ניתוח מחזור תא חי של<em&gt; דרוזופילה</em&gt; רקמות באמצעות התמקדות Cytometer אקוסטית לכוונן וה-DNA ויולט Vybrant DyeCycle כתם

Summary

פרוטוקול לניתוח של מחזור תא חי דרוזופילה רקמות באמצעות התמקדות Cytometer אקוסטית לכוונן מתוארת. פרוטוקול זה בו זמנית מספק מידע על גודל תא יחסי, מספר תא, ה-DNA ותוכן סוג התא דרך שושלת התחקות או ביטוי רקמות ספציפי של חלבוני ניאון In vivo.

Abstract

cytometry הזרימה כבר בשימוש נרחב כדי להשיג מידע על תוכן ה-DNA באוכלוסייה של תאים, כדי להסיק אחוזים יחסית בשלבי מחזור תא שונים. טכניקה זו הורחבה בהצלחה לרקמות mitotic של מודל אורגניזם תסיסנית למחקרים גנטיים של ויסות מחזור תא בגוף חי. בשילוב עם ביטוי תא מסוג מסוים חלבון פלואורסצנטי ומניפולציות גנטיות, ניתן לקבל מידע מפורט על השפעות על מספר תאים, גודל תא ומחזור תא הדרגת in vivo. עם זאת שיטה לחיות תאים זו הסתמכה על השימוש בצבע התא חדיר Hoechst 33342-DNA intercalating, הגבלת משתמשי cytometers זרימה המצוידים בלייזר UV. יש לנו שונה בפרוטוקול זה כדי להשתמש בצבע חדש יותר לחיות תאי ה-DNA, ויולט DyeCycle Vybrant, תואם עם לייזר 405nm הסגול הנפוץ יותר. הפרוטוקול המובא כאן מאפשר ניתוח מחזור תא יעיל בשילוב עם תאסוג, גודלו היחסי של תאים ומידע מספר תא, במגוון רחב של רקמות תסיסנית. פרוטוקול זה מרחיב את הטכניקה שימושית במחזור תא הניתוח לרקמות תסיסנית למנתח benchtop קטן, Cytometer ההתמקדות אקוסטית לכוונן, אשר ניתן להפעיל ומתוחזק בקנה מידת מעבדה אחת.

Introduction

cytometry הזרימה יכול לשמש למדידות של כדאיות תא, גודל תא יחסי, תוכן ה-DNA וביטוי חלבון פלואורסצנטי באוכלוסיות תאים חיים. עקב השכפול של ה-DNA הגרעיני במהלך השלב-S, מידע על תוכן ה-DNA באוכלוסייה של תאים יכולים לשמש כדי להסיק אחוזים יחסית בשלבי מחזור תא שונים ^1-3. שיטה זו הפכה לאבן פינה של ניתוח מחזור תא במערכות מודל משמרים ליונקים.

זבוב פירות תסיסנית הפכה מערכת מודל מצוינת לניתוחים גנטיים בvivo של ויסות מחזור תא. הכלים הגנטיים הנרחבים הזמינים בזבובים לאפשר למניפולציות רקמה אלגנטית ספציפיות ומוסדרות באופן זמני של רגולטורים מחזור תא יחד עם בשושלת מבוססת חלבון פלואורסצנטי vivo התחקות ^4-6. cytometry הזרימה נעשה שימוש כדי ללמוד תוכן ה-DNA במספר סוגי תאים תסיסנית, כולל endoreplicating תאים ותאים בתרבית mitotic ^7,8. מקדמה חשובה במחקרי vivo מחזור התא נעשתה על ידי דה לה קרוז ואדגר, עם הפיתוח של פרוטוקול לניתוח תזרים cytometric של חיות דיפלואידים תסיסנית דיסקים דמותי ^9,10, פרוטוקול בו נעשה שימוש והותאם על ידי מעבדות רבות. טכניקה זו, כאשר בשילוב עם גנטי בשושלת vivo מעקב דרך ביטוי חלבון פלואורסצנטי מושרה וסימון רקמות ספציפי, מאפשרת לאדם לקבל מידע על השפעות המניפולציה גנטיות בזמן הכפלת תא כללי, גודל תא ולקבוע את עיתוי מדויק של שלבי מחזור תא in vivo ^{9 , 11.} אולם שיטה זו הסתמכה עד כה על השימוש בצבע תא ה-DNA intercalating החדיר Hoechst 33342 להכתים ולכמת-DNA בתאים חיים, שהגביל את המשתמשים לזרום cytometers עם לייזר UV מסוגל המרגש לצבוע Hoechst. אלה נמצאים בדרך כלל רק בממיינים (כלומר BD FACS VantaGE, BD FACSAria) או יקרות ססגוניות benchtop מערכות (כלומר BD LSR), תמיכה בדרך כלל המחייב ידי מתקני גרעין זרימה מוסדיים.

