 g / L KH ₂ PO _4, 7,5 g / l de Na ₂ HPO ₄ · 2H ₂ O, 0,5 g / L NaCl, 1 g / l NH ₄ Cl, 4 g / L de glucosa, 50 mg / L de sulfato de kanamicina). Suplemento con Centrum completa de A a zinc para proporcionar vitaminas B y metales traza:. Disolver 1 comprimido en 40 ml de H ₂ O con mezcla durante 30 min, centrifugar para eliminar el material insoluble y el sobrenadante estéril filtro naranja Tienda solución madre a 4 ° C en la oscuridad durante hasta 2 semanas y el uso de 4 ml / L en M9.
   NOTA: ¹⁵ N enriquecido con NH ₄ Cl, ^C-13 glucosa enriquecido u otros precursores de isótopos estables marcados pueden ser incluidos en medio M9 que en esta etapa si se desea.
2. Inocular un cultivo de 100 ml de arranque recién transformado BL21 E. (DE3) cepa coli en medio M9/Kan. Crecer durante la noche a 37 ° C con agitación a 200 rpm.
3. A la mañana siguiente, comprobar la OD ₆₀₀ del cultivo iniciador - esto debe estar en el intervalo de 2 o mayor. Diluir el cultivo de 100 ml de arranque en 1 l de volumen total de Centrum medio suplementado M9. Dividido en dos matraces de 2 L deflectores (500 ml de cultivo en cada matraz) y crecen a 37 ° C con agitación a 140 rpm hasta que la DO ₆₀₀ alcanza 0,6.
4. Ajuste la temperatura del agitador a 18 ° C y continuar agitando durante 1 hora, permitiendo que las culturas se enfríe por completo antes de la inducción.
5. Tomar una muestra de pre-inducción para el análisis de SDS-PAGE (equivalente de 50 l de un cultivo a una DO de ₆₀₀ = 1), a continuación, añadir IPTG a una concentración final de 0,1 mM para inducir la expresión de la fusión trpLE-péptido. Continuar creciendo a 18 º C/140 rpm durante la noche (16-20 horas) en la inducción de IPTG.

3. Inclusión Preparación Corporal y Encuadernación matriz de níquel

1. La final OD ₆₀₀ de cultivos de expresión durante la noche en medio mínimo es variable y should ser de entre 2,5 y 5,0. Tomar una muestra para análisis SDS-PAGE (equivalente de 50 l de un cultivo a una DO de ₆₀₀ = 1) y recoger las células por centrifugación durante 20 min a 5.000 x g.
2. Resuspender el sedimento de células de cultivo L 1 en 50 ml de tampón de lisis (50 mM Tris-HCl pH 7,5, 20 mM β-ME, 0,2 M NaCl). Las suspensiones celulares se puede almacenar congelado para su posterior procesamiento.
3. Lisar las células por sonicación en hielo a potencia máxima durante 1 min y el resto en hielo durante 5 min. Usamos un Sonicator Misonix 3000 (max 600 vatios de salida) con una punta de ½ pulgadas de alta intensidad reemplazable. Repita sonicación / refrigeración durante tres ciclos.
4. Recoger el cuerpo de inclusión insoluble (IB) el material por centrifugación durante 15 min a 20.000 xg y descartar el sobrenadante. Una capa suelta y fina de restos de células de color más claro puede ser visible en la parte superior de la densa pellet IB; este puede ser lavado con agua o tampón con agitación suave. Pasos 3,3 y 3,4 se puede repetir para mejorar la pureza de la fracción IB si desirojo. Las muestras de sedimento y el material sobrenadante se deben tomar para el análisis de SDS-PAGE para confirmar trpLE-TM localización fusión a los cuerpos de inclusión.
5. Disolver IB pellets en solución de guanidina (6 M de guanidina HCl, 50 mM Tris-HCl pH 8,0, 200 mM NaCl, 1% de Triton X-100, 5 mM β-ME), con 25-50 ml por litro de cultivo procesado. Este paso requiere varias horas con agitación y sonicación suave ocasional.
6. Borrar el lisado IB por centrifugación durante 1 hora a 75,000-100,000 xg y 20 ° C. Decantar el sobrenadante y filtrar a través de una membrana de 0,2 micras.
7. Combinar el lisado aclarado IB, en un tubo cónico de 50 ml o un recipiente más grande que se puede cerrar de forma segura, con resina de afinidad de níquel que ha sido lavada con agua y se equilibra con solución de guanidina. Usar 3-4 ml de resina se establecieron por litro de cultivo procesado para las fusiones que expresan a un grado similar como trpLE-DAP12TM se muestra aquí (Figura 3, carril 2). Lotes se unen mediante la incubación de la noche a la habitación t emperatura con mezcla suave.

