הקרינה ופליטת אור הדמיה של Ca subcellular<sup&gt; 2 +</sup&gt; בבני נוירונים בהיפוקמפוס

Summary

Intracellular Ca²⁺ remodeling in aging may contribute to excitotoxicity and neuron damage, processes mediated by Ca²⁺ overload. We aimed at investigating Ca²⁺ remodeling in the aging brain using fluorescence and bioluminescence imaging of cytosolic and mitochondrial Ca²⁺ in long-term cultures of rat hippocampal neurons, a model of neuronal aging.

Abstract

רגישות למוות של תאי עצב הקשורים לניוון של מערכת עצבים ואיסכמיה גדלה מאוד במוח בגיל אבל מנגנונים אחראים ידועים קשה. הפעלת יתר רעילה, תהליך האמין לתרום לניזק הנגרם על ידי תא עצב שני העלבונות, מתווכת על ידי הפעלה של קולטני גלוטמט שמקדם Ca ^{2 +} זרם ועומס Ca ^{2 +} המיטוכונדריה. שינוי מהותי בCa ^{2 +} הומאוסטזיס או שיפוץ תאיים של הומאוסטזיס Ca ^{2 +} תאיים עשוי להעדיף נזק נוירון בנוירונים ישנים. לחקירת שיפוץ Ca ^{2 +} בהזדקנות השתמשנו הדמיה תא חי בתרבויות ארוכת טווח של תאי עצב בהיפוקמפוס העכברוש שדומות בכמה היבטים בגילי נוירונים in vivo. לשם כך, תאים בהיפוקמפוס הם, במקום הראשון, התפזרו טרי מhippocampi החולדה נולדה חדשה ומצופה על coverslips מצופה, זכוכית Poli-D ליזין. אז תרבויות נשמרות בתקשורת מבוקרת במשך כמה ימים או כמה weeks לחקירת נוירונים צעירים וזקנים, בהתאמה. שנית, נוירונים בתרבית נטענים עם fura2 ונתונים למדידות של ריכוז Ca ^{2 +} cytosolic באמצעות הדמיה יחס הקרינה דיגיטלית. שלישית, נוירונים בתרבית הם transfected עם פלסמידים להביע טנדם של aequorin נמוכה הזיקה וGFP הממוקד למיטוכונדריה. לאחר 24 שעות, aequorin בתוך תאים מחדש עם coelenterazine ונוירונים חשופים להדמית פליטת אור לניטור של ריכוז Ca ^{2 +} המיטוכונדריה. הליך בן שלושת שלבים זה מאפשר הניטור של cytosolic ותגובות Ca ^{2 +} המיטוכונדריה לגירויים רלוונטיים כמו למשל אגוניסט קולטן גלוטמט NMDA ולהשוות בין תגובות אלה ואחרים מושפעות הזדקנות. הליך זה עשוי להניב תובנות חדשות באשר לאופן הזדקנות cytosolic השפעה ותגובות המיטוכונדריה Ca ^{2 +} לגירויים שנבחרו, כמו גם הבדיקות של תרופות שנבחרו נועדו למנוע תא עצבמוות במחלות הקשורות לגיל.

Introduction

הפעלת יתר רעילה היא אחד המנגנונים החשובים ביותר שתרמו לנזק עצבי ומוות של תאים בעלבונות נוירולוגיות כגון איסכמיה, ובחלק ממחלות ניווניות כגון מחלת אלצהיימר ^1. סוג זה של רעילויות בעיקר בתיווכו של משחק גלוטמט על Ca ^{2 +,} קולטני -permeable ionotropic NMDA (NMDAR) ^2. חשיפה של נוירונים בתרבית לגלוטמט יכולה להוביל להפעלת יתר רעילה ^3, מה שגורם לאפופטוזיס העצבי ^4. אנו ואחרים דיווחו בעבר כי פגיעות עצביות לאפופטוזיס מושרה NMDA יכולות להשתנות עם התפתחות במבחנה והזדקנות ^5-8.