יש לנו שונה בפרוטוקול מבוסס Hoechst להשתמש לצבוע DNA לחיות תאים חדשים מInvitrogen, Vybrant DyeCycle יולט. צבע זה תואם לייזר ננומטר 405 סגול, נפוץ יותר בנתחים קטנים יותר המעבדתיים וזמין במנתח benchtop עצמאי הקטן, אקוסטית לכוונן התמקדות Cytometer. כאן אנו מציגים פרוטוקול מפורט לניתוח מחזור תא שיכול להיות בשילוב עם סוג התא, גודל תא, מספר תאים וניתוח שושלת במגוון רחב של רקמות דרוזופילה במהלך שלבים שונים של פיתוח באמצעות יולט DyeCycle ולכוונן. פרוטוקול זה מרחיב את מספר cytometers המתאים לניתוח כזה עם רקמות תסיסנית ומספק דוגמאות כיצד ניתן לשנות סוג של ניתוח מחזור תא חי זה לסוגי רקמות נוספים ושלבי התפתחות.

Protocol

1. טוס גידול בעלי

1. קרוס זבובים של גנוטיפים רצויים בבקבוקוני פלסטיק צרים עם 10 מיליליטר שמרים-גלוקוז בינוני ³ או מדיה עשירה בחלבון אחר על פי בחירתך. הכלים הנרחבים תסיסנית המהונדס הזמינים לביטוי ספציפי רקמות ושושלת התחקות עם בביטוי חלבון פלואורסצנטי vivo מתוארים בפירוט במקומות אחרים ^4,5. העבר את ההורים לבקבוקונים טריים מדי יום כדי לקבל סדרה של 24 אוספי צאצאי משאבים אנושים, או לבימוי מדויק יותר, לאסוף עובר על צלחות אגר ולהעביר זחל בקע זה עתה לבקבוקוני ¹⁰ כפי שתואר. על מנת להבטיח תנאים אחידים על פני ניסויים ולהימנע מצפיפות יתר, המספר הכולל של צאצאי F1 בבקבוקון אחד צריך להיות לא יותר מ 100. בהתאם לעיצוב הגנטי של הניסוי, לשמור בקבוקונים בחממה מתאימה עד השלב ההתפתחותי הרצוי.
2. איסוף חיות ניסוי: תצטרך זחלים בוגרים ^ב-3 הזחלinstar (L3) בכ 110-120 שעות של פיתוח ולניתוחי זחל או לבן prepupa (WPP) לאחסון זמני גלמי מדויקים. שינויים דרמטיים מחזור תא, כוללים מתג למצב שאינו שגשוג מתרחשים בנקודתי זמן שונות במהלך המטמורפוזה ^12,13. לכן היערכות נכונה של גולם (בשעה 1 של פיתוח) היא חיונית לנתונים בזמן מחזור תא לשעתק מטמורפוזה. WPP מתאים ל0 שעות לאחר היווצרות גולם (0 שעה APF) כפי שמוצג באיור 1, פנלי. לאסוף את WPP בצלחת פטרי 35 מ"מ בKimwipe מקופל רטוב עם 2.5 מ"ל של מים כדי לשמור על לחות מסוימת. גיל גולם עד שלב רצוי (שעות APF) בטמפרטורה מתאימה. שים לב שהפיתוח ממשיך 1.2 פעמים מהר יותר ב -29 מעלות צלזיוס, ופי 2.2 יותר לאט על 18 מעלות צלזיוס מאשר ב25 סטנדרטי ° C ^14.
3. בעלי חיים בחום הלם כדי להפעיל חום הלם flipase (HS-FLP) הנגרמת רקומבינציה לשושלת התחקות-שיבוטים במידת צורך ^9,11. לחום ההלם של זחל, לטבולבקבוקונים באמבט מים (שנקבע על 37 מעלות צלזיוס) ולהבטיח זחלים שקועים באופן מלא. לחום ההלם של גולם, לאטום את צלחת פטרי עם Parafilm ומלואו להטביע אותו למי האמבטיה. הקפד להסיר Parafilm לאחר חום ההלם, כדי לאפשר חילופי מספיק חמצן להישרדות של בעלי החיים. משך חום ההלם תלוי בפעילות של transgene flipase שימוש, ומספר השיבוטים הרצויים. אנו משתמשים באופן שגרתי 7-8 דקות לגרימה "Flipout" שושלת התחקות שיבוטים ¹⁵ בזחלים עם transgene HS-FLP על כרומוזום הראשון ו2-4 דקות להלם חום של גלמים ב35 מנות מ"מ, ואילו transgene HS-FLP על כרומוזום השני דורש 20 דקות. הלם חום להשיג מספרים דומים של שיבוטים.

