Bien qu’il y ait eu des tentatives pour tester des dispositifs implantables rétiniens à l’aide de méthodes ex vivo, un protocole complet et détaillé de l’obtention de l’échantillon à l’analyse des données a fait défaut. Avec ce travail, nous visons à combler cette lacune en fournissant aux chercheurs de différents horizons les outils nécessaires pour se lancer en toute confiance dans des expériences de stimulation neuronale rétinienne. L’imagerie calcique est une technique populaire pour étudier l’activité neuronale qui offre plusieurs avantages par rapport aux méthodes non optiques.

Il fournit une résolution cellulaire et peut cibler des types de cellules spécifiques. Il est particulièrement utile pour tester de nouveaux MEA car il permet de discriminer les cellules actives et inactives lors de la stimulation électrique. Nous introduisons une méthodologie robuste pour étudier les réponses des neurones rétiniens par l’utilisation de l’imagerie calcique.

Cette approche pourrait offrir un aperçu de l’excitation sélective des cellules, une étape cruciale dans le développement de meilleurs protocoles de stimulation, l’amélioration des performances des implants et l’avancement de l’état de l’art. Notre laboratoire se concentre sur le développement de techniques de microscopie avancées. Actuellement, nous travaillons à l’enregistrement de la dynamique du calcium en 3D afin de mieux comprendre l’interaction négative dans l’ensemble du tissu.