Évaluation fonctionnelle du cœur du donneur pendant la perfusion ex situ : aperçu des boucles pression-volume et de l’échocardiographie de surface

Résumé

Il n’existe pas d’approche non invasive fiable pour l’évaluation fonctionnelle du cœur du donneur au cours de la perfusion cardiaque normothermique ex situ (NESP). Nous décrivons ici un protocole d’évaluation ex situ de la performance myocardique à l’aide de la méthode de l’échocardiographie épicardique et du cathéter de conductance.

Résumé

La transplantation cardiaque reste le traitement de référence pour l’insuffisance cardiaque avancée. Cependant, la pénurie critique actuelle d’organes a entraîné l’attribution d’un nombre croissant de cœurs de donneurs avec des critères élargis. Ces greffons marginaux sont associés à un risque élevé d’échec primaire du greffon et peuvent bénéficier d’une perfusion ex situ avant la greffe. Cette technologie permet une préservation étendue des organes en utilisant la perfusion sanguine oxygénée chaude avec une surveillance métabolique continue. Le seul dispositif du PNSME actuellement disponible pour la pratique clinique perfuse l’organe dans un état non chargé de non-fonctionnement, ce qui ne permet pas une évaluation fonctionnelle du cœur battant. Nous avons donc développé une plateforme originale de NESP en mode de travail avec réglage de la précharge ventriculaire gauche et de la postcharge. Ce protocole a été appliqué dans les cœurs porcins. L’évaluation fonctionnelle ex situ du cœur a été réalisée par cathétérisme de conductance intracardiaque et échocardiographie de surface. Avec une description du protocole expérimental, nous rapportons ici les principaux résultats, ainsi que les perles et les pièges associés à l’acquisition de boucles pression-volume et de puissance myocardique au cours du NESP. Les corrélations entre les résultats hémodynamiques et les variables échographiques sont d’un intérêt majeur, en particulier pour la rééducation ultérieure des cœurs de donneurs avant la transplantation. Ce protocole vise à améliorer l’évaluation du cœur des donneurs afin d’augmenter le bassin de donneurs et de réduire l’incidence de l’échec primaire de la greffe.

Introduction

La transplantation cardiaque est le traitement de référence pour l’insuffisance cardiaque avancée, mais elle est limitée par la pénurie actuelle^{d’organes 1}. Un nombre croissant de cœurs de donneurs avec des critères étendus (âge >45 ans, facteurs de risque cardiovasculaire, faible débit prolongé, dysfonction ventriculaire gauche aiguë secondaire à une tempête catécholaminergique) sont attribués avec un risque accru d’échec primaire du greffon². De plus, les cœurs donnés après une mort circulatoire contrôlée (TDC) peuvent présenter une lésion myocardique secondaire à une ischémie chaude prolongée³. Par conséquent, il est nécessaire de mieux évaluer ces cœurs de donneurs avant la transplantation, en particulier pour évaluer leur admissibilité à la transplantation cardiaque ^4,5.

La perfusion ex situ normamère (NESP) préserve le cœur battant en utilisant du sang oxygéné chaud. Le seul appareil disponible dans le commerce pour le PNSME préserve le cœur dans un état de non-fonctionnement (mode Langendorff). Cette approche a été initialement appliquée pour étendre la conservation du greffon au-delà de la période critique de 4 h d’ischémie froide⁶. Un autre avantage majeur de cette technologie est de fournir une évaluation continue de la viabilité myocardique basée sur la concentration de lactate dans le perfusat⁶. Cependant, cette évaluation biochimique n’a jamais été corrélée avec les résultats post-transplantation à ce jour. De même, le mode de Langendorff pour le PNSME ne permet pas l’évaluation hémodynamique et fonctionnelle du cœur avant la transplantation. Certains auteurs ont rapporté le bénéfice potentiel du cathétérisme intracardiaque pendant le PNSME pour prédire la récupération du myocarde après la transplantation⁷.