קצב חלוקת תאים והעיתוי של נתיחה קובע גודל שיבוט בכל רקמות. בתנאים רגילים, אנו מוצאים כי שיבוטים מושרה באגף הזחל עם הלם 20 דקות בחום (באמצעות transgene HS-FLP על כרומוזום השני) וdissecשעה טד 48 מאוחר יותר, מכיל כ 20-30 שיבוטים מופרדים היטב עם גדלים הנעים בין 10 תאים לשיבוט לשני תאים לשיבוט, עם ממוצע סביב ארבעה תאים לכל שיבוט. לעומת זאת, 7 דקות בחום הלם עם אותו HS-FLP transgene של גלמים בצלחת פטרי ב0 שעות APF גזורים 36 שעות מאוחר יותר, תשואות מופרדות שיבוטים היטב (כ 15-25) החל מאחד עד ארבעה תאים עם ממוצע של 2.2 תאים לכל שיבוט. נתונים כאלה יכולים לשמש כדי לקבוע את זמן הכפלת התא הממוצע לרקמות תחת מחקר.

2. בתור

1. בעדינות להעביר את הזחלים / גלמים לצלחת לנתיחה זכוכית שקופה המכילה 1X PBS.
2. השימוש במיקרוסקופ אור והשפע לנתח, בעדינות לתפוס זחל על ידי הבטן עם Inox חד # 5 מלקחיים, לחתוך שלישי הקדמי עם מיקרו מספריים, ולהפוך את השליש הקדמי על ידי לחיצה על מפסק אזור הפה לכיוון האחורי תוך החזקת הזחל ציפורן יציבה (איור 1 א). מוציא בזהירות opaquשומן בגוף דואר וכל שנותרה בטן כדי להגדיל את הנראות של רקמות רצויות, כגון כנף, העין או מוח. לנתח את הרקמות הרצויות; נקיה הסרת כנפיים מקנה הנשימה וציפורן עם מלקחיים, עיניים מהפה קרסים, או מוח מעיניים (איור 1G).
3. ללנתח גולם; להשתמש מלקחיים לתפוס בעדינות גולם על ידי הקצה הקדמי של המקרה גלמי שבו יש בועת אוויר, כדי למנוע פגיעה בבתוך הגולם (איור 1 ג). מלקחיים או מיקרו מספריים ביד הנגדית יכולים לשמש כדי לעזור עמדת הגולם צף לאחיזה נכונה. לחתוך צורה נקיה דרך הקצה האחורי של הגולם עם מיקרו מספריים. לחתוך חתך זה צריך להיעשות בזווית קלה כלפי החלק הגבי של החיה, כדי לשחרר את הלחץ הפנימי מבלי לאלץ את שומן histolyzed לתוך הרקמות הרצויות בבית החזה והראש. לחתוך בזהירות לאורך החציון הגבי, הימנעות מהאגפים ומורכבים העין למוח הקדמי. להסיר בזהירות מגולם גלמימקרה על ידי אחיזה בקצה האחורי של האפידרמיס גלמי ומושכים אותו מהמקרה גלמי (1D איור). נקוב חור קטן בציפורן הקדמית למתחם העין למוח עם מלקחיים. שימוש בזכוכית פיפטה פסטר עם הנורה גומי, לשטוף בעדינות פתרון נתיחת PBS באמצעות הגולם גזור באופן חלקי כדי להסיר שומן histolyzed וכל רקמת מעי הנותרת. זה גם משמן את פיפטה הזכוכית עם שומנים וחלבונים, אשר מפחית את השכיחות של רקמות גזורים מלהידבק לחלק הפנימי של זכוכית פיפטה מאוחר יותר ביעילות.