זה מקובל שעלייה בריכוז Ca ללא cytosolic ^{2 +} _(CYT [Ca ^{2 +])} מובילה להפעלת תאים. עם זאת, אם עלייה זו היא גבוהה מדי ו / או ספג מספיק, זה יכול לגרום לתא מוות ^9. יתר על כן, זה כבר הציעהפעלת יתר רעילה שדורשת Ca ^{2 + 10} המיטוכונדריה ספיגה, מאז טיפול נוירונים עם נוירונים uncoupler המיטוכונדריה מוגנים מפני מוות של תאים הנגרם גלוטמט ^11. אם מיטוכונדריה תופסת הרבה יותר מדי Ca ^{2 +,} הפתיחה הנקבובית מעבר חדירות המיטוכונדריה עלולה להתרחש, שהובילה לשחרורו של ציטוכרום C וגורמים פרו-אפופטוטיים אחרים, ואפופטוזיס התרמה. לאחרונה הראה כי ספיגת Ca ^{2 +} המיטוכונדריה זה קשור באופן ישיר לרגישות תלוית גיל להפעלת יתר רעיל, על ידי מדידה ישירה Ca ^{2 +} ספיגה מושרה NMDA המיטוכונדריה בתאי עצב בהיפוקמפוס יחיד ^5, שיטה שבה מדווחת במאמר זה. ההיפוקמפוס, מעורב בתהליכים פיסיולוגיים כגון למידה, זיכרון ותהליכים קוגניטיביים אחרים ^12, הוא פגיע מאוד להזדקנות והפרעות ניווניות ^13. זה כבר הציע, לאחר מספר שבועות במבחנה, בתרביתנוירונים בהיפוקמפוס להראות מספר המאפיינים הטיפוסיים של נוירונים בגיל ^14. בהתאם לכך, תאי עצב בהיפוקמפוס תרבותיים ארוך טווח עשוי לספק מודל מקיף כדי לחקור Ca ^{2 +} מנגנוני תיווך של הפעלת יתר רעילה משופר בהזדקנות.

המטרה הכוללת של השיטה שהוצגה היא, אפוא, לחקור שינויים מהותיים בCa ^{2 +} הומאוסטזיס תאיים או שיפוץ Ca ^{2 +} במוח המזדקן כולל תגובות ההפרש Ca ^{2 +} שהושרו על ידי אגוניסטים הקולטן NMDA בנוירונים בהיפוקמפוס תרבותיים לטווח ארוך . השיטה כוללת תיאור מפורט של התרבות של תאי עצב בהיפוקמפוס חולדה והניטור של ^{2 +} ריכוזי Ca cytosolic והמיטוכונדריה על ידי הקרינה והדמיה פליטת אור בנוירונים בודדים, בהתאמה. הדמיה הקרינה של ^{2 +} Ca cytosolic בנוירונים בתרבית היא הליך סטנדרטי. עם זאת, שיטה זו היא פחות אמינה למשנההסלולרי Ca ^{2 +} מדידות כוללים Ca ^{2 +} המיטוכונדריה. סיבות לכך כוללות חוסר המיקוד הנכון של בדיקות סינתטיות וזיקה הולמת לCa ^{2 +} ריכוזים שעשויות לשנות במיטוכונדריה מרמת מיקרומטר הנמוכה אפילו לרמת מ"מ. השימוש בבדיקות ^{2 +} Ca מבוססים על חלבונים כלaequorin למשל, אפשרו מיקוד לאברונים subcellular ושימוש בנגזרים שונים Ca ^{2 +} זיקות באמצעות coelenterazines שונה או בדיקות שעברו מוטציה חסרת Ca ^{2 +} אתרי קישור ספציפי ^15. בדרך זו, הדמיה פליטת אור של תאים לבטא aequorin-ממוקד מיטוכונדריה עשויה לאפשר הניטור של Ca ^{2 +} ריכוזים של המיטוכונדריה בתאי עצב בודד. עם זאת, הליך זה עשוי לדרוש שימוש במצלמות ספירת פוטון או מצלמות CCD רגישות להדמיה פליטת אור ^16-18. שיטה זו עשויה להניב תוצאות רומן שצריך להיות מאושרת יותר establמודלים ished הזדקנות המוח כמו, למשל, פרוסות מוח מבעלי חיים ישנים.

