JoVE Logo

Sign In

A subscription to JoVE is required to view this content. Sign in or start your free trial.

In This Article

  • Summary
  • Abstract
  • Introduction
  • Protocol
  • תוצאות
  • Discussion
  • Disclosures
  • Acknowledgements
  • Materials
  • References
  • Reprints and Permissions

Summary

כאן, אנו מציגים פרוטוקול כדי לזהות 5-hydroxyמתילציטוסין בתאים ורקמות המוח, ניצול immunofluorescence כתמים ושיטות כתמי נקודה DNA.

Abstract

שינויי דנ א מרובים זוהו בגנום היונקים. מתוך זה, 5-מתילציטוסין ו-5-הידרוגרד מתילציטוסין-בתיווך מנגנונים גנטיים נחקרו באופן אינטנסיבי. 5-hydroxyמתילציטוסינוס מציג תכונות דינמיות במהלך פיתוח המוח העובריים והפוסט-לידתיים, משחק תפקיד רגולטורי בביטוי הגנים, והוא מעורב בהפרעות נוירולוגיות מרובות. כאן, אנו מתארים את השיטות המפורטות כולל כתמים immunofluorescence ו-DNA נקודה-כתם כדי לזהות 5-hydroxyמתילציטוסין בתאים מתורבתים ורקמות המוח של העכבר.

Introduction

שינויים אפיגנטיים, כולל שינוי ה-DNA, שינוי היסטון ו-RNA שינוי, הוכחו לשחק פונקציות חיוניות בתהליכים ביולוגיים שונים ומחלות1,2,3, ד , מיכל 5 , מיכל בן 6 , 7. במשך זמן רב, מתילציה DNA (כלומר, 5-מתיל ציטוסין (5-mC)) הוצג כסמן מאוד יציב אפיגנטי ולא ניתן לשנות עוד בגנום. לאחרונה, זה נמצא כי 5-mC יכול להיות תחמוצת ל 5-הידרוxyמתילציטוסין (5-hmc) על ידי ט (10-11 טרנסמקומות) משפחה חלבונים כולל TET1, TET2, ו TET38,9. מחקרים נוספים מראים כי 5-hmc יכול לשמש סמן יציב ולשחק תפקידים ביולוגיים באמצעות ויסות גן ביטוי4,10,11,12.

הראיות הקיימות מצביעות על כך 5-hmc הוא מועשר מאוד ברקמות הנוירואליות/תאים ביחס לסוגים אחרים של רקמות יונקים, ומציג תכונות דינמיות במהלך פיתוח עצבי13,14. במערכת עצביים, 5-hmC בתיווך אפיגנטי שינויים לשחק תפקיד חשוב בוויסות תאי גזע עצביים, פעילות עצבית, למידה וזיכרון, והוא מעורב בהפרעות נוירולוגיות מרובות כולל תסמונת רט, אוטיזם, אלצהיימר מחלה, מחלת הנטינגטון, וכו '2,13,15,16,17,18,19,20.

ישנן מספר גישות לגילוי 5-hmc בתאים ורקמות14,21,22,23,24. כאן, אנו מתארים שתי שיטות כדי לזהות את קיומו של 5-hmC ולכמת את הרמה הגלובלית של 5-hmC: מכתים החיסונית של כתמים ו-DNA נקודה-כתם. שתי שיטות אלה הן נוחות ורגישות, ובשימוש בהצלחה במחקרים קודמים25,26,27,28,29,30. השלבים העיקריים של שתי שיטות אלה הם denaturation DNA. עבור מכתים החיסונית של 5-hmC, טרום טיפול של דגימות עם HCl 1 M נדרש. עבור 5-hmC נקודה-כתם, דנ א הדנטורציה מבוצעת עם פתרון NaOH. שתי שיטות אלה יחד עם רצף הדור הבא הם כלים שימושיים מאוד לחקירת הפונקציה של 5-hmC.

