비엔나 종합 병원과 비엔나 의과 대학은 비엔나 간 혈역학 실험실을 위한 인프라를 친절하게 제공합니다. 비엔나 간 혈역학 실험실의 이전 구성원과 동료는 지속적으로 우리의 기관에서 HVPG 측정 및 경직 간 생검의 방법론을 개선하는 데 도움이 자신의 귀중한 입력에 대한 인식되어야한다. 또한 비엔나 혈역학 연구소의 필수 부분인 위장과 간과의 간호사들에게 감사드리며 환자에게 우수한 치료를 지속적으로 제공합니다.

여기에 설명 된 프로토콜은 비엔나 의과 대학의 인간 연구 윤리위원회의 지침을 준수합니다.
1. 준비
<ol><li>프린터 또는 레코딩 소프트웨어에 연결된 디지털 X선 형광소시스템(도1A),모니터시스템(도1B),압력 레코더 및 트랜스듀서(도1C)및 초음파 장치(도1D)를갖춘 X선을 이용한 절차에 전념/승인된 전문실을 사용한다. 또한, 환자 벤치 옆에 멸균 작업영역(도 1E)을위한 충분한 공간이 있는지 확인하십시오.</li>
	<li>HVPG의 측정에 의해 CSPH에 대한 의심되는 향상된 만성 간 질환 (ACLD)을 가진 환자를 평가합니다. 특히, 다음 기능 중 하나를 가진 환자는 HVPG 측정을 겪을 수 있습니다: 혈전 세포성 페니아 & 150 G/L, 단면 이미징에 대한 포르토전신 담보, 비선택적 betablocker 치료, 선동, 및 절단 종양의 개시 전에 위장 식도 가변.</li>
	<li>절차에 대한 다음 위반을 사용하십시오: (i), 경정맥 혈전증으로 인한 혈관 접근의 부재, (ii) 임상적으로 명백한 출혈 장애(예를 들어, 보급된 인트라바스큘러응압), (iii) 반대측 폐렴구균, (iv) 중요한 심장 부정맥.</li>
	<li>환자가 절차의 목적과 잠재적 위험에 대해 통보 받은 후 환자가 고정되고 서면 으로 통보된 동의를 얻었습니다.</li>
	<li>절차는 전신 마취없이 수행되어야한다고 설명한다. 그러나, midazolam의 낮은 복용량 (최대 0.02 mg/kg 체중) 불안 한 환자에 게 제공 될 수 있습니다.</li>
	<li>표준 모니터 시스템을 사용하여 비침습적 동맥 혈압 측정, 맥박 산소 측정 및 전기 장술에 의해 환자의 활력 징후를 모니터링합니다.</li>
	<li>압력 가방에 멸균 식염수 용액을 사용하여 압력 트랜스듀서 세트를 플러시하십시오.</li>
	<li>압력 변환기를 교정합니다(미리 보정되지 않으면 측정을 시작하기 전에 외부 압력 참조에 대해 보정합니다(예: 13.6cmH2O가 10mm Hg와 같은 물 컬럼을 사용하여).</li>
	<li>환자의 미약선을 조준하여 트랜스듀서를 오른쪽 아트리움 수준에 놓습니다.</li>
	<li>압력 레코더/레코딩 소프트웨어를 준비하여 압력 추적을 기록할 준비를 합니다.</li>
	<li>필요한 모든 멸균 장비가 준비되어 있는지 확인하십시오(재료 표참조).</li>
	<li>환자에게 환자 벤치에 척추 위치를 가져 가도록 요청하십시오.</li>
	<li>작업자가 손과 팔뚝을 씻고 소독하십시오.</li>
	<li>수술용 캡과 얼굴 마스크, 멸균 장갑, 멸균 코트를 착용하십시오.</li>
	<li>멸균 테이블 커버를 사용하고 중앙 정맥 접근에 필요한 장비에 대한 멸균 작업 영역을 준비(그림 2A).</li>
</ol>2. 멸균 조건 하에서 중앙 정맥 접근
<ol><li>환자에게 머리를 왼쪽으로 약간 돌린 다음 소독제로 오른쪽 전방 및 측면 목 부위를 소독하도록 지시합니다.</li>
	<li>경동맥 삼각형 주위에 피부를 덮는 멸균 수건을 놓습니다.</li>
	<li>초음파 프로브(멸균 미국 프로브 커버 칼집으로 덮여 있음)를 사용하여 올바른 내부 경정맥과 적절한 천자 부위를 식별합니다.</li>
	<li>21 G 바늘로 후속 혈관 접근 부위에 침투하고 국소 마취제 (리도카인 2 %, 5 mL)를 적용합니다. 그런 다음 전체 효과를 위해 1-2 분 기다립니다.</li>
	<li>중앙 정맥 접근에 필요한 모든 재료를 준비합니다(재료 표참조).</li>
	<li>7.5 F 카테터 소개자 칼집 세트의 장비를 사용하여, 초음파 지도를 사용하여 오른쪽 내부 경정맥에 바늘을 배치하고 셀딩거 기술을 사용하여 바늘을 통해 가이드 와이어를 진행(도 3A). 참고: HVPG 측정 후 경정맥생검을 수행해야 하는 경우, 더 큰 직경 10F 간 생검 소개자 칼집 세트(추가 18G 바늘 및 가이드 와이어)를 사용해야 합니다.</li>
	<li>블레이드 11 메스를 사용하여 가이드와이어를 따라 2-3mm 절개를 하여 확장기로 로드된 혈관 접근 칼집을 쉽게 도입할 수 있습니다.</li>
	<li>확장기와 함께 로드된 혈관 접근 경피 칼집을 가이드와이어 를 통해 내부 경정맥에 삽입합니다.</li>
	<li>혈관 액세스 칼집의 가이드와이어와 확장기를 제거합니다.</li>
	<li>혈관 접근 칼집이 안정적인 내트라바스 위치에 남아 있는지 확인하고 측면쪽으로 혈관 액세스 칼집의 주입 포트를 방향을 지정(그림 3B). 참고: 봉합 이나 테이핑이 필요하지 않습니다.</li>
</ol>3. 간 정맥에 풍선 카테터의 배치
<ol><li>풍선 카테터를 간 정맥에 배치하는 데 필요한 모든 재료를 준비합니다(그림2B).</li>
	<li>콘트라스트 미디어(염료)로 풍선 카테터를 플러시하고 식염수 용액에 담근 카테터 팁으로 반복적인 부동/디플레이션으로 풍선의 무결성을 확인합니다. 기포가 발생하지 않아야 합니다. 참고: X선에 카테터 자체의 가시성에 따라, 당신은 또한 카테터의 혈관 루멘을 플러시 하기 위해 단지 멸균 식염수 또는 희석 염료를 사용할 수 있습니다.</li>
	<li>혈관 액세스 칼집에 삽입하기 전에 멸균 식염수 용액으로 외부에 풍선 카테터를 적재하십시오.</li>
	<li>열등한 카바 정맥(IVC)으로 불소 유도하에 풍선 카테터를 전진시키게 한다. 풍선 카테터의 끝을 환자의 뒤쪽으로 정렬하고 카테터의 약간의 회전은 일반적으로 오른쪽 아트리움에서 IVC로 진행할 수 있습니다. 환자에게 깊은 흡입을 지시하면 어떤 경우에는 도움이 될 수 있습니다(그림 3B).</li>
	<li>IVC에서 간 정맥으로 풍선 카테터를 진행합니다. 간 정맥과 IVC(도 3C)의접합의 의심 영역을 향해 오른쪽으로 향하는 풍선 카테터의 끝을 반복적으로 이동하여 간 정맥에 대한 액세스를 시도하십시오.</li>
	<li>카테터가 IVC로의 개구부로부터 2-4cm 거리에서 자유 간 정맥 압력(FHVP)을 반복적으로 측정할 수 있도록 안정된 위치로 진행되고, 간 정맥의 루멘에서 팽창된 풍선에 적합한 공간을 확보하여 쐐기된 간 정맥 압력(WHVP)을 기록하도록 한다.</li>