Le présent rapport vise à fournir une méthodologie reproductible pour évaluer la performance cardiaque du donneur au cours du PNSME. Nous avons modifié le circuit pour permettre la perfusion en mode de fonctionnement et, par conséquent, l’acquisition de variables fonctionnelles non invasives avec l’échocardiographie épicardique. L’indice de travail myocardique, une variable indépendante de la charge, a été enregistré à l’aide de boucles pression-déformation. Nous avons étudié les relations entre le travail myocardique et les variables hémodynamiques obtenues par cathétérisme de conductance intracardiaque.

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Protocole

Le présent protocole a été approuvé par le comité local d’éthique de l’expérimentation animale et par le comité institutionnel du bien-être animal (APAFIS#30483-2021031811339219 v1, Comité d’éthique animale de l’Université Paris Saclay, France). Les animaux ont été traités conformément aux lignes directrices pour le soin et l’utilisation des animaux de laboratoire élaborées par le National Institute of Health et aux principes de soins aux animaux de laboratoire élaborés par la National Society for Medical Research.

NOTE: Les interventions chirurgicales ont été effectuées sous une stérilité stricte en utilisant les mêmes techniques utilisées pour un être humain. Les procédures expérimentales comprenaient de gros porcelets blancs (45-60 kg) et ont été effectuées sous anesthésie générale.

1. Protocole de conditionnement et d’anesthésie des animaux

1. Laisser les animaux s’acclimater pendant 7 jours, avec des congénères et un enrichissement environnemental, pour assurer le bien-être des animaux.
2. Ne pas nourrir les animaux 12 h avant leur inclusion dans le protocole expérimental.
3. Effectuer une prémédication 30 min avant l’intervention avec une injection intramusculaire d’un mélange équimolaire de tilétamine et de zolazépam (10 mg/kg) dans les muscles du cou.
4. Une fois l’animal sous sédation, insérer un cathéter dans la veine de l’oreille et induire une anesthésie générale avec un bolus intraveineux de propofol (2 mg/kg) associé à l’administration d’atracurium (2 mg/kg).
5. Intuber l’animal avec une sonde orotrachéale de 7,5 mm.
6. Surveillez l’animal avec un électrocardiogramme continu, du CO₂ expiratoire et de l’oxymétrie.
7. Maintenir l’anesthésie générale avec de l’isoflurane inhalé (2%) mélangé à un supplément d’oxygène à 40%.

2. Évaluation hémodynamique et échocardiographique in situ du cœur

NOTE: L’évaluation hémodynamique est réalisée avec un cathéter de Swan Ganz, tandis que l’évaluation fonctionnelle de base du cœur est effectuée par échocardiographie transthoracique.

1. Insérer par voie percutanée une gaine 8 française (Fr) dans le tronc veineux brachiocéphalique en utilisant la technique Seldinger⁸.
2. Après avoir désaéré le cathéter et réglé la pression 0, insérer le cathéter Swan Ganz dans la gaine 8 Fr jusqu’à ce qu’un profil de pression pulmonaire soit observé sur l’écran de surveillance.
3. Obtenir la pression d’occlusion artérielle pulmonaire en poussant le cathéter Sawn-Ganz dans la circulation pulmonaire pendant que le ballonnet est gonflé.
4. Évaluer le débit cardiaque à l’aide de l’approche de thermodilution par perfusion de 10 mL de solution saline froide (4 °C) dans la conduite proximale du cathéter Swan Ganz. Répétez la mesure trois fois.
5. Évaluer la fraction d’éjection ventriculaire gauche (FEVG) à l’aide de la technique biplan^de Simpson 9.
6. Explorez la valve aortique et la racine aortique pour identifier tout trouble structurel ou régurgitation aortique au-dessus du grade 2 qui pourrait compromettre la perfusion ex situ du cœur par l’aorte ascendante (Figure 1).

