המחקר נתמך כספית על ידי קרן לונדבק, אליז קארן ג&#39;נסן קרן המחקר של קרן הבריאות דנמרק אזור המרכז המכון לרפואה קלינית ארהוס החולים האוניברסיטאי. אנו מכירים בהכרת תודה את הסיוע מיומן של דונלד F סמית, אנדרס Steen Soerensen, הנריק Soerensen, Asbjoern Ettrup-כריסטנסן, ואת צוות Paaskehoejgaard.

1. צנרור <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> ציוד הדרוש אינטובציה endotracheal: אמצעי אוורור בסיוע, במתלים לפתיחת הפה, יניקה בלחץ נמוך עם קצה קהה, ראי גרון וטרינרי עם להב ישר בין 17 ו - 25 ס&quot;מ, stylet, מזרק עם אוויר, סטטוסקופ ו דבק. עבור מבוגרים גטינגן minipigs גודל הצינורית endotracheal 5-7 מ&quot;מ מתאים 10. בסרטון זה צינור 5.5 מ&quot;מ היה בשימוש 10. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> Minipig ממוקם על הגב שלו נתמך כראוי על מנת להבטיח את המעבר בגרון הוא המשיך ישר. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> הלשון היא שלפה מעט הלסת ופתח על ידי עוזר ללא overextending את הראש. סיבוב של דרכי הנשימה או הרחבה מוגזמת של הראש יכול לחסום דרכי הנשימה, מה שהופך את פתיחת בגרון קשה יותר לזהות סיבוך מיקום קנה הנשימה של הצינור. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> ראי גרון מועבר לתוך חלל הלוע ומשמשת לדכא את הלשון, מה שהופך את מכסה הקנה גלוי. טיפ של יניקה משמש כדי לעקור את מכסה הקנה מן החיך הרך. טיפ של ראי גרון משמש מכן ללחוץ על מכסה הקנה כלפי מעלה, לעבר בסיס הלשון, חושף את הפתח בגרון. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> Arytenoids הסחוסים ואת מיתרי הקול להיכנס להציג את הצינור endotracheal מתקדמת בעדינות עם רוטציה קלה, לתוך קנה הנשימה במהלך הפקיעה. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> השרוול הצינור הוא מנופח בהתאם למפרטים לייצור תוך הקפדה להימנע האינפלציה העולה, אשר עשוי לגרום לנפיחות בצקת של דרכי הנשימה. חזירים יש הסמפונות לאוורר את האונה הימנית pulmonal גולגולתי. לכן, חשוב למקם את הצינור מעל הסתעפות קנה הנשימה. זה הקל באמצעות צינור בגודל הנכון ובעיקר על ידי הידוק הקצה הפרוקסימלי של הצינור ברמה של חוטם באמצעות דבק. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> כאשר הוא מחובר לצינורות minipig כראוי, מעבר חופשי של אוויר צריך להיות מורגש דרך הצינור, וכן האזנה החזה צריך לחשוף קולות הנשימה בצד שמאל וימין של בית החזה. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> עם חיבור למכונת הנשמה עם מערכת ניטור minipig, פיזיולוגיים הנשיפה דו תחמוצת הפחמן ערכים צריכים להיות מדידים פחמן דו חמצני עקומה כי בעקבות דפוס הנשימה החליט על ידי הגדרות ההנשמה 6,10 ניתן לצפות. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> דו תחמוצת הפחמן וערכים oximetry עשוי בתחילה להיות מושפע premedication ו אינדוקציה הרדמה. אולם ערכים אלה צריכים מהר לחזור לשגרה עם אוורור נאות 6,10. כל סימן של כיחלון למרות אוורור מלאכותי בעזרת מצביעים מיקום לא תקין של הצינור. הטעות הנפוצה ביותר היא המיקום מכוונת של צינור הוושט. </li></ol> 2. שלפוחית ​​השתן Transurethral צנתור <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> הליך זה רק חזירות. עבור minipigs מבוגר גודל קטטר פולי צרפתי 8 או 10 מתאים. בשל העקמומיות והגודל של פתח השופכה חיצוני, קטטר עם stylet עדיפה. ספקולום האף ניתן להשתמש minipigs קטן ואילו ספקולום עם להבים כבר יכול להיות שימושי עבור בעלי חיים גדולים. הציוד הדרוש כולל גם קצה קהה מלקחיים, מזרק עם חומר סיכה, מלוחים ואת מערכת סגורה שתן שקית הניקוז. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> כדי הטובה ביותר לחזות את פתח השופכה החיצוני במהלך צנתור minipig ממוקם על הגב עם תמיכה תחת האזור המותני, בעוד עוזר מושך את רגליו האחוריות cranially. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> ספקולום משומנים מוכנס ופתח לדמיין את קיר הנרתיק. פתיחת הנקבה השופכה החיצוני ממוקם בקומה של הנרתיק כשליש עד מחצית המרחק אל צוואר הרחם (איור 1A). עם זאת, כי החיה ממוקם על הגב, את המיקום של פתח השופכה יופיעו להיות הפוכה. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> קטטר נשלטת עם מלקחיים הבוטה-טיפ, אז את קצה הצנתר הוא המשכו של מלקחיים. בזהירות להוסיף את צנתר פתח השופכה (איור 1B). השופכה הוא טראומה בקלות אם כוח רב מדי משמש במהלך צנתור. עם זאת, התנגדות קלה עשויים להיות בתחילה הרגשתי עד הקטטר עבר את שריר הסוגר השתן חיצוני. אם הבעיה נמשכת, זה עשוי להצביע על כך החיה אינה מורדמת מספיק. הפתרון הוא לחכות קצת ולתת ההרדמה ייכנסו לתוקף שלה. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> כמו קטטר מגיע שלפוחית ​​השתן, להסיר את stylet, והשתן זורם יראו. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> לנפח את הבלון עם מלח על פי מפרט של ייצור ומשוך בעדינות את הקטטר החוצה עד הבלון תופס בצוואר שלפוחית ​​השתן. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> צרף את מערכת סגורה ניקוז שקית שתן. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> את הקטטר Tape את הזנב, כדי למנוע תזוזה מקרית של קטטר, כאשר הטיפול בבעלי חיים. </li></ol> 3. עורק הירך ואת catheterizatio ורידn <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> הציוד הדרוש כולל: אזמל, קהה קצה מספריים כירורגיות, מלקחיים רקמות, קטן קהה קצה מלקחיים כירורגיים, מפשק קטן עצמית שמירה על הרקמה, מחזיק מחט, חילופי כירורגית, תפר עם מחט, מלוחים heparinized כמו סומק, נוזל לשמור patency קטטר שני 18-מד IV הצינורית, שני 4-צרפתית נדני קצה Brite עם ההיכרויות וחוטי Seldinger מדריך. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> עומק ההרדמה יש לבחון על ידי בדיקת רפלקס הכאב interdigital לפני ביצוע ההליך. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> עורק וריד הירך הם התקרבו עם minipig הניח על גבו ואת הרגל האחורית חזר רוחבית. זיהוי בקפל העור בין שריר gracilis ו סארטוריוס בו פעימה של החלק השטחי של העורק saphenous המדיאלי נעלם. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> לעשות חתך אורכי עור שטחי הגולגולת לנקודה זו, ובכך למנוע פגיעה בשוגג כלי saphenous המדיאלי. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> השתמש קצה קהה מספריים לנתח את הרקמה הבסיסית תת עורית. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> החטיבה fascia של שריר סארטוריוס ו gracilis מחולק גולגולתי לאתר חדירה של כלי saphenous המדיאלי, הראשון עם בוטה, טיפ קטן מלקחיים כירורגיים ואז דיגיטלית. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> שתי קבוצות שרירים מופרדים עם מפשק עצמית תוך שמירה על רקמות קטן נזהרת שלא לפגוע בעצב הירך וכלי. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> עורק הוא מבודד לאורך של כ 1-2 ס&quot;מ באמצעות דיסקציה קהה. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> סובב את המחט venflon משופעים כך לומן פונה מעלה. כופף את המחט קצת אז זה יהיה לעקוב אחר העקמומיות כלי בקלות רבה יותר. זכור כדי להבטיח המחט עדיין יכול לנוע קדימה ואחורה עם מעט מאמץ. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> העורק הוא ניקב, המחט חזר בו ואת חוט מדריך Seldinger מוחדר דרך הצינור venflon. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> הסר את הצינור venflon בעדינות תוך הפעלת לחץ על העורק כדי להבטיח קיבוע של guidewire. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> נדן עם ההיכרויות מוכנס מעבר לגדר Seldinger מתקדמים למיקום הרצוי, ולאחר מכן ההיכרויות וחוטי Seldinger מוסר. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> וריד הירך נמצא ממש מתחת ו המדיאלי אל העורק. לאחר בידוד וריד באמצעות לנתיחה בוטה, הווריד היא cannulated כפי שתואר לעיל עבור העורק. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> כדי לוודא כי הן בווריד ובעורק הם צינתור כראוי, להקיז דם מן נדני וגם להשוות את הצבע של הדגימות. בכל פעם ציור דגימת דם, זכור לאחר מכן לשטוף את צנתרים עם מלוחים heparinized כדי לשמור patency קטטר. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> צנתרים מובטחות והעור סגורה עם תפרים מעטים. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> לולאה כלי ניתן להציב סביב העורק לווריד כדי לקבע את כלי לפני לנקב. למרות יתרונותיה, אנחנו בדרך כלל להימנע צעד נוסף, מכיוון שהיא דורשת לנתיחה עודף של כלי והוא יכול להגביר את הסיכון של פגיעה הענפים הצדדיים ועמוק. </li></ol> 4. Transcardial זלוף <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> הציוד הבאים דרוש הליך: מערכת זלוף (איור 2), נוזלים זלוף רלוונטי, אזמל, קהה קצה מספריים כירורגיות, המזמרה עצם, ושני גדול עצמית מלקחיים מחזיק מהם אחד לפחות יש קצה מעוגל. שמירה עצמית מפשק sternal אין זה הכרחי, אבל זה מקל על הליך ניכרת. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> זלוף Transcardial חייב להתבצע בחדר מאוורר היטב עם מערכת שאיבת עשן גבוה כוח ומתקני המאפשרים איסוף נוזלים ודם perfusate לסילוק בטוח שלאחר מכן. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> לאחר הזרקה לווריד מנה קטלנית של pentobarbital, לבדוק את רפלקס הכאב interdigital לפני שתמשיך. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> הגישה הטובה ביותר ללב אבי העורקים מסופק באמצעות sternotomy חציון. ביצוע חתך עמוק בעור האורך, המשתרעת manubrium לתהליך xiphoid של עצם החזה. קבל גישה לחלל החזה על ידי ביצוע חתך קטן ממש מתחת לסרעפת בתהליך xiphoid. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> הכנס את המזמרה העצם לתוך חלל בית החזה ולחצות את עצם החזה. יש להקפיד בעת ביצוע הליך זה, כי הלב יכול להיות חסיד במקום כלשהו לצד הפנימי של עצם החזה. לכן, לוודא את להב המספריים עצם מוטלת בכל עת בתוך חלל בית החזה כלפי החלק הפנימי של עצם החזה. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> לאחר החזה כבר מחולק, לשים מפשק עצמית שמירה על sternal ולפתוח את חלל בית החזה. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> אם עדיין שלם, לעשות חתך קטן קרום הלב בשיא של הלב ואז דיגיטלית לפתוח את שק קרום הלב. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> זהה את החדר השמאלי, את אפרכסת ימין אבי העורקים יחד עם הווריד caval מעולה (איור 1C) </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> ביצוע חתך שטחי קטן ליד הקודקוד של הלב וגישה החדר השמאלי על ידי ניקוב שריר הלב עם מכשיר קהה שקצהו. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> הכנס את perfusיון הצינורית בתוך החדר השמאלי ולעבור את קצה הצינורית cranially לתוך האאורטה. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> כאשר צינורית מורגשת בין אצבעות באבי העורקים, מהדק את הצינורית למקום עם עצמי מחזיק מלקחיים מעוקל. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> עושים חתך אפרכסת הנכון להתחיל הזרקת מקבע באמצעות צינורית זלוף. זרימה של perfusate באבי העורקים ניתן לחוש, ודם ינהרו דרך אפרכסת ימין חרות כמו זרימת perfusate לתוך כלי minipig ממשיך. שימו לב איך זלוף מערכתית עם paraformaldehyde גורם hyperextension של הגפיים ומרטיט של השרירים השטחיים בשל אלדהיד צולבות הצמדה של העצבים והשרירים. בעת שימוש במערכת זלוף מופעל על ידי אוויר דחוס במקום הכבידה, הקפד להסיר את הצינורית, או מהדק צינור סיליקון ברור, לפני מיכל ריק, על מנת להימנע מלהיכנס אוויר מערכת כלי הדם. </li></ol><img src="/files/ftp_upload/2652/2652fig1.jpg" alt="איור 1" /> באיור 1. ת: פתיחת נקבה גטינגן minipig השופכה החיצוני B:. פתיחת השופכה לאחר החדרת קטטר C:. התצוגה הגחון של הלב minipig לאחר sternotomy החציוני. <img src="/files/ftp_upload/2652/2652fig2.jpg" alt="איור 2" /> איור 2. ת: מערכת זלוף מורכב צינורות היניקה עם שסתום הלחץ מתכווננת מנוף משמש לשליטה כניסה של אוויר דחוס לתוך המיכל מחזיק את perfusate. צינורות סיליקון שקוף המחבר את מיכל צינורית בוטה, קצה עשוי צינור פלדה 4 מ&quot;מ B ​​ו-C:. ידי דחיסת מנוף מפרצון, הלחץ עולה המיכל ואת perfusate מונע דרך צינורית D:. כאשר ברור צינורות סיליקון צינורית מלאים perfusate, הזרימה היא הפסיקה עם מלחציים והמערכת מוכן לשימוש.

