גידול לימפוציטים במיקרו-כבידה מדומה באמצעות מערכת תרבית תאים סיבובית

Summary

זהו מדריך שלב אחר שלב לשימוש במערכת תרבית תאים סיבובית זמינה מסחרית לתרבית לימפוציטים במיקרו-כבידה מדומה באמצעות כלי תרבית חד-פעמיים מיוחדים. שיטת גידול זו יכולה להיות מיושמת על כל תרבית תאים מסוג תרחיף.

Abstract

בהתחשב במגבלות הנוכחיות של ביצוע מחקר ביולוגי בחלל, קיימות מספר אפשרויות לחשיפת תרבית תאים למיקרו-כבידה מדומה (SMG) על כדור הארץ. אפשרויות אלה נבדלות זו מזו בשיטותיהן, בעקרונותיהן ובהתאמתן לשימוש בתרבית תאי תרחיף. כאן, מתוארת שיטת תרבית תאים לחשיפת לימפוציטים למיקרו-כבידה מדומה באמצעות מערכת תרבית תאים סיבובית זמינה מסחרית, הידועה גם בשם קלינוסטט דו-ממדי או מכשיר כלי קיר מסתובב (RWV). שיטת תרבית תאים זו משתמשת בעיקרון של ביטול וקטור הכבידה הממוצע בזמן כדי לדמות מיקרו-כבידה על ידי סיבוב התאים על ציר אופקי. התאים המגודלים בתרבית במערכת זו ניתנים לקציר ולשימוש בניסויים רבים ושונים כדי להעריך את ההשפעות של מיקרו-כבידה מדומה על תפקוד התאים והפיזיולוגיה. טכניקת הטיפוח עשויה להשתנות מעט בהתאם לסוג התא או לקו שבו נעשה שימוש, אך השיטה המתוארת כאן עשויה להיות מיושמת על כל תרבית תאים מסוג תרחיף.

Introduction

הוכח כי טיסות לחלל משפיעות על היבטים רבים של הפיזיולוגיה האנושית, כולל מערכת החיסון. מחקרים רבים הוכיחו עדויות לחוסר ויסות חיסוני כתוצאה מטיסה לחלל in vivo וחשיפה למיקרו-כבידה מדומה (SMG) במבחנה 1,2,3,4. היבט מרכזי אחד של סביבת החלל המשפיע על הפיזיולוגיה האנושית הוא מיקרו-כבידה. מיקרו-כבידה מתייחסת ל"חוסר משקל" הנחווה עקב כוחות כבידה נמוכים בסביבת החלל⁵. ככל שהאנושות מתכוננת למשימות חלל ארוכות יותר לירח ולמאדים, יש צורך במחקר נוסף כדי להפחית סיכונים בריאותיים חמורים לאסטרונאוטים.

תנאי מיקרו-כבידה אמיתיים למחקר מדעי יכולים להיות מושגים בחלל על סיפון תחנת החלל הבינלאומית (ISS) או בננו-לוויינים המשוגרים למסלול; עם זאת, אפשרויות אלה יכולות להיות יקרות ומורכבות להפליא לתזמור. בהתחשב במגבלות הנוכחיות של ביצוע מחקר ביולוגי בחלל, קיימות מספר אפשרויות לגרימת מיקרו-כבידה אמיתית ו-SMG על כדור הארץ. קיימות פעולות בקנה מידה גדול שיכולות לייצר פרקי זמן קצרים של מיקרו-כבידה אמיתית על כדור הארץ, כולל מגדלי נפילה, טיסה פרבולית ורקטות קול. עם זאת, שיטות אלה אינן מתאימות יתר על המידה לחקר ההשפעות של מיקרו-כבידה על מערכות ביולוגיות, בעיקר בשל פרקי הזמן הקצרים של טיפול במיקרו-כבידה (כלומר, שניות עד 20 דקות). שיטות אלה נידונות ביתר פירוט במקומות אחרים ^5,6. אפשרויות המתאימות לתרבית תאים ביולוגית כוללות התקנים בקנה מידה קטן כגון קלינוסטט דו-ממדי או התקני כלי קיר מסתובבים (RWV) וקלינוסטטים תלת-ממדיים או מכונות מיקום אקראיות (RPM). התקנים אלה יכולים להיות מוקמים בתוך אינקובטורים של תרביות תאים המתוחזקים בטמפרטורה של 37°C ו-5% CO₂, והם מסובבים את תרבית התאים על ציר אופקי (2D) או על שני צירים ניצבים (3D)⁵. עם זאת, חשוב להדגיש כי שיטות גידול אלה מייצרות SMG בניגוד למיקרו-כבידה אמיתית, המושגת ביותר במרחב להקשרים של מחקר ביולוגי.

