Les auteurs tiennent à remercier les anciens membres de la Banque laboratoire: Sam-Kyu Kim, Kathryn Plichta et Victoria Miranda-Thompson pour leurs contributions à l&#39;amélioration de plusieurs de ces protocoles. Nous reconnaissons l&#39;appui National Science Foundation (subventions IOS-0840932 et 0724978 IOS) à SP Stock.

1. Sol de prélèvement des échantillons <ol><li> Considérez couvrant une superficie minimale de 2 - 4 m 2 pour chaque site d&#39;échantillonnage. </li><li> Prélever des échantillons de sol à une profondeur d&#39;au moins 15 cm (Figure 4). </li><li> Prenez au moins 5 échantillons aléatoires dans ce domaine. </li><li> Prendre 3 sous-échantillons par échantillon. Selon l&#39;objectif de l&#39;étude, soit combiner les sous-échantillons ou les garder séparés. </li><li> Placer chaque échantillon dans un sac en plastique. Considérez double ensachage pour éviter les fuites d&#39;échantillons (Figure 4). </li><li> échantillons d&#39;étiquettes avec un marqueur à encre indélébile. Inclure les informations suivantes pour chaque site d&#39;échantillonnage: l&#39;information du site (y compris localité / région / nom et coordonnées GPS site d&#39;information), la date, l&#39;habitat, la végétation associée, la température, l&#39;altitude, etc REMARQUE: Le cas échéant, recueillir et / ou d&#39;enregistrer la présence d&#39;insectes ou autres invertébrés récoltés à l&#39;échantillon pour identification ultérieure. Ils peuvent représenter natur potentielhôtes al EPN. </li><li> Outils de collecte propres entre les échantillons par lavage à l&#39;eau et / ou les désinfecter avec 70% d&#39;éthanol ou d&#39;eau de Javel à 0,5%. </li><li> Conserver les échantillons dans un refroidisseur (8-15 ° C) pendant le transport vers le laboratoire. </li><li> Prendre une partie de l&#39;échantillon de sol pour analyse afin d&#39;obtenir des informations sur la composition du sol, la texture, l&#39;humidité, la conductivité électrique ou d&#39;autres paramètres relatifs au sol souhaitées. </li></ol> . 2 nématode Isolement à partir des échantillons de sol: Technique de l&#39;insecte-appâts <ol><li> Enlevez tous les débris (c&#39;est à dire., Roches, des morceaux de bois ou d&#39;écorce, feuilles, etc.) Recueillies avec vos échantillons pour éviter la contamination par des micro-organismes saprophytes. </li><li> Ajouter de l&#39;eau pour humidifier le sol et faciliter la circulation des nématodes. REMARQUE: Utilisez un vaporisateur d&#39;augmenter lentement le niveau du sol de l&#39;humidité. </li><li> Placer environ 200 à 250 ml d&#39;un sol humide dans un récipient en plastique propre avec un couvercle. </li><li> Ajouter appâts insectes. Considérons 5 à 10 insectes à la surface du sol de chaque échantillon (figure 5). </li><li> Couvrir le récipient avec un couvercle et tournez récipients à l&#39;envers. </li><li> Maintenir les récipients dans l&#39;obscurité et à température ambiante (généralement 22-25 ° C). </li><li> Vérifiez tous les récipients 2 - 3 jours et enlever les insectes morts. REMARQUE: ajouter insectes sains supplémentaires pour chaque conteneur pour plus d&#39;appâtage de l&#39;échantillon de sol. </li><li> Retirer les insectes morts des conteneurs. NOTE: Les cadavres avec une brune ou ocre coloration sont généralement parasités par steinernematids, alors que la brique rouge à violet foncé cadavres sont parasités par heterorhabditids. </li><li> Rincer cadavres dans l&#39;eau stérile. </li><li> Placez cadavres dans un piège blanc modifié pour la récupération des nématodes progéniture (voir la procédure ci-dessous). </li></ol> Piège Blanc modification:. 3 nématode récupération de cadavres infectés <ol><li> Placez le haut de 50 (ou 60) mm de diamètre. Boîte de Petri dans un plat plus grand (100 mm). </li><li> Définir un péchépapier filtre circulaire GLE (Whatman n ° 1) à l&#39;intérieur du petit plat. </li><li> La place des cadavres sur le papier filtre du plus petit plat s&#39;assurer que les cadavres ne se touchent pas les uns des autres pour éviter toute contamination. </li><li> Remplissez le extérieure (plus grande) boîte de Pétri avec ca. 20 ml d&#39;eau distillée stérile. Ne pas ajouter de l&#39;eau dans le plat qui contient les cadavres. </li><li> Couvrir la grande boîte de Pétri et son contenu avec le couvercle (Figure 6). </li><li> Étiqueter plats en conséquence. Ajoutez les informations suivantes: nom nématodes (espèces / isolé), la date de l&#39;infection (infection de date a été fixée) et la date de piège (il s&#39;agit de la date à laquelle le piège est mis en place). </li><li> Gardez piège à température ambiante jusqu&#39;à la levée des stades juvéniles infectieux (JI) se produit. Ce processus peut prendre entre 10 - 25 jours selon les espèces et / ou souche considérée nématodes. </li><li> l&#39;eau de récolte avec JI en enlevant le plus grand plat du piège et verser de l&#39;eau par des nématodes dans un bécher. </li><li> Permettre aux nématodes à décanter au fond de la beaker. Ce processus peut prendre quelques minutes. </li><li> Versez de l&#39;eau avec précaution, en s&#39;assurant que les nématodes restent dans le fond du récipient. </li><li> Rincer les nématodes en ajoutant plus d&#39;eau et permettant nématodes à décanter. Cette étape peut être répétée 2 à 3 fois jusqu&#39;à ce que l&#39;eau est propre. </li><li> Placer nématodes en suspension dans un flacon de culture tissulaire (250 ml). Maintenir la concentration de la suspension à 1000 - 3000 nématodes / ml. </li><li> fiole de magasin avec des nématodes en suspension dans une chambre froide ou dans l&#39;incubateur entre: 10 - 20 ° C. REMARQUE: consultez flacons stockés périodiquement la durée de vie de l&#39;EPN est variable. Habituellement steinernematids peuvent être stockés pour les 6 - 12 mois sans la nécessité de repiquage, alors que heterorhabditids peuvent nécessiter plus de contrôles périodiques. </li></ol>

