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In diesem Artikel

  • Zusammenfassung
  • Zusammenfassung
  • Einleitung
  • Protokoll
  • Ergebnisse
  • Diskussion
  • Offenlegungen
  • Danksagungen
  • Materialien
  • Referenzen
  • Nachdrucke und Genehmigungen

Zusammenfassung

Nucleic acids are common analytes for assessing biological systems; however, bias from enzymatic manipulation can cause concern. Here a method is described for label-free detection of nucleic acids using polyaniline. This sensitive, cost-effective sensor technology can distinguish single nucleotide differences between molecules.

Zusammenfassung

Detection of nucleic acids is at the center of diagnostic technologies used in research and the clinic. Standard approaches used in these technologies rely on enzymatic modification that can introduce bias and artifacts. A critical element of next generation detection platforms will be direct molecular sensing, thereby avoiding a need for amplification or labels. Advanced nanomaterials may provide the suitable chemical modalities to realize label-free sensors. Conjugated polymers are ideal for biological sensing, possessing properties compatible with biomolecules and exhibit high sensitivity to localized environmental changes. In this article, a method is presented for detecting nucleic acids using the electroconductive polymer polyaniline. Simple DNA "probe" oligonucleotides complementary to target nucleic acids are attached electrostatically to the polymer, creating a sensor system that can differentiate single nucleotide differences in target molecules. Outside the specific and unbiased nature of this technology, it is highly cost effective.

Einleitung

Conjugated polymers provide many options for molecular sensors. This includes fluorescence, electronic, and colorimetric responses1. There have been many efforts to incorporate conjugated polymers in nucleic acid sensors. However, most systems require secondary detection, limiting sensing options2. Recently, we reported a conjugated polymer-based sensor platform built on polyaniline (PANI) that exploits properties of this polymer, creating a label-free system3. PANI is an extensively conjugated electro-active polymer with properties such as fluorescence and resistance that are suitable for measuring biological systems4. The excitons within the structure are not localized leading to mobility of the positive charge between monomeric subunits. This provides a flexible scaffold of positive charges that can interact with the negatively charged backbone of DNA5,6. Importantly, electrostatically attached DNA is orientated such that nitrogenous bases can participate in base pairing. Association with DNA alters the electronic properties of PANI, an effect that can be enhanced by UV irradiation (Figure 1)3. Using this system, oligonucleotides complementary to target nucleic acids can be immobilized on PANI. Multiple studies have demonstrated that upon hybridization electrostatically adsorbed oligonucleotides dissociate from PANI or other cationic matrices due to conformational changes caused by the switch to a double-stranded DNA structure3,5,7.

In a sensor system where probe attachment modulates conjugated polymer properties, hybridization events can be transduced without labels or enzymatic modification of probes or target nucleic acids. Conjugated polymers offer great flexibility in detection methods, one of which is fluorescence. Through monitoring PANI fluorescence, concentrations of target nucleic acids as low as 10-11 M (10 pM) can be detected3. Detection is rapid, occurring within 15 minutes of hybridization, and specific where a single mismatch in a target molecule can be differentiated3.

Fabrication of PANI-sensors is straightforward. High molecular weight PANI can be generated that is well-dispersed in water using standard synthesis procedures involving aniline monomer, surfactant, and controlled addition of an oxidant. Yield can be very high and unreacted oxidant removed by washing with water, ensuring no further PANI growth. PANI-probe association occurs spontaneously upon mixture, and complex formation is enhanced by mild UV exposure. Hybridization can be carried out immediately, and the changes in PANI fluorescence assayed following a short incubation. The simplicity of this technology makes it highly accessible to many laboratories.