מטרת המאמר הנוכחי היא להתוות את השלבים לחשיפת לימפוציטים ל-SMG באמצעות מכשיר RWV זמין מסחרית (Table of Materials), אשר נופל תחת סיווג קלינוסטט דו-ממדי. אמנם קיים פרוטוקול כללי זמין מהיצרן להפעלת מכשיר זה, אך המאמר הנוכחי נועד לכסות את שלבי פתרון הבעיות והאופטימיזציה בפירוט רב יותר. מאמר זה מכסה גם את התיאוריה מאחורי איך המכשיר הזה עובד כדי לייצר SMG בתרבית תאי השעיה, במיוחד עם לימפוציטים. בהקשר זה, תרבית תאי תרחיף מתייחסת לתאים הגדלים בחופשיות בתרבית משלימה, ללא היצמדות לפיגומים נוספים. סוגי תאים רבים גדלים בתרבית תאי תרחיף, כולל לימפוציטים. לימפוציטים הם תאים של מערכת החיסון, כולל תאי T, B והרג טבעי (NK), השוכנים באיברי הלימפה ובזרם הדם⁷.

קלינוסטט RWV 2D המתואר כאן פועל על עקרון ביטול וקטור הכבידה הממוצע בזמן 5,6,8,9^, לפיו וקטור הכבידה מחולק באופן אקראי באמצעות סיבוב של תרבית התא על ציר אופקי. זה מושג על ידי התאמת מהירות הסיבוב של כלי התרבית למהירות השקיעה של התאים. כל עוד מהירות הסיבוב של כלי התרבית מותאמת היטב למהירות השקיעה של התאים, התאים נשמרים בנפילה חופשית ואינם מסוגלים לשקוע, כפי שחווים בסביבת החלל. לאחר שלב ההאצה הראשוני, המדיה בכלי התרבית מגיעה בסופו של דבר ל"סיבוב גוף מוצק" לאורך זמן. סיבוב אופקי זה גורם גם לזרימה למינרית בכלי תרבית התא. זה יוצר סביבה "נמוכה גזירה", בהתחשב בכך שלחץ הגזירה המושרה על התאים על ידי זרימה למינרית הוא הרבה פחות מזה של זרימה טורבולנטית. עם זאת, בהתחשב בכך שהקלינוסטט אינו מערכת מושלמת, מוצגות כמה תנועות נוזל למינריות קטנות, אשר גורמות ללחץ גזירה מינימלי על התאים. ככאלה, התאים המרחפים במדיה נגררים על ידי זרימה זו במהלך הסיבוב. במהלך סיבוב אופקי, וקטור הכבידה פועל על התאים ומביא אותם למסלול מתנודד, כפי שניתן לראות באיור 1. מקור קטן נוסף של לחץ גזירה נגרם על ידי התאים "נופלים" דרך התקשורת, מה שגורם לזרימה למינרית סביב התאים. כאשר כלי התרבית מסתובב על ציר אופקי, וקטור הכבידה שחווים התאים מסתובב גם כן. עם הזמן, וקטור הכבידה המסתובב הזה מתקרב בממוצע לאפס; תופעה זו נקראת ביטול וקטור כבידה ממוצע זמן וגורמת למצב של SMG 5,6,8,9. מכשיר זה שימש לחקר ההשפעות של SMG על סוגים רבים של תאים, שחלקם מכוסים בהפניות^10,11,12. דוגמאות נוספות ניתן למצוא באתר האינטרנט של יצרן המכשיר.