	<li>팽창된 풍선에 정맥이 팽창될 때까지 풍선(풍선 루멘내 약 2mL의 공기)과 조영제 주입(혈관 루멘내 약 5mL)을 팽창시킴으로써 정맥(wedge position)의 적절한 폐색을 확인한다(도3D).</li>
	<li>콘트라스트 미디어의 정체를 관찰하고 풍선에 의한 정맥 루멘의 폐색이 불충분하거나 정맥 맥통신의 존재로 인해 대조 매체의 세척을 배제한다. 중요한 대조 미디어 세척이 관찰되면 풍선 카테터를 재배치하십시오.</li>
	<li>풍선을 수축하고 카테터의 루멘을 식염수로 플러시합니다.</li>
</ol>4. HVPG 평가를 위한 혈역학 판독값
<ol><li>풍선 카테터의 혈관 루멘을 주입 선을 사용하여 압력 변환기와 연결합니다.</li>
	<li>간 정맥의 개구부에서 IVC에 2-4cm 풍선의 끝으로 FHVP를 기록하기 시작합니다. 곡선의 파형은 시간이 지남에 따라 변형없이 안정되어야합니다. 참고: 안정적인 값은 일반적으로 15s 이후 가져옵니다.</li>
	<li>풍선을 팽창시키고 측정이 시간이 지남에 따라 변동없이 안정적인 수평 선이 될 때까지 WHVP를 계속 기록합니다. 참고: 쐐기 압력의 안정적인 추적은 일반적으로 >40 s 후에 얻어진다.</li>
	<li>FHVG(>15s)와 WHVP(>40s)의 측정을 세 번 이상 반복하여 고품질 판독값(그림3E)을획득합니다. 참고: 단일 FHVP/WHVP 판독값 간에 ≥2mm Hg의 상당한 불일치가 관찰되는 경우 추가 측정을 얻어야 합니다. 혈역학 적기록의 각 시점에서 기침, 이동 또는 대화와 같은 잠재적인 유물의 이유를 유의하십시오.</li>
	<li>IVC에서 올바른 심방 압력(RAP)뿐만 아니라 간 정맥의 타튬 수준에서 압력을 기록합니다.</li>
	<li>녹음을 중지합니다.</li>
	<li>풍선 카테터를 제거합니다.</li>
	<li>HVPG(WHVP에서 빼는 FHVP)를 3측정의 평균으로 계산합니다. 참고: 순차적으로 획득한 HVPG 판독값 사이에 ≥2mm Hg의 상당한 차이가 있는 경우 추가 측정을 얻어야 합니다.</li>
	<li>경외생검(Step 5.1)으로 진행하거나 내부 경정맥에서 카테터 소개자 칼집을 제거한다. 참고: 뻣뻣한 가이드와이어를 삽입하면 후속 간 간 생검에 대해 동일한 간 내 위치에 도달하는 데 도움이 될 수 있습니다.</li>
	<li>멸균 거즈를 사용하여 내부 경정맥의 혈관 삽입 부위 위에 압력을 가하여 최소 5분 동안 가압을 가한다.</li>
</ol>5. 경질 간 생검 준비
참고: 두 개의 다른 생검 방법론은 경정맥 간 생검을 얻기 위하여 이용될 수 있습니다: 포부 (단계 6) 또는 핵심 생검 (단계 7). 먼저 어떤 시스템을 사용할지 결정한 다음 적절한 생검 바늘 소개자 칼집을 선택한 다음 5.1 에서 5.3 단계를 진행합니다. 대안적으로, 코어 TJBLX 세트의 바늘은 또한 포부 세트 (NOTE : 적절한 직경사용)에 삽입 될 수 있으며, 이는 간 정맥에 도입하기 쉬울 수있는 보다 유연한 코어 생검 시스템을 초래합니다 (참고 : 이 방법은 여기에 자세히 설명되지 않습니다).
<ol><li>각각의 경정맥간 생검(TJLBX)세트(포부 TJLBX: 도 4A-B; 코어 TJLBX: 그림 4C; 재료 의 테이블을참조하십시오).</li>
	<li>생검 바늘을 멸균 식염수로 내세울거나, 더 나은 시각화를 위한 조영제로 경정맥 포부 간 생검의 경우, 생검 을 도입한다.</li>
	<li>생검 바늘을 3.4에 기재한 것과 동일한 기술을 사용하여 간 정맥으로 생검 바늘을 도입한다.</li>
	<li>사용되는 생검 세트에 따라, 포부 TJBX에 대한 6.1 단계로 진행하거나 코어 TJBX에 대한 7.1 단계로 진행합니다.</li>
</ol>6. 경정맥 포부 간 생검
<ol><li>10mL 루어 락 주사기를 사용하여 포부를 멸균 식염수로 포부를 플러시하지만, 포부를 용이하게 하기 위해 주사기에 약 3mL을 둡니다.</li>
	<li>생검 바늘을 생검 바늘을 통해 부드럽게 전진하여 바늘의 끝이 소개자 칼집의 끝에 도달할 때까지 칼집을 소개합니다. 참고: 바늘을 전진시키면서 어떤 힘이나 빠른 움직임을 피하십시오. 환자에게 심호흡을 하도록 요청하면 생검 바늘의 쉽게 발전하기 위해 IVC와 간 정맥 사이의 각도가 감소합니다.</li>
	<li>환자에게 숨을 참아 달라고 부탁한다.</li>
	<li>10mL 루어 락 주사기를 사용하여 흡입을 적용하고 바늘을 간 parenchyma로 전진시다.</li>
	<li>흡입 (음압)을 적용하는 동안 바늘을 철회합니다.</li>
	<li>환자에게 정상적으로 호흡을 계속하도록 조언하십시오.</li>
	<li>바늘을 제거 (하지만 바늘 소개자 칼집) 간 샘플을 수확. 참고: 간 샘플은 일반적으로 주사기에 보관되며 바늘이 아닌(도 4D).</li>
	<li>충분한 간 표본이 얻을 때까지 추가 바늘 통로를 위한 6.1 에서 6.6 단계를 반복합니다.</li>
	<li>카테터 소개자 칼집에 5-10 mL의 콘트라스트 미디어를 주입하여 간 캡슐의 천포를 배제하십시오.</li>
	<li>생검 바늘 을 제거 합니다 소개자 칼 집을 제거 합니다.</li>
	<li>10F 간 생검 세트는 발멸 거즈를 사용하여 최소 5분 동안 내부 경정맥의 혈관 삽입 부위 위에 압력을 가한다.</li>
</ol>7. 경질 코어 간 생검
<ol><li>촬영 메커니즘이 잠길 때까지 그립을 당겨 코어 TJLBX 바늘을 로드합니다. 바늘끝이 소개자 칼집의 끝에 접근할 때까지 생검 바늘을 통해 심검 바늘을 부드럽게 전진시키십시오. 참고: 바늘을 전진시키면서 어떤 힘이나 빠른 움직임을 피하십시오.</li>
	<li>환자에게 숨을 참아 달라고 부탁한다.</li>
	<li>간 parenchyma에 바늘을 진행합니다.</li>
	<li>촬영 메커니즘의 트리거를 당겨 서 핵심 생검을 수행.</li>
	<li>환자에게 정상적으로 호흡을 계속하도록 조언하십시오.</li>
	<li>바늘을 제거 (하지만 바늘 소개자 칼집) 간 샘플을 수확. 작은 바늘은 간 견본을 제거하는 것을 도울 수 있습니다(그림 4D).</li>
	<li>충분한 간 표본이 얻어지날 때까지 추가 바늘 통로를 위한 7.1 에서 7.6 단계를 반복합니다.</li>
	<li>카테터 의 측면 포트 위에 5-10 mL의 콘트라스트 미디어를 주입하여 간 캡슐의 천포를 배제한다.</li>
	<li>생검 바늘 을 제거 합니다 소개자 칼 집을 제거 합니다.</li>
	<li>10F 간 생검 세트소개자 칼집을 제거하고 멸균 거즈를 사용하여 약 5분 동안 내부 경정맥의 혈관 삽입 부위 위에 압력을 가한다.</li>
</ol>