Protocol

כל ההליכים בעלי החיים אושרו על ידי ועדת האתיקה של בעלי חיים של אוניברסיטת ג'ה-ג'יאנג.

1. התרבות של תאי גזע עצביים למבוגרים ונוירונים

  1. בידוד בתאי גזע עצביים מבוגרים מן המוח הקדמי של מבוגר (8-10 בן שבוע) C57/BL6 עכבר זכר כמתואר בעבר31,32.
  2. תרבות תאי גזע עצביים למבוגרים בלבד/F-12 בינונית המכילה 20 ng/mL FGF-2, 20 ng/mL EGF, 2% B27 תוספת, 1% אנטיביוטי-antimycotic, ו 2 מ"מ L-גלוטמין בחממה 5% CO2 ב 37 ° c. לגרום הבידול של תאים גזע עצבי מבוגרים עם חומצה retinoic 1 μm ו 5 μm forskolin עבור 48 h כמתואר בעבר31,32.
  3. בידוד נוירונים מן היום העובריים 17 (E17) היפוקמאני של העכבר והתרבות עם מדיום נוירוסיס המכיל של 0.25% L-גלוטמין, 0.125% גלוטמקס ו 2% B27 תוספת בחממה 5% CO2 ב 37 ° צ' כמתואר לעיל33.

2. הטרנס הפרזיה של העכבר

  1. הכינו 10% כלוראל הידרוקסיד, 4% פאראפורמלדהיד (הכלט) ו פוספט מאגור באגירה (PBS) יום אחד לפני הניסוי, ולאחסן ב 4 ° c.
  2. מורדם בוגר זכר או נקבה C57 BL/6J עכבר עם 10% כלוראל הידרוקסיד (50 מ"ג/ק"ג, כלומר), ולהבטיח כי החיה הוא מורדם עמוקות על ידי בדיקת תגובת הגוף. תקן כל איבר בסרט דביק על לוח פלסטיק (במצב פנים-למעלה).
  3. חותכים את העור ואז את השריר עם מספריים ניתוח. פתח את חלל בית החזה. עם מספריים כירורגיים לחשוף את הלב ולחתוך חלק קטן של האטריום הימני עם מספריים כירורגית נאה.
  4. מבשם העכבר עם מזרק 10 mL חד פעמיות מחדר שמאל עם PBS קר (סביב 30 mL לעכבר למבוגרים).
  5. מבשם העכבר עם 4% בכיוון התנועה (כ -30 מ ל ב -10 דקות למבוגר) עד שהוא נוקשה.
  6. לפתוח את הגולגולת של העכבר עם מלקחיים עצם. הסירו את המוח והכניסו לתוך 5 מ ל של 4% כלפי התחתית בצינורית צנטריפוגה של 15 מ"ל לפוסט-קיבוע ב -4 ° c.
    הערה: לנקות את האזור כירורגי לאחר הניתוח הסתיים.
  7. לפחות 24 שעות מאוחר יותר, להעביר את דגימות המוח לתוך 30% סוכרוז פתרון להתייבשות מלאה ב 4 ° c.

3. בנייה מוחית

  1. הטמע את דגימות המוח בתרכובת טמפרטורת החיתוך האופטימלית (OCT) במיכל קטן, וצנן את הטמפרטורה ב-20 ° c לפחות 1 h.
  2. דגימות מוח מקטע בעובי של 20-40 יקרומטר עם מיקרוסטט קריוטום.
  3. לאסוף מקטעים לתוך PBS ולאחסן ב 4 ° c.