3. Description et amorçage de la machine de perfusion normothermique ex situ (NESP)

REMARQUE: Un module NESP modifié est utilisé pour effectuer alternativement la perfusion de Langendorff et la perfusion en mode de travail. En bref, connectez la ligne aortique du circuit à une chambre de conformité via un connecteur en Y. Ajouter un oxygénateur pédiatrique et un réservoir de cardiotomie (70-80 cm de hauteur au-dessus du connecteur aortique du module) pour fournir une postcharge du ventricule gauche d’environ 70 mmHg pendant le mode de fonctionnement. Connectez un autre réservoir de cardiotomie (hauteur de 7 à 10 cm au-dessus du connecteur aortique du module) à la conduite d’entrée principale à l’aide d’un connecteur en Y pour fournir une précharge de l’oreillette gauche d’environ 10 mmHg pendant le mode de fonctionnement (Figure 2). Le débit coronaire est évalué à l’aide d’un capteur de débit relié à la canule pulmonaire. Une pompe centrifuge, un oxygénateur à membrane et une machine de chauffage-refroidisseur sont connectés au circuit (Figure 2). Pour obtenir une description des solutions, reportez-vous au Tableau 1.

1. Amorcer le circuit de perfusion avec la solution d’amorçage (tableau 1).
2. Réglez la puissance de la pompe à 1500 mL/min.
3. Ajouter le sang prélevé sur le porc donneur (1200-1500 mL) dans le circuit.
4. Réglez le mélangeur de gaz pour obtenir une pression partielle d’oxygène >250 mmHg.
5. Connectez la solution de maintenance et la solution d’adrénaline (Tableau 1) au circuit et réglez la sortie initiale respectivement à 5 mL/h et 0,1 mL/h.
6. Régler la température du perfusat à température ambiante (RT) avant de placer le cœur dans le module de perfusion.
7. En mode de fonctionnement, connectez une seringue de dobutamine à une concentration de 2,5 mg/mL (sortie comprise entre 0,04 et 0,12 mg/h).

4. Prélèvement cardiaque et instrumentation pour la perfusion cardiaque normothermique ex situ

1. Approvisionnement en cœur
   1. Placez l’animal en décubitus dorsal et continuez à maintenir l’anesthésie générale.
   2. Effectuez une sternotomie médiane et ouvrez le péricarde.
   3. Suspendre le péricarde avec quatre points de suture.
   4. Placez des sutures en polypropylène 4-0 sur l’oreillette droite et sur l’aorte ascendante pour sécuriser les canulations avec des garrots.
   5. Après perfusion d’héparine (300 UI/kg) et dissection soigneuse de la racine aortique, insérer une canule veineuse à double étage dans l’oreillette droite pour le prélèvement sanguin et une canule à lumière unique dans l’aorte ascendante pour la perfusion cardioplégique.
   6. Isoler la veine cave supérieure et inférieure avec des garrots silastiques.
   7. Connectez la canule veineuse à une poche de prélèvement de sang contenant 10 000 UI d’héparine non fractionnée.
   8. Placez le corps du porcelet en position Trendelenburg pour améliorer le drainage du sang dans le sac de collecte.
   9. Une fois la collecte de sang terminée, serrer l’aorte ascendante, infuser la cardioplégie de Del Nido dans la racine aortique (tableau 1) et vérifier que l’aorte ascendante est sous pression (pas de régurgitation aortique).
   10. Déchargez l’oreillette droite et gauche en ouvrant respectivement la veine cave inférieure et la veine pulmonaire droite, tandis que la veine cave supérieure est serrée par un garrot.
   11. Une fois la perfusion de cardioplégie terminée, ligaturer la veine hémiazygos gauche avec deux points de suture de polypropylène 4-0.
   12. Procéder à l’obtention du cœur, en gardant 2 cm du tronc pulmonaire avec la paroi postérieure de l’oreillette gauche.
   13. Vérifiez qu’il n’y a pas de foramen ovale persistant en inspectant le septum auriculaire et fermez-le si nécessaire à l’aide de sutures en polypropylène 4-0.
2. Instrumentation du cœur avant le PNSME
   1. Placer le cœur dans une solution saline à 4 °C et séparer l’aorte ascendante du tronc pulmonaire. Vérifiez que la valve aortique et les osties coronaires ne sont pas blessées.
   2. Insérer quatre points de suture (polypropylène 4-0) à 5 mm au-dessous de la section distale de l’aorte ascendante et insérer la canule de perfusion dans l’aorte. Serrez un collier de serrage autour de l’aorte pour fixer la canule.
   3. Insérez une canule de drainage dans le tronc pulmonaire et fixez avec une suture de fonctionnement en polypropylène 3-0.
   4. Fermez la veine cave inférieure et supérieure avec des sutures de fonctionnement en polypropylène 5-0.
   5. Fermez la paroi postérieure de l’oreillette gauche avec une suture de course en polypropylène 4-0.
   6. Insérez une canule d’évent gauche à travers la paroi postérieure de la paroi de l’oreillette gauche et collez un garrot autour.
   7. Insérez une canule de précharge dans l’appendice auriculaire gauche et collez un garrot.