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Protocol

הצהרת אתיקה: נהלים כרוכים בנושאים בעלי חיים טופלו בפרוטוקולים שאושרו על ידי מתקן דיור בעלי החיים האוניברסיטה ויאדוליד בהסכם עם האמנה האירופית 123 / מועצת אירופה והוראה 86/609 / EEC.

1. תרבות קצרה וארוך-טווח של עכברוש נוירונים בהיפוקמפוס

1. הכנת poly-D- ליזין מצופה, 12 coverslips מ"מ זכוכית.
   1. לעקר coverslips זכוכית קוטר 12 מ"מ באתנול לפחות 24 שעות. לאפשר להם להתייבש בתנאים סטריליים.
   2. להפיץ את coverslips על רצועת parafilm בצלחת פטרי. מכסה את פני השטח של כל coverslip עם 200 μl של 1 מ"ג / פולי-D ליזין מיליליטר. לאפשר טיפול O / N.
   3. למחרת לשטוף את coverslips עם מים מזוקקים פעמיים סטריליים כל 15 דקות למשך 90 דקות בתנאים סטריליים.
   4. מלא ארבעה-גם צלחת multidish עם 500 μl של Neurobasal תרבות בינוני בכל טוב. Neurobasal תרבות בינוני צריך להיות בתוספת10% בסרום שור עוברי, B27 2%, 1 מיקרוגרם / מיליליטר גנטמיצין וL- גלוטמין 2 מ"מ.
   5. מניחים את coverslips בצלחת multidish. לשמור אותם בCO 37 המעלות צלזיוס, 5% ₂ חממת humidified עד לשימוש.
2. בידוד של תאי עצב בהיפוקמפוס של חולדות בילוד.
   1. הכן 1.8 מיליליטר פתרון פפאין (שנרכש ישירות) בבקבוקון (20 μl / מיליליטר) בתנאים סטריליים: כדי להשיג ריכוז סופי של 20 μl / מ"ל ​​להוסיף כ -40 פפאין μl ב1.8 מיליליטר האנק של תוספת 0.6 BSA% (יש לחשב μl בהתאם לתנאי הספק). BSA 0.6% של האנק הוא מוכן על ידי ערבוב 85 מיליליטר של מדיום HBSS עם 15 מיליליטר של אלבומין 4% בסרום שור (BSA, שהוכן על פתרון 4 גרם של BSA ב100 מיליליטר HBSS). להכין אותו במכסת מנוע סטרילית.
   2. דגירה פפאין בהאנק של תוספת 0.6% BSA למשך 30 דקות ב 37 מעלות צלזיוס לפני השימוש. סנן את הפתרון באמצעות מסנן 0.22 מיקרומטר לפני השימוש.
   3. הכן בינוני F-12 של בשר חזיר על ידי הוספה של Dulbeccoהשתנה האבקה בינונית של הנשר (13.5 גר 'לכל ליטר) ב900 מיליליטר של מים מזוקקים פעמיים סטריליים. ואז להוסיף 6 HEPES גרם ו 336 מ"ג NaHCO ₃ ולהתאים את ה- pH ל 7.42 באמצעות נ 'NaOH 4 מוסיף מים סטריליים כדי להשיג פתרון 1 ליטר ולסנן אותו באמצעות polyethersulfone 0.20 מיקרומטר (PES) בקבוק מסנן עליון. לבצע תהליך זה במנדף סטרילי. לבסוף להרוות את הפתרון עם CO ₂ בתנאים סטריליים לפני השימוש. פתרונות חנות ב 4 מעלות צלזיוס ולהשתמש בם מצוננים.