4. מאימונולואובורנציה

  1. לאסוף את הסעיפים עם אזורי המוח ממוקד ולשים אותם לתוך צלחת 24-היטב עם PBS. עבור תאים מתורבתים על מחליק, ללכת ישירות לשלב 4.2.
  2. לשטוף עם PBS על שייקר בטמפרטורת החדר עבור 10 דקות.. חזור על זה פעמיים
  3. הסירו את ה-PBS, והתייחסו לרשימת הHCl של 1 מ' במשך 30 דקות ב-37 ° c.
    הערה: להכין הHCl 1 M על ידי הוספת 1 מ ל של חומצה הידרוכלורית (36-38%) לתוך 10 מ ל של מים בשכונה כימית. מחממים את הHCl 1 מ' בחממה ב 37 ° c.
  4. שטוף את הדגימות עם ה-PBS במשך 5 דקות.. חזור על זה פעמיים
  5. דגימות בלוק עם PBS המכילה 3% סרום עז רגיל 0.1% טריטון X-100 עבור 1 h על שייקר בטמפרטורת החדר.
  6. לילה ב -4 ° c על שייקר.
    הערה: השתמש בנוגדנים העיקריים הבאים: נוגדנים מפולי-שבטיים anti-5-הידרוקסימתילציטוסין (1:5000), העכבר נוגדן מונושבטיים אנטי NeuN (1:500).
  7. , תוציא את הדגימות. ועוד מודרות בטמפרטורת החדר לשעה
  8. שטפו את הדגימות בערוץ הPBS במשך 10 דקות.. חזור על זה פעמיים
  9. מודטה עם נוגדנים משניים המתאימים לנוגדנים העיקריים בטמפרטורת החדר עבור 1 h על שייקר. . כסו את הצלחת באלומיניום
    הערה: השתמש בנוגדנים המשניים הבאים: אלקסה Fluor 488 עז נגד ארנבת IgG (1:500), אלקסה Fluor 568 עז נגד עכבר מבוססי-IgG (1:500). גרעיני נגד כתמים עם 4 ′ -6-diamidino-2-פניינילידול (DAPI).
  10. רחץ את הדגימות עם PBS עבור 10 דקות על שייקר. . חזור על זה פעמיים
  11. הר מקטעי המוח על השקופיות, להוסיף כמות נאותה של בינונית הרכבה antifade (סביב 100-150 μL), ולכסות עם זכוכית כיסוי פרימיום. . חותם עם לק
  12. לקחת תמונות עם מיקרוסקופ רגיל או קונפוקלית וקד הקרינה.

5. דנ א גנומית בידוד

  1. המתת חסד למבוגרים C57 BL/6J העכבר (זכר או נקבה) על ידי פריקה צוואר הרחם ולהסיר את המוח.
  2. מנתח את ההיפוקמפוס, הקליפה ואת הרקמות המוח על צלחת מקורר קרח. טוחנים רקמות עם מטחנת רקמות ב 1 מ ל של מאגר לפירוק DNA והעברה לתוך צינור מיקרוצנטריפוגה נקי. הוסף 250 μg of פרוטטינואז K לכל 600 μL של מאגר הליזה. עבור כדורי תא, ישירות להוסיף מאגר הליזה, פרוטטינואז K, ו לערבב ביסודיות.
    הערה: הכנת מאגר לפירוק ה-DNA: 5 מ"מ EDTA, 0.2% SDS, 200 mM הנאקל ב-100 mM טריס-HCl, pH 8.5. רוחצים ומקלבים את מטחנת הרקמה לפני הניסוי.
  3. ביום השני, להוסיף כ 50 μg של RNase A לכל מדגם עבור לפחות 12 h ב 37 ° c.
  4. הוסף נפח שווה של פנול: כלורופורם: isoamyl אלכוהול (25:24:1) ולערבב לחלוטין.
  5. צנטריפוגה ב 20,817 x g עבור 15 דקות, ולהסיר את supernatant לתוך צינור מיקרוצנטריפוגה חדש.
  6. הוסף 600 μL של כלורופורם ל-supernatant כדי לזרז את ה-DNA, ולערבב היטב.
  7. צנטריפוגה ב 20,817 x g עבור 15 דקות, ולהסיר את הסופרנטנט לתוך צינור חדש אחר.
  8. הוסף 500 μL של איזופנול לסופרנטאנט, וערבב היטב.
  9. צנטריפוגה ב 20,817 x g עבור 15 דקות, ולהסיר את supernatant לחלוטין.
  10. לשטוף את המשקעים עם 1 מ ל של 70% אתנול, צנטריפוגה ב 20,817 x g עבור 1 דקות, ולהסיר את supernatant לחלוטין. . חזור על זה פעם אחת
  11. . תייבש את הגלולה לגמרי
  12. התמוססות את הגלולה DNA עם מאגר של Tris-HCl (pH 8.5) לריכוז הנכון.