토마스 레이버거는 쿡 메디컬의 보조금과 자료 지원을 받았으며 W.L. 고어 & 어소시에이츠의 강의를 위한 보조금 과 명예를 받았습니다. 필립 슈바블, 마르쿠스 펙-라도사벨예비치, 마이클 트라우너는 이 원고와 관련하여 공개할 것이 없다. 마티아스 만도르퍼는 W.L. 고어 & 어소시에이츠의 강의에 대한 명예를 받았습니다.

HVPG 측정에는 상당한 자원이 필요하며 압력 추적 을 읽는 데 있어 중재 능력과 전문 지식을 갖춘 개인 교육을 받아야하지만 예후를 향상시키고 치료 결정을 안내할 수 있으므로 개인화된 의학을 용이하게 합니다. 또한, 동일한 세션에서 경전 경로를 통해 간 생검 표본을 안전하게 얻을 수 있는 기회는 고등 요양원에서 간 혈역학 실험실을 구현하는 데 찬성하는 또 다른 논쟁이다. 실제로 가이드라?...

간경변증 환자는 주로 위 또는 식도 가변1,2,3에서발진 또는 출혈과 같은 포털 고혈압(PHT)과 관련된 합병증을 일으킬 위험이 있다. 간 보상의 위험은 PHT2의정도와 관련이 있습니다. 간 정맥 간 압력 그라데이션(HVPG)의 측정은 간경변 환자에서 포털 정맥 압력을 추정하는 금본위제, 즉 부비동성 포털 고혈압4의중증도를 평가한다. HVPG≥10mm Hg는 CSPH를 정의하는 동안 ≥6mm Hg에서 9mm Hg의 HVPG는 높은 포털 압력('subclinical portal 고혈압')을 나타냅니다. 이 프로토콜은 장비 및 절차에 대한 자세한 설명을 제공하며 잠재적인 함정을 강조하고 문제 해결에 대한 조언을 제공합니다.
임상적으로, HVPG의 측정은 (i) 부비동성 포털 고혈압의 진단을 확립하기 위해, (ii) CSPH (HVPG ≥10mm Hg), (iii) 혈관 출혈의 1 차 또는 이차 예방에서 약리요법을안내하고,(iv) 형 간염의 위험을 평가하기 위하여, (iv) 그(것)들을 부비동성 포털 고혈압의 진단을 확립하기 위하여 표시된다. HVPG는 HVPG의 감소가 임상적으로 의미 있는 이점5로변환되기 때문에 간 섬유증/기능의 개선 및/또는 악화를 위한 확립된 대리 마커로 사용되며, 반면 HVPG 값이 증가된 variceal 출혈 위험6과관련이 있다. 비선택적 베타 차단제(NSBB) 또는 병인학 치료 하에 있는 환자에서 HVPG의 변화에 대한 관찰에 기초하여, HVPG의 감소는 임상적으로 관련있는것으로간주됩니다7,8.
현재까지 HVPG와 유사한 정확도로 포털 압력의 정도를 반영하는 대체 비침습적 매개 변수는 없습니다. HVPG가 실제로 포털 압력을 측정하는 '간접적' 방법이라 할지라도, 그것은 강하게 상관관계가 있어 간경변 환자에서 측정된 포털 압력을 정확하게 반영한다9. 중요한 것은, HVPG 측정은 간parenchyma10,11,12의평가량을 최대화하기 위하여 풍선 카테터를 사용하여 수행되어야 합니다. HVPG 측정은 침습적이고 자원 집약적이며 압력 판독값의 신뢰성과 타당성을 해석하는 데 내정간섭 기술과 전문 지식이 필요하지만, 이 방법은 간경변13,14,15의심변 환자에서 포털 고혈압을 진단하고 모니터링하기 위한 현재금 본위제이다.
혈소판 수와 같은 간단한 실험실 값은 CSPH의 가능성을 추정하는 데 도움이 될 수 있습니다. 그러나 혈소판 수 또는 혈소판 수를 포함하는 비침습적 점수는 예측값(16)을제한한다. 간경변 환자에서 비장17 또는 포르토전신담보(18)를 보여주는 이미징 양식은 CSPH의 존재를 시사하지만, 실제 포털 고혈압의 정도를 정량화하는 데 는 도움이 되지 않는다. 간(19) 및/또는 비장의 엘라스토그래피와 같은 새로운 비침습적 이미징도구는 CSPH의 존재를 판결하거나 배제하는 데 유용합니다. 그러나 사용 가능한 방법 중 어느 것도 포털압력(21)의동적 변화를 직접 측정할 수 없습니다.
HVPG의 예후 가치는 여러 획기적인 연구에 의해 밑줄이 되어 왔으며, HVPG ≥10mm Hg(즉 CSPH)가 varices8의 형성을 예측하고 있으며, 포털고혈압(22)과관련된 합병증의 개발을 위해, HVPG의 각각의 위험 (약리학적으로 유도된) 감소(약리적으로 유도된) 감소(약리학적으로 유도된) 감소(약리학적으로 유도된) 감소(약리학적으로 유도된) 감소(약리적으로 유도된) 감소(약리적으로 유도된)감소(73) 및 제13의 혈관 성장의 각각리스크를감소시켰다. HVPG 반응은 (재발성) variceal 출혈을 방지하는 NSBs의 효과에 대한 유일한 확립 된 대리입니다. HVPG가 ≤12mm Hg의 값으로 감소하거나 NSBB 치료 중 ≥10-20% 감소하면 환자는 꽃잎 출혈로부터 보호되고 생존율이24,25증가한다. 유사하게, HVPG 반응은 또한 보상된 간경변을 가진 환자에서 선동 및 관련 합병증의발생률을감소시킵니다5,26. 여러 연구는 HVPG 유도 요법27,28,29,30,31, 32의사용을 지원하는 증거를 제공했다. 따라서 충분한 경험을 가진 센터에서 HVPG 응답은 치료 결정을 안내하여 포털 고혈압 환자를 위한 맞춤형 의학을 촉진할 수 있습니다.
더욱이, HVPG의 측정은 소라페닙33, 34,심바스타틴35,36,타우린37,또는 엠리카산38과같이 벤치에서 침대 곁으로 번역되는 간경변 및/또는 포털 고혈압에 대한 새로운 치료법의 효과를 평가하는 개념 증명 연구를 위한 대리 종점역할을 할 수 있다. 궁극적으로, HVPG의 측정은 또한 HCC39의 발달을 위한 리스크에 관하여 중요한 예후 정보를 제공할 수 있고 간 부전 후 간 부전40에대한.
HVPG를 측정하는 인프라는 중등 및 고등 요양원에서 쉽게 사용할 수 있어야 합니다. HVPG 측정 기술은 특수 교육 및 장비가 필요하기 때문에 학술 및 이식 센터가 간 혈역학 실험실을 설립하여 포털 고혈압의 최첨단 진단 및 관리를 촉진하는 것이 합리적인 것으로 보입니다. 대용량 센터는 연간 수백 개의 HVPG 측정을 수행합니다. 우리의 경험을 바탕으로, 정확한 HVPG 측정을 수행하기위한 충분한 전문 지식은 일반적으로 50-100 감독 HVPG 측정 후 얻을 수 있습니다.