5. Raccordement à l’appareil du PNSME et réanimation cardiaque

REMARQUE: Avant l’instrumentation du cœur, assurez-vous que les matériaux nécessaires à la réanimation sont disponibles à côté du circuit de perfusion, en particulier un défibrillateur avec sondes internes et un stimulateur cardiaque externe avec électrodes épicardiques. Assurez-vous que la conduite de pression est connectée à la conduite aortique et que le capteur de sortie est placé sur la conduite d’écoulement coronaire. La ligne de postcharge doit être serrée, ainsi que la ligne de précharge du circuit de mode de fonctionnement.

1. Diminuer le débit de la pompe à 200 mL/min.
2. Connectez le cœur au connecteur aortique après avoir désaéré le connecteur. Assurez-vous que le cœur est correctement connecté au module de perfusion de sorte que les parois ventriculaires inférieures et l’oreillette gauche et droite soient devant l’opérateur. Évitez de tordre l’aorte ascendante pour éviter la régurgitation aortique.
3. Ajustez la pression aortique à 30 mmHg à TA.
4. Pendant la réanimation, effectuez un massage cardiaque doux jusqu’à ce qu’un rythme sinusal soit rétabli.
5. Augmentez lentement le débit de la pompe en 15-25 minutes par pas de 50 mL/min pour atteindre une pression aortique de 65 mmHg. Dans le même temps, augmentez la température du perfusat par pas de 2 à 4 °C pour atteindre 37 °C.
6. Une fois que la pression aortique est à 65 mmHg et que la température du perfusat est à 37 °C, administrer un choc électrique à 5 J si nécessaire, et répéter jusqu’à ce que le rythme sinusal soit rétabli.
7. Fixez une électrode épicardique sur la paroi postérieure ventriculaire droite et connectez-la à un stimulateur cardiaque externe. Rythmez le cœur à 80 BPM pour surcharger le rythme spontané.
8. Connectez la canule pulmonaire à la ligne d’écoulement coronaire.
9. Effectuer des échantillons de sang artériel et veineux pour les analyses gazeuses et biochimiques du perfusat. Enregistrer la concentration initiale de lactate et corriger les troubles biochimiques pour atteindre les objectifs suivants : glucose >1 g/L, K+ 3,5-5,5 mmol/L, Ca 2+ 1,0-1,20 mmol/L, pH 7,35-7,45, Na⁺ 135-145 mmol/L et HCO3^- 20-24 mmol/L.
10. Ajuster le débit de la pompe pour atteindre une pression aortique moyenne de 65-75 mmHg et un débit coronaire de 650-850 mL/min.
11. Effectuer une analyse des gaz sanguins artérioveineux toutes les 15 minutes pour s’assurer que l’extraction myocardique du lactate est efficace. Si le lactate veineux est supérieur au lactate artériel, augmenter la pression aortique moyenne à 80 mmHg en diminuant la solution d’entretien, et vérifier la concentration de lactate 15 minutes après. Si la clairance artérioveineuse du lactate est toujours altérée, augmentez le débit coronaire à >850 mL et vérifiez la concentration de lactate 15 minutes plus tard.