6. כתם דנ א של נקודה

  1. הכינו את הפתרונות: 2 M NaOH, מאגר Tris-HCl (pH 8.5), 6x מלוחים נתרן ציטראט (מתחת לס).
  2. הפוך את הדוגמה לתערובת כטבלה 1.
  3. דגימות דנ א בספרות ב 100 ° c עבור 10 דקות, ולהתקרר על קרח.
  4. חותכים את הגודל המתאים של קרום ניילון (למשל, Hybond-N +) ולשטוף עם התחנה התחתית 6x.
  5. לשים את הקרום על מכשיר כתמי נקודה ולהתחבר למשאבת ואקום. ספוט 6 μL של תערובת לכל נקודה על הקרום.
  6. Hybridize עבור 30 דקות ב 80 ° c, ולחסום את קרום לדוגמה עם חלב ללא שומן ב מלוחים באגירה Tris (TBS) עבור 1 h.
  7. דגירה עם נוגדן ראשי ב 4 ° c לילה.
    הערה: הנוגדן העיקרי הבא: ארנב רב-שבטיים אנטי-5-הידרוקסימתיל (1:5000).
  8. ביום השני, מודפה את הקרומים לדוגמה בטמפרטורת החדר במשך 1 h. לשטוף עם TBS עבור 10 דקות. חזור על השטיפה. הזאת פעמיים יותר
  9. דגירה את הקרום עם נוגדן אנטי ארנב משני (1:5000) עבור 30 דקות בטמפרטורת החדר.
  10. לשטוף עם TBS במשך 10 דקות. חזור על השטיפה הזאת פעמיים.
  11. . ומכמת את עוצמות האות

תוצאות

כדי לחשוף את ההתפלגות של 5-hmC בהיפוקמפוס של עכברים למבוגרים, ביצעו immunofluorescence עם נוגדנים נגד תאים עצביים (NeuN) ו 5-hmC. בהיפוקמפוס, 5-hmC שיתוף מקומי היטב עם סמן תא עצבי NeuN (איור 1A-H), המציעה העשרה של 5-hmc ב נוירונים.

כדי לקבוע את הדינמיקה של 5-hmC במהלך התפתחות עצב?...

Discussion

שינויים אפיגנטיים לשחק תפקידים חיוניים במהלך התפתחות המוח, התבגרות, ותפקוד. כסמן יציב עבור שינוי DNA, דינמי 5-hmC מגיב לעיבוד התנהגותי, פעילות עצבית, והוא מתואם באופן חיובי עם ביטוי גנים; לכן, הוא מעורב בתפקוד תקין של המוח והפרעה נוירולוגית4. כדי לחקור את תפקידה בתאים ורקמות, יש צור...

Disclosures

לא קיימים אינטרסים פיננסיים מתחרים.

Acknowledgements

XL היה נתמך בחלק על ידי תוכנית הלאומית R & D של סין (2017YFE0196600), והקרן הלאומית למדעי הטבע של סין (גרנט Nos. 31771395, 31571518). Q.S. היה נתמך על ידי תוכנית המחקר ופיתוח המפתח הלאומי של סין (2017YFC1001703) ואת תוכנית מחקר ופיתוח מפתח של פרובינצית ג'ה-ג'יאנג (2017C03009). W.X. היה נתמך על ידי הקרן המדע הטבעי של מחוז ג'ה-ג'יאנג (LY18H020002) ואת טכנולוגיית המדע של מחוז ג'ה-ג'יאנג (2017C37057).