התקן RWV זה משתמש ב"כלי יחס גובה-רוחב גבוה" (HARVs) מיוחדים הזמינים דרך יצרן המכשיר. HARV אלה מחזיקים 10 מ"ל של תרבית תאים כל אחד; עם זאת, 50 מ"ל HARV זמינים גם. ניתן להשתמש ב- HARV של 10 מ"ל או 50 מ"ל בהתאם למספר התאים הדרושים כדי להשלים כל בדיקה ניסיונית במורד הזרם, המתוארת בהמשך פרק הדיון. ה-HARV עשויים מפוליקרבונט וכוללים קרום חמצון סיליקון כדי לאפשר חילופי גזים במהלך תרבית תאים. זה שומר על ה- pH של המדיה התאית ומאפשר נשימה תאית יעילה. יש פתח מילוי ראשי ושתי יציאות מזרק מכוסים על פני הספינה (איור 2A). לאחר טעינת תרבית התאים דרך פתח המילוי הראשי, שני מזרקים נטענים על הכלי כדי לסייע בהסרת הבועות. בעת שימוש בכלי 10 מ"ל, שני מזרקים 3 מ"ל לעבוד טוב. מזרק אחד מחובר למכשיר ריק, כאשר המזרק מדוכא לחלוטין, והשני מחובר מלא ב-3 מ"ל של תרבית תאים (איור 2E). אלה משמשים בשילוב כדי להסיר בועות מן הכלי, אשר חשוב לשמירה על הטיפול SMG. באופן כללי, מומלץ להגדיר שני פקדים שליליים, אשר ניתן לכנות את פקד "Flask" ואת "1G" פקד. בקרת "Flask" מתאימה לתאים הגדלים בצלוחית תרבית תאי תרחיף T25 סטנדרטית. בקרת 1G מתאימה לתאים הגדלים בכלי התרבות המיוחד של 10 מ"ל, אשר פשוט ממוקם באינקובטור (כלומר, מבלי להיות נתון לטיפול SMG). עיין בסעיף דיון לקבלת פרטים נוספים על פקדים.

השיטה המתוארת כאן מתאימה לכל חוקר המעוניין לחקור את ההשפעות של SMG על לימפוציטים, עם התמקדות ספציפית בתאי NK באמצעות קו תאי NK92¹³. התוצאות ממחקרים אלה עשויות לעזור לנו להבין טוב יותר ולמתן את ההשפעות השליליות של טיסה לחלל על מערכת החיסון האנושית.

Protocol

הערה: יש להשלים את השלבים הבאים בתוך ארון בטיחות ביולוגי סטרילי.

1. הכנת כלי דם לתרבית תאים

1. הוציאו את כלי התרבות מאריזות הפלסטיק. תייגו כל כלי על השפה בהתאם לסוג התא / הקו בו נעשה שימוש, האם מדובר בבקרה (1G) או בטיפול (SMG), וכל מידע רלוונטי אחר.
2. ייצב את הכלי ופתח את פתח המילוי בזהירות, מבלי לגעת בפתח פתח המילוי יתד/טבעת O. הניחו את הפקק על כרית אתנול, כאשר טבעת היתד/O פונה כלפי מעלה, בזמן שהכלי מתמלא. אין להסיר את הפקקים מיציאות המזרק.
   הערה: אם נגעו בטעות בטבעת היתד/O, רססו את יתד הפקק באתנול 70% והניחו לו לשבת (עם הפנים כלפי מעלה) למשך מספר רגעים תוך כדי מילוי הכלי. כאשר אתם מוכנים לסגור שוב את פתח המילוי, הרימו את המכסה עם מגבון נייר טרי כדי לייבש היטב את המכסה לפני שתחזירו אותו לכלי.
3. לטעון את הכלי עם 10 מ"ל של מדיה מלאה המתאימה עבור תרבית התא באמצעות פיפטה סרולוגית סטרילית, בזהירות להניח את המכסה בחזרה על יציאת המילוי.
   הערה: כאן, קו תאי NK92 NK שימש, אשר היה בתרבית מדיה GM1, כפי שאומת בעבר בניסוי קליני באמצעות תאי NK92 כתרפיה תאית¹⁴. מדיית התרבית שבה נעשה שימוש תלויה בקו התא או בסוג התא המתורבת בתרבית. בדוק באתר האינטרנט של הספק את מתכון המדיה הנכון עבור קו התא או סוג התא שבשימוש.
4. ודא כי מכסי יציאת המזרק ויציאת המילוי סגורים היטב, ומקם את הכלים המלאים באינקובטור CO₂ של 37 מעלות צלזיוס, 5% תוך ביצוע השלבים הבאים כדי להכין את הכלים לתרבית תאים.
   הערה: שלב ראשוני זה עוזר למזער היווצרות בועות גדולות כדי להקל על סילוק בועות מאוחר יותר בשלב 6.