Protokoll

1. verarbeitbaren PANI Synthese

  1. Auflösen Anilin (1 ml, 11 mmol) vollständig in 60 ml Chloroform in einem 250 ml Rundkolben. Rühre bei 600 Umdrehungen pro Minute für 5 Minuten und Abkühlen auf 0-5 ° C mit Eis. Dies dauert in der Regel 15 bis 20 min (2A).
  2. Hinzufügen Natriumdodecylbenzolsulfonat (NaDBS) (7,44 g, 21 mmol) zu der Anilin-Lösung in einem Rundkolben während bei 600 rpm gerührt wurde.
  3. Man löst Ammoniumpersulfat (APS) (3,072 g, 13,5 mmol) in 20 ml Wasser und fügen Sie alle tropfenweise über 30 Minuten eine Überhitzung der Reaktion zu vermeiden.
  4. Führen Sie die Reaktion bei 0-5 ° C für 24 Stunden, und lassen Sie es Raumtemperatur für weitere 24 Stunden zu erreichen.
  5. Beachten Sie das Reaktionsgemisch zunächst drehen milchig weiß nach 15 min, dann dunkelbraun nach 2 h und schließlich zu dunkelgrün nach 24 h (2B-F).
  6. Filtern Sie die PANI-NaDBS Lösung mit einem Büchner-Trichter. Mischen Sie mit 80 ml Chloroform und 120 ml Wasser in alseparation Trichter (2G).
  7. Inkubiere die Lösung 24 h bei Raumtemperatur und sammle die dunkelgrüne PANI aus dem Scheidetrichter, so dass nicht-umgesetztes NaDBS und APS in dem wässrige Überstand.

2. PANI-Sonde Mischen und UV-Bestrahlung

  1. Verdünnen Sie PANI Lösung 10x mit Chloroform-Wasser (1: 3 v / v) und mischen Sie 200 ul verdünnt PANI mit 6,4 & mgr; mol Sonden-DNA-Oligonukleotide durch sanftes für 15 min rocking in ein Mikrozentrifugenröhrchen.
  2. Bestrahlen , um die PANI-DNA - Lösung mit 1200 & mgr; J / cm 2 UV in einem Vernetzer für 2 min. Es ist kritisch, dass die UV-Belichtung mit der angegebenen Menge beschränkt ist. Verlängerte Exposition gegenüber UV kompromittiert die Fluoreszenzänderung in PANI, wahrscheinlich durch kovalente Vernetzung von PANI und DNA.
  3. Pellet-Komplexe durch Zentrifugation bei 17.000 xg für 6 min und Waschen mit phosphatgepufferter Salzlösung (PBS). Pellet erneut und resuspendieren in PBS.

3. Hybridization von PANI-Sonde

  1. Aus 8 ul 100 uM komplementären DNA-Oligonucleotide oder Zielnukleinsäuren zu 200 ul PANI-Sonde-Komplexe.
  2. Führen Hybridisierung durch Lösungsgemisch 15 min bei 40 rocking ° C.
  3. Pellet die PANI-Komplexe durch Zentrifugation bei 17.000 xg für 6 min. Waschen mit PBS und Resuspendieren in Wasser.

4. Emissions Steady-State-Fluoreszenzmessung

  1. In PANI aus verschiedenen Behandlungen in einer 96-Well-Mikroplatte und messen Emissionsfluoreszenz im 270-850 nm-Bereich durch Anregung bei 250 nm. Ein Emissionsspitze für PANI sollte etwa 500 nm zu beobachten.

5. Fluoreszenzmikroskopie Messung der hybridisierten Duplex

  1. Drop-Mantel PANI auf einem Borosilikat-Deckglas und trocken bei 40 ° C für 48 Stunden.
  2. In Sonde (8 ul 100 uM) auf einem getrockneten PANI Film und bestrahlen es mit UV - Licht (1200 & mgr; J / cm 2 ) für 2 min.
  3. Waschen Sie die PANI-Sonde Film mit PBS und trocken bei 40 ° C für 48 Stunden.
  4. Führen Sie die Hybridisierung für 15 min von Ziel-Nukleinsäuren hinzufügen. Dies könnte eine biologische Probe oder eine Kontroll Zieloligonucleotid (8 ul 100 uM) sein. Folgen Sie mit einem PBS waschen.
  5. Besorgen Sie sich die Fluoreszenzbilder bei 40-facher Vergrößerung, mit einem 500 nm Langpassfilter.

