כרומטוגרפיה של עמודה

Overview

מקור: המעבדה של ד"ר ג'ימי פרנקו - מכללת מרימק

כרומטוגרפיה של עמודה היא אחת הטכניקות השימושיות ביותר לטיהור תרכובות. טכניקה זו משתמשת בשלב נייח, אשר ארוז בעמודה, ושלב נייד העובר דרך העמודה. טכניקה זו מנצלת את ההבדלים בקוטביות בין תרכובות, ומאפשרת להפריד בין המולקולות בקפדנות. 1 שני השלבים הניויים הנפוצים ביותר לכרומטוגרפיה של העמוד הם ג'ל סיליקה (SiO2)ואלומינה (Al2O3), כאשר השלבים הניידים הנפוצים ביותר הם ממיסים אורגניים. 2 הממסים שנבחרו לשלב הנייד תלויים בקוטביות של המולקולות המטוהרות. בדרך כלל יותר תרכובות קוטב דורשות יותר ממיסים קוטביים על מנת להקל על המעבר של המולקולות דרך השלב הנייח. לאחר השלמת תהליך הטיהור ניתן להסיר את הממס מהשברים שנאספו באמצעות מאייד סיבובי כדי להניב את החומר המבודד.

Procedure

1. סיליקה ג'ל סלברי

  1. יוצקים את ג'ל הסיליקה לבקבוק ארלנמייר. המשקל של חומר האריזה צריך להיות בערך 50x מזה של המדגם המופרד. אם התרכובות המופרדות יש ערכי Rf דומים מאוד, אז זה עשוי לדרוש באמצעות כמות גדולה יותר של סיליקה לכל מדגם, שהוא המקרה בדוגמה זו.
    1. מניחים 10 גרם של סיליקה בבקבוק ארלנמאייר, שכן 50 מ"ג של מדגם (45 מ"ג פלואורנון ו 5 מ"ג של טטרפנילפורפירין) מבודדים.
  2. הוסף את מערכת הממס (hexane /dichloromethane, 70%: 30%) לבקבוק ארלנמאייר המכיל את ג'ל סיליקה. הוסף מס

Log in or to access full content. Learn more about your institution’s access to JoVE content here

Results

המדגם המכיל תערובת של טטרפנילפורפירין (TPP, 5 מ"ג) ופלואורנון (45 מ"ג) הופרדו בהצלחה וכל תרכובת בודדה. ה-TPP חמקה תחילה מהטור כלהקה סגולה-אדמדמה כהה, והפלואורנון התחמק לאחר מכן מהטור כפס צהוב (איור2). השברים הנבהרים נאספו במבחנות וזוהו בצבעים הייחודיים שלהם

Log in or to access full content. Learn more about your institution’s access to JoVE content here

Application and Summary

תקציר

כרומטוגרפיה של העמודים היא שיטה נוחה ורב-תכליתית לטיהור תרכובות. שיטה זו מפרידה בין תרכובות המבוססות על קוטביות. על ידי ניצול הבדלים בקוטביות של מולקולות, כרומטוגרפיה של העמודים יכולה להפריד בקלות תרכובות לפי הקצב שבו התרכובות עוברות דרך השלב הנייח של העמו?...

Log in or to access full content. Learn more about your institution’s access to JoVE content here

References

  1. Mayo, D. W.; Pike, R. M.; Forbes, D. C., Microscale organic laboratory : with multistep and multiscale syntheses. 5th ed.; J. Wiley & Sons: Hoboken, NJ; p xxi, 681 p (2011).
  2. Armarego, W. L. F.; Chai, C. L. L., Purification of laboratory chemicals. 5th ed.; Butterworth-Heinemann: Amsterdam; Boston; p xv, 609 p (2003).
  3. Silverman, R. B.; Holladay, M. W., The organic chemistry of drug design and drug action. Third edition / ed.; Elsevier/AP, Academic Press, is an imprint of Elsevier: Amsterdam ; Boston; p xviii, 517 pages (2014).
  4. Mortensen, D. S.; Perrin-Ninkovic, S. M.; Shevlin, G.; Elsner, J.; Zhao, J.; Whitefield, B. et. al. Optimization of a Series of Triazole Containing Mammalian Target of Rapamycin (mTOR) Kinase Inhibitors and the Discovery of CC-115. Journal of Medicinal Chemistry (2015).
  5. Davies, D. R.; Johnson, T. M., Isolation of Three Components from Spearmint Oil: An Exercise in Column and Thin-Layer Chromatography. Journal of Chemical Education,84 (2), 318 (2007).
  6. Taber, D. F.; Hoerrner, R. S., Column chromatography: Isolation of caffeine. Journal of Chemical Education, 68 (1), 73 (1991).