Materials

NameCompanyCatalog NumberComments
4'-6-diamidino-2-phenylindole (DAPI )Sigma-AldrichD8417
Adobe Photoshop softwareAdobe Inc./
Alexa Fluor 488 goat anti-rabbit IgGThermo FisherA11008
Alexa Fluor 568 goat anti-mouse IgGThermo FisherA11001
anti-5-hydroxymethylcytosineActive Motif39769
anti-NeuNMilliporeMAB377
B27 supplementGibco12587-010
B27 supplementGibco12580-010
B27 supplementGibco17504-044
Cryostat microtomeLeicaCM1950
DMEM/F-12 mediumOmegaScientificDM25
Epidermal growth factorPeproTech100-15
Fibroblast growth factor-basicPeproTech100-18B
ForskolinSigma-AldrichF6886
GlutaMaxThermo35050061
L-GlutamineGibco25030-149
Neurobasal mediumGibco21103-049
Normal goat serumVector LaboratoriesZ0325
Nylon membrane (Hybond™-N+ )Amersham BiosciencesRPN303B
OCTLeica14020108926
Pen StrepGibco15140-122
Phenol: chloroform: isoamyl alcohol (25: 24:1 )Sigma-Aldrich516726
Poly-D-LysineSigmaP0899-10
Proteinase KVVR39450-01-6
Retinoic acidSigma-AldrichR2625
Triton X-100SolarbioT8210