Ergebnisse

2A erfasst zu Beginn des Polymerisationsverfahrens des Reaktionsaufbau, also vor APS hinaus. Mizellenbildung ist der erste Schritt in dem Reaktionsverfahren-PANI - Synthese an der mizellaren Schnittstelle auftritt. 2B zeigt eine milchige Lösung nach 5 min. 30 min nach dem APS zugegeben wird die Reaktion dann auch in eine leicht braune Farbe. 2C zeigt die Farbänderung mit der Bildung von Oligomeren verbunden. 2D

Diskussion

A PANI-basierten Sensor von Nukleinsäuren erfordert die Solubilisierung des Polymers in Wasser, um mit DNA und RNA zu interagieren. Die Dispersion von PANI in Wasser Tenside erreicht Verwendung bilden Mizellen wie zuvor 8 berichtet. Neben den hier NaDBS andere anionische Tenside wie dodecylester von 4-Sulfophthalsäure, nicht - ionische Tenside wie Nonylphenolethoxylat oder kationische oberflächenaktive Mittel wie Cetyltrimethylammoniumbromid könnte auch für die Synthese von verarbeitbaren PANI 9,10<...

Offenlegungen

The work was supported by the University of Southern Mississippi College of Science and Technology and Mississippi College of Science and technology and Mississippi INBRE program (Award Number P204M103476 from the National Institute of general Medical Science).

Danksagungen

The authors have nothing to disclose.

Materialien

NameCompanyCatalog NumberComments
Aniline Fisher Scientific A7401-500 ACS, liquid, refrigerated
Ammonium peroxydisulfateFisher Scientific A682-500 ACS, crystalline
Sodium dodecylbenzene sulfonatePfaltz & Bauer D56340 95% solid
ChloroformFisher Scientific MCX 10601 Liquid
DNA primersMWG operonn/acustom DNA sequence ~20 bps
Microplate USA Scientific 1402-9800 96 well, polypropylene as it is unreactive to chloroform
Microplate Adhesive FilmUSA Scientific 2920-0000 Reduces well-to-well contamination, sample spillage and evaporation
Microscope Cover GlassFisher Scientific 12-544-D PANI coated on UV irradiated cover glass
UV crosslinker UVP HL-2000 Energy: X100 μJ/cm2; Time: 2 min
Hybridization OvenVWR01014705 TTemperature: 400 °C; with rocking for 15 min
Glass Apparatus Fisher ScientificThree necked round bottom flask for reaction; dropping funnel, stoppers, condenser, separating funnel
MicroscopeLeica Microsystems Leica IMC S80Magnification 20X; Pseudo color 536 nm; Exposure 86 msec; Gain 1.0x; Gamma 1.6
Microplate ReaderMolecular Devices 89429-536

Referenzen

  1. Hahm, J. I. Functional polymers in protein detection platforms: optical, electrochemical, electrical, mass-sensitive, and magnetic biosensors. Sensors (Basel). 11 (3), 3327-3355 (2011).
  2. Rahman, M. M., Li, X. B., Lopa, N. S., Ahn, S. J., Lee, J. J. Electrochemical DNA hybridization sensors based on conducting polymers. Sensors (Basel). 15 (2), 3801-3829 (2015).
  3. Sengupta, P. P., et al. Utilizing Intrinsic Properties of Polyaniline to Detect Nucleic Acid Hybridization through UV-Enhanced Electrostatic Interaction. Biomacromolecules. 16 (10), 3217-3225 (2015).
  4. Song, E., Choi, J. -. W. Conducting Polyaniline Nanowire and Its Applications in Chemiresistive Sensing. Nanomaterials. 3 (3), 498 (2013).
  5. Liu, S., et al. Polyaniline nanofibres for fluorescent nucleic acid detection. Nanoscale. 3 (3), 967-969 (2011).
  6. Oliveira Brett, A. M., Chiorcea, A. -. M. Atomic Force Microscopy of DNA Immobilized onto a Highly Oriented Pyrolytic Graphite Electrode Surface. Langmuir. 19 (9), 3830-3839 (2003).
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