1. Identifiez la souris à imager dans sa cage et transférez-la à la chambre d'induction d'anesthésie.
2. Anesthésiez la souris à l'aide d'isoflurane et confirmez le knockdown à l'aide d'une technique de pincement des orteils. Prenez la patte entre votre pouce et l'index et pincez fermement pour vérifier une réponse. Si l'animal retire son pied, vous devez attendre ou redoser avec anesthésie selon le protocole approuvé.
3. Vérifiez que tous les membres du personnel entrant dans l'installation d'imagerie sont mm en toute sécurité. Cela comprend l'enlèvement de tout vêtement magnétique / accessoires, la confirmation d'aucun implant magnétique ou stimulateurs cardiaques, et l'enlèvement du métal contenant des piercings.
4. Ouvrez le flux d'isoflurane au cône de nez dans la salle d'IRM. Cela permet de apprêté le tube plus long avec de l'anesthésique avant le transfert de la souris pour s'assurer que l'animal ne se réveille pas.
5. Fermer le flux d'isoflurane à la chambre d'induction d'anesthésie et transférer la souris au stade d'imagerie. Placez la souris sur la scène de telle sorte que l'emplacement approximatif du cœur soit aligné avec le centre de l'aimant.
6. Fixer le cône de nez et reconfirmer knockdown en utilisant la technique de pincement des orteils.
7. Insérez les trois électrocardiogrammes conduit sous-cutanéeavec une tête à gauche et à droite du cœur et une à la base du membre arrière gauche.
8. Insérez la sonde de température rectale à l'aide d'une gaine et d'un lubrifiant de sonde stérile.
9. Placez le capteur de respiration d'oreiller sur la région épigastrique de l'abdomen et fixez-le en place à l'aide d'une plaque en carton. Le carton permettra d'assurer un signal sensible à la pression.
10. Confirmez que tous les signaux physiologiques sont acquis par le biais du logiciel de surveillance à l'extérieur de la salle de scanner. Si une fréquence cardiaque, une fréquence respiratoire ou une température en dehors de la plage normale est détectée, faites une pause d'imagerie et évaluez si l'animal est correctement anesthésié. Si l'animal est en détresse, l'administration de l'anesthésie doit cesser et l'animal doit être retourné à la cage pour récupérer.
11. Installez le module de chauffage et le ventilateur et commencez à réchauffer le flux d'air vers l'animal. Fixez tous les tubes d'air en place de sorte que l'air chaud souffle vers la souris à partir juste après la pointe de la queue.
12. Placez la bobine de gradient sur l'animal et assurez-vous que tous les câbles/tubing sont fixés.

2. Imagerie par résonance magnétique cardiaque - Cette section peut être adaptée à d'autres applications.

1. Accordez et assortiz la bobine de gradient à l'extérieur de l'alésage de l'aimant pour s'assurer que le signal maximal est détecté à partir du sujet.
2. Insérez lentement le stade d'imagerie dans l'alésage de l'aimant de sorte que l'animal soit placé directement au centre de l'alésage. Cela comprend s'assurer que la bobine de gradient a un espacement égal le long de toutes les directions radiales. C'est la position où le champ magnétique principal sera le plus homogène.
3. Exécutez un scanner localisateur/navigateur pour confirmer l'emplacement de la souris dans le scanner. Un segment du cœur devrait être visualisé dans les trois plans (c.-à-d. axial, sagittal, et coronal). Si ce n'est pas le cas, répétez le processus de repositionnement de la souris et d'exécution des balayages localisateurs/navigation jusqu'à ce que la position désirée soit atteinte.
4. Configurez les paramètres de la séquence FLASH. Par exemple : TR/TE 8,0/2,0 ms, FA 20, FOV 35 x 35 mm, matrice-taille 192 x 192, et NEX 6. Ensuite, sélectionnez le déclencheur externe pour être "sur".
5. Sur le logiciel de surveillance, configurez les déclencheurs externes de telle sorte que les séquences d'IRM sont commencées lors de l'identification des pics R dans les cycles cardiaques et pendant que la respiration est stable pendant la phase d'expiration. Comme ces deux conditions sont remplies, la séquence peut être exécuté en série et les données seront acquises.
6. Prescrire et exécuter une tranche de séquence FLASH initiale dans la vue coronale de telle sorte que le plan de tranche suit l'axe de l'apex du cœur à travers la valve aortique. Cette boucle de cine initiale fournira une vue à deux chambres du cœur.
7. En se référant aux résultats de la vue à deux chambres, prescrire et exécuter une nouvelle séquence FLASH le long de l'axe de la valve apex-aortique pour visualiser une vue à quatre chambres.
8. Enfin, prescrire une tranche à axe court qui est perpendiculaire à l'axe de la valve apex-aortique à peu près à mi-chemin à travers le cœur. Les muscles papillaires doivent être nettement visibles dans la sortie de la boucle de cine à cet endroit.
   1. Des tranches supplémentaires peuvent être acquises parallèlement à celle-ci pour construire des volumes synchronisés dans le temps du cœur. Ces volumes sont créés en concaténant les boucles de cine adjacentes en post-traitement.
9. Une fois l'imagerie terminée, transférez les données acquises à un endroit approprié pour analyse et retirez l'animal du scanner.