<ol>
	<li>Bedding, R. A., Akhurst, R. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+simple+technique+for+the+detection+of+insect+parasitic+rhabditid+nematodes+in+soil.">A simple technique for the detection of insect parasitic rhabditid nematodes in soil.</a> Nematologica. 21, 109-110 (1975).</li><li>Boemare, N. E., Akhurst, R. A., Dworkin, M., Falkow, S., Rosenberg, E., Schleifer, K. -. H., Stackebrandt, E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=.">.</a> The Genera Photorhabdus and Xenorhabdus. In The Prokaryotes. , 473-488 (2007).</li><li>Gaugler, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=.">.</a> Entomopathogenic Nematology. , (2002).</li><li>Gaugler, R., Kaya, H. 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K., Gaugler, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Entomopathogenic+nematodes.">Entomopathogenic nematodes.</a> Annual Review of Entomology. 38, 181-206 (1993).</li><li>Kaya, H. K., Stock, S. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=.">.</a> Techniques in insect nematology. In Manual of techniques in insect pathology. , 281-324 (1997).</li><li>Lacey, L. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=.">.</a> Manual of techniques in invertebrate pathology. , (2012).</li><li>McCoy, C. W., Shapiro-Ilan, D., Duncan, L., Nguyen, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Entomopathogenic+nematodes+and+other+natural+enemies+as+mortality+factors+for+larvae+of+Diaprepes+abbreviatus+(Coleoptera:+Curculionidae).">Entomopathogenic nematodes and other natural enemies as mortality factors for larvae of Diaprepes abbreviatus (Coleoptera: Curculionidae).</a> Biological Control. 19, 182-190 (2000).</li><li>Meyling, N. V., Eilenberg, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Occurrence+and+distribution+of+soil+borne+entomopathogenic+fungi+within+a+single+organic+agroecosystem.">Occurrence and distribution of soil borne entomopathogenic fungi within a single organic agroecosystem.</a> Agriculture, ecosystem., &amp; environment. 113, 336-341 (2006).</li><li>Poinar, G. O. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=.">.</a> Taxonomy and biology of Steinernematidae and Heterorhabditidae. In: Entomopathogenic Nemtaodes in Biological. , 23-61 (1990).</li><li>Stock, S. P., Gress, J. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Diversity+and+phylogenetic+relationships+of+entomopathogenic+nematodes+(Steinernematidae+and+Heterorhabditidae)+from+the+Sky+Islands+of+southern+Arizona.">Diversity and phylogenetic relationships of entomopathogenic nematodes (Steinernematidae and Heterorhabditidae) from the Sky Islands of southern Arizona.</a> Journal of invertebrate pathology. 92, 66-72 (2006).</li><li>Stock, S. P., Hunt, D. J., Grewal, P. S., Ehlers, R. U., Shapiro-Ilan, D. I. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Nematode+morphology+and+systematics.">Nematode morphology and systematics.</a> Nematodes as biological control agents. CAB International Publishing. , 3-43 (2005).</li><li>Stock, S. P., Goodrich&#8211;Blair, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Entomopathogenic+nematodes+and+their+bacterial+symbionts:+The+inside+out+of+a+mutualistic+association.">Entomopathogenic nematodes and their bacterial symbionts: The inside out of a mutualistic association.</a> Symbiosis. 46, 65-75 (2008).</li><li>Stuart, R. J., Gaugler, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Patchiness+in+populations+of+entomopathogenic+nematodes.">Patchiness in populations of entomopathogenic nematodes.</a> Journal of Invertebrate Pathology. 64, 39-45 (1994).</li><li>White, G. F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+method+for+obtaining+infective+nematode+larvae+from+cultures.">A method for obtaining infective nematode larvae from cultures.</a> Science. 66, 302-303 (1927).</li></ol>

