JoVE Logo
Authors
Contact Us

Sign In

A subscription to JoVE is required to view this content. Sign in or start your free trial.

In This Article

  • Summary
  • Abstract
  • Introduction
  • Protocol
  • תוצאות
  • Discussion
  • Disclosures
  • Acknowledgements
  • Materials
  • References
  • Reprints and Permissions

Summary

תיכננו חיישן 16 ערוץ EEG מסוג יבש אשר לא פולשנית, deformable ו מחדש שמיש. מאמר זה מתאר את כל התהליך של ייצור האלקטרודה EEG המוצע כדי עיבוד חזותי עורר הפוטנציאלים (VEP) אותות אותות נמדדים על הקרקפת העכבר באמצעות חיישן EEG מרובה ערוצים לא פולשנית יבש.

Abstract

עבור סביבות מחקר הקרקפת EEG עם עכברי מעבדה, עיצבנו בחיישן מסוג יבש ערוץ 16 EEG אשר לא פולשנית, deformable ו שמיש מחדש בשל היבט מבניים הבוכנה-האביב-חבית החוזק המכני הנובע מתכת חומרים. התהליך כולו לרכישת את VEP תגובות ויוו מתוך עכבר כולל ארבעה שלבים: (1) חיישן הרכבה, הכנת חיות (2), (3) VEP מדידה של עיבוד אותות (4). מאמר זה מציג מדידות נציג של תגובות VEP עכברים מרובים עם רזולוציה אות מתח submicro וגם תת מאות מילי-שניות רזולוציה טמפורלית. למרות השיטה המוצעת היא בטוחה יותר ונוח יותר לעומת השני דיווח בעבר בעלי חיים שיטות רכישת EEG, נותרו בעיות כולל כיצד לשפר את יחס אות לרעש וכיצד ליישם טכניקה זו עם נע בחופשיות חיות. השיטה המוצעת מנצל את המשאבים הזמינים בקלות ומראה תגובה VEP חוזרות עם איכות אות משביע רצון. לכן, בשיטה זו יכול להיות מנוצל האורך מחקרים ניסויים ומחקר translational אמין ניצול פרדיגמות פולשני.

Introduction

ככל שמספר חולים עם מחלות ניוון מוחי סנילי כגון דמנציה, אלצהיימר, פרקינסון תסמונות ושבץ גדלו עם הזדקנות האוכלוסייה, של תוחלת החיים עולה, נטל חברתי ארוך טווח המחלות האלה יש גם גדל1,2,3. בנוסף, רוב מחלות התפתחותיות, כגון סכיזופרניה, אוטיזם, מלוות הפרעות קוגניטיביות והתנהגותיות המשפיעים של המטופל כל החיים2,3,4. מסיבה זו, החוקרים כבר נאבק לשפר את אבחון, מניעה, הבנה פתולוגי, תצפית לטווח ארוך, טיפול במחלות המוח. עם זאת, בעיות נשארים לבלום מן המורכבות של המוח שהצילום מחלות פתולוגיות. המחקר translational עשויה להיות כלי מבטיח לזיהוי פתרונות מכיוון שהיא מאפשרת העברת המחקר הבסיסי ליישומים קליניים בתוך מסגרת זמן קצרה יותר, במחיר נמוך יותר, עם שיעור הצלחה גבוה יותר של מדעי המוח שדות5 ,6,7. מטרה נוספת של המחקר translational היא לבחון את ישימות של ניסויים, אשר דורשת לא פולשנית גישות ניסיוניות בבעלי חיים המאפשרות השוואות באותה השיטה עבור בני אדם. תנאים אלה הובילו כמה צרכים ניכרים לפיתוח שיטות הכנת בעלי חיים לא פולשנית. שיטה אחת היא אלקטרואנצפלוגרם (EEG), אשר חושף חיבוריות במוח בקליפת המוח ופעילות two-dimensionally עם רזולוציה טמפורלית גבוהה, אשר נהנה פרוטוקול לא פולשנית. ההקלטה אפשריות הקשורות לאירוע (ERP) הוא אחד פרדיגמות ניסויית טיפוסית לנצל האא ג.