   4. להרדים גורי חולדה יילוד (P0) על ידי עריפת ראש ולשטוף את הראש במדיום HBS סטרילי. פתח את הגולגולת בעזרת המספריים סטרילי. חלץ את המוח עם מרית ולשטוף אותה במהירות במדיום של בשר חזיר F-12.
   5. לעשות חתך אלכסוני בסיוע אזמל בכל חצי הכדור (איור 1), ולשאת אותו לצלחת פטרי המכילה בינוני של בשר חזיר F-12.
   6. קרומי המוח בטל בזהירות בעזרת מלקחיים לנתיחה ותחת זכוכית מגדלת.
   7. זהה את ההיפוקמפוס במיקום אופייני קעור מעל הקליפה באמצעות זכוכית מגדלת. לאחר מכן, להפריד את ההיפוקמפוס מהקליפה על ידי משיכת בזהירות מגבול אחד ולהסיר אותו מתפקידו באמצעות מספריים העין.
   8. להעביר את הרקמה בהיפוקמפוס לצלחת 4 היטב מלאה הבינוני של האנק סטרילי חסר Ca ^{2 +} וMg ^{2 +} בתוספת 0.6% BSA ולשטוף רקמות בהיפוקמפוס. מבלי להסיר את התקשורת לחתוך את הרקמה בחתיכות קטנות (סביב 2 x 2 מ"מ) תוך שימוש באותו המספריים העין.
   9. העבר את החתיכות בהיפוקמפוס לבקבוקון המכיל 1.8 מיליליטר פתרון פפאין מסונן מראש. אז דגירה אותם 37 המעלות צלזיוס עם רעד מדי פעם, עדין. 15 דקות מאוחר יותר, להוסיף 90 μl של DNase אני פתרון (50 מיקרוגרם / מיליליטר סופי) ודגירה במשך 15 דקות נוספות.
   10. העברת הרקמה לצינור צנטריפוגות 10 מ"ל ולשטוף את שברים עם טרי Neurobasal תרבות בינוני. להשיג השעיה תא על ידי העברת שברי רקמות באמצעות PIP פלסטיק 5 מיליליטרette.
   11. השעיה תא צנטריפוגה ב 160 XG במשך 5 דקות. הסר את supernatant בעזרת פיפטה פסטר סטרילי פלסטיק ולהשעות גלולה בזהירות עם 1 מיליליטר האוטומטי פיפטה ב 1 מיליליטר של Neurobasal תרבות בינוני.
   12. למדוד צפיפות תאים באמצעות תא ספירת נויבאואר. שים coverslip הזכוכית מעל תא נויבאואר. הוסף 10 μl של השעיה תא. ודא ההשעיה התא נכנסה לתא באופן אחיד ולא עשה כל בועות. לספור את מספר התאים מתחת למיקרוסקופ ולבצע חישובים מקביל להשיג ירידה מתאימה של 40-80 μl המכיל 30 x 10 ³ תאים. המספר הכולל של תאים יהיה תלוי במספר בעלי החיים המשמשים.
3. טווח קצר-ותרבות לטווח הארוך של תאי עצב בהיפוקמפוס החולדה.
   1. על צלחת ארבעה היטב multidish המכילה 500 μl של Neurobasal תרבות בינוני מוכן לפני והמשיך בחממה, הצלחת סביב 30 x 10 ³ תאים בירידה של כ -50 μl לכלגם של צלחת multidish מכילה אחד פולי-D ליזין מצופה, coverslip זכוכית קוטר 12 מ"מ.
   2. שמור על תאים בהיפוקמפוס עיקריים בCO ₂ באינקובטור humidified 37 מעלות צלזיוס, 5% במשך 2-5 ימים במבחנה (DIV, קצר-טווח, תרבויות צעירות) או> 15 DIV (לטווח ארוך, תרבויות גיל) לפני ניסויים מבלי לשנות את התרבות כְּלֵי תִקְשׁוֹרֶת.