4. כדי להשיג כנפיים גלמי, הציפורן עוטפת האגף והאגף עצמו חייב להיות עקר מהגולם (איור 1E). ניתן לעשות זאת על ידי לחיצה רצוף על הגולם על ידי הראש עם מלקחיים אחד, תוך שימוש במלקחיים או אחר לתפוס את הקצה האחורי ביותר של ציפורן הכנף ותלישה או תמרון המלקחיים תחת חסותו בסמוך לצירים לפני פירוקו מהצד הפגר (Figure 1E). לאחר מכן ניתן לחתוך את הכנף או קרועה בציר כדי להסיר אותו מהגוף ולשים בערימה הרחק מהפגרים והחומר אחר.
5. כדי להשיג את עיני גלמים או במוח, לשטוף את הגולם עד מתחם העין המוח הופך חלץ וחופשי מהגולם (איור 1F, 1H). באמצעות מלקחיים, בעדינות למשוך את העין גלמי מן המוח ולשמור את הרקמה הרצויה.
6. אל תיקח יותר מ -45 דקות כדי לנתח כל מדגם, כפי שהתוצאות הופכת להיות פחות מדויקות התאים הארוכים יותר הם עזבו ב PBS לאחר שפתח את בעלי החיים.

3. רקמת דיסוציאציה ומכתים DNA

1. באמצעות משומן פיפטה פסטר, להעביר את הרקמות גזורים בזהירות לתוך 0.5 מ"ל של פתרון כתם חי DNA בצינור קלקר 5 מ"ל (איור 1G). העברה כקטן PBS ככל האפשר (פחות מ 300 μl) לפתרון כתם ה-DNA, כדילול של טריפסין ימנע ניתוק רקמות.
2. דגירה צינורות עם שאקיng ב 23 ° C ב 500 סל"ד (אנו משתמשים Thermomixer אפנדורף).
3. דגירה במשך 70 דקות, ואז מערבולת בעדינות במשך 5 שניות במהירות בינונית (הגדרה של 5). vortexing המופרז יגרום שיבוש תא וצורה פסולות, ואילו תחת vortexing יוביל לגושי תאים. להחזיר את הדגימות לרעד ב23 ° C ב 500 סל"ד עבור 15 עד 20 דקות נוספות לפני vortexing עוד פעם אחת למשך 5 שניות במהירות 5.
4. למוח ועיני גלמים מבוגרים יותר מאשר 36hAPF, נדרש פרוטוקול שונה. לנתק את הרקמות בפתרון כתם DNA ב 23 ° C ב 500 סל"ד במשך 45-60 דקות ב1.7 צינורות microcentrifuge מ"ל. ואז אחד על אחד לנתק באופן ידני נתחים גדולים של רקמה על ידי העברה לצלחת לנתח יחד עם כ -50 פתרון כתם DNA μl ומהיר pipetting למעלה ולמטה עם צוירה ידני פיפטה פסטר ¹⁶ (בסך של כ 100-150 פתיחת מיקרומטר). העבר את כל דגימה ניתקה עם שאר 0.5 מ"ל של פתרון כתם דנ"א לתוך צינור 5 מ"ל. דגירה 45 נוספים-30 דקות (עד 90 דקות של זמן דגירה סך הכל) בשעה 23 ° C עם הרועד בסל"ד עד 500 גושים כבר אינן נראים לעין.
5. מלאות דגימות ניתק צריכים מעט מאוד נתחים גלויים גדולים של רקמה, אם כי שים לב שציפורן אגף גלמי השקוף acellular לא לנתק.