אינספור מחקרים מועסקים פולשני EEG שיטות קודמות הכוונת נושאים בני אדם, ואילו שיטות פולשניות, כגון שתל בורגי ואלקטרודות סוג קוטב, השתמשו במחקרים שנעשו בבעלי חיים8,9,10 , 11 , 12. איכות האות ומאפיינים של שיטות אלה הם תלויים באופן משמעותי invasiveness של המיקום חיישן. עבור המחקר translational מוצלחת, גארנר הדגיש משתמש באותם התנאים למחקר בבעלי חיים כמו אלה המשמשות עבור מחקר אנושי13. למחקר בסיסי באמצעות בעלי חיים, עם זאת, מתודולוגיות EEG לא פולשנית אינם נפוצים. גישה מוזרה באמצעות מערכת חיישן פולשני הקרקפת EEG התמקדות עכברי מעבדה יהיה כלי אמין ויעיל עבור המחקר translational שניתן להחיל כדי הפארדיגמות פולשני עבור בני האדם, כמו גם.

מחקרים רבים העכבר EEG הוביל את הדרך על-ידי המיסחור של PCB (המעגלים המודפסים) המבוסס על רב ערוצית אלקטרודות14,15,16. אמנם הם אימצו שיטה חודרנית, היו להם מספר מוגבל של הערוצים (3-8), אשר עשה את זה יותר קשה להתבונן הדינאמיקה המוחית בקנה מידה גדול. יתר על כן, יישומים יכולה להיות מוגבלת על-ידי invasiveness והעלות הגבוהה שלהם. במחקר מחקר אחר, KIST (קוריאה במכון למדע וטכנולוגיה) פיתח את ערוץ 40 מבוססי פוליאימיד סרט דק אלקטרודה ומצורף לזה של עכבר הגולגולת17,18,19,20 . עבודה זו רכשה את המספר הגבוה ביותר של העכבר EEG ערוצים. זה היה, עם זאת, באופן מכני חלש, לא קל לשימוש חוזר; לכן, זה לא היה הולם עבור תצפיות ארוכות טווח, שמוביל אות חלשה, ככל הנראה כתוצאה תגובה חיסונית. בינתיים, Troncoso, Mégevand רכשה חושית עורר פוטנציאלית (ספטמבר) על הגולגולות של מכרסמים עם 32 אלקטרודות נירוסטה מאובטח על ידי נקבים Poly(methyl methacrylate) (PMMA, זכוכית אקרילית) רשת21,22 , 23. למרות איכותם אות גבוה, האלקטרודות היו מכנית גמישה ורכה; לכן, היו להם קשיים בתרגולים של ניסויים מרובים. בנוסף, שיטה זו היה עדיין פולשנית. למרות שיטות אלה מספקים איכות אות טוב, פני השטח של הגולגולת של עכבר הוא מוגבל, ולכן מספר אלקטרודות היא מוגבלת באמצעות אלקטרודה מוט נירוסטה-סוג. מספר מחקרים קודמים EEG על עכברים הראו מספר מגבלות. במחקר זה, אנחנו נראה שיטה חדשה למדידת EEG החלות בתחומי המחקר translational קליניים באמצעות חיישן רב ערוצית מסוג יבש לא פולשנית.

על מנת להתגבר על המגבלות של הקודם מתודולוגיות EEG בעלי חיים, שכללה את המורכבות מהותי של הכנת בעלי חיים invasiveness, עלות גבוהה, בזבזנות, חוזק מכני חלש, חיפשנו לפתח אלקטרודה חדשה אשר מוצגים גמישות, סטטוס של סוג יבש, יכולות רב ערוצית, הלא-invasiveness ו re-usability. בפרוטוקול הבא, נתאר את התהליך של מדידת חזותי עורר פוטנציאליים (VEP) בהקלטות הקרקפת העכבר באמצעות חיישן EEG יבש, לא פולשנית, רב ערוצית. שיטה זו משתמשת משאבים זמינים בקלות, לכן הנמכת המכשול כניסה לתוך בבע ח בתחום הנדסה ביו-רפואית.