2. הכנת תרבית תאי מלאי למערך הטיפול ב-SMG

1. כאשר אינם בשימוש, לאחסן את התאים המעניינים בטמפרטורה נמוכה מ -130 ° C או, באופן אידיאלי, בשלב אדי חנקן נוזלי.
2. לפחות שבוע לפני הגדרת הטיפול המתוכנן, הפשירו את התאים ותרבו אותם באמצעות מתכון תרבית התאים המתאים שנמצא באתר האינטרנט של הספק. תכננו כמה תאים דרושים כדי להגדיר את הטיפול (פרטים בהמשך השלבים הבאים) וודאו להתחיל את התרביות מוקדם מספיק כדי לאפשר התרבות מספקת והסתגלות לתרבית.
3. אחסנו את תרבית התאים באינקובטור של 37°C, 5% CO₂ . פרטים נוספים על פרקטיקת תרבית תאים סטנדרטית מכוסים במקום אחר¹⁵.
4. ביום של מערך הטיפול המתוכנן ב- SMG, לקבוע את הריכוז ההתחלתי ואת הכדאיות של תרבית התאים הראשונית.
   1. השתמש בשיטה המועדפת לקביעת ריכוז תרבית התאים הראשונית (למשל, המוציטומטר, ViCell, ציטומטריית זרימה וכו '). שימו לב לריכוז התא הבר-קיימא (תאים למ"ל) ולכדאיות (%) של התאים, וודאו שהכדאיות גבוהה באופן אידיאלי מ-85%. פרוטוקול לשימוש בהמוציטומטר ניתן למצוא במקום אחר¹⁶.
5. לקבוע את צפיפות/ריכוז זריעת התאים המתאימים לטיפול ב-SMG על ידי התחשבות בטווח ריכוז התאים האופטימלי של סוג/קו התא המסוים, זמן ההכפלה שלהם ומשך הטיפול ב-SMG. אנא עיין בסעיף הדיון להרחבה נוספת.
   הערה: מניסיון, טווח הריכוז האופטימלי עבור תאי NK92 הוא בין 0.3 x 10 6- 1.2 x 10⁶ תאים/מ"ל. בדרך כלל, תאים אלה יש זמן הכפלה של 48-72 שעות והם מוזנים כל 2-3 ימים ככזה. בהתחשב בכך שאורך הטיפול היה 72 שעות, התאים נזרעו בקצה התחתון של הטווח האופטימלי שלהם ב 0.4-0.5 x 10⁶ תאים / מ"ל. הספק ממליץ גם על צפיפות זריעה זו בעת התחלת תרבית התאים הראשונית מבקבוקון טרי של תאי NK92.
6. קבע את נפח תרבית תאי המלאי הדרוש להגדרת הטיפול והבקרות.
   הערה: 10 מ"ל של תרבית תאים נדרשים לכל קבוצת ניסוי. אם מוקמות שלוש קבוצות ניסוי (כלומר, טיפול אחד: "SMG", ושתי בקרות שליליות: "Flask" ו- "1G"), 10 מ"ל נוספים של תרבית תאים מספיקים כדי להיכנס לצינור של 15 מ"ל המשמש לטעינת מזרקי HARV. זה 40 מ"ל בסך הכל, אשר עשוי להשתנות בהתאם לתכנון הניסוי הספציפי.