<table border="0" cellpadding="0" cellspacing="0" style="width:1628px;" width="1627">
	<colgroup>
		<col />
		<col />
		<col />
		<col />
	</colgroup>
	<tbody>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:315px;">10 mL Luer-Lock syringe</td>
			<td style="width:335px;">Braun</td>
			<td style="width:317px;">REF 4617100V, LOT 17G03C8</td>
			<td style="width:661px;">Luer-Lock Syringe for connection with the aspiration biopsy set</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">10 mL Syringe 2x</td>
			<td>Braun</td>
			<td style="width:317px;">REF 4606108V</td>
			<td>Snonpyrogenic, nontoxic 10 mL syringe</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">10 F liver biopsy&#160; introducer sheath set</td>
			<td>Cook Medical</td>
			<td style="width:317px;">REF RCFW-10.0-38, REF G07600</td>
			<td>Percutaneous Sheath Introducer Set (TJBX), 10F Port, 13cm, Check-Flo Performer Introducer</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">18 G needle for biopsy introducer sheat</td>
			<td>Arrow International</td>
			<td style="width:317px;">REF AN-04318</td>
			<td>Introducer Needle for TJBX Set, 18 G, 6.35 cm</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">21 G needle</td>
			<td>Henke Sass Wolf</td>
			<td style="width:317px;">REF 0086, Fine-Ject 21Gx2&#34;</td>
			<td>Sterile injeciton needle, 21 Gx2&#34;, 0.8 x 50 mm, for local anesthesia</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">3-way channels</td>
			<td>Becton Dickinson</td>
			<td style="width:317px;">BD Connecta Luer-Lok, REF 39402</td>
			<td>Three way channel with Luer-Lok connection system</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">7.5 F catheter introducer sheath set</td>
			<td>Arrow International</td>
			<td style="width:317px;">REF SI_09875-E</td>
			<td>Percutaneous Sheath Introducer Set, 7.5 F Port</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Aspiration TJLBX set</td>
			<td>Cook Medical</td>
			<td style="width:317px;">REF RMT-16-51.0-TJL, REF G20521</td>
			<td>TJ Liver Access and Biopsy Needle Set (Aspiration Set), 9 F-45 cm, 16 G-50.5 cm</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Balloon catheter</td>
			<td>Gerhard Pejcl Medizintechnik Austria</td>
			<td style="width:317px;">REF 500765B</td>
			<td>Ferlitsch HVPG Catheter, 7F-65cm, Balloon:2.5mL, Pressure 50-90 kPa, GW: 0.032&#34;</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Blade 11 scalpel</td>
			<td>Medi-Safe Surgicals</td>
			<td style="width:317px;">MS Safety Scalpel REF /Batch 18012424</td>
			<td>11 blade safety scalpels, retractable, single use, 10 scalpels per package</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Blunt tip fill needle</td>
			<td>Becton Dickinson</td>
			<td style="width:317px;">REF 303129</td>
			<td>Sterile blunt tip fill needle, single use</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Contrast media (dye)</td>
			<td>Dr. Franz K&#246;hler Chemie GmbH, Bensheim, GER</td>
			<td style="width:317px;">ZNR 1-24112</td>
			<td>Peritrast 300 mg Iod/mL, 50 mL, contrastmedia</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Core TJLBX set</td>
			<td>Cook Medical</td>
			<td style="width:317px;">REF RMT-14XT-50.5-LABS-100, REF G08285</td>
			<td>TJ Needle Introducer and Bx-Needle 7 F-53.5 cm, 14 G-53.5 cm/20 mm, 18 G-60 cm</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Digital x-ray fluoroscope system</td>
			<td>Siemens</td>
			<td style="width:317px;">Model No 07721710</td>
			<td>ARCADIS Varic, mobile x-ray fluoroscope system</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Disinfectant solution</td>
			<td>Gebro Pharma</td>
			<td style="width:317px;">1-20413</td>
			<td>Isozid-H</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Face mask</td>
			<td>MSP Medizintechnik GmbH</td>
			<td style="width:317px;">REF HSO36984</td>
			<td>Surgical face mask from double fleece, with tie, 50 pieces</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Guide wire for biopsy introducer sheat</td>
			<td>Arrow International</td>
			<td style="width:317px;">REF AW-14732</td>
			<td>Marked Spring-Wire Guide, TJBX Set, 0.032&#34;, 0.81 mm, 68 cm</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Infusion line</td>
			<td>Rosstec Medical Products b Cardea GmbH &#38; Co</td>
			<td style="width:317px;">REF 220010, 100m</td>
			<td>Infusion line, Luer-Lok for connection of balloon catheter and pressure transducer</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Lidocaine 2%</td>
			<td>Gebro Pharma</td>
			<td style="width:317px;">Xylanaest, ZNR 17.792, 20mg/1mL (2%)</td>
			<td>Sterile vials Xylanest including 2% Lidocain hydrochloride for local anesthesia</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Midazolame</td>
			<td>Roche</td>
			<td style="width:317px;">Dormicum, ZNr 1-18809, Midazolam 5mg/5mL</td>
			<td>Sterile vials Dormicum including Midazolam for sedation</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Monitor system</td>
			<td>Datex-Ohmeda by GE</td>
			<td style="width:317px;">Type F-CMREC1</td>
			<td>Patient monitoring system</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Patient bench</td>
			<td>Silerlen-MAQET</td>
			<td style="width:317px;">Model No 7474.00A</td>
			<td>Mobile patient bench for x-ray fluoroscopy</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Pressure bag</td>
			<td>Ethox Corp</td>
			<td style="width:317px;">REF 4005</td>
			<td>Pressure Infuser Bag 500 mL</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Pressure recorder</td>
			<td>Edwards Lifesciences</td>
			<td style="width:317px;">Ref T001631A, Lot 61202039</td>
			<td>TruWave 3 cc/150 cm</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Pressure transducer</td>
			<td>Edwards Lifesciences TM</td>
			<td style="width:317px;">REF T001631A</td>
			<td>Pressure Monitoring Set (1x), 3 cc/150 cm, TruWave TM</td>
		</tr>
		<tr height="42">
			<td height="42" style="height:42px;">Recording software&#160;</td>
			<td>Datex Ohmeda by GE</td>
			<td style="width:317px;">Software S/5 is property of Instrumentarium Corp of Datex-Ohmeda TM</td>
			<td>Datex-Ohmeda S/5TM Collect - Software to record pressure tracings of the patient monitor system</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Sterile coat</td>
			<td>Lohmann &#38; Rauscher International GmbH &#38; Co</td>
			<td style="width:317px;">REF 19351</td>
			<td>Surgical Gown, Different sizes, e.g. L-130 cm</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Sterile gauze</td>
			<td>Hartmann</td>
			<td style="width:317px;">REF 401798, 10x10cm gauze</td>
			<td>10 x 10 cm sterile gauze, 10 pieces per package</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Sterile gloves</td>
			<td>Meditrade</td>
			<td style="width:317px;">REF 9021</td>
			<td>Gentle Skin sterile gloves, different sizes, e.g. 7.5</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Sterile saline solution</td>
			<td>Fresenius Kabi</td>
			<td style="width:317px;">NaCl 0.9%, B009827 REV 03</td>
			<td>Physiologic Saline Solution 0.9% NaCl, 309 mosmol/L, pH-Wert: 4.5-7.0</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Sterile saline vessel</td>
			<td>KLS Martin</td>
			<td style="width:317px;">REF K8A,&#160; 18/10 Jonas</td>
			<td>Sterilizable Metal Vessel for sterile saline</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Sterile table cover</td>
			<td>Hartmann</td>
			<td style="width:317px;">REF 2502208</td>
			<td>Table Cover, Foliodrape 150 x 100 cm</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Sterile towel</td>
			<td>BARRIER by M&#246;lnlycke Health Care</td>
			<td style="width:317px;">REF 706900</td>
			<td>Adhesive OP-Towel, 100 x 100 cm</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Sterile US probe cover sheath</td>
			<td>Websinger</td>
			<td style="width:317px;">REF 07014</td>
			<td>Sterile ultrasound probe cover, 20 x 60 cm, inluding two sterie adhesive tapes</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Stiff guidewire</td>
			<td>Cook Medical</td>
			<td style="width:317px;">REF TSMG-35-180-4-LES, G46729</td>
			<td>Lunderquist Extra Stiff Wire Guide, 0.035&#34;-.89 mm, 180 cm, 4 cm flexible tip</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Surgical cap</td>
			<td>BARRIER by M&#246;lnlycke Health Care</td>
			<td style="width:317px;">REF 620500, PCS 100, Colour Green</td>
			<td>Surgical Cap</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Ultrasound device</td>
			<td>FUJIFILM SonoSite</td>
			<td style="width:317px;">Model M-Turbo, REF P17000-17</td>
			<td>Mobile ultrasound system</td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