2. דימות פלואורסצנטי של Cytosolic Ca ^{2 +} ריכוז

1. הכנה של פתרונות בדיקת הדמיה הקרינה.
   1. הכן פתרון חיצוני שנאגר מלוח HEPES (HBS) המכיל, במ"מ: 145 NaCl, KCl 5, MgCl ₂ 1, ₂ CaCl 1, גלוקוז 10, נתרן-HEPES 10 (pH 7.42).
   2. הכן פתרון -חינם חיצוני, Mg ^{2 +,} מלח HEPES שנאגר (HBS) המכיל, במ"מ: 146 NaCl, KCl 5, CaCl ₂ 1, גלוקוז 10 וHEPES 10 (pH 7.42).
   3. לפתור מלוח NMDA ב-חינם Mg ^{2 +,} HEPES שנאגר (HBS) בFINAריכוז l של 100 מיקרומטר ולהשלים אותו עם 10 מיקרומטר גליצין.
   4. הכן פתרון HBS המכיל KCl במקום NaCl על ידי פתרון (מ"מ): 145 KCl, MgCl ₂ 1, ₂ CaCl 1, גלוקוז 10 ו -10 HEPES (pH 7.42).
2. טעינה של תאים בהיפוקמפוס עם fura2 / AM בדיקה סידן ניאון.
   1. קח את תרבות התא המכילה coverslips את החממה ולשטוף אותם עם מדיום HBS ב RT על ידי העברת לארבעה-גם צלחת multidish חדשה המכילה 500 μl של HBS לכל טוב.
   2. דגירה תאים עם fura2 / AM 4 מיקרומטר (שהוכן באותו המדיום HBS) במשך 60 דקות ב RT (25 מעלות צלזיוס) במקום חשוך.
   3. לאחר 60 דקות, לשטוף coverslips עם מדיום HBS טרי.
3. תמונות הקלטת הקרינה של cytosolic [Ca ^{2 +]} בתאים בתרבית.
   1. מדליק את המנורה, מיקרוסקופ, מערכת זלוף, המצלמה הקרינה ומחשב.
   2. מניחים את coverslips בפלטפורמת thermostated ל12 coverslips מ"מ זכוכית הפתוח על הבמה של מיקרוסקופ ההפוך ובחר שדה מיקרוסקופי באמצעות מטרת 40X (שמן, NA: 1.3). Perfuse תאים ברציפות עם מדיום HBS מחומם מראש (37 מעלות צלזיוס) בהעדר או נוכחות של חומרי בדיקה. לשמור על הזרימה בשיעור של כ 5-10 מיליליטר / דקה.
      הערה: מערכת זלוף סלולארי לתאי חיים היא רכובה בפלטפורמת thermostated לcoverslips מ"מ זכוכית הפתוחה 12. 8-קווי מערכת זלוף מונע כובד מצויד בשסתום בקר משמש לינקבו את הפתרונות. משאבת ואקום אחראית להסרת כל מדיום עודף. פתרונות מחוממים באמצעות מערכת חימום בצינור.
   3. ללכוד תמונת רקע עם הצמצם סגור בשני אורכי גל העירור.
   4. Epi-להאיר תאים לסירוגין ב 340 ו 380 ננומטר. שיא אור הנפלט ב520 ננומטר כל שניות 5-10 עם מצלמה הקרינה, אשר מסוננת על ידי מראה dichroic פורע-2.
   5. כאשר תקופת ההקלטה נגמרה, לאחסן o הרצף המלאהתמונות ו נפלטות ב520 ננומטר במחשב לניתוח נוסף.
4. ניתוח של תמונות ניאון נרשמו.
   1. פתח את קובץ הניסוי. שימוש בתוכנת aquacosmos, לחץ על "יחס" ובחר את טווח היחס הרצוי. לחשב את פיקסל על ידי יחס פיקסל בתמונות וכתוצאה מכך על מנת לקבל רצף של תמונות יחס.
   2. לחסר רקע על ידי התאמת 'חיסול הרקע ". "חישוב התחל" לחץ.
   3. לחץ על "כל הפעמים רצף 'כפתור ולמחוק את האזורים העתיקים של עניין (ROIs). לניתוח כמותי של תאים בודדים, להקים אזורים החדשים של ריבית או ROIs המתאים לנוירונים בודדים. כל ערכי היחס הממוצע בכל פיקסל המתאים לכל החזר על השקעה וכל תמונה כדי להשיג הקלטה של ​​ערכי הקרינה יחס לROIs בודדת (תאים).
   4. גרף ההקלטות בודדות לייצא את ערכי הקרינה היחס המתאימים לכל החזר על השקעה לprogr גרפיםאני.
   5. הפוך את החישובים המקביל להערכת הגודל של העליות בfluorescences יחס בתגובה לכל גירוי באמצעות ניתוח נתונים מתאים וגרפי תוכנה.