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Protocol

טיפול בבעלי חיים וטיפול בעקבות מנחה מוסדית של קוואנגג'ו במכון למדע, טכנולוגיה (תמצית).

הערה: הליך רכישת VEP האיתות העכבר ויוו כוללת ארבעה שלבים: (1) חיישן הרכבה, הכנת חיות (2), (3) VEP מדידה של עיבוד אותות (4).

1. חיישן הרכבה

  1. להכין סיכות 16 אידיוט לא פולשנית.
    הערה: כל אלקטרודה pin-סוג מורכב משלושה חלקים: פומפה ראש בדיקה ל האביב פנימי, חבית, כפי שמוצג באיור 1a. אורך כל סיכה הוא 13 מ מ, אורך קדם עומס קפיץ מתכוונן 1 מ מ.
  2. לחתוך שתי פיסות של סובסטרטים סיבי זכוכית (עובי: 1.5 מ מ) בגודל של 15 מ מ × 17 מ"מ (רוחב × גובה).
    הערה: הפונקציות המצע פיברגלס-ניצוח כמו בידוד חשמלי, אשר מפריד את אותות מרובים רכשה בו זמנית של הקרקפת של העכבר.
  3. לעשות חורים 16 של קוטר 1.2 מ מ באמצעות מכונת חריטה דיוק, כפי שמוצג באיור 1 c.
    1. פרושים התיאום בדיקה אחיד במרווח של 2 מ מ על גבי המצע שטוח: +7/0, +2 /-2, +2/0, +2 / +2, 0/4, 0/2, 0/0 (bregma), 0 / +2, 0 / +4,-2/3,-2/1,-2 / +1,-2 / +3,-4-/-2, 4/0 ,-4 / +2 (anteroposterior/לרוחב עם בסיס של bregma, במ מ)24,25,26.
  4. מחסנית סובסטרטים שני ולהחיל טיפה אחת של דבק דבק משחק מהיר בין שכבות המצע, בהפקת כפולה-שכבה של 3 מ מ עובי תמיכה 16 אלקטרודות מקבילים ויציבה במהלך שידור.
  5. להרכיב את 16 אלקטרודות על המצע, אחד-אחד באופן ידני.
    הערה: קוטר חור קטן עוצר כל אלקטרודה באותו האורך. בכל קוטר החור הוא מעט קטן יותר מקוטר חבית בתוך הסיכה יחיד (1.3 מ מ) המאפשרת קיבוע חזק של אלקטרודות ללא כל התרופפות העבה ביותר.
  6. הלחמה וקשר ולהירגע של אלקטרודה כל הלחמה-גביע למחבר הוכחה מגע.
  7. לכסות ולהסתיר את צמתי עירום עם אבובים לכווץ לבידוד חשמלי.

2. בעלי חיים הכנה

  1. עזים ומתנגד את העכבר עם זריקה בקרום הבטן (i.p.) של ketamine:xylazine 100:10 (100 מ ג / mL:10 מ"ג/מ"ל) תערובת עם הכמות של 10 µL גרם של משקל הגוף.
    הערה: בדוק שההרדמה של החיה היא נאותה על ידי משיכת רגל אחת או מגרסאות הזנב לפני תחילת ההכנה.
  2. להחיל משחה העין כדי לשמור על הקרנית של העכבר לח באמצעות מקלון צמר גפן.
  3. להסיר את השערות סביב הראש והכתפיים עם שיער-בטלוויזיה, מורחים קרם depilatory זמינים מסחרית וגם להשאירו על האזור למשך 3-4 דקות.
  4. הסר את דפילציה יישומית עם מרית ולאחר מכן נגב בשאר עם מגבונים החלת המים מספר פעמים.