7. לקבוע את מספר התאים הדרושים כדי להגדיר את הטיפול.
   1. חשב את מספר התאים הכולל הדרוש על-ידי הכפלת צפיפות הזריעה שנבחרה (תאים/מ"ל) בנפח הכולל הדרוש (מ"ל).
      הערה: מניסיון עם NK92, 40 מ"ל של תרבית תאי מלאי מוכנים כמפורט לעיל בריכוז זריעה של 0.4-0.5 x 10⁶ תאים / מ"ל. ככזה, 16-20 x 10⁶ תאי NK92 נדרשים כדי להשלים את מערך הטיפול הטיפוסי. עבור קו התאים NK92, שימוש במעט יותר תאים עדיף על מעט פחות תאים כדי לשמור על כדאיות גבוהה לאורך הטיפול.
8. קבע את נפח תרבית התאים הראשונית לסחרור.
   1. בהינתן שריכוז התאים מיוצג כתאים/מ"ל, חלק את המספר הכולל של תאים (תאים) הדרושים לניסוי בריכוז ההתחלתי הנמדד של תרבית התא (תאים/מ"ל).
      הערה: לדוגמה, אם נדרשים 16 x 10⁶ תאים והריכוז ההתחלתי של התרבית הוא 0.8 x 10⁶ תאים / מ"ל, יש לסובב 20 מ"ל של התרבית כלפי מטה.
9. בצע את תרבית תאי המלאי הסופית.
   1. צנטריפוגה את מספר התאים המתאים ב 300 x גרם במשך 8 דקות בצינור חרוטי 50 מ"ל.
   2. שפכו בזהירות את הסופרנאטנט למיכל פסולת, והעבירו בעדינות את הצינור כדי להשהות מחדש את הגלולה בנפח שאריות קטן.
   3. השהה מחדש את התאים בנפח המתאים של מדיה שלמה מחוממת (37 ° C) כדי להביא את התרבית לצפיפות הזריעה הרצויה. אמצעי אחסון זה חושב בשלב 2.6.
   4. סגור היטב את הצינור בנפח 50 מ"ל והפוך אותו בעדינות מספר פעמים כדי לערבב היטב את מתלה התא.
      הערה: אם יש צורך ביותר מ-50 מ"ל כדי להגדיר את הניסוי המלא, עדיף לצנטריפוגה את המספר הכולל של התאים הדרושים בצינור חרוטי של 50 מ"ל ולהשהות אותו מחדש במחצית מהנפח הדרוש. לאחר מכן, מערבבים היטב ומבצעים דילול של 1:2 בצינור חרוטי נפרד של 50 מ"ל. לדוגמה, אם יש צורך ב- 100 מ"ל ב- 0.4 x 10 6 תאים / מ"ל, סובב כלפי מטה 40 x 10⁶ תאים בצינור של 50 מ"ל, השהה מחדש ב- 50 מ"ל של מדיה, העבר 25 מ"ל לצינור אחר של 50 מ"ל ולאחר מכן מלא את שניהם ב- 25 מ"ל של מדיה טרייה.