measurement of the hepatic venous pressure gradient and transjugular liver biopsy

여기서 우리는 경정맥성 간질환 환자에서 간 정맥압력 그라데이션(HVPG) 측정의 임상적 절차를 설명하는 상세한 프로토콜을 제공하고 있으며, 그 다음에는 경정맥생검에 대한 지침이 뒤따릅니다. 국소 마취 및 초음파 지침에 따라 카테터 소개자 칼집이 올바른 내부 경정맥에 배치됩니다. 불소 지도를 사용하여 풍선 카테터는 열등한 정맥 카바 (IVC)로 진행되어 큰 간 정맥에 삽입됩니다. 카테터의 정확하고 충분한 쐐기 위치는 풍선이 수중 간 정맥의 유출을 차단하는 동안 대비 매체를 주입하여 보장된다. 외부 압력 변환기를 보정한 후, 연속 압력 기록은 쐐기 간 정맥 압력(WHVP) 및 자유 간 정맥 압력(FHVP)의 삼중 음파 기록으로 얻어진다. FHVP와 WHVP의 차이는 HVPG라고 하며, 값≥10mm Hg는 임상적으로 유의한 포털 고혈압(CSPH)을 나타낸다. 카테터를 제거하기 전에 IVC에서 얻은 압력 판독값과 올바른 심방 압력이 기록됩니다.
마지막으로, 경정맥 간 생검은 동일한 혈관 경로를 통해 얻을 수 있습니다. 다른 시스템을 사용할 수 있습니다. 그러나, 코어 생검 바늘은 특히 cirrhotic 간을 위해, 포부 바늘 을 통해 선호됩니다. 다시 말하지만, 형광유도하에 생검 바늘 소개자 칼집은 간 정맥으로 진행된다. 다음으로, 경정맥생염 바늘은 도입자 칼집을 통해 부드럽게 진행된다: (i) 포부생검의 경우, 바늘은 포부 아래 간 판자로 진행된 다음 신속하게 제거되거나, (ii) 코어 생검의 경우, 절단 메커니즘이 parenchyma 내부에서 발동된다. 몇몇 개별적인 통로는 경추생검을 통해 충분한 간 견본을 얻기 위하여 안전하게 수행될 수 있습니다. 경험이 풍부한 손에서, 이러한 절차의 조합은 약 30-45 분 걸립니다.

