JoVE Logo

Sign In

A subscription to JoVE is required to view this content. Sign in or start your free trial.

In This Article

  • Summary
  • Abstract
  • Introduction
  • Protocol
  • תוצאות
  • Discussion
  • Disclosures
  • Acknowledgements
  • Materials
  • References
  • Reprints and Permissions

Summary

Nucleic acids are common analytes for assessing biological systems; however, bias from enzymatic manipulation can cause concern. Here a method is described for label-free detection of nucleic acids using polyaniline. This sensitive, cost-effective sensor technology can distinguish single nucleotide differences between molecules.

Abstract

Detection of nucleic acids is at the center of diagnostic technologies used in research and the clinic. Standard approaches used in these technologies rely on enzymatic modification that can introduce bias and artifacts. A critical element of next generation detection platforms will be direct molecular sensing, thereby avoiding a need for amplification or labels. Advanced nanomaterials may provide the suitable chemical modalities to realize label-free sensors. Conjugated polymers are ideal for biological sensing, possessing properties compatible with biomolecules and exhibit high sensitivity to localized environmental changes. In this article, a method is presented for detecting nucleic acids using the electroconductive polymer polyaniline. Simple DNA "probe" oligonucleotides complementary to target nucleic acids are attached electrostatically to the polymer, creating a sensor system that can differentiate single nucleotide differences in target molecules. Outside the specific and unbiased nature of this technology, it is highly cost effective.

Introduction

Conjugated polymers provide many options for molecular sensors. This includes fluorescence, electronic, and colorimetric responses1. There have been many efforts to incorporate conjugated polymers in nucleic acid sensors. However, most systems require secondary detection, limiting sensing options2. Recently, we reported a conjugated polymer-based sensor platform built on polyaniline (PANI) that exploits properties of this polymer, creating a label-free system3. PANI is an extensively conjugated electro-active polymer with properties such as fluorescence and resistance that are suitable for measuring biological systems4. The excitons within the structure are not localized leading to mobility of the positive charge between monomeric subunits. This provides a flexible scaffold of positive charges that can interact with the negatively charged backbone of DNA5,6. Importantly, electrostatically attached DNA is orientated such that nitrogenous bases can participate in base pairing. Association with DNA alters the electronic properties of PANI, an effect that can be enhanced by UV irradiation (Figure 1)3. Using this system, oligonucleotides complementary to target nucleic acids can be immobilized on PANI. Multiple studies have demonstrated that upon hybridization electrostatically adsorbed oligonucleotides dissociate from PANI or other cationic matrices due to conformational changes caused by the switch to a double-stranded DNA structure3,5,7.

In a sensor system where probe attachment modulates conjugated polymer properties, hybridization events can be transduced without labels or enzymatic modification of probes or target nucleic acids. Conjugated polymers offer great flexibility in detection methods, one of which is fluorescence. Through monitoring PANI fluorescence, concentrations of target nucleic acids as low as 10-11 M (10 pM) can be detected3. Detection is rapid, occurring within 15 minutes of hybridization, and specific where a single mismatch in a target molecule can be differentiated3.

Fabrication of PANI-sensors is straightforward. High molecular weight PANI can be generated that is well-dispersed in water using standard synthesis procedures involving aniline monomer, surfactant, and controlled addition of an oxidant. Yield can be very high and unreacted oxidant removed by washing with water, ensuring no further PANI growth. PANI-probe association occurs spontaneously upon mixture, and complex formation is enhanced by mild UV exposure. Hybridization can be carried out immediately, and the changes in PANI fluorescence assayed following a short incubation. The simplicity of this technology makes it highly accessible to many laboratories.

Protocol

סינתזה 1. processable פאני

  1. ממיסים אנילין (1 מ"ל, 11 מילימול) לחלוטין ב -60 מ"ל של כלורופורם בתוך 250 מ"ל בבקבוק מסביב לתחתית. מערבבים בסל"ד 600 במשך 5 דקות ומצננים עד 0-5 מעלות צלזיוס עם קרח. זה בדרך כלל לוקח 15-20 דקות (איור 2 א).
  2. להוסיף sulphonate בנזן dodecyl נתרן (NaDBS) (7.44 גר ', 21 מילימול) לפתרון אנילין בבקבוק עגול תחתית תוך ערבוב ב 600 סל"ד.
  3. ממסי אמוניום persulphate (APS) (3.072 גרם, 13.5 mmol) ב 20 מ"ל מים ולהוסיף את כל זה טיפה חכמה יותר מ -30 דקות כדי למנוע התחממות יתר התגובה.
  4. לבצע את התגובה על C 0-5 מעלות למשך 24 שעות, ולאפשר לו להגיע לטמפרטורת החדר למשך 24 שעות.
  5. שים את תערובת התגובה בתחילה להלבין חלבי לאחר 15 דקות, ולאחר מכן חום כהה לאחר 2 שעות, ולבסוף לירוק כהה לאחר 24 שעות (איור 2 ב-F).
  6. סנן הפתרון פאני-NaDBS עם משפך בוכנר. מערבבים עם כלורופורם 80 מ"ל ו -120 מ"ל מים כמומשפך eparation (איור 2G).
  7. דגירת הפתרון למשך 24 שעות בטמפרטורת חדר לאסוף את פאני הירוק כהה מן ארובת ההפרדה, עוזב NaDBS ו APS unreacted ב supernatant המימי.