Aucun conflit d&#39;intérêt déclaré.

Cette démonstration est le premier des deux présentations qui décrivent un certain nombre de techniques qui sont couramment utilisés pour l&#39;étude de l&#39;EPN et de leurs bactéries symbiotiques. Ces techniques constituent des étapes clés de la mise en place réussie des cultures de l&#39;EPN dans le laboratoire et constituent également la base pour d&#39;autres essais biologiques qui emploient EPN comme organismes modèles pour la recherche. Diverses études de sol de l&#39;EPN ...

Beaucoup de nématodes sont associés avec des insectes, et leurs interactions hôte vont de bénéfique à préjudiciable. Ici, nous nous concentrons sur un groupe de nématodes qui sont des agents pathogènes d&#39;insectes, aussi connu comme nématodes entomopathogènes (ou EPN). Deux familles de nématodes appartiennent à ce groupe de nematodes: Steinernematidae et Heterorhabditidae 11,13. Leur effet pathogène est en effet conféré par leur interaction avec les bactéries entériques facultatives anaérobies (bactéries Xenorhabdus associent steinernematids et bactéries Photorhabdus associer à heterorhabditids) 2. Les bactéries sont vectorisés d&#39;un insecte hôte à un autre par la seule étape sans nématodes vivant, le mineur infectieux de la troisième étape (également connu sous le nom dauer juvénile, juvénile infectieux ou IJ), qui vit dans le sol. Une fois à l&#39;intérieur de l&#39;insecte, les nématodes libèrent les bactéries dans l&#39;hémolymphe de l&#39;insecte, qui tuent l&#39;hôte de l&#39;insecte par septicémie massif. Les bactéries aussidégrader les tissus de l&#39;insecte et deviennent la source de nourriture des nématodes, ce qui leur permet de mûrir et de se multiplier. Habituellement, une ou deux générations de nématodes adultes sont produits dans le cadavre d&#39;insecte. La descendance des dernières réassocie génération adulte avec quelques cellules bactériennes dans un plus spécialiser de manière que leur relation nutritionnel précédente, et de nourrir ces cellules dans leurs intestins comme ils se déplacent hors de la carcasse de l&#39;insecte dans le sol où ils attendront un autre insecte à parasiter 6,11,14 (Figure 1). Depuis leur découverte en 1927, l&#39;EPN ont été considérés comme des alternatives valables aux pesticides chimiques, car ils peuvent parasiter un large éventail d&#39;insectes qui sont nuisibles agricoles 3,4,5. Cependant, au cours des deux dernières décennies, ces nématodes et leurs bactéries symbiotiques ont été reconnus comme un système modèle pour l&#39;étude malléable aspects biologiques, écologiques et évolutifs de l&#39;hôte microbe INTERACTIONns 14. Le but de cette présentation est de montrer les méthodes et les techniques les plus couramment utilisées pour l&#39;échantillonnage et l&#39;isolement de l&#39;EPN sol. Une variété d&#39;outils est disponible et peut être utilisé pour prélever des échantillons de sol, y compris: carottiers du sol, truelles, pelles post-trous, tarières, des tubes d&#39;échantillonnage, pelles à la main, entre autres (figure 2). Selon le but de l&#39;étude, deux stratégies d&#39;échantillonnage peuvent être envisagées: a) stratifié, b) un échantillonnage aléatoire (Figure 3). L&#39;échantillonnage stratifié est habituellement utilisé dans le cadre d&#39;une étude intensive dans une zone déterminée ou démarquée sur une période de temps donnée. En général, un transect est démarquée et des échantillons de sol sont prélevés à des intervalles prévus dans le transect sur ​​une période de temps (figure 3A) 15. L&#39;échantillonnage aléatoire est généralement utilisé lorsqu&#39;on se concentre sur une vaste zone. Cette stratégie d&#39;échantillonnage a été utilisée pour étudier la diversité des EPN felon une grande surface ou d&#39;une région géographique (figure 3B) 12. Un certain nombre de facteurs peut être considéré en fonction de l&#39;objet de l&#39;étude, y compris un large éventail de hauteurs, textures de sol et des habitats (p. ex., Les champs cultivés, les forêts, les pâturages, parcs, bords de mer, les zones riveraines, etc.) Nous montrons la technique de l&#39;insecte-appâts, qui a été initialement décrit par Literie et Akhurst 1 et représente une alternative simple et sélective pour la récupération de l&#39;EPN à partir d&#39;échantillons de sol. Il s&#39;agit d&#39;une procédure sélective qui est basée sur la prémisse que les nématodes (stade IJ) seront attirés par un insecte hôte et parasitent il. Cette technique peut également être envisagée pour l&#39;isolement d&#39;autres agents pathogènes tels que les insectes, les champignons et les bactéries 8,10. Nous démontrons également la technique de piège blanc modifié qui est utilisé pour récupérer la descendance des nématodes chez des hôtes d&#39;insecte infectées 7,14. Il s&#39;agit d&#39;un effort rencontréhod qui offre l&#39;avantage de récupérer un «propre» nématode progéniture libre de débris des cadavres d&#39;insectes dégradantes. Enfin, les techniques décrites et présentées dans cet article correspondent à ceux conçus et / ou réalisés dans notre laboratoire ainsi que ceux décrits par divers collègues et collaborateurs.