3. העמסת כלי שיט בתרבית תאי מלאי

1. הוציאו את כלי השיט מהאינקובטור.
2. אם נעשה שימוש בבקרת "צלוחיות", טען בקבוק תרבית תרחיף T25 עם 10 מ"ל של תרבית תאים מהמלאי שהוכן לעיל. כמו כן, הוסף 10 מ"ל של תרבית תאי מלאי לצינור חרוטי נפרד של 15 מ"ל, שישמש לטעינת המזרקים.
3. פתחו את פקקי יציאת המזרק כדי להסיר אותם מכלי השיט ולוודא שהסטופקוקים נמצאים במצב פתוח (איור 2C).
4. ייצב את הכלי ופתח את פתח המילוי בזהירות, מבלי לגעת בפתח פתח המילוי יתד/טבעת O. הניחו את הפקק על כרית אתנול, כאשר טבעת היתד/O פונה כלפי מעלה, בזמן שהכלי מתמלא. פתח בזהירות את הפקקים מיציאות המזרק.
5. ודאו שהסטופקוקים נמצאים במצב פתוח (איור 2C). יוצקים בזהירות את המדיה מהכלי למיכל פסולת, מוציאים את המדיה באמצעות פיפטה סרולוגית, או שואפים אותה באמצעות פיפטת פסטר זכוכית סטרילית המחוברת למערכת הוואקום, מבלי לגעת בקרום החמצון.
6. סגור היטב את הצינור החרוטי 50 מ"ל המכיל את תרבית תאי המניות והפוך אותו בעדינות כמה פעמים כדי לערבב היטב את התוכן.
7. צייר 10 מ"ל של מלאי תרבית תאים מצינור 50 מ"ל עם פיפטה סרולוגית סטרילית טרייה. הרימו את הכלי והטו אותו כך שפתח המילוי יהיה כלפי מעלה ולאחר מכן הוציאו בזהירות את מלאי תרביות התאים לתוך הכלי דרך פתח המילוי.
   הערה: היזהר וצפה בעוצמת הקול כדי שהתרבית לא תישפך דרך יציאות המזרק בעת הטיית הכלי.
8. המטרה היא למלא את הכלי עד לראש השפה של פתח המילוי מבלי להישפך; הטו את הכלי בחזרה כלפי מטה בזמן שהוא מתמלא כדי למנוע שפיכה. היזהר לא לגעת בקרום החמצון עם פיפטה כפי שהוא שביר מאוד.
   הערה: תהליך מילוי כלי השיט עשוי לקחת קצת תרגול; היו סבלניים ולכו לאט. אם נוצר סרט בועות בפתח פתח פתח יציאת המילוי, הדבר יפריע לטעינת כלי השיט. אם זה קורה, פגע בעדינות בכלי כדי לשבור את האטם שנוצר על ידי סרט הבועה.
9. לאחר העמסת הכלי, הניחו בזהירות את מכסה פתח המילוי בחזרה, וודאו שאין לגעת ביתד/טבעת O.
10. מניחים על המזרקים.
    הערה: יש שתי יציאות מזרק על פני הכלי (איור 2A). אחד יחזיק מזרק ריק, והשני יחזיק מזרק מלא בתרבית תאים (איור 2E).
    1. ראשית, חבר את המזרק הריק 3 מ"ל לאחת מיציאות המזרק, וודא שהמזרק מדוכא לחלוטין.
       הערה: יש לשאוב את המזרקים מספר פעמים לפני חיבורם לכלי מכיוון שהם מעט הדוקים בהתחלה. עשו זאת בתוך ארון הבטיחות הביולוגי כדי לשמור על סטריליות.
    2. סגור היטב את הצינור החרוטי 15 מ"ל עם 10 מ"ל של תרבית תאים aliquoted ולהפוך אותו בעדינות כמה פעמים כדי לערבב היטב את התוכן.
    3. לאחר מכן, בזהירות חצי לטבול את השני 3 מ"ל מזרק בתרבית התא ולצייר קצת תרבית. כדי למזער את בועת האוויר בחלק העליון של המזרק, לחלוטין לחלק את זה בחזרה לתוך הצינור, ולאחר מכן לצייר 3 מ"ל של התרבית.
    4. חברו את המזרק המלא ליציאת המזרק הנותרת, וחטאו בזהירות את המזרקים ומסביב לשקע המילוי בעזרת פד אתנול. אין לקבל אתנול על קרום החמצון. עכשיו הספינה מוכנה להיפטר בועות.
       הערה: המזרק השני המלא עבור הכלי השני קשה יותר לטעון בהתחשב בעומק של צינור 15 מ"ל. זה עוזר להטות את הצינור תוך כדי מילוי המזרק כדי לשמור על האטימה בין המזרק להיות מלא לבין תרבית התא.
    5. חזור על שלבים 3.3-3.10 עבור הכלים הנותרים. אם נותרה כמות מעט לא מספקת של תרבית תאים בצינור החרוטי של 50 מ"ל עבור הכלי האחרון (למשל, 9.5 מ"ל במקום 10 מ"ל), לשחזר את הכמות הנותרת מהצינור החרוטי 15 מ"ל המשמש לטעינת המזרקים.
       הערה: השלבים הבאים אינם צריכים להתבצע בתוך ארון בטיחות ביולוגי סטרילי, מכיוון שכלי השיט הוא כעת מערכת סגורה וסטרילית.

4. הסרת בועות מהכלים

הערה: בועות הן בלתי נמנעות בתוך מערך זה, ויש להסיר אותן באופן עקבי במהלך הטיפול (איור 3). אנא עיין בסעיף הדיון לקבלת פרטים נוספים על כך.