6. Procédure en mode de travail

NOTE: La clairance artérioveineuse efficace du lactate est généralement atteinte dans les 30 minutes suivant le début de la perfusion de Langendorff. Le mode de fonctionnement peut ensuite être initié en connectant la canule de précharge au réservoir de précharge (cette ligne était auparavant serrée en mode Langendorff). De même, la ligne de postcharge est connectée à la ligne aortique (Figure 2). Réglez le capteur de débit sur la ligne de postcharge pour mesurer le débit cardiaque.

1. Ouvrez la conduite de précharge et ajustez le débit de la pompe pour assurer un remplissage stable du réservoir de précharge. Pendant cette période, l’oreillette gauche et le ventricule gauche sont progressivement remplis de sang.
2. Ouvrez la ligne de postcharge aortique et serrez la ligne principale du circuit utilisé pour la perfusion de Langendorff. Le réservoir de postcharge est progressivement rempli. Assurer la vidange du réservoir par une conduite de trop-plein qui ramène le perfusat au réservoir principal du circuit.
3. Initier la perfusion de dobutamine à 0,04 mg / min.
4. Effectuer une analyse des échantillons de gaz sanguins artériels et veineux pour s’assurer que l’extraction myocardique du lactate est toujours efficace.
5. Une fois que le débit cardiaque est stable, effectuer une évaluation hémodynamique invasive ainsi que des mesures échographiques épicardiques.

7. Évaluation de la boucle pression-volume (PV) avec la méthode de conductance

REMARQUE : Toutes les étapes d’étalonnage doivent être effectuées en mode de fonctionnement.

1. Mise en place d’un cathéter PV dans le ventricule gauche
   1. Nettoyez le cathéter de conductance en queue de cochon 7 Fr avec une solution saline et connectez-le à l’interface matérielle.
   2. Poussez doucement le cathéter dans la gaine d’introducteur 8 Fr préalablement insérée à travers le toit de l’oreillette gauche pour être aligné avec la valve mitrale.
   3. Dès que le cathéter traverse la valve mitrale, ajustez la position appropriée, en tenant compte des signaux de pression et de volume optimaux. S’il y a trop de bruit, déplacez doucement le cathéter de conductance pour améliorer la qualité des boucles.
2. Calibrage du cathéter à boucle PV
   1. Calibrage de pression
      1. Une fois que le cathéter de conductance est correctement situé dans le ventricule gauche, ouvrez l’interface d’étalonnage sur le logiciel et étalonnez la valeur de pression à l’aide d’un logiciel d’acquisition pour les mesures de conductance.
      2. Démarrez l’enregistrement, sélectionnez une pression de 0 mmHg et 100 mmHg sur l’interface de commande, et enregistrez pendant 5 s chacun.
      3. Ensuite, arrêtez l’enregistrement et ouvrez l’interface d’étalonnage de pression. Faites correspondre le signal correspondant au niveau de pression.
      4. Une fois calibré, vérifiez que le signal correspond aux valeurs obtenues par la surveillance invasive de la pression artérielle.
   2. Calibrage du volume
      1. Calibrage de conductance
         1. Ouvrez l’interface de contrôle du logiciel pour les mesures de conductance.
         2. Lancez l’enregistrement, l’un après l’autre, sélectionnez les volumes suggérés par l’interface d’étalonnage.
         3. Laissez l’interface enregistrer pendant 5 s chacune, puis arrêtez l’enregistrement.
         4. Utilisez la trace de données obtenue et ouvrez l’interface d’étalonnage du volume.
         5. Faites correspondre la trace correspondante au niveau de pression.
      2. Calibrage de volume parallèle
         1. Le tissu cardiaque environnant conduit l’électricité et contribue au signal de volume global. Retirez ce volume parallèle pour une mesure précise du volume (étalonnage post-traitement).
         2. Pour évaluer le volume parallèle dans cette configuration (paroi myocardique), injecter une fois 10 cc de solution saline hypertonique (4%) dans la ligne de l’oreillette gauche.
         3. Ne répétez pas l’opération pour éviter l’hypernatrémie.
3. Calibrage du facteur de correction sur le terrain
   1. Entrez la valeur du volume de course obtenue à partir des mesures échographiques.
      REMARQUE : Le facteur alpha sera calculé en tenant compte du rapport des volumes d’AVC obtenus soit par des mesures échographiques, soit par cathétérisme de conductance.
4. Collecte de données PV
   1. Arrêtez la stimulation épicardique du cœur pour éviter toute interférence avec le signal de conductance. Enregistrer les données en régime permanent lorsque le signal est stabilisé (Figure 3)
   2. Sélectionnez une série de 10 boucles consécutives et ouvrez le logiciel d’analyse. Le logiciel fournira automatiquement le travail d’AVC, le travail d’AVC pré-recrutable, le dP / dt maximum, le dP / dt minimum et l’indice tau.
   3. Pour obtenir la relation pression-volume systolique finale et la relation pression-volume diastolique terminale, enregistrez le signal pendant l’occlusion de précharge. Serrez progressivement la conduite de perfusion auriculaire jusqu’à ce que la réduction de la précharge soit efficace (figure 4). Puis relâchez lentement la pince.