References

  1. Tan, L., Shi, Y. G. Tet family proteins and 5-hydroxymethylcytosine in development and disease. Development. 139 (11), 1895-1902 (2012).
  2. Yao, B., et al. Epigenetic mechanisms in neurogenesis. Nature Reviews Neuroscience. 17 (9), 537-549 (2016).
  3. Day, J. J., Sweatt, J. D. DNA methylation and memory formation. Nature Neuroscience. 13 (11), 1319-1323 (2010).
  4. Wu, X. J., Zhang, Y. TET-mediated active DNA demethylation: mechanism, function and beyond. Nature Reviews Genetics. 18 (9), 517-534 (2017).
  5. Sun, W. J., Guan, M. X., Li, X. K. 5-Hydroxymethylcytosine-Mediated DNA Demethylation in Stem Cells and Development. Stem Cells and Development. 23 (9), 923-930 (2014).
  6. Li, S., Mason, C. E. The pivotal regulatory landscape of RNA modifications. Annual Review of Genomics and Human Genetics. 15, 127-150 (2014).
  7. Hwang, J. Y., Aromolaran, K. A., Zukin, R. S. The emerging field of epigenetics in neurodegeneration and neuroprotection. Nature Reviews Neuroscience. 18 (6), 347-361 (2017).
  8. Kriaucionis, S., Heintz, N. The nuclear DNA base 5-hydroxymethylcytosine is present in Purkinje neurons and the brain. Science. 324 (5929), 929-930 (2009).
  9. Tahiliani, M., et al. Conversion of 5-Methylcytosine to 5-Hydroxymethylcytosine in Mammalian DNA by MLL Partner TET1. Science. 324 (5929), 930-935 (2009).
  10. Guo, J. U., et al. Neuronal activity modifies the DNA methylation landscape in the adult brain. Nature Neuroscience. 14 (10), 1345-1351 (2011).
  11. Feng, J., et al. Dnmt1 and Dnmt3a maintain DNA methylation and regulate synaptic function in adult forebrain neurons. Nature Neuroscience. 13 (4), 423-430 (2010).
  12. Jaenisch, R., Bird, A. Epigenetic regulation of gene expression: how the genome integrates intrinsic and environmental signals. Nature Geneticset. , 245-254 (2003).
  13. Szulwach, K. E., et al. 5-hmC-mediated epigenetic dynamics during postnatal neurodevelopment and aging. Nature Neuroscience. 14 (12), (2011).
  14. Song, C. X., et al. Selective chemical labeling reveals the genome-wide distribution of 5-hydroxymethylcytosine. Nature Biotechnology. 29 (1), 68-72 (2011).
  15. Shu, L. Q., et al. Genome-wide alteration of 5-hydroxymenthylcytosine in a mouse model of Alzheimer's disease. BMC Genomics. 17, (2016).
  16. Cruvinel, E., et al. Reactivation of maternal SNORD116 cluster via SETDB1 knockdown in Prader-Willi syndrome iPSCs. Human molecular genetics. 23 (17), 4674-4685 (2014).
  17. Bernstein, A. I., et al. 5-Hydroxymethylation-associated epigenetic modifiers of Alzheimer's disease modulate Tau-induced neurotoxicity. Human Molecular Genetics. 25 (12), 2437-2450 (2016).
  18. Wang, F. L., et al. Genome-wide loss of 5-hmC is a novel epigenetic feature of Huntingtons disease. Human Molecular Genetics. 22 (18), 3641-3653 (2013).
  19. Yu, H., et al. Tet3 regulates synaptic transmission and homeostatic plasticity via DNA oxidation and repair. Nature Neuroscience. 18 (6), 836-843 (2015).
  20. Wu, H., Zhang, Y. Reversing DNA methylation: mechanisms, genomics, and biological functions. Cell. 156 (1-2), 45-68 (2014).
  21. Lister, R., et al. Global epigenomic reconfiguration during mammalian brain development. Science. 341 (6146), 1237905 (2013).
  22. Inoue, A., Zhang, Y. Replication-Dependent Loss of 5-Hydroxymethylcytosine in Mouse Preimplantation Embryos. Science. 334 (6053), 194 (2011).
  23. Pastor, W. A., et al. Genome-wide mapping of 5-hydroxymethylcytosine in embryonic stem cells. Nature. 473 (7347), 394-397 (2011).
  24. Ito, S., et al. Role of Tet proteins in 5mC to 5hmC conversion, ES-cell self-renewal and inner cell mass specification. Nature. 466 (7310), (2010).
  25. Wang, T., et al. Genome-wide DNA hydroxymethylation changes are associated with neurodevelopmental genes in the developing human cerebellum. Human Molecular Genetics. 21 (26), 5500-5510 (2012).
  26. Song, C. X., et al. Selective chemical labeling reveals the genome-wide distribution of 5-hydroxymethylcytosine. Nature Biotechnology. 29 (1), 68-72 (2011).
  27. Wang, T., et al. Subtelomeric hotspots of aberrant 5-hydroxymethylcytosine-mediated epigenetic modifications during reprogramming to pluripotency. Nature Cell Biology. 15 (6), 700-711 (2013).
  28. Li, X., et al. Ten-eleven translocation 2 interacts with forkhead box O3 and regulates adult neurogenesis. Nature Communications. 8, 15903 (2017).
  29. Szulwach, K. E., et al. 5-hmC-mediated epigenetic dynamics during postnatal neurodevelopment and aging. Nature Neuroscience. 14 (12), 1607-1616 (2011).
  30. Tao, H., et al. The Dynamic DNA Demethylation during Postnatal Neuronal Development and Neural Stem Cell Differentiation. Stem Cells International. 2018, 2186301 (2018).
  31. Li, X. K., et al. Ten-eleven translocation 2 interacts with forkhead box O3 and regulates adult neurogenesis. Nature Communications. 8, (2017).
  32. Li, X., et al. Epigenetic regulation of the stem cell mitogen Fgf-2 by Mbd1 in adult neural stem/progenitor cells. Journal of Biological Chemistry. 283 (41), 27644-27652 (2008).
  33. Kaech, S., Banker, G. Culturing hippocampal neurons. Nature Protocols. 1 (5), 2406-2415 (2006).

Reprints and Permissions

Request permission to reuse the text or figures of this JoVE article

Request Permission

Explore More Articles

1515

This article has been published

Video Coming Soon

JoVE Logo

Privacy

Terms of Use

Policies

Research

Education

ABOUT JoVE

Copyright © 2025 MyJoVE Corporation. All rights reserved