El Hospital General de Viena y la Universidad Médica de Viena proporcionan amablemente la infraestructura para el Laboratorio Hemodinámico Hepático de Viena. Los miembros anteriores del Laboratorio Hemodinámico Hepático de Viena y sus compañeros de trabajo deben ser reconocidos por su valioso aporte que ayudó a mejorar continuamente la metodología de medición de HVPG y biopsia de hígado transjugular en nuestra institución. Además, agradecemos a las enfermeras de la División de Gastroenterología y Hepatología que forman parte esencial del Laboratorio Hemodinámico de Viena y proporcionamos continuamente a los pacientes una excelente atención.

El protocolo descrito aquí cumple con las directrices del comité de ética de la investigación humana de la Universidad Médica de Viena.
1. Preparativos
<ol><li>Utilice una sala especializada dedicada/aprobada para procedimientos que utilicen rayos X equipados con un sistema digital de fluoroscopia de rayos X(Figura 1A),un sistema de monitor (Figura 1B), una grabadora de presión y transductor (Figura 1C) que están conectados a una impresora o software de grabación, y un dispositivo de ultrasonido (Figura 1D). Además, asegúrese de que haya suficiente espacio para un área de trabajo estéril(Figura 1E)junto al banco del paciente.</li>
	<li>Evaluar pacientes con sospecha de enfermedad hepática crónica avanzada (ACLD) para CSPH mediante la medición de HVPG. En particular, los pacientes con una de las siguientes características pueden someterse a medición de HVPG: trombocitopenia <150 G/L, colaterales portosistemas en imágenes transversales, várices gastroesofágicas antes del inicio de la terapia betabloqueante no selectiva, asctas y tumores hepáticos que están programados para la resección.</li>
	<li>Utilice las siguientes contraindicaciones para el procedimiento: (i), ausencia de acceso vascular debido a trombosis venosa yugular o caval, (ii) trastornos hemorrágicos clínicamente evidentes (por ejemplo, coagulación intravascular diseminada), iii) neumotórax contralateral y (iv) arritmias cardíacas significativas.</li>
	<li>Asegúrese de que el paciente esté sujeto y dé su consentimiento informado por escrito después de haber sido informado sobre el propósito y los riesgos potenciales del procedimiento.</li>
	<li>Explique que el procedimiento debe realizarse sin anestesia general. Sin embargo, se pueden ofrecer dosis bajas de midazolam (hasta 0,02 mg/kg de peso corporal) a pacientes ansiosos.</li>
	<li>Supervise los signos vitales del paciente mediante medición de la presión arterial arterial no invasiva, oximetría de pulsos y electrocardiografía utilizando un sistema de monitor estándar.</li>
	<li>Enjuague el transductor de presión con solución salina estéril en una bolsa de presión.</li>
	<li>Calibrar el transductor de presión (si no precalibrado, calibrar contra una referencia de presión externa antes de iniciar las mediciones, por ejemplo, mediante el uso de una columna de agua donde 13,6 cm H2O es igual a 10 mm Hg).</li>
	<li>Coloque el transductor a la altura de la aurícula derecha apuntando a la línea midaxilria del paciente.</li>
	<li>Prepare la grabadora de presión/el software de grabación para estar listo para grabar trazados de presión.</li>
	<li>Asegúrese de que todo el equipo estéril necesario esté listo (consulte Tabla de materiales).</li>
	<li>Pida al paciente que tome una posición supina en el banco del paciente.</li>
	<li>Pida al operador que la lave y desinfecte las manos y los antebrazos.</li>
	<li>Ponte gorra quirúrgica y mascarilla facial, guantes estériles y una capa estéril.</li>
	<li>Utilice una cubierta estéril de la mesa y prepare un área de trabajo estéril para el equipo necesario para el acceso venoso central (Figura 2A).</li>
</ol>2. Acceso venoso central en condiciones estériles
<ol><li>Instruya al paciente a girar ligeramente la cabeza hacia el lado izquierdo, luego desinfectar el área del cuello anterior y lateral derecho con una solución desinfectante.</li>
	<li>Coloque toallas estériles que cubran la piel alrededor del triángulo carótido.</li>
	<li>Utilice una sonda de ultrasonido (cubierta por una vatina estéril de la sonda estadounidense) para identificar la vena yugular interna derecha y el sitio de punción adecuado.</li>
	<li>Infiltrarse en el área de acceso vascular posterior con una aguja de 21 G y aplicar un anestésico local (lidocaína 2%, 5 ml). Luego, espere 1-2 min para su efecto completo.</li>
	<li>Preparar todos los materiales necesarios para el acceso venoso central (véase Tabla de materiales).</li>
	<li>Utilizando el equipo del conjunto de vaciados introductores de catéter de 7,5 F, coloque la aguja en la vena yugular interna derecha utilizando una guía de ultrasonido y avance el cable guía a través de la aguja utilizando la técnica Seldinger (Figura 3A). NOTA: Si se debe realizar una biopsia transjugular después de la medición del HVPG, se debe utilizar un conjunto de vaina introductoria de biopsia hepática de 10 F de diámetro más grande (con aguja adicional de 18 G y alambre guía).</li>
