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Method Article
Este protocolo describe el proceso de obtención de macrófagos humanos a partir de monocitos para la infección por Leishmania braziliensis. También permite a los investigadores evaluar la tasa de infección y la viabilidad del parásito, la producción de ROS mediante microscopía de fluorescencia y la producción de mediadores inflamatorios en sobrenadantes de cultivo para investigar la respuesta de los macrófagos a la infección.
Los macrófagos son células multifuncionales esenciales para el funcionamiento del sistema inmunitario y la célula huésped principal de la infección por Leishmania braziliensis (Lb). Estas células están especializadas en el reconocimiento de microorganismos y la fagocitosis, pero también activan otras células inmunitarias y antígenos presentes, además de promover la inflamación y la reparación de tejidos. Aquí, describimos un protocolo para obtener células mononucleares de sangre periférica (PBMC) de donantes sanos para separar monocitos que luego se diferencian en macrófagos. Estas células pueden infectarse in vitro a diferentes concentraciones de Lb para evaluar la capacidad de controlar la infección, así como evaluar la respuesta inmunitaria de la célula huésped, que puede medirse mediante varios métodos. Las PBMC se aislaron primero por centrifugación con gradiente Ficoll-Hypaque y luego se sembraron para permitir que los monocitos se adhirieran a las placas de cultivo; Las células no adherentes se eliminaron mediante lavado. A continuación, las células adherentes se cultivaron con factor estimulante de colonias de macrófagos (M-CSF) durante 7 días para inducir la diferenciación de macrófagos. Sugerimos sembrar 2 x 106 células por pocillo en placas de 24 pocillos para obtener 2 x 105 macrófagos. Los macrófagos completamente diferenciados pueden infectarse con Lb durante 4 o 24 horas. Este protocolo da como resultado un porcentaje significativo de células infectadas, que pueden ser evaluadas por microscopía óptica o de fluorescencia. Además del índice de infección, la carga parasitaria se puede medir contando el número de parásitos dentro de cada célula. También se pueden realizar ensayos moleculares y funcionales adicionales en sobrenadantes de cultivo o dentro de los propios macrófagos, lo que permite que este protocolo se aplique en una variedad de contextos y también se adapte a otras especies de parásitos intracelulares.
El parásito protozoario intracelular del género Leishmania es el agente causal de un complejo de enfermedad desatendida conocido como leishmaniasis1. Estas enfermedades tropicales tienen una amplia gama de manifestaciones clínicas que pueden ir desde lesiones cutáneas hasta complicaciones derivadas de la forma visceral de la enfermedad, que pueden ser mortales si no se tratan. La leishmaniasis cutánea (LC) es la forma más frecuente de leishmaniasis y se caracteriza por una o pocas lesiones cutáneas ulceradas con inflamación crónica exacerbada2. El desarrollo de la enfermedad depende de la especie de Leishmania, además de una combinación de factores asociados con la respuesta inmune del huésped, que definen los resultados clínicos 3,4. Leishmania braziliensis es la principal especie causante de CL en Brasil, con casos reportados en todos los estados del país5. La respuesta inmune contra L. braziliensis se considera protectora, ya que restringe el parásito al sitio de inoculación, e involucra varios tipos de células inmunes, como macrófagos, neutrófilos y linfocitos 4,6,7.
Los macrófagos son células multifuncionales esenciales para el sistema inmunitario, ya que están especializados en la detección y fagocitosis de microorganismos, y pueden presentar antígenos y activar otros tipos de células. Los macrófagos son capaces de regular procesos que van desde la inflamación hasta la reparación de tejidos y el mantenimiento de la homeostasis 8,9. Estas células juegan un papel esencial en la respuesta inmune temprana contra parásitos intracelulares, como la Leishmania, siendo importantes para su eliminación 10,11,12.
Durante la infección por L. braziliensis, los macrófagos pueden responder a través de diferentes mecanismos para eliminar el parásito, como la producción de especies reactivas de oxígeno (ROS) y mediadores inflamatorios13,14. Las respuestas inmunitarias pueden ser guiadas por la producción de citocinas proinflamatorias o antiinflamatorias, que contribuyen a un estado inflamatorio exacerbado o a procesos de reparación de tejidos 6,15,16. La plasticidad de los macrófagos es fundamental para la inmunopatogenia de la CL, así como para la interacción parásito-huésped, y estas células se consideran cruciales para la elucidación de los mecanismos de la enfermedad y para el desarrollo de nuevos enfoques terapéuticos.