<table border="0" cellpadding="0" cellspacing="0" width="1119">
	<tbody>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:271px;">Name of Reagent/ Equipment</td>
			<td style="width:309px;">Company</td>
			<td style="width:241px;">Catalog Number</td>
			<td style="width:299px;">Comments/Description</td>
		</tr>
		<tr height="22">
			<td height="22" style="height:22px;width:271px;">Galleria mellonella</td>
			<td style="width:309px;">Timberline</td>
			<td style="width:241px;">http://www.timberlinefisheries.com/ProductDetails.asp?ProductCode=WAXLG</td>
			<td>for insect baiting technique</td>
		</tr>
		<tr height="25">
			<td height="25" style="height:25px;width:271px;">Filter Paper, 55mm Grade 1 Cellulose</td>
			<td style="width:309px;">Whatman/VWR</td>
			<td>28450-048</td>
			<td>infection chamber and White trap assembly</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:271px;">60 x 15 mm Petri Dishes</td>
			<td style="width:309px;">VWR</td>
			<td>25384-092</td>
			<td>infection chamber and White trap assembly</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:271px;">100 x 15 Petri Dishes</td>
			<td style="width:309px;">VWR</td>
			<td style="width:241px;">25384-088</td>
			<td>infection chamber and White trap assembly</td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;width:271px;">ZIPloc Plastic Bags</td>
			<td style="width:309px;">Ace Hardware or local hardware store</td>
			<td style="width:241px;">N/A</td>
			<td>soil sampling</td>
		</tr>
		<tr height="19">
			<td height="19" style="height:19px;width:271px;">Mechanical Pipettor P1000, P200 ml</td>
			<td style="width:309px;">VWR</td>
			<td>89130-562; 89130-566&#160;</td>
			<td>infection chamber and White trap assembly</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:271px;">pippetor tips 1000ml, 200 ml</td>
			<td style="width:309px;">VWR</td>
			<td style="width:241px;">16466-004 ; 53510</td>
			<td>infection chamber and White trap assembly</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:271px;">Bleach</td>
			<td style="width:309px;">Ace Hardware or local hardware store</td>
			<td>N/A</td>
			<td>soil sampling , desisnfecting</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:271px;">Sodium Hypochlorite</td>
			<td style="width:309px;">Ace Hardware or local hardware store</td>
			<td>N/A</td>
			<td>soil sampling , desisnfecting</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:271px;">70% Ethyl alochol</td>
			<td style="width:309px;">AAPER</td>
			<td>17212945</td>
			<td>soil sampling , desisnfecting</td>
		</tr>
		<tr height="18">
			<td height="18" style="height:18px;width:271px;">Shovels</td>
			<td style="width:309px;">Ace Hardware or local hardware store</td>
			<td style="width:241px;">N/A</td>
			<td>soil sampling</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:271px;">Tubular soil sampler</td>
			<td>Accuproducts</td>
			<td style="width:241px;">N/A</td>
			<td>soil sampling</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:271px;">Soil Probe, long handle</td>
			<td>Nupla&#160;</td>
			<td style="width:241px;">PRB4T 69401 Classic</td>
			<td>soil sampling</td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;width:271px;">Measuring tape</td>
			<td style="width:309px;">Ace Hardware or local hardware store</td>
			<td style="width:241px;">N/A</td>
			<td>soil sampling</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:271px;">Flagging tape, various colors</td>
			<td style="width:309px;">Ace Hardware or local hardware store</td>
			<td style="width:241px;">N/A</td>
			<td>soil sampling</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:271px;">tissue culture flasks</td>
			<td style="width:309px;">VWR</td>
			<td style="width:241px;">Falcon, 29185-304&#160;</td>
			<td>White trap, collection of EPN</td>
		</tr>
		<tr height="22">
			<td height="22" style="height:22px;width:271px;">wash bottles, Polyethylene, Wide Mouth</td>
			<td style="width:309px;">VWR</td>
			<td>16650-107</td>
			<td>White trap, collection of EPN</td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