잘 보존된 간 기능(즉, 암낭 또는 꽃출혈과 같은 간 변제의 병력이 없는) 측정된 HVPG 값은 정상이거나 하위 임상 포털 고혈압(HVPG 6-9mm Hg)의 범위에서 정상일 수 있다. 그러나, 보상된 환자는 VARICES 또는 간 보상 개발을 위한 증가한 리스크를 나타내는 CSPH (HVPG ≥10 mm Hg)를 개발할 수 있습니다. 차례로, 식도 또는 위 변이를 가진 환자, HVPG는 일반적으로 CSPH의 범위에, 그렇지 않은 경우 환자는 포털 정?...

Watch this Scientific Journal Video about Measurement of the Hepatic Venous Pressure Gradient and Transjugular Liver Biopsy at JoVE.com

Measurement of the Hepatic Venous Pressure Gradient and Transjugular Liver Biopsy

여기서, 우리는 임상적으로 중요한 포털 고혈압을 진단하기 위한 금 본위제인 간 정맥 압력 그라데이션(HVPG)의 측정을 위한 프로토콜을 제시합니다. 더욱이, 우리는 같은 세션 내에서 경정맥 간 생검을 수행하는 방법을 설명합니다.

간 정맥 압력 그라데이션 및 경정맥 간 생검의 측정

Here we provide a detailed protocol describing the clinical procedure of hepatic venous pressure gradient (HVPG) measurement in patients with advanced ...

measurement-hepatic-venous-pressure-gradient-transjugular-liver

Research

JoVE Journal

Medicine

19.2K 조회수.  Medical University of Vienna. 여기서, 우리는 임상적으로 중요한 포털 고혈압을 진단하기 위한 금 본위제인 간 정맥 압력 그라데이션(HVPG)의 측정을 위한 프로토콜을 제시합니다. 더욱이, 우리는 같은 세션 내에서 경정맥 간 생검을 수행하는 방법을 설명합니다.

비디오: Measurement of the Hepatic Venous Pressure Gradient and Transjugular Liver Biopsy

Epidural Intracranial Pressure Measurement in Rats Using a Fiber-optic Pressure Transducer

Elevated intracranial pressure (ICP) is a significant problem in several forms of ischemic brain injury including stroke, traumatic brain injury and cardiac arrest. This elevation may result in further neurological injury, in the form of transtentorial herniation1,2,3,4, midbrain compression, neurological deficit or increased cerebral infarct2,4. Current therapies are often inadequate to control elevated ICP in the clinical setting5,6,7 . Thus there is a need for accurate methods of ICP measurement in animal models to further our understanding of the basic mechanisms and to develop new treatments for elevated ICP.
In both the clinical and experimental setting ICP cannot be estimated without direct measurement. Several methods of ICP catheter insertion currently exist. Of these the intraventricular catheter has become the clinical 'gold standard' of ICP measurement in humans8. This method involves the partial removal of skull and the instrumentation of the catheter through brain tissue. Consequently, intraventricular catheters have an infection rate of 6-11%9. For this reason, subdural and epidural cannulations have become the preferred methods in animal models of ischemic injury. 
Various ICP measurement techniques have been adapted for animal models, and of these, fluid-filled telemetry catheters10 and solid state catheters are the most frequently used11,12,13,14,15. The fluid-filled systems are prone to developing air bubbles in the line, resulting in false ICP readings. Solid state probes avoid this problem (Figure 1). An additional problem is fitting catheters under the skull or into the ventricles without causing any brain injury that might alter the experimental outcomes. Therefore, we have developed a method that places an ICP catheter contiguous with the epidural space, but avoids the need to insert it between skull and brain. 
An optic fibre pressure catheter (420LP, SAMBA Sensors, Sweden) was used to measure ICP at the epidural location because the location of the pressure sensor (at the very tip of the catheter) was found to produce a high fidelity ICP signal in this model. There are other manufacturers of similar optic fibre technologies13 that may be used with our methodology. Alternative solid state catheters, which have the pressure sensor located at the side of the catheter tip, would not be appropriate for this model as the signal would be dampened by the presence of the monitoring screw. 
Here, we present a relatively simple and accurate method to measure ICP. This method can be used across a wide range of ICP related animal models.

A novel technique to record the pressures within the skull is described. The minimally invasive method uses a fibre-optic pressure sensing system to accurately measure intracranial pressure (ICP) in anaesthetized rats without causing significant brain trauma. The technique may be used in a wide range of experimental models.

광섬유 압력 변환기를 사용하여 쥐에서 경막외 Intracranial 압력 측정

Elevated intracranial pressure (ICP) is a significant problem in several forms of ischemic brain injury including stroke, traumatic brain injury and ...

연구

의학

Surgical Procedures for a Rat Model of Partial Orthotopic Liver Transplantation with Hepatic Arterial Reconstruction

Orthotopic liver transplantation (OLT) in rats using a whole or partial graft is an indispensable experimental model for transplantation research, such as studies on graft preservation and ischemia-reperfusion injury 1,2, immunological responses 3,4, hemodynamics 5,6, and small-for-size syndrome 7. The rat OLT is among the most difficult animal models in experimental surgery and demands advanced microsurgical skills that take a long time to learn. Consequently, the use of this model has been limited. Since the reliability and reproducibility of results are key components of the experiments in which such complex animal models are used, it is essential for surgeons who are involved in rat OLT to be trained in well-standardized and sophisticated procedures for this model.
While various techniques and modifications of OLT in rats have been reported 8 since the first model was described by Lee et al. 9 in 1973, the elimination of the hepatic arterial reconstruction 10 and the introduction of the cuff anastomosis technique by Kamada et al. 11 were a major advancement in this model, because they simplified the reconstruction procedures to a great degree. In the model by Kamada et al., the hepatic rearterialization was also eliminated. Since rats could survive without hepatic arterial flow after liver transplantation, there was considerable controversy over the value of hepatic arterialization. However, the physiological superiority of the arterialized model has been increasingly acknowledged, especially in terms of preserving the bile duct system 8,12 and the liver integrity 8,13,14.
In this article, we present detailed surgical procedures for a rat model of OLT with hepatic arterial reconstruction using a 50% partial graft after ex vivo liver resection. The reconstruction procedures for each vessel and the bile duct are performed by the following methods: a 7-0 polypropylene continuous suture for the supra- and infrahepatic vena cava; a cuff technique for the portal vein; and a stent technique for the hepatic artery and the bile duct.