	<li>Haga una incisión de 2-3 mm a lo largo del cable guía usando un bisturí blade 11 para facilitar la introducción de la cuña de acceso vascular cargada con el dilatador.</li>
	<li>Inserte la vaa de acceso vascular percutánea cargada con el dilatador en la vena yugular interna sobre el cable guía.</li>
	<li>Retire el cable guía y el dilatador de la esquema de acceso vascular.</li>
	<li>Asegúrese de que la colilla de acceso vascular permanezca en una posición intravascular estable y oriente el puerto de inyección de la colilla de acceso vascular hacia el lado lateral(Figura 3B). NOTA: No es necesario suturar o grabar.</li>
</ol>3. Colocación del catéter del globo en una vena hepática
<ol><li>Preparar todos los materiales necesarios para la colocación del catéter de globo en una vena hepática (Figura 2B).</li>
	<li>Enjuague el catéter del globo con medios de contraste (tinte) y compruebe la integridad del balón mediante una insuficiencia/deflación repetitiva con la punta del catéter sumergida en solución salina. No se deben producir burbujas de aire. NOTA: Dependiendo de la visibilidad del catéter en sí en la radiografía, también puede usar solo solución salina estéril o tinte diluido para lavar el lúmenes vasculares del catéter.</li>
	<li>Humedezca el catéter del globo en el exterior con solución salina estéril antes de insertarlo en la vaina de acceso vascular.</li>
	<li>Avance el catéter del globo bajo guía fluoroscópica hacia la vena cava inferior (CIV). Alinear la punta del catéter del globo hacia la parte posterior del paciente y las ligeras rotaciones del catéter generalmente permite avanzar desde la aurícula derecha hasta el CIV. Instruir al paciente a inhalar profundamente podría ayudar en algunos casos (Figura 3B).</li>
	<li>Avance el catéter del globo desde el CIV hacia la vena hepática. Trate de acceder a las venas hepáticas moviéndose repetidamente con la punta del catéter del globo mirando hacia la derecha hacia el área sospechosa de la unión de las venas hepáticas y el CIV (Figura 3C).</li>
	<li>Asegúrese de que el catéter esté avanzado en una posición estable que permita la medición repetida de la presión venosa hepática libre (FHVP) a una distancia de 2-4 cm de su abertura en el CIV y espacio adecuado para el globo inflado en el lúmenes de la vena hepática con el fin de registrar la presión venosa hepática encajada (WHVP).</li>
	<li>Compruebe si hay una oclusión adecuada de la vena (posición de cuña) inflando el balón (aproximadamente 2 ml de aire en el lúmenes del globo) y la inyección del agente de contraste (aproximadamente 5 ml en el lúmenes vasculares) hasta que se visualice la vena hepática distal al globo inflado(Figura 3D).</li>
	<li>Observe la estasis de los medios de contraste y excluya el lavado de los medios de contraste debido a la insuficiente oclusión del lúmenes venosos por el globo o debido a la presencia de comunicaciones venosas y venosas. Si se observa un lavado significativo de medios de contraste, intente cambiar la posición del catéter del globo.</li>
	<li>Desinflar el globo y enjuagar el lúmenes del catéter con solución salina.</li>
</ol>4. Lecturas hemodinámicas para evaluar el HVPG
<ol><li>Conecte el lúmenes vasculares del catéter del globo al transductor de presión mediante una línea de perfusión.</li>
	<li>Comience a grabar el FHVP con la punta del globo 2-4 cm desde la abertura de la vena hepática hasta el CIV. La forma de onda de la curva debe ser estable sin variaciones con el tiempo. NOTA: Los valores estables generalmente se obtienen después de 15 s.</li>
	<li>Inflar el globo y continuar registrando el WHVP hasta que la medición se convierta en una línea horizontal estable sin variaciones con el tiempo. NOTA: Los trazados estables de la presión encajada generalmente se obtienen después de >40 s.</li>
	<li>Repita la medición de FHVG (>15 s) y WHVP (>40 s) al menos tres veces para obtener lecturas triplicadas de alta calidad (Figura 3E). NOTA: Si se observan discrepancias significativas de ≥2 mm Hg entre las lecturas FHVP/WHVP individuales, se deben obtener mediciones adicionales. Tenga en cuenta las razones de los artefactos potenciales, como toser, moverse o hablar en los respectivos puntos de tiempo de la grabación hemodinámica.</li>
	<li>Presión récord en el CIV a nivel del ostium de la vena hepática, así como la presión auricular derecha (RAP).</li>
	<li>Detengan las grabaciones.</li>
	<li>Retire el catéter del globo.</li>
	<li>Calcular HVPG (FHVP restado de WHVP) como la media de 3 mediciones. NOTA: Si se observan diferencias significativas ≥2 mm Hg entre las lecturas HVPG obtenidas secuencialmente, se deben obtener mediciones adicionales.</li>