1. ודאו שפקקי יציאת המזרקים נמצאים במצב סגור (איור 2D) כדי להגביל את נדידת התאים והבועות מהמזרקים לתוך כלי הדם. זה חשוב במיוחד בהמשך הטיפול (נדון בהמשך). כדי לאסוף את הבועות הראשוניות, להפוך את הכלי הפוך ולהכות בצד של זה כמה פעמים.
2. הפכו במהירות את הכלי לאחור כך שיפנה כלפי מעלה, ואז בזווית קלה כשפניו כלפי חוץ, כך שכל הבועות יצופו לצד העולה של הכלי (איור 3B).
3. תמרנו את הבועות מתחת לנמל עם המזרק הריק וצפו בהן מתחילות להיכנס לנמל. פתחו את שני פקקי היציאה של המזרק (איור 2C).
4. הכו בעדינות בכלי כדי לעודד את הבועות לצוף אל תוך המזרק הריק. לאט למצוץ את הבועות הגדולות עם מזרק ריק, תוך לחיצה בזהירות על המזרק המלא, כדי לשמור על הלחץ בכלי כך קרום חמצון לא להתפוצץ.
   הערה: יהיה צורך לשאוב בועות גדולות יותר, בעוד שניתן לעודד בועות קטנות ומיקרו-בועות לצוף לתוך המזרק על ידי תמרונן לתוך יציאות המזרק ופגיעה עדינה בכלי השיט. לאחר מספר שעות של טיפול, חשוב מאוד למזער את "הזיהום הצולב" בין התאים במזרקים לבין התאים בכלי התרבית. הסיבה לכך היא שהתאים במזרקים אינם מקבלים את אותה כמות של חמצון או חשיפה ל- SMG כמו התאים בכלי הדם.
5. חזור על שלבים 4.2-4.4 כמה פעמים כדי לוודא שכל הבועות הוסרו. הסר את כל הבועות כולל מיקרו-בועות מכלי הדם.
   הערה: ניתן לראות בקלות את הבועות דרך קרום החמצון (גב הכלי) כאשר הכלי מכוון למקור אור (חלון, אור וכו '). בעת ביצוע שלבים 4.2 ו -4.3, התבונן בבועות הנעות מגב הכלי כדי לעזור לדמיין את הבועות הקשות יותר לראייה.
6. לאחר הסרת הבועות ביעילות, סגור את פקקי יציאת המזרק. יש להשאיר את המזרקים דולקים במהלך הטיפול כדי לאפשר הסרת בועות לאחר מכן, ולהבטיח שהנפח בשני המזרקים יהיה שווה בקירוב.

5. חיבור הכלי לבסיס המסתובב

1. נגב בזהירות את פני השטח של הבסיס המסתובב וכבל הסרט עם 70% אתנול.
2. ודא שכבל רצועת הכלים המצורף מחובר לספק הכוח. מניחים את הבסיס המסתובב באינקובטור ומחברים את כבל הסרט לבסיס. ודא שספק הכוח נשמר בקרבת האינקובטור אך מחוצה לו. איור 4 מתאר את הבסיס המסתובב ואת ספק הכוח להקשר.
3. חבר את כלי הטיפול SMG על ידי יישור חוטי הכלי ליתד המסתובבת וסיבוב עדין של היתד המסתובבת על הבסיס נגד כיוון השעון. ודא שכלי השיט מחובר היטב. ודא כי האינקובטור שומר על קרוב ל -100% לחות על ידי מילוי מגש המים בכמות מספקת של מים באוסמוזה הפוכה (RO) אוטוקלאבית.
4. בחר מהירות סיבוב (סל"ד) מתאימה. התאימו את מהירות הסיבוב כך שתתאים למהירות השקיעה של התאים, כך שהתאים לא "ייפלו דרך המדיה" כלל אלא יסתובבו בסופו של דבר במסלול מסלול קטן. תופעה זו מוצגת כתרשים סכמטי באיור 1.
   הערה: החברה ממליצה להתחיל את הסיבוב ב 8-10 סל"ד עבור לימפוציטים. במקרה זה, תאי NK92 סובבו במהירות 11 סל"ד, כפי שהודגם במאמר קודם¹⁷. בהתאם לגודל התא, יש להגדיל את הסל"ד עבור תאים גדולים יותר ולהקטין עבור תאים קטנים יותר. אותה תבנית חלה אם התאים המשמשים נוטים להתקבץ במהלך התרבית. אנא עיין בסעיף הדיון לקבלת פרטים נוספים על כך.