Orthotopic liver transplantation in rats is an indispensable experimental model for biomedical research. Here we present our surgical procedures for orthotopic rat liver transplantation with hepatic arterial reconstruction using a 50% partial graft.

간 간선 재건과 부분 Orthotopic 간 이식의 쥐 모델에 대한 외과 절차

Orthotopic liver transplantation (OLT) in rats using a whole or partial graft is an indispensable experimental model for transplantation research, such as ...

A Preclinical Murine Model of Hepatic Metastases

Numerous murine models have been developed to study human cancers and advance the understanding of cancer treatment and development. Here, a preclinical, murine pancreatic tumor model of hepatic metastases via a hemispleen injection of syngeneic murine pancreatic tumor cells is described. This model mimics many of the clinical conditions in patients with metastatic disease to the liver. Mice consistently develop metastases in the liver allowing for investigation of the metastatic process, experimental therapy testing, and tumor immunology research.

A preclinical, murine model of hepatic metastases performed via a hemispleen injection technique.

간 전이의 전임상 쥐과 모델

Numerous murine models have been developed to study human cancers and advance the understanding of cancer treatment and development. Here, a preclinical, ...

Monitoring of Systemic and Hepatic Hemodynamic Parameters in Mice

The use of mouse models in experimental research is of enormous importance for the study of hepatic physiology and pathophysiological disturbances. However, due to the small size of the mouse, technical details of the intraoperative monitoring procedure suitable for the mouse were rarely described. Previously we have reported a monitoring procedure to obtain hemodynamic parameters for rats. Now, we adapted the procedure to acquire systemic and hepatic hemodynamic parameters in mice, a species ten-fold smaller than rats. This film demonstrates the instrumentation of the animals as well as the data acquisition process needed to assess systemic and hepatic hemodynamics in mice. Vital parameters, including body temperature, respiratory&#160;rate&#160;and heart&#160;rate were recorded throughout the whole procedure. Systemic hemodynamic parameters consist of carotid artery pressure (CAP) and central venous pressure (CVP). Hepatic perfusion parameters include portal vein pressure (PVP), portal flow rate as well as the flow rate of the common hepatic artery (table 1). Instrumentation and data acquisition to record the normal values was completed within 1.5 h. Systemic and hepatic hemodynamic parameters remained within normal ranges during this procedure.
This procedure is challenging but feasible. We have already applied this procedure to assess hepatic hemodynamics in normal mice as well as during 70% partial hepatectomy and in liver lobe clamping experiments. Mean PVP after resection (n= 20), was 11.41&#177;2.94 cmH2O which was significantly higher (P&#60;0.05) than before resection (6.87&#177;2.39 cmH2O). The results of liver lobe clamping experiment indicated that this monitoring procedure is sensitive and suitable for detecting small changes in portal pressure and portal flow rate. In conclusion, this procedure is reliable in the hands of an experienced micro-surgeon but should be limited to experiments where mice are absolutely needed.

This film demonstrates how to acquire systemic and hepatic hemodynamics in mice. The whole monitoring includes acquisition of vital parameters, systemic blood pressure, central venous pressure, common hepatic artery flow rate, and portal vein pressure as well as the portal flow rate in mice.

마우스의 전신과 간장 혈 역동 학적 파라미터의 모니터링

The use of mouse models in experimental research is of enormous importance for the study of hepatic physiology and pathophysiological disturbances. ...

Measurement of the Pressure-volume Curve in Mouse Lungs

In recent decades the mouse has become the primary animal model of a variety of lung diseases. In models of emphysema or fibrosis, the essential phenotypic changes are best assessed by measurement of the changes in lung elasticity. To best understand specific mechanisms underlying such pathologies in mice, it is essential to make functional measurements that can reflect the developing pathology. Although there are many ways to measure elasticity, the classical method is that of the total lung pressure-volume (PV) curve done over the whole range of lung volumes. This measurement has been made on adult lungs from nearly all mammalian species dating back almost 100 years, and such PV curves also played a major role in the discovery and understanding of the function of pulmonary surfactant in fetal lung development. Unfortunately, such total PV curves have not been widely reported in the mouse, despite the fact that they can provide useful information on the macroscopic effects of structural changes in the lung. Although partial PV curves measuring just the changes in lung volume are sometimes reported, without a measure of absolute volume, the nonlinear nature of the total PV curve makes these partial ones very difficult to interpret. In the present study, we describe a standardized way to measure the total PV curve. We have then tested the ability of these curves to detect changes in mouse lung structure in two common lung pathologies, emphysema and fibrosis. Results showed significant changes in several variables consistent with expected structural changes with these pathologies. This measurement of the lung PV curve in mice thus provides a straightforward means to monitor the progression of the pathophysiologic changes over time and the potential effect of therapeutic procedures.

Here we present a protocol to simply and reliably measure the lung pressure-volume curve in mice, showing that it is sufficiently sensitive to detect phenotypic parenchymal changes in two common lung pathologies, pulmonary fibrosis and emphysema. This metric provides a means to quantify the lung&#8217;s structural changes with developing pathology.

마우스 폐의 압력 볼륨 곡선의 측정

In recent decades the mouse has become the primary animal model of a variety of lung diseases. In models of emphysema or fibrosis, the essential ...

Isolated Hepatic Perfusion as a Treatment for Liver Metastases of Uveal Melanoma

Isolated hepatic perfusion (IHP) is a procedure where the liver is surgically isolated and perfused with a high concentration of the chemotherapeutic agent melphalan. Briefly, the procedure starts with the setup of a percutaneous veno-venous bypass from the femoral vein to the external jugular vein. Via a laparotomy, catheters are then inserted into the proper hepatic artery and the caval vein. The portal vein and the caval vein, both supra- and infrahepatically, are then clamped. The arterial and venous catheters are connected to a heart lung machine and the liver is perfused with melphalan (1 mg/kg body weight) for 60 min. This way it is possible to locally perfuse the liver with a high dose of a chemotherapeutic agent, without leakage to the systemic circulation.
In previous studies including patients with isolated liver metastases of uveal melanoma, an overall response rate of 33-100% and a median survival between 9 and 13 months, have been reported. The aim of this protocol is to give a clear description of how to perform the procedure and to discuss IHP as a treatment option for liver metastases of uveal melanoma.

Here, we present a protocol how to perform an isolated liver perfusion (IHP) with melphalan and we also discuss IHP as a treatment option for liver metastases of uveal melanoma.

포도막 흑색 종의 간전이에 대한 치료로 고립 간 관류

Isolated hepatic perfusion (IHP) is a procedure where the liver is surgically isolated and perfused with a high concentration of the chemotherapeutic ...