	<li>Proceda a la biopsia transjugular (paso 5.1) o retire la revestimiento introductoria del catéter de la vena yugular interna. NOTA: Insertar un cable guía rígido puede ayudar a alcanzar la misma posición intrahepática para una biopsia de hígado transjugular posterior.</li>
	<li>Aplique presión en la parte superior del sitio de inserción vascular de la vena yugular interna durante al menos 5 minutos utilizando una gasa estéril.</li>
</ol>5. Preparación para la biopsia de hígado transjugular
NOTA: Se pueden utilizar dos metodologías de biopsia diferentes para obtener una biopsia hepática transjugular: aspiración (paso 6) o biopsia del núcleo (paso 7). Primero decida qué sistema utilizar y, a continuación, seleccione la vatina introductora de agujas de biopsia adecuada antes de continuar con los pasos 5.1 a 5.3). Alternativamente, la aguja del conjunto TJBLX del núcleo también se puede insertar en el conjunto de aspiración (NOTA: utilizar diámetros apropiados), lo que resulta en un sistema de biopsia de núcleo más flexible que puede ser más fácil de introducir en una vena hepática (NOTA: este enfoque no se describe en detalle aquí).
<ol><li>Preparar el conjunto de biopsia hepática transjugular respectiva (TJLBX) (aspiración TJLBX: Figura 4A-B; núcleo TJLBX: Figura 4C; ver Tabla de materiales).</li>
	<li>Enjuague la vaina introductora de agujas de biopsia con solución salina estéril o, en caso de biopsia hepática de aspiración transjugular, con agente de contraste para una mejor visualización.</li>
	<li>Avance la vatina introductora de agujas de biopsia en una vena hepática utilizando la misma técnica descrita en 3.4.</li>
	<li>Dependiendo del conjunto de biopsia utilizado, proceda al paso 6.1 para la aspiración TJBX o al paso 7.1 para el núcleo TJBX.</li>
</ol>6. Biopsia hepática de aspiración transjugular
<ol><li>Utilice una jeringa de bloqueo de luer de 10 ml para lavar la aguja TJLBX de aspiración con solución salina estéril, sin embargo, deje unos 3 ml en la jeringa para facilitar la aspiración.</li>
	<li>Avance suavemente la aguja de biopsia a través de la vatina introductora de la aguja de biopsia hasta que la punta de la aguja llegue al final de la vaadura introductoria. NOTA: Evite cualquier fuerza o movimiento rápido mientras avanza la aguja. Pedirle al paciente que respire profundamente disminuirá el ángulo entre el CIV y las venas hepáticas para facilitar el avance de la aguja de biopsia.</li>
	<li>Pídele al paciente que aguante la respiración.</li>
	<li>Aplique succión con la jeringa de bloqueo de luer de 10 ml y avance la aguja hacia el parénquima hepático.</li>
	<li>Retraiga la aguja mientras sigue aplicando succión (presión negativa).</li>
	<li>Aconseje al paciente que continúe respirando con normalidad.</li>
	<li>Retire la aguja (pero no la esquela introductora de agujas) y coseche la muestra hepática. NOTA: La muestra hepática generalmente se conserva en la jeringa, no en la aguja (Figura 4D).</li>
	<li>Repita los pasos del 6,1 al 6,6 para pasajes adicionales de agujas hasta que se obtengan suficientes muestras hepáticas.</li>
	<li>Inyectar 5-10 ml de medios de contraste sobre la revestimiento introductoria del catéter para descartar la perforación de la cápsula hepática.</li>
	<li>Retire la esquema introductora de agujas de biopsia.</li>
	<li>Retire la vatina introductoria introductoria hepática de 10 F y aplique presión en la parte superior del sitio de inserción vascular de la vena yugular interna durante al menos 5 minutos utilizando gasas estériles.</li>
</ol>7. BIOPSIA DE HÍGADO DE NÚCLEO TRANSJUGULAR
<ol><li>Cargue la aguja TJLBX del núcleo tirando del agarre hasta que el mecanismo de disparo esté bloqueado. Avance suavemente la aguja de biopsia del núcleo a través de la esquema introductora de la aguja de biopsia hasta que la punta de la aguja se acerque al extremo de la revestimiento introductoria. NOTA: Evite cualquier fuerza o movimiento rápido mientras avanza la aguja.</li>
	<li>Pida al paciente que mantenga la respiración.</li>
	<li>Avance la aguja hacia el parénquima hepático.</li>
	<li>Realice la biopsia del núcleo apretando el gatillo del mecanismo de disparo.</li>
	<li>Aconseje al paciente que continúe respirando con normalidad.</li>
	<li>Retire la aguja (pero no la esquela introductora de agujas) y coseche la muestra hepática. Una aguja pequeña podría ayudar a extraer la muestra de hígado (Figura 4D).</li>
	<li>Repita los pasos del 7,1 al 7,6 para pasajes adicionales de la aguja hasta que se obtengan suficientes muestras hepáticas.</li>
	<li>Inyectar 5-10 ml de medios de contraste sobre el puerto lateral de la revestimiento introductoria del catéter para descartar la perforación de la cápsula hepática.</li>
	<li>Retire la esquema introductora de agujas de biopsia.</li>
	<li>Retire la vatina introductoria introductoria hepática de 10 F y aplique presión en la parte superior del sitio de inserción vascular de la vena yugular interna durante aproximadamente 5 minutos utilizando gasas estériles.</li>
</ol>