6. טיפול

1. בחר אורך טיפול מתאים ליישום המחקר, אשר עשוי להיות תלוי אילו פרמטרים של תפקוד התא / פיזיולוגיה נבדקים. אנא עיין בסעיף הדיון לקבלת פרטים נוספים על כך.
   הערה: במקרה זה, תאי NK92 היו נתונים לטיפול SMG של 72 שעות, בהתבסס על תוצאות ממחקרים קודמים^18,19. בועות ייווצרו באופן בלתי נמנע במהלך הטיפול ויהיה צורך להסירן. ניתן לעצור את הסיבוב לזמן קצר ולהפעיל אותו מחדש כדי להקל על כך. ראה שלב 7.1 כיצד להסיר בבטחה את כלי ה- SMG.
2. ביום הראשון של הגדרת הטיפול, בדוק היווצרות בועות כל כמה שעות על ידי חזרה על שלבים 4.2-4.6. לאחר היום הראשון, בדוק את כלי הדם לפי הצורך (לפחות פעם ביום), חזור על שלבים 4.2-4.6, עד לסיום הטיפול.

7. קצירת תאים מהכלים

1. לאחר שחלף אורך הטיפול המתוכנן, עצרו את הסיבוב ופרקו את המנגנון. הסר את כלי הטיפול SMG על ידי החזקת כלי הדם בעדינות נייח תוך סיבוב היתד המסתובבת של המכשיר בכיוון השעון.
2. הביאו את בקבוק הבקרה, שלטו בכלי 1G והשתמשו בכלי SMG מטופל לארון בטיחות ביולוגי סטרילי.
3. קחו כל כלי (1G ו-SMG בלבד; לא את ה-Flask) והפכו אותו כך שיפנה כלפי מטה והכו בו בעדינות כדי להכניס את כל התאים להשעיה. לאחר מכן, סובב את הכלי על צדו עם פתח המילוי לכיוון החלק התחתון והכה שוב בכלי כדי לעודד את התאים לכיוון פתח המילוי לשאיפה יעילה.
4. טפל בכל כלי בנפרד. שחררו את המזרקים משתי היציאות והשליכו אותם לפסולת המסוכנת ביולוגית. פתח את הסטופקוקים ביציאות המזרק.
5. בזהירות להסיר את מכסה יציאת מילוי ולצייר את התוכן באמצעות פיפטה סרולוגית סטרילית 10 מ"ל, להטות את הכלי כפי שהוא מתרוקן. הוציאו את התוכן של קבוצות "Flask", "1G" ו- "SMG" לתוך צינורות חרוטיים 15 מ"ל המסומנים בנפרד.
6. סגור כל צינור והפוך אותם בעדינות כמה פעמים כדי לוודא שהם מעורבבים כראוי. השתמש בשיטה המועדפת לקביעת הריכוז והכדאיות של תרבית התאים המתקבלת כדי להתכונן לשימוש בבדיקות הניסוי הבאות.

תוצאות

שיטת גידול זו נחשבת מוצלחת אם 1) התפשטות התאים עקבית בקירוב בין קבוצות הביקורת (ובאופן אידיאלי כל קבוצות הניסוי), 2) ההתרבות מתאימה בהתחשב בצפיפות הזריעה, משך הטיפול וזמן ההכפלה של סוג התא/קו, ו-3) הכדאיות של התאים שנקטפו היא 85% ומעלה (טבלה 1 ). באופן אידיאלי, התאים המתקבלים צריכים להיות...

Discussion

ככל שהאנושות מתכוננת למשימות חלל ארוכות יותר לירח ולמאדים, יש צורך במחקר נוסף כדי להפחית סיכונים בריאותיים חמורים לאסטרונאוטים. היבט מרכזי אחד של סביבת החלל המשפיע על הפיזיולוגיה האנושית הוא מיקרו-כבידה. כאן, תוארה שיטת תרבית תאים לחשיפת לימפוציטים ל- SMG באמצעות מערכת תרבית תאים סיבובית ז...

Materials

Name	Company	Catalog Number	Comments
Disposible High Aspect Ratio Vessel (HARV) (10 mL)	Synthecon	D-410	Gamma sterilized culture vessels (4/box)
Luer-Lok tip syringes (3 mL)	BD	309657	For attaching to the 10 mL HARVs
NK92 Cell-line	ATCC	CRL-2407
Rotary Cell Culture System (RCCS)	Synthecon	RCCS-4D	Rotating wall vessel device; 2D clinostat
Sarsedt 15 mL conical tubes	Fisher Scientific	50-809-220
Sarsedt 50 mL conical tubes	Fisher Scientific	50-809-218
Sarsedt sterile serological pipettes	Fisher Scientific	86.1254.001
T25 suspension culture flasks	Sarsedt	83.3910.502	For flask control