3. VEP מדידה

הערה: VEP כל מדידה תהליך התרחש בתוך כלוב פאראדיי כהה (רוחב עומק × × גובה: 61 × 61 × 60 ס מ).

  1. הר הראש של העכבר אל מסגרת stereotaxic על-ידי הצבת האוזן ברים לתוך תעלות האוזן של העכבר והידוק אותם בדיוק במקום.
  2. בעיא החיישן המחזיק אלקטרודה בהזמנה אישית (איור 1b) ותקן בעל חיישן אל מסגרת stereotaxic, כפי שמוצג באיור 1 d.
  3. אתר החיישן EEG גמיש, בהתחשב המיקום אלקטרודה הפניה והן את העמדה bregma27. לאחר מכן, בזהירות רבה להפחית החיישן בכיוון אנכי כך בוכנות אלקטרודה ערוכים קשר הקרקפת של העכבר באופן שווה על השוליים מעוגלים.
    הערה: המרחק הוריד הוא קטן מ- 1 מ מ, אשר הוא אורך מתכוונן הבוכנה.
  4. בדוק כי impedances הם בטווח תקין מ 100 kΩ כדי 2 MΩ. מיקום מחדש של האלקטרודה כאשר כל ערך אימפדנס של ה-pin נמצא מחוץ לטווח של28.
  5. מקם את ממריץ צילום 20 ס מ מן העיניים של העכבר.
  6. לפני תחילת הניסוי, להתאים את העכבר 10 דקות בכלוב אפל עבור עיבוד חזותי כהה.
    1. קבע את הפרמטרים של המכשירים ניסיוני כדלקמן: תדר הדגימה: 500 הרץ; חריץ סינון: 60 הרץ; מרווח בין הגירוי: 10 s; פלאש משך הזמן: 10 ms; מספר של גירויים פלאש: ניסויים 100/נושא.
      הערה: הפלאש הוא אור לבן תאורת LED אשר יש 550 ± 20% lx עם מרחק של 20 ס מ.

4. VEP עיבוד אותות תגובות נהלים

  1. Epoching
    1. למדידת ברציפות נתונים טוריים, תמצית כל אפוק ליצירת יחיד-משפט VEP מקטעי מתקופת טרום הגירוי (-300 ms) לתקופה שלאחר הגירוי (600 ms), המבוסס על תחילת גירוי פלאש.
      הערה: מאז אנו שוב ושוב מספקים גירוי פלאש ניסויים מעל 100 לכל נושא, סך של 100 שהשרתים VEP עבור כל עכבר מחולצים בשלב זה. EEG epoching היא תהליך שבו זמן מסוים-windows מופקים מן הנתונים אות EEG נמדד באופן רציף.
  2. הפניה מחדש (הפניה ממוצע)
    1. חשב את הממוצע של EEG אותות מעבר לכל האלקטרודות ארבע עשרה ערוצי בכל מועד הצבע, then לחסר את ערך בממוצע מכל אחד מהערוצים. חזור על הליך זה עבור כל שהשרתים VEP.
  3. לבצע מעברים הלהקה סינון של האיתות ~ 1-100 הרץ באמצעות תגובה דחף סופיים (FIR) לסנן.
  4. תיקון בסיסית
    1. לחשב את הממוצע של האותות EEG בתקופת טרום הגירוי (תקופת בסיסית,-300 ~ 0 ms) בכל אחד מהערוצים, then לחסר זה ממוצע של כל נקודה ב waveform (-300 ~ 600 ms). זה מתאים לציר משרעת VEP תגובות כדי להקל על התצפית של גלי המוח משתנה לאחר גירוי. חזור על שלב זה עבור כל שהשרתים VEP.
  5. תגובות VEP גרנד
    1. הממוצע שהשרתים VEP יחיד-משפט כדי ליצור יחידה-נושא בממוצע VEP ואת לכל ערוץ. לאחר מכן, חישוב ממוצע אנסמבל גרנד VEP תגובות לכל ערוץ לגבי כל הנושאים.