Thomas Reiberger ha recibido subvenciones y apoyo material de Cook Medical, así como apoyo de subvenciones y honorarios para conferencias de W.L. Gore & Associates. Philipp Schwabl, Markus Peck-Radosavljevic y Michael Trauner no tienen nada que revelar con respecto a este manuscrito. Mattias Mandorfer ha recibido honoraria por conferencias de W.L. Gore & Associates.

Si bien las mediciones de HVPG requieren recursos considerables y personal capacitado con habilidades de intervención y experiencia en la lectura de trazados de presión, mejora el pronóstico y podría guiar las decisiones de tratamiento, y por lo tanto, facilita la medicina personalizada. Además, la oportunidad de obtener muestras de biopsia hepática de forma segura a través de la vía transjugular en la misma sesión es otro argumento a favor de la implementación de laboratorios hemodinámicos hepáticos en centr...

Los pacientes con cirrosis están en riesgo de desarrollar complicaciones relacionadas principalmente con la hipertensión portal (PHT), como ascites o sangrado de várices gástricas o esofágicas1,2,3. El riesgo de descompensación hepática está relacionado con el grado de PHT2. La medición del gradiente de presión venosa hepática (HVPG) es el estándar de oro para estimar la presión venosa del portal en pacientes con cirrosis, es decir, evaluar la gravedad de la hipertensión del portal sinusoidal4. Un HVPG de Hg de ≥6 mm a 9 mm Hg indica presión elevada del portal ('hipertensión del portal subclínico'), mientras que un Hg de ≥10 mm define el CSPH. Este protocolo proporciona una descripción detallada del equipo y el procedimiento y también destaca posibles escollos y ofrece consejos para solucionar problemas.
Clínicamente, la medición de HVPG está indicada (i) para establecer el diagnóstico de hipertensión del portal sinusoidal, (ii) identificar a los pacientes en riesgo de descompensación hepática mediante el diagnóstico de CSPH (HVPG ≥10 mm Hg), (iii) guiar el tratamiento farmacológico en profilaxis primaria o secundaria de sangrado variceal, y iv) evaluar el riesgo de insuficiencia hepática después de la hepatectomía parcial2,4. HVPG se utiliza como un marcador sustituto establecido para la mejora y/ o empeoramiento de la fibrosis/función hepática, ya que una disminución en el HVPG se traduce en un beneficio clínicamente significativo5,mientras que los valores más altos de HVPG se asocian con un mayor riesgo de sangrado variceal6. Sobre la base de observaciones sobre los cambios en el HVPG en pacientes con betabloqueante no selectivo (NSBB) o terapias etológicas, se considera que una disminución del HVPG del 10% es clínicamente relevante7,8.
Hasta la fecha, no hay parámetros alternativos y no invasivos que reflejen el grado de presión del portal con una precisión similar a la de HVPG. Incluso si el HVPG es en realidad una forma "indirecta" de medir la presión del portal, se correlaciona fuertemente y, por lo tanto, refleja con precisión la presión del portal medida "directamente" en pacientes con cirrosis9. Es importante destacar que las mediciones de HVPG deben realizarse utilizando un catéter de globo para maximizar la cantidad evaluada de parénquima hepático10,11,12. Aunque las mediciones de HVPG son invasivas, intensivas en recursos y requieren habilidades de intervención y experiencia en la interpretación de la fiabilidad y verosimilitud de las lecturas de presión, este método es el estándar oro actual para diagnosticar y monitorear la hipertensión del portal en pacientes con cirrosis13,14,15.
Los valores simples de laboratorio, como el recuento de plaquetas, pueden ayudar a estimar la probabilidad de CSPH. Sin embargo, el recuento de plaquetas, o puntuaciones no invasivas que incluyen recuento de plaquetas, tienen un valor predictivo limitado16. Las modalidades de imagen que muestran esplenomegalegalia17 o garantías portosistemas18 en pacientes con cirrosis sugieren la presencia de CSPH, pero no son útiles para cuantificar el grado real de hipertensión portal. Nuevas herramientas de imagen no invasivas, como la elastografía del hígado19 y/o del bazo20 son útiles para gobernar o descartar la presencia de CSPH. Sin embargo, ninguno de los métodos disponibles es capaz de medir directamente los cambios dinámicos en la presión del portal21.
El valor pronóstico de HVPG ha sido subrayado por varios estudios históricos, mostrando que un HVPG ≥10 mm Hg (es decir, CSPH) es predictivo para la formación de varices8 (y para el desarrollo de complicaciones relacionadas con la hipertensión portal22,mientras que una disminución (inducida farmacológicamente) de HVPG modula el riesgo respectivo de crecimiento variceal23 y descompensación7. La respuesta de HVPG es el único sustituto establecido para la eficacia de los NSBBB en la prevención (recurrente) del sangrado variceal. Si el HVPG disminuye a un valor de ≤12 mm Hg o se reduce en ≥10-20% durante el tratamiento con NSBB, los pacientes están protegidos contra el sangrado variceal y la supervivencia aumenta24,25. Del mismo modo, la respuesta hvpg también disminuye la incidencia de ascados y complicaciones relacionadas en pacientes con cirrosis compensada5,26. Varios estudios han proporcionado evidencia que respalda el uso de la terapia guiada por HVPG27,28,29,30,31,32. Así, en centros con suficiente experiencia, la respuesta hvpg puede guiar las decisiones de tratamiento, facilitando la medicina personalizada para pacientes con hipertensión portal.
Además, la medición de HVPG podría servir como punto final sustituto para estudios de prueba de concepto que evalúan la eficacia de nuevos tratamientos para la cirrosis y/o la hipertensión portal que se traduce de banco a cabecera, como sorafenib33,34,simvastatina35,36,taurina37o emricasan38. En última instancia, las mediciones de HVPG también pueden proporcionar información de pronóstico importante sobre el riesgo de desarrollo de HCC39 y para la insuficiencia hepática después de la resección hepática40.
La infraestructura para medir el HVPG debe estar disponible en centros de atención secundaria y terciaria. Dado que la técnica de medición de HVPG requiere formación especializada y equipo, parece racional que los centros académicos y de trasplante establezcan un laboratorio hemodinámico hepático, facilitando el diagnóstico y manejo de última generación de la hipertensión del portal. Los centros de gran volumen realizan varios cientos de mediciones de HVPG al año. Sobre la base de nuestra experiencia, se obtiene suficiente experiencia para realizar mediciones precisas de HVPG después de 50-100 mediciones supervisadas de HVPG.