4. En la columna de reticulación oxidativa

1. Cargue el lisado IB / níquel suspensión de resina en una columna de desagüe vacío con soporte de lecho poroso, agregando continuamente hasta que todo el volumen fluye. Recoger y dejar a un lado la medición de flujo, que pueden contener proteína no unida fusión.
2. Lavar la resina de níquel mediante flujo por gravedad con 5 volúmenes de lecho de solución de urea (8 M urea, 50 mM Tris-HCl pH 8,0, 200 mM NaCl) que contienen 5 mM β-ME.
3. Lavar la resina de níquel de nuevo con 5 volúmenes de lecho de solución de urea sin β-ME.
4. Lavar la resina de níquel una tercera vez con 5 volúmenes de lecho de solución de urea que se ha complementado con 20 mM CuSO ₄ y 2 mM de glutatión oxidado. Después de este lavado, cerrar la salida de la columna y se incuba 30 minutos a temperatura ambiente para permitir la formación máxima de enlace disulfuro.

5. TFA Elución y Cuantificación

contenido "> PRECAUCIÓN: ácido trifluoroacético (TFA) provoca graves quemaduras al entrar en contacto con la piel y los vapores son muy irritantes TFA concentrado debe utilizarse sólo en una campana de humos químicos aprobados con protección para los ojos y guantes que no contengan látex Compruebe la compatibilidad química de todos.. los materiales utilizados, el polipropileno es compatible con todos los pasos de este protocolo.

1. Lavar la solución de urea oxidante con 10 volúmenes de lecho de agua y secar el lecho de la columna mediante la aplicación de una línea de vacío a la salida de la columna.
2. Cierre la salida de la columna y añadir 1,5 volúmenes de lecho de puro (99-100%) TFA. Se agita la resina de níquel con una pequeña espátula de garantizar una exposición al ácido y se incuba durante 5 min. Abrir la salida de la columna y recoger el eluato ácido, presurizando suavemente con una jeringa o una línea de aire comprimido, si es necesario para expulsar todo el líquido.
3. Repita el paso de elución ácida con otros 1,5 volúmenes de lecho de TFA puro. Trabajar rápidamente en este paso para evitar la disolución completa de la beaded matriz de agarosa. El rendimiento de proteína se puede determinar en este punto según la ecuación de Beer-Lambert y el coeficiente de extinción molar teórico de la secuencia trpLE-péptido. Se diluye una muestra del eluato TFA (1:20 a 1:50) en trifluoroetanol (TFE) y medir la absorbancia a 280 nm, utilizando TFA / TFE a la misma dilución como blanco.

6. La digestión con CNBr

ADVERTENCIA: El bromuro de cianógeno (CNBr) es extremadamente tóxico y debe ser manejado sólo en una campana de humos químicos aprobado. PPE incluyendo gafas de seguridad, bata de laboratorio y guantes de látex no son absolutamente necesarios. CNBr es reactivo a la humedad y debe estar a temperatura ambiente antes de abrirse. Póngase en contacto con su oficina de seguridad institucional para obtener instrucciones sobre la neutralización / enajenación de CNBr contaminados con soluciones y materiales.