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

תוצאות

אנחנו מחושב הממוצע אנסמבל של תגובות VEP 11 עכברים כמוצג באיור2. תוצאה זו מציג את התגובות VEP שהושג באמצעות הניסוי מן התקופה שלפני גירוי (-300 ms) לתקופה שלאחר גירוי (600 ms), הגירוי ניתנת בזמן 0 אמ. מורגש כי האות תנודות רק לזמן (פחות מ- 300 ms) לאחר הגירוי, ואילו האות מייצבת...

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Discussion

ראשית התמקדנו על העיצוב של החיישן, מתן עדיפות המעשיות על-ידי מזעור ניתוחים מורכבים. החיישן EEG deformable מורכב מ 16 פינים: 14 עבור הקלטה, אחד עבור הקרקע האחרון עבור הפניה אלקטרודות. כל אלקטרודה יש מבנה הבוכנה-האביב-חבית, אשר חל ודפורמביליות על גבי משטח מגע של האלקטרודה, אז הם מאפשרים רכישת אות אחידה...

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Disclosures

המחברים אין לחשוף.

Acknowledgements

עבודה זו נתמך בחלקה על ידי העיקר מכון המחקר (GRI), העיקר-Caltech מחקר שיתוף פעולה בפרויקט באמצעות מענק שמספק העיקר ב-2017. גם נתמך על ידי מענק מחקר (ה-NRF-2016R1A2B4015381) של נבחרת מחקר קרן (ב- NRF) ממומן על ידי ממשלת קוריאה (MEST), ועל ידי KBRI תוכנית מחקר בסיסי דרך המכון הקוריאני לחקר המוח ממומן על ידי משרד המדע, תקשוב, העתיד תכנון (17-BR-04).

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Materials

NameCompanyCatalog NumberComments
Ketamine 50 Inj. (Vial)Yuhan-Ketamine HCl 57.68 mg
Zoletil 50 Inj.Virbac-Tiletamina 125 mg/ Zolazepam 125 mg
Rompun 2% Inj.BAYER-Xylazine hydrochloride 23.32mg/mL
Hycell solution 2%Samil-Hydroxypropylmethylcellulose 20 mg
Puralube Vet Ointment 3.5 mgPharmaderm-
Saline solution Inj. JW Pharmaceutical -NaCl 9 g/1000 mL
Veet Hair Removal Cream – Legs & Body - Sensitive SkinReckitt Benckiser-depilatory
Skins - Surgical Skin MarkerSurgmedS-3000STERILE - Multi-Tip Fine Marker with ruler and label set
Stainless Steel Micro SpatulasHEATHROW SCIENTIFICHS15907 One Round Flat End, 2L x 5/16W"
cotton swap
Stereotaxic, Desktop Digi SingleRWD Life Science68025
Mouse AdapterRWD Life Science68010
Ear Bar for Mouse Non-RuptureRWD Life Science68306
Mitsar-EEG 202-24 MITSARamplifier
EEGStudio EEG acquisition softwareMITSAR
White flash stimulator MITSARMITSAR Flash stimulator
BCI2000 softwareSchalk lab
g.USBampg.tec0216
g.Power-g.USBampg.tec0247
 441 style straight body Touch Proof connectorPlasticsOne441000PSW080001441 - 000 PSW 80" (BLACK)
Standard probeLEENOSK100CSWhttp://www.globalinterpark.com/detail/detail?prdNo=2114277241&dispNo=001851006012
Precision engraving machine toolsTINYROBOTinyCNC-6060C
Heat shirink3MFP301