8. Évaluation par échocardiographie épicardique du cœur en état de fonctionnement

1. Acquisition de boucles ultrasonores
   1. Placez trois électrodes épicardiques ECG connectées à l’échocardiogramme.
   2. Appliquez un champ stérile autour du cœur et utilisez une sonde transœsophage.
   3. Appliquez la sonde sur la paroi supérieure de l’oreillette gauche et faites tourner manuellement le transducteur jusqu’à ce qu’une vue à quatre chambres soit obtenue (Figure 5).
   4. Démarrez le logiciel d’acquisition échocardiographique pour l’évaluation des performances myocardiques en utilisant le mode X-plan.
   5. Ensuite, faites fonctionner le moteur de sonde à ultrasons pour obtenir des vues à trois et deux chambres. L’analyse de ces vues permet de mesurer la fraction d’éjection du ventricule gauche et la déformation longitudinale globale⁹.
2. Évaluation de l’indice de travail myocardique (MWI)
   1. Procéder à l’acquisition de vues à quatre, trois et deux chambres et enregistrer simultanément la pression artérielle (Figure 6).
   2. Évaluez la déformation longitudinale globale à l’aide de ces vues et ouvrez le logiciel MWI. Utilisez la pression artérielle invasive détectée par le capteur externe sur le circuit de perfusion lors de l’acquisition en boucle.
   3. Informez manuellement le logiciel du moment exact de l’ouverture et de la fermeture des valves aortique et mitrale.
      REMARQUE: Le logiciel MWI fournira automatiquement un MWI global, un travail constructif, un travail gaspillé et un travail efficace.

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Résultats

Nous avons décrit ici un protocole NESP dans un état de fonctionnement monoventriculaire, en utilisant un module de perfusion cardiaque modifié habituellement utilisé dans la pratique clinique pour la perfusion Langendorff du cœur du donneur avant la transplantation. Ce modèle de porcelet du PNSME utilisant le présent module personnalisé a été développé en 2019. Les modifications du circuit étaient mineures, car la majeure partie du circuit de perfusion a été réutilisée pour des expériences. Le capuchon...

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Discussion

Il y a quelques étapes critiques à considérer dans le protocole du PNSME. L’évaluation préliminaire in situ du cœur demeurait importante, surtout compte tenu de la valve aortique qui ne devrait pas présenter de régurgitation aortique significative (grade 2 ou plus) ; sinon, la réanimation du cœur sera compromise pendant la période Langendorff en raison d’une altération de la perfusion coronaire et de l’ischémie myocardique. L’initiation du WM après la perfusion de Langendorff a été une m...