1. Diluir el eluido ácido a la concentración de TFA 80% final de la adición gota a gota de agua mientras se mezcla suavemente. Si se forma un precipitado, unadd atrás un pequeño volumen (0,5 a 1 ml) de TFA puro hasta que se clarifique la solución, a continuación, re-correcta a 80% con agua. Tomar un 5 l pre-digestión de la muestra para el análisis de SDS-PAGE, la congelación en nitrógeno líquido y liofilizar la muestra inmediatamente.
2. Añadir cristales CNBr a aproximadamente 0,2 g / ml, teniendo cuidado para pesar el producto químico tóxico de forma segura en cerradas, tubos previamente pesados ​​o usando un equilibrio dentro de la campana química. Mezclar suavemente hasta su completa disolución. Enjuague y sellar el recipiente de reacción en atmósfera de gas inerte (nitrógeno o argón corriente) e incubar 3-4 horas a temperatura ambiente, protegido de la luz.
3. Tomar un 5 l post-digestión de la muestra para el análisis por SDS-PAGE y congelar y liofilizar inmediatamente. Transferir la reacción de digestión a un casete de diálisis de celulosa regenerada o tubería (acetato de celulosa se ​​disuelve en ácido concentrado) con un corte de peso molecular de 3,5 kDa o menos, de acuerdo con el tamaño del complejo péptido esperado. Dializar durante toda la noche a 4 L de agua en lacampana química para reducir la concentración de TFA y descomponer cualquier CNBr sin reaccionar. Deje espacio en el casete de diálisis o las tuberías para un aumento significativo en el volumen (tanto como de dos a tres veces) durante la diálisis durante la noche.
4. Quitar la solución de reacción dializada con precipitado suspendido de la casete de diálisis o los tubos (la mayor parte de la proteína se precipita cuando la concentración de TFA se reduce) y transferir la suspensión a tubos de 50 ml cónicos. Congelar y liofilizar para eliminar el agua y trazas de CNBr / TFA. Este paso es probable que requieren varios días.
   PRECAUCIÓN: Tanto la reacción dializada resumen y el agua de diálisis deben seguir siendo tratados como tóxicos y manipulados / desecharse con las precauciones adecuadas.
5. Muestras de cultivos procedentes de las etapas de pre-inducción y la cosecha, por cuerpos de inclusión sobrenadante y el sedimento, el eluido TFA y digerido con CNBr material puede ser analizado mediante SDS-PAGE. Preparar muestras por calentamiento a 95 ° C en Invitrogen NuPAGE LDS sample tampón. Eluato TFA y muestras de digerir deben estar preparados tanto en condiciones reductoras y no reductoras para facilitar la identificación del producto y la evaluación de la reticulación oxidativa.
6. Separar las muestras en un 12% NuPAGE bis-tris gel de acrilamida prefabricado utilizando MES-SDS funcionamiento de amortiguación para una resolución óptima de los productos más pequeños digerir.