References

  1. Alzheimer's Association. Alzheimer's disease facts and figures. Alzheimers Dement. 12 (4), 459-509 (2016).
  2. Birbeck, G. L., Meyer, A. C., Ogunniyi, A. Nervous system disorders across the life course in resource-limited settings. Nature. 527 (7578), S167-S171 (2015).
  3. World Health Organization. Neurological disorders: public health challenges. , World Health Organization. (2006).
  4. Meyer, U., Feldon, J., Dammann, O. Schizophrenia and Autism: Both Shared and Disorder-Specific Pathogenesis Via Perinatal Inflammation? Pediatr Res. 69 (5), 26r-33r (2011).
  5. Freedman, L. P., Cockburn, I. M., Simcoe, T. S. The Economics of Reproducibility in Preclinical Research. PLoS Biol. 13 (6), e1002165(2015).
  6. Cummings, J. L., et al. Alzheimer's disease drug development: translational neuroscience strategies. CNS Spectr. 18 (3), 128-138 (2013).
  7. Roelfsema, P. R., Treue, S. Basic neuroscience research with nonhuman primates: a small but indispensable component of biomedical research. Neuron. 82 (6), 1200-1204 (2014).
  8. Wu, C., Wais, M., Sheppy, E., del Campo, M., Zhang, L. A glue-based, screw-free method for implantation of intra-cranial electrodes in young mice. J Neurosci Methods. 171 (1), 126-131 (2008).
  9. Yu, F. H., et al. Reduced sodium current in GABAergic interneurons in a mouse model of severe myoclonic epilepsy in infancy. Nat Neurosci. 9 (9), 1142-1149 (2006).
  10. Parmentier, R., et al. Anatomical, physiological, and pharmacological characteristics of histidine decarboxylase knock-out mice: evidence for the role of brain histamine in behavioral and sleep-wake control. J Neurosci. 22 (17), 7695-7711 (2002).
  11. Handforth, A., Delorey, T. M., Homanics, G. E., Olsen, R. W. Pharmacologic evidence for abnormal thalamocortical functioning in GABA receptor beta3 subunit-deficient mice, a model of Angelman syndrome. Epilepsia. 46 (12), 1860-1870 (2005).
  12. Wu, C., Wais, M., Zahid, T., Wan, Q., Zhang, L. An improved screw-free method for electrode implantation and intracranial electroencephalographic recordings in mice. Behav Res Methods. 41 (3), 736-741 (2009).
  13. Garner, J. P. The Significance of Meaning: Why Do Over 90% of Behavioral Neuroscience Results Fail to Translate to Humans, and What Can We Do to Fix It? Ilar Journal. 55 (3), 438-456 (2014).
  14. Naylor, E., Harmon, H., Gabbert, S., Johnson, D. Automated sleep deprivation: simulated gentle handling using a yoked control. Sleep. 12 (1), 5-12 (2010).
  15. Naylor, E., et al. Simultaneous real-time measurement of EEG/EMG and L-glutamate in mice: A biosensor study of neuronal activity during sleep. J Electroanal Chem (Lausanne). 656 (1-2), 106-113 (2011).
  16. Naylor, E., et al. Molecules in Neuroscience. Proceedings of the 13th International Conference on In Vivo Methods, , 12-16 (2010).
  17. Choi, J. H., et al. A flexible microelectrode for mouse EEG. Conf Proc IEEE Eng Med Biol Soc, , 1600-1603 (2009).
  18. Choi, J. H., Koch, K. P., Poppendieck, W., Lee, M., Shin, H. S. High resolution electroencephalography in freely moving mice. J Neurophysiol. 104 (3), 1825-1834 (2010).
  19. Lee, M., Shin, H. S., Choi, J. H. Simultaneous recording of brain activity and functional connectivity in the mouse brain. Conf Proc IEEE Eng Med Biol Soc, , 2934-2936 (2009).