Generation of a Humanized Mouse Liver Using Human Hepatic Stem Cells

A novel animal model involving chimeric mice with humanized livers established via human hepatocyte transplantation has been developed. These mice, in which the liver has been repopulated with functional human hepatocytes, could serve as a useful tool for investigating human hepatic cell biology, drug metabolism, and other preclinical applications. One of the key factors required for successful transplantation of human hepatocytes into mice is the elimination of the endogenous hepatocytes to prevent competition with the human cells and provide a suitable space and microenvironment for promoting human donor cell expansion and differentiation. To date, two major liver injury mouse models utilizing fumarylacetoacetate hydrolase (Fah) and uroplasminogen activator (uPA) mice have been established. However, Fah mice are used mainly with mature hepatocytes and the application of the uPA model is limited by decreased breeding. To overcome these limitations, Alb-toxin receptor mediated cell knockout (TRECK)/SCID mice were used for in vivo differentiation of immature human hepatocytes and humanized liver generation. Human hepatic stem cells (HpSCs) successfully repopulated the livers of Alb-TRECK/SCID mice that had developed lethal fulminant hepatic failure following diphtheria toxin (DT) treatment. This model of a humanized liver in Alb-TRECK/SCID mice will have functional applications in studies involving drug metabolism and drug-drug interactions and will promote other in vivo and in vitro studies.

Here, we present a novel humanized mouse liver model generated in Alb-toxin receptor mediated cell knockout (TRECK)/SCID mice following the transplantation of immature and expandable human hepatic stem cells.

인간 간 줄기 세포를 이용한 인간형 마우스 간 세대

A novel animal model involving chimeric mice with humanized livers established via human hepatocyte transplantation has been developed. These mice, in ...

Method of Direct Segmental Intra-hepatic Delivery Using a Rat Liver Hilar Clamp Model

Major hepatic surgery with inflow occlusion, and liver transplantation, necessitate a period of warm ischemia, and a period of reperfusion leading to ischemia/reperfusion (I/R) injury with myriad negative consequences. Potential I/R injury in marginal organs destined for liver transplantation contributes to the current donor shortage secondary to a decreased organ utilization rate. A significant need exists to explore hepatic I/R injury in order to mediate its impact on graft function in transplantation. Rat liver hilar clamp models are used to investigate the impact of different molecules on hepatic I/R injury. Depending on the model, these molecules have been delivered using inhalation, epidural infusion, intraperitoneal injection, intravenous administration or injection into the peripheral superior mesenteric vein. A rat liver hilar clamp model has been developed for use in studying the impact of pharmacologic molecules in ameliorating I/R injury. The described model for rat liver hilar clamp includes direct cannulation of the portal supply to the ischemic hepatic segment via a side branch of the portal vein, allowing for direct segmental hepatic delivery. Our approach is to induce ischemia in the left lateral and median lobes for 60 min, during which time the substance under study is infused. In this case, pegylated-superoxide dismutase (PEG-SOD), a free radical scavenger, is infused directly into the ischemic segment. This series of experiments demonstrates that infusion of PEG-SOD is protective against hepatic I/R injury. Advantages of this approach include direct injection of the molecule into the ischemic segment with consequent decrease in volume of distribution and reduction in systemic side effects.

A unique rat liver hilar clamp model was developed for studying the impact of pharmacologic molecules in ameliorating ischemia-reperfusion injury. This model includes direct cannulation of the portal supply to the ischemic liver segment via a branch of the portal vein, allowing for direct hepatic delivery.

쥐 간 문부 클램프 모델을 사용하여 직접 분절 인트라 간 납품 방법

Major hepatic surgery with inflow occlusion, and liver transplantation, necessitate a period of warm ischemia, and a period of reperfusion leading to ...

Simultaneous Electrocardiography Recording and Invasive Blood Pressure Measurement in Rats

For studies related to cardiovascular physiology or pathophysiology, blood pressure (BP) and electrocardiography are basic observational parameters. Research focusing on cardiovascular disease models, potential cardiovascular therapeutic targets or pharmaceutical agents requires assessment of systemic arterial pressure and heart rhythm changes. In situations where radio telemetry systems are not available or affordable, the technique of femoral artery cannulation is an alternative way to obtain intra-arterial pressure waveform recordings and systemic BP measurements. This technique is economical and can be performed with standard equipment in animal facilities. However, invasive arterial pressure recording requires cannulation of small arteries, which can be a challenging surgical skill. Here, we present step-by-step protocols for femoral artery cannulation procedures. Key procedures include the calibration of the data acquisition system, tissue dissection and femoral artery cannulation, and setup of the arterial cannulation system for pressure recording. Surface electrocardiography recording procedures are also included. We also present examples of BP recordings from normotensive and hypertensive rats. This protocol allows reliable direct recordings of systemic BP with simultaneous electrocardiography.

Here, we describe a setup for simultaneous recording of electrocardiography and intra-arterial blood pressure (BP) in experimental rats, which can be done with standard equipment in animal facilities and can be applied to physiological or pharmacological studies to investigate pathogenic or therapeutic mechanisms in cardiovascular medicine.

동시 심전도 기록 및 침략 적 혈액 압력 측정 쥐에

For studies related to cardiovascular physiology or pathophysiology, blood pressure (BP) and electrocardiography are basic observational parameters. ...

Measurement of Natural Killer Cell-Mediated Cytotoxicity and Migration in the Context of Hepatic Tumor Cells

Natural killer (NK) cells are a subset of the cytotoxic lymphocyte population of the innate immune system and participate as a first line of defense by clearing pathogen-infected, malignant, and stressed cells. The ability of NK cells to eradicate cancer cells makes them an important tool in the fight against cancer. Several new immune-based therapies are under investigation for cancer treatment which rely either on enhancing NK cell activity or increasing the sensitivity of cancer cells to NK cell-mediated eradication. However, to effectively develop these therapeutic approaches, cost-effective in vitro assays to monitor NK cell-mediated cytotoxicity and migration are also needed. Here, we present two in vitro protocols that can reliably and reproducibly monitor the effect of NK-cell cytotoxicity on cancer cells (or other target cells). These protocols are non-radioactivity-based, simple to set up, and can be scaled up for high-throughput screening. We also present a flow cytometry-based protocol to quantitatively monitor NK cell migration, which can also be scaled up for high-throughput screening. Collectively, these three protocols can be used to monitor key aspects of NK cell activity that are necessary for the cells&#39; ability to eradicate dysfunctional target cells.

Evasion of natural killer (NK) cell-mediated eradication by cancer cells is important for cancer initiation and progression. Here, we present two non-radioactivity-based protocols to evaluate NK cell-mediated cytotoxicity toward hepatic tumor cells. Additionally, a third protocol is presented to analyze NK cell migration.

Natural killer (NK) cells are a subset of the cytotoxic lymphocyte population of the innate immune system and participate as a first line of defense by ...