ערבוב פאני-חללית 2. ו- UV הקרנה

  1. לדלל פתרון פאני 10x עם כלורופורם-מים (1: 3 v / v) ומערבבים 200 μl של פאני מדולל 6.4 μmol של oligonucleotides DNA בדיקה על ידי נדנדה עדין במשך 15 דקות בתוך שפופרת microfuge.
  2. מקרינים הפתרון פאני-DNA עם 1,200 μJ / 2 ס"מ של UV בתוך crosslinker 2 דקות. זה קריטי, כי החשיפה ל- UV מוגבלת לסכום המצוין. חשיפה רבה UV פוגעת שינוי קרינת פאני, כנראה עקב פאני cross-linking של קוולנטיים ו- DNA.
  3. מתחמי גלולה ידי צנטריפוגה ב 17,000 XG במשך 6 דקות, ולשטוף עם בופר פוספט (PBS). גלול שוב, מחדש להשעות ב PBS.

3. Hybridization של חללית פאני

  1. הוסף 8 μl של 100 מיקרומטר oligonucleotides DNA משלימים או למקד חומצות גרעין 200 μl של מתחמי פאני-בדיקה.
  2. בצע הכלאה ידי נדנדת תערובת פתרון במשך 15 דקות ב 40 מעלות צלזיוס.
  3. גלולה מתחמי פאני על ידי צנטריפוגה ב 17,000 XG במשך 6 דקות. לשטוף עם PBS מחדש להשעות במים.

4. פליטה יציבה מדידת קרינת המדינה

  1. להוסיף פאני מטיפולים שונים לתוך microplate 96 באר ולמדוד קרינת פליטה בטווח 270-850 ננומטר ידי עירור ב 250 ננומטר. שיא פליטה עבור פאני יש לשים לב סביב 500 ננומטר.

5. מדידה מיקרוסקופ פלואורסצנטי של הכלאה דופלקס

  1. זרוק מעיל פאני על coverslip בורוסיליקט זכוכית ויבש ב 40 מעלות צלזיוס למשך 48 שעות.
  2. להוסיף בדיקה (8 μl של 100 מיקרומטר) על סרט פאני יבשים מכשיר אותו עם האור האולטרה סגול (1,200 μJ / 2 ס"מ ) למשך 2 דקות.
  3. שטפו את הסרט פאני-בדיקה עם PBS ויבש ב 40 מעלות צלזיוס למשך 48 שעות.
  4. בצע הכלאה במשך 15 דקות על ידי הוספת חומצות גרעין יעד. זה יכול להיות דגימה ביולוגית או oligonucleotide ליעד האיזון (8 μl של 100 מיקרומטר). עקוב עם לשטוף PBS.
  5. להשיג את התמונות פלורסנט בהגדלה 40X, עם מסנן מסירה ארוכה 500 ננומטר.

תוצאות

איור 2 א לוכדת את התקנת התגובה בתחילת תהליך פילמור, כלומר, לפני כן APS. היווצרות micelle הוא השלב הראשוני התגובה תהליך-פאני סינתזה המתרחשת בבית הממשק micellar. איור 2B מראה פתרון חלבי לאחר 5 דקות. 30 דקות לאחר APS מתווסף התגובה פונה בצבע ח...

Discussion

חיישן מבוסס פאני של חומצות גרעין דורש solubilization של הפולימר במים כדי אינטראקציה עם DNA ו- RNA. פיזור פאני במים מושג באמצעות פעילי שטח, ויצר מיצלות כפי שדווח בעבר 8. בנוסף NaDBS משמש כאן פעילי שטח anionic אחרים כמו אסתר dodecyl של חומצה 4-sulfophthalic, פעילי שטח nonionic כמו ethoxylate פנול nonyl, א?...

Disclosures

The work was supported by the University of Southern Mississippi College of Science and Technology and Mississippi College of Science and technology and Mississippi INBRE program (Award Number P204M103476 from the National Institute of general Medical Science).

Acknowledgements

The authors have nothing to disclose.