3. פליטת אור הדמיה של מיטוכונדריאלי Ca ^{2 +} ריכוז

1. Transfection של תאי עצב בהיפוקמפוס תרבותיים עם פלסמיד mitGAmut.
   הערה: תאים transfected ראשון עם פלסמיד mitGAmut מכיל רצף ממוקד מיטוכונדריה וaequorin מוטציה חסרת אתר קישור Ca ^{2 +} התמזג החלבון פלואורסצנטי הירוק (GFP). בנייה זו מזהה עלייה גדולה בספיגת Ca ^{2 +} המיטוכונדריה ומאפשרת זיהוי של תאי transfected על ידי הקרינה GFP. פלסמיד פותח וסופק באדיבות על ידי פ 'Brûlet ועמיתים לעבודה ¹⁸ (CNRS, פריס).
   1. הכן Neurobasal TF, המכיל Neurobasal תרבות בינוני, חסר בסרום שור עוברי, B27, gentamicובL- גלוטמין 2 מ"מ.
   2. הכן 50 μl של Neurobasal TF בתוספת 2.5 מגיב transfection μl בבקבוקון (פתרון). הכן 50 μl של TF Neurobasal בתוספת 4 מיקרוגרם mitGAmut פלסמיד בבקבוקון (פתרון B). להוסיף בעדינות הפתרון B מעל א פתרון אפשר ערבוב במשך 20 דקות, בלי ללחוץ.
   3. העבר את coverslips המכיל תאי עצב בהיפוקמפוס לצלחות multidish חדשות המכילות 200 μl של TF Neurobasal הטרי.
   4. הוסף טיפה אחרת טיפה של פתרון B + 100 μl על כל coverslip. דגירה למשך 30 דקות. הסר את המדיום. שטפי פעם עם תאי TF Neurobasal הטרי. להחזיר את coverslips למקור Neurobasal התרבות בינוני.
   5. נוירונים תרבות ל24 שעות נוספות על 37 מעלות צלזיוס, 5% CO ₂ לאחר transfection כדי לאפשר ביטוי יעיל ומיקוד של החללית.
2. הכנה של פתרונות בדיקת הדמיה פליטת אור.
   1. הכן את פתרונות HBS מכילים NMDA 100 מיקרומטר או 145 מ"מ KCl כלעיל (שלב 2.1). הכן פתרון HBS המכיל 10 מ"מ Ca ^{2 +} תוספת digitonin 100 מיקרומטר.
3. הכינון מחדש של aequorin-ממוקד מיטוכונדריה עם n coelenterazine.
   1. coverslips העברה המכיל תאי עצב בהיפוקמפוס transfected לצלחת ארבעה-היטב המכילה 200 μl של HBS.
   2. הוסף 4 μl של n coelenterazine (200 מיקרומטר) 200 μl של HBS לריכוז סופי של 4 מיקרומטר ומערבבים בעדינות. דגירה עבור שעה 2 ב RT (25 מעלות צלזיוס) ובחושך.
4. תמונות הקלטת פליטת אור של המיטוכונדריה [Ca ^{2 +].}
   1. הפעל מיקרוסקופ, המנורה, מערכת זלוף, מצלמה פליטת אור והמחשב.
   2. העבר את coverslips מחדש לתא זלוף thermostated (37 מעלות צלזיוס) ותנקב ברציפות עם פתרון HBS מראש חימם בשיעור של 5-10 מיליליטר / דקה.