<table border="0" cellpadding="0" cellspacing="0" style="width:1628px;" width="1627">
	<colgroup>
		<col />
		<col />
		<col />
		<col />
	</colgroup>
	<tbody>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:315px;">10 mL Luer-Lock syringe</td>
			<td style="width:335px;">Braun</td>
			<td style="width:317px;">REF 4617100V, LOT 17G03C8</td>
			<td style="width:661px;">Luer-Lock Syringe for connection with the aspiration biopsy set</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">10 mL Syringe 2x</td>
			<td>Braun</td>
			<td style="width:317px;">REF 4606108V</td>
			<td>Snonpyrogenic, nontoxic 10 mL syringe</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">10 F liver biopsy&#160; introducer sheath set</td>
			<td>Cook Medical</td>
			<td style="width:317px;">REF RCFW-10.0-38, REF G07600</td>
			<td>Percutaneous Sheath Introducer Set (TJBX), 10F Port, 13cm, Check-Flo Performer Introducer</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">18 G needle for biopsy introducer sheat</td>
			<td>Arrow International</td>
			<td style="width:317px;">REF AN-04318</td>
			<td>Introducer Needle for TJBX Set, 18 G, 6.35 cm</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">21 G needle</td>
			<td>Henke Sass Wolf</td>
			<td style="width:317px;">REF 0086, Fine-Ject 21Gx2&#34;</td>
			<td>Sterile injeciton needle, 21 Gx2&#34;, 0.8 x 50 mm, for local anesthesia</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">3-way channels</td>
			<td>Becton Dickinson</td>
			<td style="width:317px;">BD Connecta Luer-Lok, REF 39402</td>
			<td>Three way channel with Luer-Lok connection system</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">7.5 F catheter introducer sheath set</td>
			<td>Arrow International</td>
			<td style="width:317px;">REF SI_09875-E</td>
			<td>Percutaneous Sheath Introducer Set, 7.5 F Port</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Aspiration TJLBX set</td>
			<td>Cook Medical</td>
			<td style="width:317px;">REF RMT-16-51.0-TJL, REF G20521</td>
			<td>TJ Liver Access and Biopsy Needle Set (Aspiration Set), 9 F-45 cm, 16 G-50.5 cm</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Balloon catheter</td>
			<td>Gerhard Pejcl Medizintechnik Austria</td>
			<td style="width:317px;">REF 500765B</td>
			<td>Ferlitsch HVPG Catheter, 7F-65cm, Balloon:2.5mL, Pressure 50-90 kPa, GW: 0.032&#34;</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Blade 11 scalpel</td>
			<td>Medi-Safe Surgicals</td>
			<td style="width:317px;">MS Safety Scalpel REF /Batch 18012424</td>
			<td>11 blade safety scalpels, retractable, single use, 10 scalpels per package</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Blunt tip fill needle</td>
			<td>Becton Dickinson</td>
			<td style="width:317px;">REF 303129</td>
			<td>Sterile blunt tip fill needle, single use</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Contrast media (dye)</td>
			<td>Dr. Franz K&#246;hler Chemie GmbH, Bensheim, GER</td>
			<td style="width:317px;">ZNR 1-24112</td>
			<td>Peritrast 300 mg Iod/mL, 50 mL, contrastmedia</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Core TJLBX set</td>
			<td>Cook Medical</td>
			<td style="width:317px;">REF RMT-14XT-50.5-LABS-100, REF G08285</td>
			<td>TJ Needle Introducer and Bx-Needle 7 F-53.5 cm, 14 G-53.5 cm/20 mm, 18 G-60 cm</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Digital x-ray fluoroscope system</td>
			<td>Siemens</td>
			<td style="width:317px;">Model No 07721710</td>
			<td>ARCADIS Varic, mobile x-ray fluoroscope system</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Disinfectant solution</td>
			<td>Gebro Pharma</td>
			<td style="width:317px;">1-20413</td>
			<td>Isozid-H</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Face mask</td>
			<td>MSP Medizintechnik GmbH</td>
			<td style="width:317px;">REF HSO36984</td>
			<td>Surgical face mask from double fleece, with tie, 50 pieces</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Guide wire for biopsy introducer sheat</td>
			<td>Arrow International</td>
			<td style="width:317px;">REF AW-14732</td>
			<td>Marked Spring-Wire Guide, TJBX Set, 0.032&#34;, 0.81 mm, 68 cm</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Infusion line</td>
			<td>Rosstec Medical Products b Cardea GmbH &#38; Co</td>
			<td style="width:317px;">REF 220010, 100m</td>
			<td>Infusion line, Luer-Lok for connection of balloon catheter and pressure transducer</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Lidocaine 2%</td>
			<td>Gebro Pharma</td>
			<td style="width:317px;">Xylanaest, ZNR 17.792, 20mg/1mL (2%)</td>
			<td>Sterile vials Xylanest including 2% Lidocain hydrochloride for local anesthesia</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Midazolame</td>
			<td>Roche</td>
			<td style="width:317px;">Dormicum, ZNr 1-18809, Midazolam 5mg/5mL</td>
			<td>Sterile vials Dormicum including Midazolam for sedation</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Monitor system</td>
			<td>Datex-Ohmeda by GE</td>
			<td style="width:317px;">Type F-CMREC1</td>
			<td>Patient monitoring system</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Patient bench</td>
			<td>Silerlen-MAQET</td>
			<td style="width:317px;">Model No 7474.00A</td>
			<td>Mobile patient bench for x-ray fluoroscopy</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Pressure bag</td>
			<td>Ethox Corp</td>
			<td style="width:317px;">REF 4005</td>
			<td>Pressure Infuser Bag 500 mL</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Pressure recorder</td>
			<td>Edwards Lifesciences</td>
			<td style="width:317px;">Ref T001631A, Lot 61202039</td>
			<td>TruWave 3 cc/150 cm</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Pressure transducer</td>
			<td>Edwards Lifesciences TM</td>
			<td style="width:317px;">REF T001631A</td>
			<td>Pressure Monitoring Set (1x), 3 cc/150 cm, TruWave TM</td>
		</tr>
		<tr height="42">
			<td height="42" style="height:42px;">Recording software&#160;</td>
			<td>Datex Ohmeda by GE</td>
			<td style="width:317px;">Software S/5 is property of Instrumentarium Corp of Datex-Ohmeda TM</td>
			<td>Datex-Ohmeda S/5TM Collect - Software to record pressure tracings of the patient monitor system</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Sterile coat</td>
			<td>Lohmann &#38; Rauscher International GmbH &#38; Co</td>
			<td style="width:317px;">REF 19351</td>
			<td>Surgical Gown, Different sizes, e.g. L-130 cm</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Sterile gauze</td>
			<td>Hartmann</td>
			<td style="width:317px;">REF 401798, 10x10cm gauze</td>
			<td>10 x 10 cm sterile gauze, 10 pieces per package</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Sterile gloves</td>
			<td>Meditrade</td>
			<td style="width:317px;">REF 9021</td>
			<td>Gentle Skin sterile gloves, different sizes, e.g. 7.5</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Sterile saline solution</td>
			<td>Fresenius Kabi</td>
			<td style="width:317px;">NaCl 0.9%, B009827 REV 03</td>
			<td>Physiologic Saline Solution 0.9% NaCl, 309 mosmol/L, pH-Wert: 4.5-7.0</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Sterile saline vessel</td>
			<td>KLS Martin</td>
			<td style="width:317px;">REF K8A,&#160; 18/10 Jonas</td>
			<td>Sterilizable Metal Vessel for sterile saline</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Sterile table cover</td>
			<td>Hartmann</td>
			<td style="width:317px;">REF 2502208</td>
			<td>Table Cover, Foliodrape 150 x 100 cm</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Sterile towel</td>
			<td>BARRIER by M&#246;lnlycke Health Care</td>
			<td style="width:317px;">REF 706900</td>
			<td>Adhesive OP-Towel, 100 x 100 cm</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Sterile US probe cover sheath</td>
			<td>Websinger</td>
			<td style="width:317px;">REF 07014</td>
			<td>Sterile ultrasound probe cover, 20 x 60 cm, inluding two sterie adhesive tapes</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Stiff guidewire</td>
			<td>Cook Medical</td>
			<td style="width:317px;">REF TSMG-35-180-4-LES, G46729</td>
			<td>Lunderquist Extra Stiff Wire Guide, 0.035&#34;-.89 mm, 180 cm, 4 cm flexible tip</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Surgical cap</td>
			<td>BARRIER by M&#246;lnlycke Health Care</td>
			<td style="width:317px;">REF 620500, PCS 100, Colour Green</td>
			<td>Surgical Cap</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Ultrasound device</td>
			<td>FUJIFILM SonoSite</td>
			<td style="width:317px;">Model M-Turbo, REF P17000-17</td>
			<td>Mobile ultrasound system</td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

measurement of the hepatic venous pressure gradient and transjugular liver biopsy