4. הזרימה cytometry

1. הפעל cytometer לכוונן ולפתוח את התוכנה לכוונן. צריכים להיות מופעלים לייזרי cytometer על דרך תפריט האתחול, ומבחן ביצועים יומי צריכה להתבצע עם חרוזים מעקב אחר ביצועים עם ציונים נאותים לפני כל יום רכישת נתונים. מפלס הנוזל צריך להיות לפחות חצי מלא ופסולת התרוקנה לפני מבחן ביצועים. ניתן למצוא את פרטים לכיול אתחול, נכון ותפעול של לכוונן במדריך למשתמש של לכוונן (http://tools.invitrogen.com/content/sfs/manuals/cms_082577.pdf)
2. עיצוב טה חדשmplate על ידי יצירת 4 חלקות נקודה ו -2 histograms בסביבת עבודה ריקה עם הפרמטרים שצוינו ב4.3, או לבחור תבנית תוכננה בעבר מתאימה לניסוי, ולציין את מספר הדגימות שנאספו. אנו מספקים תבניות לכוונן (קבצים ב. פורמט מקבל) לניתוח מחזור תא תסיסנית לחיות עם Vybrant DyeCycle יולט וGFP או ביטוי RFP בנספח ט
3. את התבניות שסופקו כוללות ארבע חלקות נקודה ושתי histograms עם הפרמטרים שצוינו באיור 2. ערוצים לאיתור כוללים: FSC וSSC - פיזור קדימה ופיזור בצד המציין גודל תא ומורכבות קרום, VL1 גובה (H), רוחב (W) ואזור () - עירור לייזר יולט המציין של מכתים יולט DyeCycle ה-DNA, וBL1 -- שטח כחול לייזר ערוץ 1, המציין GFP פלואורסצנטי. התבנית סיפק לניתוח RFP היא זהה לתבנית לניתוח ה-GFP, פרט לכך שהוא משתמש בערוץ הכחול לייזר 3 (BL3-), שהוא optimized לגילוי RFP.
4. חלקות נקודה בתבניות יש שערים למגבילים את הניתוח לאוכלוסיות הרצויות ולהגביל את הגושים ופסולת מתא הניתוח (איור 2). שער 1 אינו כולל פסולת וגושים המבוססים על SSC לעומת FSC (איור 2 א). שער 2 לא כולל תאים בלא כתם, תאים אפופטוטיים תת G1 וגושים סלולריים המבוססים על זיהוי של גופיות (VL1Area לעומת VL1Width) (איור 2). שער 3 הוא שער נגזר, המקיף את התאים בתוך שערי 1 ו -2, ומזהה את ה-GFP (או RFP) תאים שליליים לעומת תוכן ה-DNA המבוסס על VL1Height (איור 2 ג). שער 4 הוא שער נגזר, המקיף את התאים בתוך שערי 1 ו -2, ומזהה את ה-GFP (או RFP) תאים חיוביים לעומת תוכן ה-DNA (איור 2 ג). חלקות נקודה של גודל תא כפי שנמדד על ידי ה-GFP (או RFP) לעומת פיזור קדימה (FSC) משמשות ליצירת גייטס 5 ו -6 (איור 2 ד). תוכן ה-DNA עלילת היסטוגרמות שתיים על ציר ה-X ותא הספירה על Y-AXIים לאוכלוסיות שהוגדרו על ידי שער 3 ושער 4. (איור 2E ו2F) יכול להיכלל גם Histograms לגודל תא אם תרצה בכך (לא מוצג). להיסטוגרמות גודל תא, צריכה להיות מוגדרות לאוכלוסיות גייטס 5 ו -6, FSC זוממות על ספירה על ציר y ציר ה-X ו.
5. הגדרת הקלטה לעצור ב10,000 אירועי GFP חיוביים או RFP (זה יהיה 4 שער, השער הנגזר של שער 1, שער 2 והשער החיובי GFP או RFP). נע בין 6,000 - 10,000 אירועי GFP חיוביים היה באופן מסורתי במטרה לפרופילים באיכות פרסום ^9,11. אנו מציעים להשתמש במינימום של 15 כנפיים או עיניים, שהם כ 50% GFP החיובי כדי להשיג מספיק שער 4 אירועים ¹⁰ לפרופילים באיכות גבוהות. עם זאת, השגנו בהצלחה נתונים ברורים לניתוח מחזור תא ראשוני מכמה כמו 6 כנפיים (איור 3 א). הגדר את עוצמת הקול לרכישת 300 μl, זה יהיה להשתמש בכ 460 μl בסך הכל דגימת 0.5 מ"ל. טאble 2 מציג את הגדרות סף ומתח המתאימות הניתנות בתבנית לדוגמא באיור 2.
6. הפעל דגימות ברגישות רגילה או 100 μl / דקות ושיא רגישות. אנו מוצאים לא מעט הבדל בניתוח שלנו עם רמות הרגישות השונות. בשל התמקדות אקוסטית של תאים, cytometer זה יכול למדוד במדויק דגימות בספיקות גבוהות מאוד. שלא כמו cytometers המסורתי, אנו מוצאים שום פשרה נתונים על ידי רכישה במהירויות של עד 1,500 אירועים לשנייה. את קבצי הנתונים שנרשמו נוצרו על ידי התוכנה לכוונן נמצאים ב. פורמט FCS, שהוא תואם את רוב תוכנת מודלים מחזור התא.