soil sampling and isolation of entomopathogenic nematodes (steinernematidae, heterorhabditidae)

Les nématodes entomopathogènes (aka EPN) représentent un groupe de nématodes terricoles qui parasitent une grande variété d&#39;insectes. Ces nématodes appartiennent à deux familles: Steinernematidae et Heterorhabditidae. Jusqu&#39;à présent, plus de 70 espèces ont été décrites dans le Steinernematidae et il ya environ 20 espèces dans le Heterorhabditidae. Les nématodes ont un partenariat mutualiste avec des bactéries Enterobacteriaceae et ensemble, ils agissent comme un puissant complexe insecticide qui tue un grand nombre d&#39;espèces d&#39;insectes. Ici, nous nous concentrons sur les techniques les plus courantes en considération pour la collecte de l&#39;EPN du sol. La deuxième partie de cette présentation se concentre sur la technique de l&#39;insecte-appâts, une approche largement utilisée pour l&#39;isolement de l&#39;EPN à partir d&#39;échantillons de sol, et la technique de piège Blanc modifié qui est utilisé pour la récupération de ces nématodes des insectes infectés. Ces méthodes et ces techniques sont les principales étapes pour la mise en place réussie de l&#39;EPN culteres dans le laboratoire et également former la base pour d&#39;autres essais biologiques qui considèrent que ces nématodes comme organismes modèles pour la recherche dans d&#39;autres disciplines biologiques. Les techniques présentées dans cette présentation correspondent à ceux exécutés et / ou conçu par les membres du SP Stock laboratoire ainsi que ceux décrits par différents auteurs.

Sol de prélèvement des échantillons Troisième stade juvéniles infectieux de l&#39;EPN sont les seules étapes de vie libre dans le cycle de vie de ces nématodes qui se trouvent dans le sol (figure 1). Par conséquent, la collecte des échantillons de sol est une méthode très efficace pour récupérer de ces nématodes. Figure 4 montre un profil de sol indiquant la profondeur à laquelle les échantillons doivent être prises. La préservation de l&#3...

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Soil Sampling and Isolation of Entomopathogenic Nematodes Steinernematidae, Heterorhabditidae

Les nématodes entomopathogènes sont des vers ronds terricoles qui parasitent une grande variété d&#39;insectes. Nous démontrons méthodes d&#39;échantillonnage utilisées pour l&#39;isolement de ces nématodes dans le sol au moyen de deux techniques: l&#39;appâtage des insectes et le piège blanc modifié, pour la récupération des nématodes à partir d&#39;échantillons de sol et de cadavres d&#39;insectes infectés, respectivement.

L&#39;échantillonnage du sol et isolement de nématodes entomopathogènes (Steinernematidae, Heterorhabditidae)

Entomopathogenic nematodes (a.k.a. EPN) represent a group of soil-inhabiting nematodes that parasitize a wide range of insects. These nematodes belong to ...

soil-sampling-isolation-entomopathogenic-nematodes-steinernematidae

Research

JoVE Journal

Environment

Soil Sampling and Isolation of Entomopathogenic Nematodes (Steinernematidae, Heterorhabditidae)

24.6K vues.  University of Arizona.  Les nématodes entomopathogènes sont des vers ronds terricoles qui parasitent une grande variété d'insectes. Nous démontrons méthodes d'échantillonnage utilisées pour l'isolement de ces nématodes dans le sol au moyen de deux techniques: l'appâtage des insectes et le piège blanc modifié, pour la récupération des nématodes à partir d'échantillons de sol et de cadavres d'insectes infectés, respectivement. 