Aquí proporcionamos un protocolo detallado que describe el procedimiento clínico de medición del gradiente de presión venosa hepática (HVPG) en pacientes con enfermedad hepática crónica avanzada seguida de una instrucción para la biopsia transjugular. Bajo anestesia local y guía de ultrasonido, se coloca una vatina introductora de catéter en la vena yugular interna derecha. Usando guía fluoroscópica, un catéter de globo se avanza en el cava de vena inferior (IVC) e se inserta en una vena hepática grande. La posición correcta y suficiente de la cuña del catéter se asegura inyectando medios de contraste mientras el globo bloquea la salida de la vena hepática cannulada. Después de calibrar el transductor de presión externo, se obtienen grabaciones de presión continua con grabaciones triplicadas de la presión venosa hepática en cuña (WHVP) y presión venosa hepática libre (FHVP). La diferencia entre FHVP y WHVP se conoce como HVPG, con valores ≥10 mm Hg que indican hipertensión portal clínicamente significativa (CSPH). Antes de extraer el catéter, se registran las lecturas de presión obtenidas en el CIV al mismo nivel, así como la presión auricular adecuada.
Por último, se puede obtener una biopsia de hígado transjugular por la misma vía vascular. Hay diferentes sistemas disponibles; sin embargo, las agujas de biopsia del núcleo son preferidas sobre las agujas de aspiración, especialmente para los hígados cirrhotic. Una vez más, bajo la guía fluoroscópica, una vaina introductora de agujas de biopsia se avanza en una vena hepática. A continuación, la aguja de biopsia transjugular se avanza suavemente a través de la vatina introductoria: (i) en caso de biopsia de aspiración, la aguja se avanza en el parénquima hepático bajo aspiración y luego se retira rápidamente, o (ii) en caso de una biopsia de núcleo, el mecanismo de corte se activa dentro del parénquima. Varios pasajes separados se pueden realizar de forma segura para obtener suficientes muestras hepáticas a través de biopsia transjugular. En manos experimentadas, la combinación de estos procedimientos toma alrededor de 30-45 min.

En pacientes compensados con una función hepática bien conservada (es decir, sin antecedentes de descompensación hepática, como ascites o sangrado variceal), los valores medidos de HVPG pueden ser normales o en el rango de hipertensión del portal subclínico (HVPG 6-9 mm Hg). Sin embargo, los pacientes compensados pueden desarrollar CSPH (HVPG ≥10 mm Hg) lo que indica un mayor riesgo de desarrollar várices o descompensación hepática. A su vez, los pacientes con varices esofágicas o gástricas, HVPG suele estar...

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Measurement of the Hepatic Venous Pressure Gradient and Transjugular Liver Biopsy

Aquí, presentamos un protocolo para la medición del gradiente de presión venosa hepática (HVPG), el estándar de oro para diagnosticar la hipertensión del portal clínicamente significativa. Además, describimos cómo realizar una biopsia de hígado transjugular dentro de la misma sesión.

Medición del gradiente de presión venosa hepática y biopsia de hígado transjugular

Here we provide a detailed protocol describing the clinical procedure of hepatic venous pressure gradient (HVPG) measurement in patients with advanced ...

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Research

JoVE Journal

Medicine

19.0K vistas.  Medical University of Vienna. Aquí, presentamos un protocolo para la medición del gradiente de presión venosa hepática (HVPG), el estándar de oro para diagnosticar la hipertensión del portal clínicamente significativa. Además, describimos cómo realizar una biopsia de hígado transjugular dentro de la misma sesión.

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Epidural Intracranial Pressure Measurement in Rats Using a Fiber-optic Pressure Transducer

Elevated intracranial pressure (ICP) is a significant problem in several forms of ischemic brain injury including stroke, traumatic brain injury and cardiac arrest. This elevation may result in further neurological injury, in the form of transtentorial herniation1,2,3,4, midbrain compression, neurological deficit or increased cerebral infarct2,4. Current therapies are often inadequate to control elevated ICP in the clinical setting5,6,7 . Thus there is a need for accurate methods of ICP measurement in animal models to further our understanding of the basic mechanisms and to develop new treatments for elevated ICP.
In both the clinical and experimental setting ICP cannot be estimated without direct measurement. Several methods of ICP catheter insertion currently exist. Of these the intraventricular catheter has become the clinical 'gold standard' of ICP measurement in humans8. This method involves the partial removal of skull and the instrumentation of the catheter through brain tissue. Consequently, intraventricular catheters have an infection rate of 6-11%9. For this reason, subdural and epidural cannulations have become the preferred methods in animal models of ischemic injury. 
Various ICP measurement techniques have been adapted for animal models, and of these, fluid-filled telemetry catheters10 and solid state catheters are the most frequently used11,12,13,14,15. The fluid-filled systems are prone to developing air bubbles in the line, resulting in false ICP readings. Solid state probes avoid this problem (Figure 1). An additional problem is fitting catheters under the skull or into the ventricles without causing any brain injury that might alter the experimental outcomes. Therefore, we have developed a method that places an ICP catheter contiguous with the epidural space, but avoids the need to insert it between skull and brain. 
An optic fibre pressure catheter (420LP, SAMBA Sensors, Sweden) was used to measure ICP at the epidural location because the location of the pressure sensor (at the very tip of the catheter) was found to produce a high fidelity ICP signal in this model. There are other manufacturers of similar optic fibre technologies13 that may be used with our methodology. Alternative solid state catheters, which have the pressure sensor located at the side of the catheter tip, would not be appropriate for this model as the signal would be dampened by the presence of the monitoring screw. 
Here, we present a relatively simple and accurate method to measure ICP. This method can be used across a wide range of ICP related animal models.

A novel technique to record the pressures within the skull is described. The minimally invasive method uses a fibre-optic pressure sensing system to accurately measure intracranial pressure (ICP) in anaesthetized rats without causing significant brain trauma. The technique may be used in a wide range of experimental models.

Medición de la presión intracraneal epidural en ratas, utilizando un transductor de presión de fibra óptica

Elevated intracranial pressure (ICP) is a significant problem in several forms of ischemic brain injury including stroke, traumatic brain injury and ...

