Les thrips de fleurs de l’Ouest sont un ravageur majeur pour les cultures végétales, fruitières et ornementales qui se propageront dans le monde entier en raison du commerce mondial. Les efforts déployés pour lutter contre le ravageur avec les applications d’insecticides prévues n’ont pas permis de créer des problèmes avec le développement de la résistance aux insecticides et des éclosions connexes de ravageurs secondaires. Les techniques sont une méthode efficace pour quantifier avec précision les populations des thrips de fleurs de l’Ouest et d’autres espèces de thrips de fleurs dans l’expérience sur le terrain.
Les objectifs sont de déterminer l’efficacité des tactiques de gestion, y compris les tactiques culturelles telles que le paillis réfléchissant ultraviolet et les programmes de lutte biologique de conservation à l’aide de punaises pirates minuscules prédatrices. Les techniques sont essentielles dans le développement de nouvelles tactiques de gestion contre les thrips de fleurs de l’Ouest et d’autres espèces de thrips de fleurs ne sont même pas dans d’autres parties du monde. Les techniques développées en Floride peuvent être adaptées à d’autres régions géographiques.
Iris Strzyzewski et Edward Traczyk, étudiants diplômés de mon laboratoire, démontreront les procédures. Pour commencer, préparez des flacons d’échantillon de 50 millilitres. Placez une étiquette avec le paillis, kaolin, et le traitement de plante compagnon, le numéro de bloc, et la date d’échantillon à l’extérieur et à l’intérieur de chaque flacon.
Remplissez chaque flacon avec exactement 30 millilitres de 70% d’éthanol et placez les flacons dans un plateau. Emmenez les plateaux sur le site expérimental. Assignez au hasard les plants de tomates ou de poivrons à échantillonner dans chaque sous-exemple.
Entre le milieu de la matinée et le milieu de l’après-midi, obtenir les échantillons de la moitié supérieure de la plante. À l’aide d’un rasoir ou de ciseaux tranchants, retirez soigneusement la fleur de la plante et placez rapidement la fleur dans le flacon pré-étiqueté approprié. Recueillir 10 fleurs par échantillon.
Assurez-vous que chaque flacon est hermétiquement scellé, puis secouez chaque flacon pour vous assurer que les fleurs sont immergées dans l’éthanol. Retourner les plateaux avec des échantillons au laboratoire et placer les flacons dans un réfrigérateur pour s’assurer que les échantillons ne se détériorent pas avant le traitement. Obtenez l’échantillon du réfrigérateur, retirez le couvercle du flacon et retirez soigneusement avec une pipette tout excès d’alcool au-dessus des fleurs.
Reseal le flacon et secouer pour déloger les thrips et les insectes pirates minute dans les fleurs. Ouvrez le flacon et versez le contenu dans une boîte de Pétri. Rincer l’intérieur du flacon avec 70% d’alcool et verser le contenu dans la boîte de Pétri.
Assurez-vous que tous les thrips et les minuscules bogues pirates dans le flacon sont rincés dans la boîte de Petri. Disséquer chaque fleur avec des forceps et rincer avec 70% d’alcool pour s’assurer que tous les thrips et les punaises pirates minute ont été délogés. Retirer et jeter les parties de fleurs de la boîte de Pétri.
Transférer la boîte de Pétri à la forme végétale d’un stéréoscope avec grossissement 40X à 150X. Avec un objectif 40X, identifier une larve thrips qui est plus petite en taille et manque d’ailes. Identifier une femelle adulte qui est une plus grande taille et a un ovipositeur cellulaire.
Comptez dans chaque grille le nombre de mâles et de femelles adultes de chaque espèce de thrips de fleurs. Passez le grossissement à 150X et identifiez les espèces adultes de thrips de fleur en Floride basées sur les setae sur le pronotum, la tête et le deuxième segment d’antenne. Ensuite, placez les adultes et séparez les adultes de Frankliniella bispinosa des adultes de Frankliniella tritici et Frankliniella occidentalis par la robustesse supplémentaire des deux setae sur la marge dorsale antérieure du deuxième segment d’antenne.
Ensuite, séparez l’adulte Frankliniella occidentalis de ceux Frankliniella bispinosa et Frankliniella tritici par les longueurs presque égales des sètes angulaires angulaires et marginales antérieures sur le pronotum et par les plus longs 4ème setae postoculaires sur la tête. Pour identifier les minuscules punaises pirates dans les échantillons de Floride, comptez dans chaque grille le nombre d’orius insidiosus adultes et orius pumilio et le nombre d’espèces nymphales d’Orius. Identifiez l’insidiosus orius adulte par les segments basaux bruns d’antenne, par le femora qui ont des marques foncées, et par le qui est brun foncé.
Identifiez l’Orius nymphal par le manque d’ailes et de forme de larme. Ajoutez les nombres de chaque grille pour déterminer le nombre total de mâles et de femelles adultes de chaque espèce de thrips de fleur, le nombre de larves d’espèces de Frankliniella, le nombre de punaises pirates adultes minuscules de chaque espèce et le nombre de nymphes des insectes pirates minuscules dans l’échantillon. Dans ce protocole, l’effet principal du paillis réfléchissant ultraviolet était significatif pour le nombre réduit de frankliniella occidentalis femelles avec une p-valeur de moins de 0,01.
Bien que les principaux effets de Kaolin et des plantes d’accompagnement n’étaient pas significatifs pour la femelle Frankliniella occidentalis avec une valeur p supérieure à 0,05. Les effets du paillis sur les différentes dates d’échantillonnage ont montré que le paillis réfléchissant ultraviolet était efficace pour réduire le nombre de thrips floraux au début de la saison, mais il n’y avait aucune signification aux dates individuelles de l’échantillon au milieu ou à la fin de la saison. Kaolin n’a pas affecté de manière significative les nombres femelles de Frankliniella occidentalis tandis que les nombres masculins de Frankliniella occidentalis ont été sensiblement réduits.
L’interaction de la date d’échantillon de plante x de compagnon était significative pour frankliniella occidentalis mâle avec une p-valeur inférieure à 0.05 mais pas pour frankliniella occidentalis femelle avec une p-valeur supérieure à 0.05. Les plantes d’accompagnement ont réduit le nombre adulte de Frankliniella occidentalis aux dates d’échantillonnage de fin de saison, mais jamais aux dates d’échantillonnage précoces ou de mi-saison. De nombreux facteurs tels que l’heure de la journée et la position de la fleur sur la plante influencent les estimations de l’échantillon.
Par conséquent, il est d’une importance cruciale de savoir où, quand et comment échantillonner pour les thrips et les bogues pirates minute. Cette procédure a été utilisée pour développer un programme de lutte biologique de conservation utilisant des punaises pirates minuscules dans la fraise. D’autres chercheurs utilisent ces procédures pour évaluer l’efficacité de ces tactiques dans d’autres cultures et dans d’autres parties du monde.
Les techniques ont joué un rôle déterminant dans le développement de stratégies push-pull ou de tactiques culturelles telles que le paillis réfléchissant ultraviolet et Kaolin poussé les thrips des cultures à une plante compagnon où ils sont mangés par des insectes pirates minute.