   3. באמצעות מטרת 40X (שמן, NA: 1.3), בחר שדה מיקרוסקופי המכיל תאים המבטאים אתpoaequorins כפי שמוצג על ידי פליטת הקרינה קשורה בביטוי של חלבון פלואורסצנטי ירוק (GFP) באמצעות מסנני FITC. שדה טיפוסי עשוי להכיל 1-2 תאי transfected. ללכוד את תמונת הקרינה GFP, באמצעות מצלמת CCD.
   4. כבה את אור מיקרוסקופ. הסר את התיבה המכיל dichroic ממוקמת בנתיב האור. לכבות את אור העירור ולסגור את התיבה הכהה לחושך מוחלט.
   5. Perfuse תאים ב5-10 מיליליטר / דקה עם מדיום HBS עם או בלי פתרונות בדיקה מחוממים מראש על 37 מעלות צלזיוס.
   6. צלם תמונות פליטת פוטונים בכל שנייה 10 עם מצלמה פוטון ספירה טיפלה עם מעבד תמונה.
   7. בסופו של כל ניסוי, permeabilize תאים עם 0.1 מ"מ digitonin ב 10 מ"מ CaCl ₂ בהרוורד כדי לשחרר את כל פליטת פוטונים שנותרה.
      הערה: פליטת פוטונים אלה יש להוסיף את כדי להעריך את פליטת פוטונים הכוללת, ערך הדרוש לכיול בCa ^{2 +} ריכוזים <./ Li>
   8. תמונות פליטת אור חנות במחשב עם תמונת הקרינה GFP קשורה נתפסו לפני ההדמיה ספירת פוטון.
5. ניתוח של תמונות פליטת אור המשקפות המיטוכונדריה [Ca ^{2 +].}
   1. לכמת את פליטת פוטונים באמצעות תוכנה ספציפית. ניתן להמיר את פליטת פוטונים לCa החופשי המיטוכונדריה ^{2 +} ריכוז _(MIT [Ca ^{2 +])} באמצעות האלגוריתם שתואר על ידי et al Brini. ^15.
   2. פתח את הניסוי ותמונת הקרינה GFP. אזורי בחירה של עניין (ROIs) בעזרת תוכנה ספציפית על ידי ציור הצורה של תאי transfected על פי תמונות הקרינה שנתפסו בתחילת הניסוי.
   3. הדבק את אותו ROIs על כל תמונה. פליטה פוטוניים הכוללת בכל החזר על השקעה מחושבת עם תוכנה ספציפית כדי להשיג את ערך פליטת הארה (L) לכל תא בכל נקודה בזמן.
   4. הוסף את כל emiss פוטונייםיונים בתמונות פליטת אור, כוללים אלה המתקבלים לאחר digitonin permeabilization, באמצעות התוכנה הספציפית, כדי לקבל תמונת פליטת אור המכילה את כל פליטת פוטונים.
   5. ערכי יצוא של פליטת פוטונים לכל אזור של עניין לתוכנה ספציפית לחישובים. כדי לעשות זאת, לחץ על "גרף" על מנת לחשב את ערכי פליטת אור לכל החזר על השקעה בכל פעם. בחירה 'שווי כולל' ו 'להשתמש ROI הנוכחי לכל התמונות. 'המחשבון' לחץ. שמור את 'txt.file' ונתוני יצוא לגיליון עבודה. לכל החזר על השקעה, [Ca ^{2 +]} _mit מחושב באמצעות האלגוריתם הבא:
      