Investigación

Medicina

Measurement of the Pressure-volume Curve in Mouse Lungs

In recent decades the mouse has become the primary animal model of a variety of lung diseases. In models of emphysema or fibrosis, the essential phenotypic changes are best assessed by measurement of the changes in lung elasticity. To best understand specific mechanisms underlying such pathologies in mice, it is essential to make functional measurements that can reflect the developing pathology. Although there are many ways to measure elasticity, the classical method is that of the total lung pressure-volume (PV) curve done over the whole range of lung volumes. This measurement has been made on adult lungs from nearly all mammalian species dating back almost 100 years, and such PV curves also played a major role in the discovery and understanding of the function of pulmonary surfactant in fetal lung development. Unfortunately, such total PV curves have not been widely reported in the mouse, despite the fact that they can provide useful information on the macroscopic effects of structural changes in the lung. Although partial PV curves measuring just the changes in lung volume are sometimes reported, without a measure of absolute volume, the nonlinear nature of the total PV curve makes these partial ones very difficult to interpret. In the present study, we describe a standardized way to measure the total PV curve. We have then tested the ability of these curves to detect changes in mouse lung structure in two common lung pathologies, emphysema and fibrosis. Results showed significant changes in several variables consistent with expected structural changes with these pathologies. This measurement of the lung PV curve in mice thus provides a straightforward means to monitor the progression of the pathophysiologic changes over time and the potential effect of therapeutic procedures.

Here we present a protocol to simply and reliably measure the lung pressure-volume curve in mice, showing that it is sufficiently sensitive to detect phenotypic parenchymal changes in two common lung pathologies, pulmonary fibrosis and emphysema. This metric provides a means to quantify the lung&#8217;s structural changes with developing pathology.

Medición de la curva de presión-volumen en mouse Pulmones

In recent decades the mouse has become the primary animal model of a variety of lung diseases. In models of emphysema or fibrosis, the essential ...

Isolated Hepatic Perfusion as a Treatment for Liver Metastases of Uveal Melanoma

Isolated hepatic perfusion (IHP) is a procedure where the liver is surgically isolated and perfused with a high concentration of the chemotherapeutic agent melphalan. Briefly, the procedure starts with the setup of a percutaneous veno-venous bypass from the femoral vein to the external jugular vein. Via a laparotomy, catheters are then inserted into the proper hepatic artery and the caval vein. The portal vein and the caval vein, both supra- and infrahepatically, are then clamped. The arterial and venous catheters are connected to a heart lung machine and the liver is perfused with melphalan (1 mg/kg body weight) for 60 min. This way it is possible to locally perfuse the liver with a high dose of a chemotherapeutic agent, without leakage to the systemic circulation.
In previous studies including patients with isolated liver metastases of uveal melanoma, an overall response rate of 33-100% and a median survival between 9 and 13 months, have been reported. The aim of this protocol is to give a clear description of how to perform the procedure and to discuss IHP as a treatment option for liver metastases of uveal melanoma.

Here, we present a protocol how to perform an isolated liver perfusion (IHP) with melphalan and we also discuss IHP as a treatment option for liver metastases of uveal melanoma.

Aislado hepática de perfusión como un tratamiento para las metástasis hepáticas de melanoma uveal

Isolated hepatic perfusion (IHP) is a procedure where the liver is surgically isolated and perfused with a high concentration of the chemotherapeutic ...

Generation of a Humanized Mouse Liver Using Human Hepatic Stem Cells

A novel animal model involving chimeric mice with humanized livers established via human hepatocyte transplantation has been developed. These mice, in which the liver has been repopulated with functional human hepatocytes, could serve as a useful tool for investigating human hepatic cell biology, drug metabolism, and other preclinical applications. One of the key factors required for successful transplantation of human hepatocytes into mice is the elimination of the endogenous hepatocytes to prevent competition with the human cells and provide a suitable space and microenvironment for promoting human donor cell expansion and differentiation. To date, two major liver injury mouse models utilizing fumarylacetoacetate hydrolase (Fah) and uroplasminogen activator (uPA) mice have been established. However, Fah mice are used mainly with mature hepatocytes and the application of the uPA model is limited by decreased breeding. To overcome these limitations, Alb-toxin receptor mediated cell knockout (TRECK)/SCID mice were used for in vivo differentiation of immature human hepatocytes and humanized liver generation. Human hepatic stem cells (HpSCs) successfully repopulated the livers of Alb-TRECK/SCID mice that had developed lethal fulminant hepatic failure following diphtheria toxin (DT) treatment. This model of a humanized liver in Alb-TRECK/SCID mice will have functional applications in studies involving drug metabolism and drug-drug interactions and will promote other in vivo and in vitro studies.

Here, we present a novel humanized mouse liver model generated in Alb-toxin receptor mediated cell knockout (TRECK)/SCID mice following the transplantation of immature and expandable human hepatic stem cells.

Generación de un ratón humanizado hígado uso de células madre hepáticas humanas

A novel animal model involving chimeric mice with humanized livers established via human hepatocyte transplantation has been developed. These mice, in ...

Method of Direct Segmental Intra-hepatic Delivery Using a Rat Liver Hilar Clamp Model

Major hepatic surgery with inflow occlusion, and liver transplantation, necessitate a period of warm ischemia, and a period of reperfusion leading to ischemia/reperfusion (I/R) injury with myriad negative consequences. Potential I/R injury in marginal organs destined for liver transplantation contributes to the current donor shortage secondary to a decreased organ utilization rate. A significant need exists to explore hepatic I/R injury in order to mediate its impact on graft function in transplantation. Rat liver hilar clamp models are used to investigate the impact of different molecules on hepatic I/R injury. Depending on the model, these molecules have been delivered using inhalation, epidural infusion, intraperitoneal injection, intravenous administration or injection into the peripheral superior mesenteric vein. A rat liver hilar clamp model has been developed for use in studying the impact of pharmacologic molecules in ameliorating I/R injury. The described model for rat liver hilar clamp includes direct cannulation of the portal supply to the ischemic hepatic segment via a side branch of the portal vein, allowing for direct segmental hepatic delivery. Our approach is to induce ischemia in the left lateral and median lobes for 60 min, during which time the substance under study is infused. In this case, pegylated-superoxide dismutase (PEG-SOD), a free radical scavenger, is infused directly into the ischemic segment. This series of experiments demonstrates that infusion of PEG-SOD is protective against hepatic I/R injury. Advantages of this approach include direct injection of the molecule into the ischemic segment with consequent decrease in volume of distribution and reduction in systemic side effects.