7. HPLC de fase inversa Purificación de disulfuro reticulados complejos de péptidos

1. Disolver hasta 100 mg de liofilizado productos resumidos en 2-3 ml de ácido fórmico puro y carga en un a escala preparativa (21,2 x 150 mm) de Agilent ZORBAX SB-300 C3 PrepHT columna de disolvente A (típicamente acetonitrilo 10-20% o 5 -10% de isopropanol en agua con 0,1% de TFA).
2. La elución de los productos de digestión en un gradiente de disolvente B (acetonitrilo o isopropanol con 0,1% TFA) durante al menos 5 volúmenes de columna. Véase la discusión para obtener sugerencias sobre la selección de las condiciones óptimas para el gradiente de secuencias de péptidos diferentes.
3. Tomar50-100 muestras mu l de cada fracción de HPLC para el análisis de SDS-PAGE y congelar y liofilizar inmediatamente. Eliminación de los disolventes de HPLC es rápido y debe ser completa en 1-2 horas.
4. Preparar muestras liofilizadas de HPLC para SDS-PAGE por calentamiento a 95 ° C en tampón de muestra de Invitrogen NuPAGE LDS sin agente reductor. Enfriar y se dividió cada muestra uniformemente en 2 tubos de microcentrífuga, añadiendo DTT 100 mM a una de ellas y brevemente re-calentamiento.
5. Se separan las muestras de HPLC reducidas y no reducidas en un 12% NuPAGE Bis-Tris gel de acrilamida premoldeados con MES-SDS funcionamiento de amortiguación como anteriormente. Pequeños péptidos hidrofóbicos, a menudo no toman Coomassie bien y no se puede ejecutar en sus pesos moleculares esperados. Sin embargo, la comparación de muestras reducidas y no reducidas debe facilitar la identificación de los productos peptídicos reticulados y de evaluación de la pureza.
6. Analizar los candidatos que contienen fracciones de péptidos por láser asistida por matriz de desorción ionización tiempo de vuelo (MALDI-AF) espectrometría de masas (ver Discusión) para identificar las especies de interés y confirme su masa esperada.
7. Combinar, congelar y liofilizar las fracciones de HPLC que contienen la pura, reticulado TM complejo de péptido y tener un peso en seco del producto final para determinar el rendimiento. Las fracciones con contenido de isopropanol alta no puede permanecer congelado. Si fracciones de péptidos secar hasta una película en lugar de un producto liofilizado esponjoso, volver a disolver la película completamente en un pequeño volumen de puro hexafluoroisopropanol (HFIP), congelar y liofilizar de nuevo. El producto HFIP tratados debería ser un cono pequeño y blanco que es fácil de punta a cabo y se pesa.

Resultados

El nivel de expresión logrado en las fusiones TrpLE es variable y depende en gran medida de la secuencia de aminoácidos del péptido adjunto. Figura 3 muestra el análisis SDS-PAGE de pre-inducción (pista 1) y tiempo de cosecha-(carril 2) muestras de una cultura que produjo aproximadamente 120 mg de pura e intacta trpLE-DAP12TM fusión de 1 litro de cultivo y 4 ml matriz de níquel. Todos los de la fusión trpLE-DAP12TM fue localizado en el cuerpo de inclusión de precipitado (carril 4) en lugar de s...

Discusión

Expresión de trpLE-TM fusiones. En nuestra experiencia, trpLE-TM fusiones se expresó mal en medio de cultivo rico a 37 ° C, y las condiciones de cultivo descritas aquí han demostrado tener éxito para muchas secuencias diferentes que contienen de uno a cuatro dominios TM con rendimientos que oscilan 50 a 150 mg / L de fusión puro, intacto. Codificación de fusiones de tres o cuatro fragmentos de TM GPCR (CCR5 humano TM1-TM3 y TM4 TM7-, respectivamente) o un fragmento de núcleo catalítico de la peptidasa ...