      [Ca ^{2 +]} (M) = [R + (R · K _TR) - 1] / [K _R - (R · K _R)];
      
      אֵיפֹה,
      R = [L / (λ L _{סך הכל)]} ^{1 / n}
      L הוא הארה הנפלטת בעת מדידה בכל אזור של עניין.
      _סך L הואהארה הכוללת שנותרה לאחר תוספת של הספירה הנוכחית ברקמה באותו הזמן בעת ​​המדידה עבור כל אזור של עניין. λ, K _TR, K _R וn הם קבועים שערכיה תלויים בשילוב של aequorin (סוג בר או מוטציה) וcoelenterazin משמשים (סוג בר או סוג n), כמו גם את הקלטת הטמפרטורה ^16. לשילוב משמש כאן (מוטציה AEQ וn coelenterzine), על 37 מעלות צלזיוס, השתמשנו בערכים הבאים: K _R = 8.47 x 10 ^7, K _TR = 165.6 x 10 ^3, n = 1,204 λ = 0138 ו.
6. הפוך את החישובים המקביל להערכת הגודל של העליות בפליטת אור בתגובה לכל גירוי באמצעות ניתוח נתונים מתאים וגרפי תוכנה.

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

תוצאות

כאן אנו מתארים שיטה פשוטה להעריך שיפוץ Ca ^{2 +} ואת ההשפעות של NMDA בcytosolic והמיטוכונדריה [Ca ^{2 +]} בתאי עצב בגיל. איור 1 מציג את סכמטי של הליך הבידוד וculturing תאי עצב בהיפוקמפוס של חולדות בילוד. לפני שמתחיל, אנחנו צריכים להכין coverslips סטרילי, פולי-D ליזין המצופה, ז?...

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Discussion

שיפוץ של Ca ^{2 +} הומאוסטזיס תאיים במוח המזדקן כבר קשור לאובדן הקוגניטיבי, הגדיל את הרגישות לנזק איסכמי, הפעלת יתר רעילה וניוון של מערכת עצבים. כדי לחקור את ההשערה הזאת במבחנה, נהלי ההדמיה Ca ^{2 +} זמינים. למרבה הצער, תרבויות קיימא של נוירונים בהיפוקמפוס ישנים...

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Materials

Name	Company	Catalog Number	Comments
Neurobasal Culture Medium	Gibco	21103-049
HBSS medium	Gibco	14170-088
Ham's F-12 medium	Gibco	31330-038
DNase I (from bovine pancreas)	Sigma	D5025-15KU
Fetal Bobine Serum	Lonza	DE14-801E
B27	Gibco	17504-044
Gentamicin	Gibco	15750
L-glutamine	Gibco	25030-032
12 mm glass coverslips	Labolan	0111520/20012
Papain	Worthington	LS003127
4-well multidish plaques	Nunc	176740
Petry dishes	JD Catalan s.l.	2120044T
Sterile pipettes	Fisher Scientific	431030
Fura2-AM	Life Technologies	F1201
Lipofectamine2000	Invitrogen	11668-027
Coelenterazine n	Biotium	BT-10115-2250 uG
Digitonin	Sigma	D5628
NMDA	Sigma	M3262
Glycine	Sigma	50046
Zeiss Axiovert S100 TV microscope	Carl Zeiss Inc.
Xcite ilumination system	EXFO
ORCA ER fluorescence camera	Hamamatsu
VIM photon counting CCD camera	Hamamatsu
VC-8 valve controller	Warner Instruments
SH-27B heating system	Warner Instruments
Aquacosmos Software	Hamamatsu Photonics