A unique rat liver hilar clamp model was developed for studying the impact of pharmacologic molecules in ameliorating ischemia-reperfusion injury. This model includes direct cannulation of the portal supply to the ischemic liver segment via a branch of the portal vein, allowing for direct hepatic delivery.

Método de la entrega directa segmentaria intra-hepática utilizando un modelo de hígado de rata hiliar abrazadera

Major hepatic surgery with inflow occlusion, and liver transplantation, necessitate a period of warm ischemia, and a period of reperfusion leading to ...

Measurement of Natural Killer Cell-Mediated Cytotoxicity and Migration in the Context of Hepatic Tumor Cells

Natural killer (NK) cells are a subset of the cytotoxic lymphocyte population of the innate immune system and participate as a first line of defense by clearing pathogen-infected, malignant, and stressed cells. The ability of NK cells to eradicate cancer cells makes them an important tool in the fight against cancer. Several new immune-based therapies are under investigation for cancer treatment which rely either on enhancing NK cell activity or increasing the sensitivity of cancer cells to NK cell-mediated eradication. However, to effectively develop these therapeutic approaches, cost-effective in vitro assays to monitor NK cell-mediated cytotoxicity and migration are also needed. Here, we present two in vitro protocols that can reliably and reproducibly monitor the effect of NK-cell cytotoxicity on cancer cells (or other target cells). These protocols are non-radioactivity-based, simple to set up, and can be scaled up for high-throughput screening. We also present a flow cytometry-based protocol to quantitatively monitor NK cell migration, which can also be scaled up for high-throughput screening. Collectively, these three protocols can be used to monitor key aspects of NK cell activity that are necessary for the cells&#39; ability to eradicate dysfunctional target cells.

Evasion of natural killer (NK) cell-mediated eradication by cancer cells is important for cancer initiation and progression. Here, we present two non-radioactivity-based protocols to evaluate NK cell-mediated cytotoxicity toward hepatic tumor cells. Additionally, a third protocol is presented to analyze NK cell migration.

Medición de la citotoxicidad y migración mediadas por células asesinas naturales en el contexto de las células tumorales hepáticas

Natural killer (NK) cells are a subset of the cytotoxic lymphocyte population of the innate immune system and participate as a first line of defense by ...

Murine Precision-Cut Liver Slices as an Ex Vivo Model of Liver Biology

Understanding the mechanisms of liver injury, hepatic fibrosis, and cirrhosis that underlie chronic liver diseases (i.e., viral hepatitis, non-alcoholic fatty liver disease, metabolic liver disease, and liver cancer) requires experimental manipulation of animal models and in vitro cell cultures. Both techniques have limitations, such as the requirement of large numbers of animals for in vivo manipulation. However, in vitro cell cultures do not reproduce the structure and function of the multicellular hepatic environment. The use of precision-cut liver slices is a technique in which uniform slices of viable mouse liver are maintained in laboratory tissue culture for experimental manipulation. This technique occupies an experimental niche that exists between animal studies and in vitro cell culture methods. The presented protocol describes a straightforward and reliable method to isolate and culture precision-cut liver slices from mice. As an application of this technique, ex vivo liver slices are treated with bile acids to simulate cholestatic liver injury and ultimately assess the mechanisms of hepatic fibrogenesis.

This protocol provides a simple and reliable method for the production of viable precision-cut liver slices from mice. The ex vivo tissue samples can be maintained under laboratory tissue culture conditions for multiple days, providing a flexible model to examine liver pathobiology.

Rebanadas de hígado cortadas con precisión de la murino como modelo Ex Vivo de biología hepática

Understanding the mechanisms of liver injury, hepatic fibrosis, and cirrhosis that underlie chronic liver diseases (i.e., viral hepatitis, non-alcoholic ...

Análisis cuantitativo de la distribución de la rigidez hepática

A Three-Dimensional Digital Model for Early Diagnosis of Hepatic Fibrosis Based on Magnetic Resonance Elastography

Hepatic fibrosis is an early stage of liver cirrhosis, and there are no better non-invasive and convenient methods for the detection and evaluation of the disease. Despite the good progress made with the liver stiffness map (LSM) based on magnetic resonance elastography (MRE), there are still some limitations that need to be overcome, including manual focus determination, manual selection of regions of interest (ROIs), and discontinuous LSM data without structural information, which makes it impossible to evaluate the liver as a whole. In this study, we propose a novel three-dimensional (3D) digital model for the early diagnosis of hepatic fibrosis based on MRE.
MRE is a non-invasive imaging technique that employs magnetic resonance imaging (MRI) to measure the liver stiffness at the scanning site through human-computer interaction. Studies have indicated a significant positive correlation between the LSM obtained through MRE and the degree of hepatic fibrosis. However, for clinical purposes, a comprehensive and precise quantification of the degree of hepatic fibrosis is necessary. To address this, the concept of Liver Stiffness Distribution (LSD) was proposed in this study, which refers to the 3D stiffness volume of each liver voxel obtained by the alignment of 3D liver tissue images and MRE indicators. This provides a more effective clinical tool for the diagnosis and treatment of hepatic fibrosis.

Autor destacado: Avance en el diagnóstico de la fibrosis hepática mediante elastografía por resonancia magnética e IA 

The objective of this study was to develop a novel three-dimensional digital model for the early diagnosis of hepatic fibrosis, which includes the stiffness of each voxel in the patient's liver and can thus, be used to calculate the distribution ratio of the patient's liver at different fibrosis stages.

Un modelo digital tridimensional para el diagnóstico precoz de la fibrosis hepática basado en la elastografía por resonancia magnética

Hepatic fibrosis is an early stage of liver cirrhosis, and there are no better non-invasive and convenient methods for the detection and evaluation of the ...