5. ניתוח נתונים

1. Histograms של גודל תא ואת תוכן ה-DNA של ה-GFP (או RFP) אוכלוסיות חיוביות ושליליות ניתן להשוות. הם יכולים להיות מרובד באופן ידני על ידי העתקה והדבקה באמצעות תוכנת Adobe Photoshop. אם ציר y מוגדר אוטומטי, ציר ה-Y יהיה בקנה מידה עם hספירת ighest עבור כל דגימה. כיסה שני גרפים עם סט ציר Y לautoscale יוצר שכבה של היסטוגרמות עם הצירים שנקבעו למקסימום הגלובלי עבור כל אוכלוסייה. זה מאפשר השוואה ויזואלית קלה לשינויים יחסיים במחזור התא בהדרגה, גם כאשר מספרים סלולריים כולל של ה-GFP החיובי ושליליות אוכלוסיות GFP הם לא שווי ערך (לדוגמה באיור 3). לחלופין, מותאם אישית ניתן להגדיר ציר ה-Y (אופציה ידנית ציר y) לערך קבוע עבור היסטוגרמות. במקרה זה ניתן להשוות את המספרים הסלולריים ביחס לשתי אוכלוסיות. כלכוונן משתמש בנפח מוגדר של מדגם לריצה, כימות מוחלטת של תאים לכל סיבוב, בכל שער עם אחוז האוכלוסייה הכוללת, ניתן לקבל מטבלת הנתונים הסטטיסטיים שנוצרה באופן אוטומטי בזמן הריצה בסביבת העבודה (לדוגמה באיור 3F ). ניתן גם מגרשים ושכבתיים histograms דוט בקלות בתוכנה לכוונן, פשוט על ידי גרירה ושחרור של מדגמים שונים מהתפריט קובץ בדואר דגימה ימינה לרחוב הגרף הרצוי של מדגם פתוח להשוואה. עם זאת לכיסוי אוכלוסיות מתוך מדגם יחיד (כלומר ה-GFP חיובי ושלילי GFP באותו המדגם), אנו משתמשים בפוטושופ.
2. ניתן להשתמש בשתי שיטות כדי למצוא האחוזים יחסיים בשלבים שונים של מחזור התא לאוכלוסייה. שיטת הקירוב מסתמכת על אזורי הגדרת משתמש להתוות גבולות G1, S, G2 ופסגות G2>. שיטה זו מאפשרת הערכות מהירות וקלה של אחוזים בתוך האזורים המוגדרים על ידי משתמש (איור 3E). אנו קובעים אזורינו מבוססים על בדיקה ישירה עם תאי KC תסיסנית, שכותרתו לשלב-S באמצעות התאגדות Ethynyl-deoxyuridine (edu). השיטה השנייה משתמשת תוכנת מודלים צד שלישית להערכת חלוקת מחזור תא. אנחנו השתמשנו בתוכנת ModFitLT (ריטי בית תוכנה) למשל, באיור 3F.