  20. Lee, M., Kim, D., Shin, H. S., Sung, H. G., Choi, J. H. High-density EEG recordings of the freely moving mice using polyimide-based microelectrode. JoVE-J Vis Exp. (47), e2562(2011).
  21. Mégevand, P., Quairiaux, C., Lascano, A. M., Kiss, J. Z., Michel, C. M. A mouse model for studying large-scale neuronal networks using EEG mapping techniques. Neuroimage. 42 (2), 591-602 (2008).
  22. Megevand, P., et al. Long-term plasticity in mouse sensorimotor circuits after rhythmic whisker stimulation. J Neurosci. 29 (16), 5326-5335 (2009).
  23. Troncoso, E., Muller, D., Czellar, S., Zoltan Kiss, J. Epicranial sensory evoked potential recordings for repeated assessment of cortical functions in mice. J Neurosci Methods. 97 (1), 51-58 (2000).
  24. Bauschatz, J. D., Guido, V. E., Marden, C. C., Davisson, M. T., Donahue, L. R. Preliminary skull characterization and comparison of C57BL/6J, C3H/heSnJ, BALB/cByJ and DBA/2J inbred mice. , http://craniofacial.jax.org/characteristics.html (2014).
  25. Keith, B., Franklin, G. P., Paxinos, G. The mouse brain in stereotaxic coordinates. , Academic. California. (2008).
  26. Kawakami, M., Yamamura, K. I. Cranial bone morphometric study among mouse strains. Bmc Evol Biol. 8, (2008).
  27. Strain, G. M., Tedford, B. L. Flash and pattern reversal visual evoked potentials in C57BL/6J and B6CBAF1/J mice. Brain Res Bull. 32 (1), 57-63 (1993).
  28. Schalk, G., McFarland, D. J., Hinterberger, T., Birbaumer, N., Wolpaw, J. R. BCI2000: A general-purpose, brain-computer interface (BCI) system. Ieee Transactions on Biomedical Engineering. 51 (6), 1034-1043 (2004).
  29. Kim, D., Yeon, C., Kim, K. Development and Experimental Validation of a Dry Non-Invasive Multi-Channel Mouse Scalp EEG Sensor through Visual Evoked Potential Recordings. Sensors. 17 (2), 326(2017).
  30. Yeon, C., Kim, D., Kim, K., Chung, E. SENSORS, 2014 IEEE. , IEEE. 519-522 (2014).
  31. Kim, D., Yeon, C., Chung, E., Kim, K. SENSORS, 2015 IEEE. , IEEE. 1-4 (2015).
  32. Lin, C. T., et al. Novel dry polymer foam electrodes for long-term EEG measurement. IEEE Trans Biomed Eng. 58 (5), 1200-1207 (2011).
  33. Lopez-Gordo, M. A., Sanchez-Morillo, D., Pelayo Valle, F. Dry EEG electrodes. Sensors (Basel). 14 (7), 12847-12870 (2014).
  34. Fang, Q., Bedi, R., Ahmed, B., Cosic, I. Engineering in Medicine and Biology Society, 2004. IEMBS'04. 26th Annual International Conference of the IEEE. 2995-2998 IEEE, , 2995-2998 (2004).
  35. Maffei, L., Fiorentini, A., Bisti, S. Neural correlate of perceptual adaptation to gratings. Science. 182 (4116), 1036-1038 (1973).
  36. Ernst, M., Lee, M. H., Dworkin, B., Zaretsky, H. H. Pain perception decrement produced through repeated stimulation. Pain. 26 (2), 221-231 (1986).

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Reprints and Permissions

Request permission to reuse the text or figures of this JoVE article

Request Permission

Explore More Articles

131EEGEEGEEG invasivenessdeformableVEPEEG

This article has been published

Video Coming Soon

JoVE Logo

Privacy

Terms of Use

Policies

Contact Us

Recommend to library

JoVE NEWSLETTERS

Research

Education

Authors

Librarians

ABOUT JoVE

Copyright © 2025 MyJoVE Corporation. All rights reserved