Materials

NameCompanyCatalog NumberComments
Aniline Fisher Scientific A7401-500 ACS, liquid, refrigerated
Ammonium peroxydisulfateFisher Scientific A682-500 ACS, crystalline
Sodium dodecylbenzene sulfonatePfaltz & Bauer D56340 95% solid
ChloroformFisher Scientific MCX 10601 Liquid
DNA primersMWG operonn/acustom DNA sequence ~20 bps
Microplate USA Scientific 1402-9800 96 well, polypropylene as it is unreactive to chloroform
Microplate Adhesive FilmUSA Scientific 2920-0000 Reduces well-to-well contamination, sample spillage and evaporation
Microscope Cover GlassFisher Scientific 12-544-D PANI coated on UV irradiated cover glass
UV crosslinker UVP HL-2000 Energy: X100 μJ/cm2; Time: 2 min
Hybridization OvenVWR01014705 TTemperature: 400 °C; with rocking for 15 min
Glass Apparatus Fisher ScientificThree necked round bottom flask for reaction; dropping funnel, stoppers, condenser, separating funnel
MicroscopeLeica Microsystems Leica IMC S80Magnification 20X; Pseudo color 536 nm; Exposure 86 msec; Gain 1.0x; Gamma 1.6
Microplate ReaderMolecular Devices 89429-536

References

  1. Hahm, J. I. Functional polymers in protein detection platforms: optical, electrochemical, electrical, mass-sensitive, and magnetic biosensors. Sensors (Basel). 11 (3), 3327-3355 (2011).
  2. Rahman, M. M., Li, X. B., Lopa, N. S., Ahn, S. J., Lee, J. J. Electrochemical DNA hybridization sensors based on conducting polymers. Sensors (Basel). 15 (2), 3801-3829 (2015).
  3. Sengupta, P. P., et al. Utilizing Intrinsic Properties of Polyaniline to Detect Nucleic Acid Hybridization through UV-Enhanced Electrostatic Interaction. Biomacromolecules. 16 (10), 3217-3225 (2015).
  4. Song, E., Choi, J. -. W. Conducting Polyaniline Nanowire and Its Applications in Chemiresistive Sensing. Nanomaterials. 3 (3), 498 (2013).
  5. Liu, S., et al. Polyaniline nanofibres for fluorescent nucleic acid detection. Nanoscale. 3 (3), 967-969 (2011).
  6. Oliveira Brett, A. M., Chiorcea, A. -. M. Atomic Force Microscopy of DNA Immobilized onto a Highly Oriented Pyrolytic Graphite Electrode Surface. Langmuir. 19 (9), 3830-3839 (2003).
  7. Zhang, Y., et al. Poly(m-Phenylenediamine) Nanospheres and Nanorods: Selective Synthesis and Their Application for Multiplex Nucleic Acid Detection. PLoS ONE. 6 (6), e20569 (2011).
  8. Namgoong, H., Woo, D. J., Lee, S. -. H. Micro-chemical structure of polyaniline synthesized by self-stabilized dispersion polymerization. Macromol Res. 15 (7), 633-639 (2007).
  9. John, A., Palaniappan, S., Djurado, D., Pron, A. One-step preparation of solution processable conducting polyaniline by inverted emulsion polymerization using didecyl ester of 4-sulfophthalic acid as multifunctional dopant. J Polym Sci A: Polym Chem. 46 (3), 1051-1057 (2008).
  10. El-Dib, F. I., Sayed, W. M., Ahmed, S. M., Elkodary, M. Synthesis of polyaniline nanostructures in micellar solutions. J Appl Polym Sci. 124 (4), 3200-3207 (2012).
  11. Tsotcheva, D., Tsanov, T., Terlemezyan, L., Vassilev, S. Structural Investigations of Polyaniline Prepared in the Presence of Dodecylbenzenesulfonic Acid. J Therm Anal Calorim. 63 (1), 133-141 (2001).
  12. Jia, W., et al. Polyaniline-DBSA/organophilic clay nanocomposites: synthesis and characterization. Synthetic Met. 128 (1), 115-120 (2002).
  13. Kim, B. -. J., Oh, S. -. G., Han, M. -. G., Im, S. -. S. Preparation of Polyaniline Nanoparticles in Micellar Solutions as Polymerization Medium. Langmuir. 16 (14), 5841-5845 (2000).
  14. Scales, C. W., et al. Corona-Stabilized Interpolyelectrolyte Complexes of siRNA with Nonimmunogenic, Hydrophilic/Cationic Block Copolymers Prepared by Aqueous RAFT Polymerization†. Macromolecules. 39 (20), 6871-6881 (2006).
  15. Kadashchuk, A., et al. Localized trions in conjugated polymers. Phys Rev B. 76 (23), 235205 (2007).
  16. Chang, H., Yuan, Y., Shi, N., Guan, Y. Electrochemical DNA Biosensor Based on Conducting Polyaniline nanotube Array. Anal. Chem. 79, 5111-5115 (2007).
  17. Zhu, N., Chang, Z., He, P., Fang, Y. Electrochemically fabricated polyaniline nanowire-modified electrode for voltammetric detection of DNA hybridization. Eletrochim. Acta. 51, 3758-3762 (2006).

Reprints and Permissions

Request permission to reuse the text or figures of this JoVE article

Request Permission

Explore More Articles

117electroconductiveUVpolyaniline

This article has been published

Video Coming Soon

JoVE Logo

Privacy

Terms of Use

Policies

Research

Education

ABOUT JoVE

Copyright © 2025 MyJoVE Corporation. All rights reserved