Dado que la CL es una enfermedad compleja, las investigaciones requieren que los investigadores exploren tipos de células que imiten a las que se encuentran en los seres humanos. Las respuestas inmunitarias observadas en diferentes modelos experimentales pueden variar y producir resultados que no reflejan la respuesta inmunitaria observada en humanos infectados de forma natural. Por lo tanto, el protocolo que se presenta en este documento fue diseñado para permitir el estudio de los macrófagos humanos y sus respuestas inmunes durante la LC causada por L. braziliensis.
El Comité de Revisión Institucional de Ética en Investigación en Seres Humanos del Instituto Gonçalo Moniz (Fundación Oswaldo Cruz-IGM-FIOCRUZ, Salvador, Bahía-Brasil), aprobó este estudio (número de protocolo: CAAE 95996618.8.0000.0040).
1. Aislamiento de PBMC humanos
2. Diferenciación en macrófagos humanos
NOTA: Para una placa de 24 pocillos, calcule la cantidad total de celdas necesarias para colocar 2 x 106 celdas por pocillo, lo que producirá 2 x 105 macrófagos. Este rendimiento se basa en un promedio de 10% de monocitos en sangre humana. Alternativamente, los monocitos también pueden liberarse por métodos no enzimáticos y luego contarse para la siembra.
3. Cultivo e infección por Leishmania
NOTA: En este ensayo se utilizaron promastigotes de L. braziliensis de dos cepas diferentes (MHOM/BR/01/BA788 y MHOM/BR88/BA-3456).
4. Evaluación de la infección
5. Evaluación de la producción de ROS por microscopía de fluorescencia
6. Análisis estadístico
La comprensión de la interacción entre parásitos y células huésped es crucial para dilucidar los mecanismos implicados en la patogénesis de varias enfermedades. Aunque las células humanas cultivadas se utilizan menos debido a las limitaciones del cultivo celular en comparación con los linajes celulares, el protocolo presentado en este documento muestra una diferenciación robusta y reproducible de los macrófagos humanos. Este protocolo permite analizar varios aspectos de la resp...
El protocolo presentado aquí para la diferenciación de monocitos humanos en macrófagos seguida de la infección con dos cepas de L. braziliensis permite evaluar varios aspectos de la interacción parásito-célula. Estas herramientas pueden ser cruciales para dilucidar las preguntas sin respuesta sobre el CL. Con el establecimiento de este protocolo, nuestro grupo pudo descubrir algunos aspectos de la respuesta inmune de los macrófagos obtenidos de individuos con diabetes y ...
Los autores declaran que no tienen intereses financieros contrapuestos.
Este trabajo contó con el apoyo de la Fundação de Amparo à Pesquisa do Estado da Bahia (FAPESB) bajo el número de subvención PET0009/2016 y la Coordenação de Aperfeiçoamento de Pessoal de Nível Superior - Brasil (CAPES) bajo la Clave de Finanzas 001.
Name | Company | Catalog Number | Comments |
AlamarBlue Cell Viability Reagent | Invitrogen | DAL1100 | |
Cell Culture Flask 25 cm² | SPL | 70125 | |
CellROX Green Reagent | Invitrogen | C10444 | |
Coverslip circles 13 mm | Perfecta | 10210013CE | |
DAPI (4',6-diamidino-2-phenylindole) | ThermoFisher | D1306 | |
Disposable support for blood collection | BD Vacutainer | 364815 | |
Eclipse blood collection needle 21 g x 1.25 in | BD Vacutainer | 368607 | |
Entellan | Sigma Aldrich | 107961 | |
Falcon Conical Tubes, 15 mL | Sigma Aldrich | CLS430791-500EA | |
Falcon Conical Tubes, 50 mL | StemCell Technologies | 100-0090 | |
Fetal Bovine Serum | Gibco | A4766801 | |
Formaldehyde 3.7% | Merck | 252549 | |
Glass slide 25,4x76,2mm | Perfecta | 0200 | |
Histopaque | Sigma Aldrich | 10771 | |
Human IL-6 ELISA Kit | RD | DY206 | |
Human M-CSF Recombinant Protein | PeproTech | 300-25 | |
Human TNF-a ELISA Kit | RD | DY210 | |
Leukotriene B4 ELISA Kit | Cayman | 520111 | |
Methanol | Merck | MX0482 | |
Penilicin-Sreptomycin-Glutamine (100x) | ThermoFisher | 10378-016 | |
Phosphate Buffered Saline pH 7.2 (10x) | Gibco | 70013032 | |
Plasma tube, 158 USP units of sodium heparin (spray coated) | BD Vacutainer | 367874 | |
Quick H&E Staining Kit (Hematoxylin and Eosin) | abcam | ab245880 | |
RPMI 1640 Medium | Gibco | 11875093 | |
Schneider's Insect Medium | Sigma Aldrich | S0146 | |
Tissue Culture 24-wells Plate | TPP | Z707791-126EA | |
Trypan Blue | Gibco | 15250061 |
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