תוצאות

תרשים 2 מציג תוצאות עבור נציג אגף מדגם הזחל, להביע GFP במחצית האחורית של הרקמה, תוך שימוש בתבנית ה-GFP סיפק. תוצאות דומות מתקבלות עם אותו סוג הרקמה ודפוס ביטוי למכרז באמצעות סיפק RFP התבנית (איור 3 א). את התבניות שסופקו והמתחים (טבלה 2) מתאימות לניתוח עיני זח...

Discussion

הפרוטוקול המתואר כאן מאפשר ניתוח של מחזור התא, גודל תא יחסי ומספר תא היחסי ברקמות חיים תסיסנית בשלבי התפתחות שונים. כאשר ניתוח זה הוא בשילוב עם ביטוי תא מסוג מסוים חלבון פלואורסצנטי או שושלת התחקות, ניתן לקבל מידע מפורט על תגובות הסלולר מחזור תא דיסקרטי או הפרעו?...

Materials

Name	Company	Catalog Number	Comments
12x75 mm Polystyrene Round-Bottom 5 ml Test Tube	BD Falcon	352058	5 ml tubes
Attune Acoustic Focusing Cytometer	Life Technologies/ Applied Biosystems	4445315	Blue / Violet configuration
Attune Cytometer Software (version 1.2.5)	Life Technologies/ Applied Biosystems	Free	PC only
Attune Performance Tracking Beads (5 x 106 beads/ ml)	Life Technologies/ Applied Biosystems	4449754	For daily performance test
Dumont #5 Inox forceps	Fine Science Tools	11251-20
Embryo dishes 30 mm x 12mm	Electron Microscopy Sciences	70543-30	Glass dissection dishes
Eppendorf Thermomixer	Eppendorf	022670051
Trypsin-EDTA Solution (10x)	Sigma	T4174
Vannas-Tübingen Spring Scissors	Fine Science Tools	15003-08	Straight 5mm Cutting Edge
Vybrant DyeCycle Violet Stain	Life Technologies/ Invitrogen	V35003
Table 1. Required reagents and instruments.
Live DNA Stain Solution (10 ml): 1 ml 10X Ca2+ Mg2+ free PBS (pH7.2) 9 ml 10X Trypsin-EDTA (Sigma) 5 μl Invitrogen Vybrant DyeCycle Violet (note that this is 0.25X the recommended concentration for mammalian cells. We find that higher concentrations are toxic to Drosophila cells.) 10X Ca2+ Mg2+ free PBS (pH7.2): 1.37M NaCl, 27 mM KCl, 100mM Na2HPO4 (dibasic), 20mM KH2PO4 (monobasic) adjusted to pH 7.2
FSC SSC BL1 VL1 Threshold (x1000) 100 10 10 10 Voltage (mV) 2950 4250 1800 1150 Table 2. Threshold and voltage setting for the analysis in Figure 2.