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matériels

Name	Company	Catalog Number	Comments
3T Heater Cooler System	Liva Nova, Châtillon, France	IM-00727 A	Extracorporeal Heater Cooler device
4-0 polypropylene suture	Peters, bobigny, France	20S15B	sutures
5-0 polypropylene suture	Peters, bobigny, France	20S10B	sutures
Adenosine	Efisciens BV, Rotterdam, Netherlands	9088309	Drugs for the ex-vivo perfusion
Adrenaline	Aguettant, Lyon, France	600040	Drugs for the ex-vivo perfusion
Atracurium	Pfizer Holding France, Paris, France	582547	Drugs for the induction of the anesthesia
DeltaStream	Fresenius Medical Care, L’Arbresle, France	MEH2C4024	Extracorporeal blood pump
EKG epicardial electrodes	Cardinal Health LLC, Waukegan, Illinois, USA	31050522	EKG detection electrodes
External pacemaker	Medtronic Inc. Minneapolis, Minneapolis, USA	5392	Pacemaker device
Glucose 5%	B.Braun Melsungen AG, Melsungen, Germany	3400891780017	Drugs for the priming solution
Heart Perfusion Set, Organ Care System	Transmedics, Andover, MA, USA	Ref#1200	Normothermic ex-vivo heart perfusion device
Intellivue MX550	Philips Healthcare, Suresnes, France	NA	Permanent monitoring system
Istat 1	Abbott, Chicago, Ill, USA	714336-03O	Blood Analyzer machine
Labchart	AD Instruments Ltd, Paris, France	LabChart v8.1.21	Pressure Volume loops aquisition software
Magnesium	Aguettant, Lyon, France	564 780-6	Drugs for the cardioplegia
Magnesium Sulfate	Aguettant, Lyon, France	600111	Drugs for the cardioplegia
Mannitol 20%	Macopharma, Mouvoux, France	3400891694567.00	Drugs for the cardioplegia
Methylprednisolone	Mylan S.A.S, Saint Priest, France	400005623	Drugs for the priming solution
Millar Conductance Catheter	AD Instruments Ltd, Paris, France	Ventri-Cath 507	Pressure Volume loops conductance catheter
MWI software	General Electric Healthcare, Chicago, Ill, USA	NA	software used for the Ultrasound echocardiographic machine
Orotracheal probe	Smiths medical ASD, Inc., Minneapolis, Minneapolis, USA	100/199/070	probe for the intubation during anesthesia
Potassium chloride 10%	B.Braun Melsungen AG, Melsungen, Germany	3400892691527.00	Drugs for the cardioplegia
Propofol	Zoetis France, Malakoff, France	8083511	Drugs for the induction of the anesthesia
Quadrox-I small Adult Oxygenator	Getinge, Göteborg, Sweden	BE-HMO 50000	Extracorporeal blood oxygenator
Ringer solution	B.Braun Melsungen AG, Melsungen, Germany	DKE2323	Drugs for the cardioplegia
Sodium Bicarbonate	Laboratoire Renaudin, itxassou, France	3701447	Drugs for the cardioplegia
Sodium chloride	Aguettant, Lyon, France	606726	Drugs for the priming solution
Swan Ganz Catheter	Merit Medical, south jordan, utah, USA	5041856	Right pressure and cardiac output probe
Tiletamine	Virbac France, Carros, France	3597132126021.00	Drugs for the induction of the anesthesia
Transesophagus probe (3–8 MHz 6VT)	General Electric Healthcare, Chicago, Ill, USA	NA	Ultrasound echocardiographic transesophagus probe
Vivid E95 ultraSound Machine	General Electric Healthcare, Chicago, Ill, USA	NA	Ultrasound echocardiographic machine
Xylocaïne 2%	Aspen, Reuil-malmaison, France	600550	Drugs for the cardioplegia
Zolazepam	Virbac France, Carros, France	3597132126021.00	Drugs for the induction of the anesthesia