Materiales

Name	Company	Catalog Number	Comments
Nombre del reactivo / material	Empresa	Número de catálogo	Comentarios
Bromuro de cianógeno	ALDRICH	P.No-C91492, CAS-506-68-3	SUSTANCIA PELIGROSA. Mercancías peligrosas. Muy tóxico por inhalación, contacto con la piel e ingestión. El contacto con ácidos libera gases muy tóxicos. Muy tóxico para los organismos acuáticos, puede provocar a largo plazo efectos negativos en el medio ambiente acuático.
Ácido trifluoroacético	SIGMA-ALDRICH	CP-1000984387, CAS 76-05-1	SUSTANCIA PELIGROSA. MERCANCÍAS PELIGROSAS., Provoca quemaduras graves. Nocivo por inhalación. Nocivo para los organismos acuáticos, puede provocar a largo plazo efectos negativos en el medio ambiente acuático.
2-mercaptoetanol	SIGMA-ALDRICH	P.No M7154, Número CAS 60-24-2	SUSTANCIA PELIGROSA. MERCANCÍAS PELIGROSAS. Tóxico por inhalación, contacto con la piel y por ingestión. Irrita la piel. Riesgo de lesiones oculares graves. Posibilidad de sensibilización en contacto con la piel. Muy tóxico para los organismos acuáticos, puede provocar a largo plazo efectos negativos en el medio ambiente acuático.
1,1,1,3,3,3-Hexafluoro-2-propanol	SIGMA-ALDRICH	Número de producto 52512, CAS-No. 920-66-1	SUSTANCIA PELIGROSA. MERCANCÍAS PELIGROSAS. Nocivo por inhalación y por ingestión. Provoca quemaduras.
Ácido fórmico	Merck KGaA	K41186564	Líquidos y vapores inflamables. Provoca quemaduras graves en la piel y lesiones oculares.
Urea	UNIVAR, AJAX Finechem	Número de producto, 817, N º CAS 57-13-6	Cuando se calienta, diciembreomposes a dióxido de carbono y amoníaco, si se quema, emite pequeñas cantidades de óxidos de nitrógeno. Puede causar enrojecimiento e irritación de la piel y los ojos.
Hidrocloruro de guanidina	Amresco	P.No-M110, Número CAS: 50-01-1	Nocivo si se ingiere, causa irritación ocular grave, Provoca irritación cutánea, toxicidad oral aguda, Irritante de piel, Irritante de ojos.
TRITON X-100	SIGMA	Number-T8532 Producto CAS No: 9002-93-1	Triton X-100 es un detergente no iónico, 100% de ingrediente activo, que se utiliza a menudo en aplicaciones bioquímicas para solubilizar las proteínas. Triton X-100 no tiene propiedades antimicrobianas y es considerado un comparativamente suave no desnaturalizante detergente
Su-Select níquel-Affinity gel	SIGMA-ALDRICH	Catálogo Num-P6611	ES-Select gel de afinidad de níquel es un metal inmovilizado de iones de cromatografía de afinidad (IMAC) del producto. El Nick SU-Selectel gel de afinidad es un quelato patentado quadridentate en perlas de agarosa cargada con níquel que está diseñado para unirse específicamente a las proteínas que contienen histidina.
(-)-Glutatión, oxidado	SIGMA-ALDRICH	Catálogo num 150568
Misonix S-3000 sonicador	QSONICA	S-3000 (descatalogados)	Potencia máxima de salida de 600 vatios. 1/2-inch reemplazables punta de la sonda se 1/2-pulgada de alta intensidad y consejos de gran volumen y una gama de alta intensidad y bajo volumen de consejos. Más próximos modelos actualmente disponibles de esta empresa son Q500 y Q700.
RP-HPLC: doble paso BioLogic sistema de cromatografía, Software Versión 5.3	Bio-Rad Laboratories	Catálogo Num 760-0047, Config No: AU500571, n º serie: 484BR3705	Los péptidos se une a la fase inversa HPLC en columnas de alta aqueous fase móvil y se eluyen de columnas de HPLC RP con alta fase móvil orgánica. En RP HPLC péptidos se separan en base a su carácter hidrófobo. Los péptidos pueden separarse mediante la ejecución de un gradiente lineal de disolvente orgánico.
Prep HT C3 ZORBAX 300SB-HPLC analítica columna, 21,2 x 150 mm, tamaño de partícula 5 micras	Agilent	No Producto: 895150-909	HPLC de fase inversa Colum
NuPAGE 12% Bis-Tris geles	Life Technologies	NP0341BOX	Geles prefabricados para la electroforesis de proteínas
Slide-A-G2 Lyzer Cassettes diálisis, 3.5K MWCO	Thermo Scientific	No Producto: 87724	Ejemplo de diálisis