<ol>
	<li>Lind, N. M., Moustgaard, A., Jelsing, J., Vajta, G., Cumming, P., Hansen, A. K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+use+of+pigs+in+neuroscience:+modeling+brain+disorders.">The use of pigs in neuroscience: modeling brain disorders.</a> Neurosci Biobehav Rev. 31, 728-751 (2007).</li><li>Ettrup, K. S., Sorensen, J. C., Bjarkam, C. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+anatomy+of+the+Gottingen+minipig+hypothalamus.">The anatomy of the Gottingen minipig hypothalamus.</a> J Chem Neuroanat. 39, 151-165 (2010).</li><li>Larsen, M. O., Rolin, B., Sturis, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Measurements+of+insulin+responses+as+predictive+markers+of+pancreatic+beta-cell+mass+in+normal+and+beta-cell-reduced+lean+and+obese+Gottingen+minipigs+in+vivo.">Measurements of insulin responses as predictive markers of pancreatic beta-cell mass in normal and beta-cell-reduced lean and obese Gottingen minipigs in vivo.</a> Am J Physiol Endocrinol Metab. 290, 670-677 (2006).</li><li>Forster, R., Ancian, P., Fredholm, M., Simianer, H., Whitelaw, B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+minipig+as+a+platform+for+new+technologies+in+toxicology.">The minipig as a platform for new technologies in toxicology.</a> J Pharmacol Toxicol Methods. , (2010).</li><li>Popov, A. F., Dorge, H., Hinz, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Accelerated+intimal+hyperplasia+in+aortocoronary+internal+mammary+vein+grafts+in+minipigs.">Accelerated intimal hyperplasia in aortocoronary internal mammary vein grafts in minipigs.</a> J Cardiothorac Surg. 3, 20-20 (2008).</li><li>Swindle, M. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=.">.</a> Swine in the Laboratory: Surgery, Anesthesia, Imaging, and Experimental Techniques. , (2007).</li><li>Bjarkam, C. R., Cancian, G., Glud, A. N., Ettrup, K. S., Jorgensen, R. L., Sorensen, J. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=MRI-guided+stereotaxic+targeting+in+pigs+based+on+a+stereotaxic+localizer+box+fitted+with+an+isocentric+frame+and+use+of+SurgiPlan+computer-planning+software.">MRI-guided stereotaxic targeting in pigs based on a stereotaxic localizer box fitted with an isocentric frame and use of SurgiPlan computer-planning software.</a> J Neurosci Methods. 183, 119-126 (2009).</li><li>Val-Laillet, D., Blat, S., Louveau, I., Malbert, C. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+computed+tomography+scan+application+to+evaluate+adiposity+in+a+minipig+model+of+human+obesity.">A computed tomography scan application to evaluate adiposity in a minipig model of human obesity.</a> Br J Nutr. , 1-10 (2010).</li><li>Larsen, M., Bjarkam, C. R., Stoltenberg, M., Sorensen, J. C., Danscher, G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=An+autometallographic+technique+for+myelin+staining+in+formaldehyde-fixed+tissue.">An autometallographic technique for myelin staining in formaldehyde-fixed tissue.</a> Histol Histopathol. 18, 1125-1130 (2003).</li><li>Alstrup, A. K. O. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Anaesthesia+and+Analgesia+in+Ellegaard+G&#246;ttingen+minipigs.">Anaesthesia and Analgesia in Ellegaard G&#246;ttingen minipigs.</a> Jannerup.DK. , (2010).</li><li>Jensen, K. N., Deding, D., Sorensen, J. C., Bjarkam, C. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Long-term+implantation+of+deep+brain+stimulation+electrodes+in+the+pontine+micturition+centre+of+the+Gottingen+minipig.">Long-term implantation of deep brain stimulation electrodes in the pontine micturition centre of the Gottingen minipig.</a> Acta Neurochir (Wien). 151, 785-794 (2009).</li><li>Cumming, P., Moller, M., Benda, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+PET+study+of+effects+of+chronic+3,4-methylenedioxymethamphetamine+(MDMA,+"ecstasy")+on+serotonin+markers+in+Gottingen+minipig+brain.">A PET study of effects of chronic 3,4-methylenedioxymethamphetamine (MDMA, "ecstasy") on serotonin markers in Gottingen minipig brain.</a> Synapse. 61, 478-487 (2007).</li><li>Olsen, A. K., Keiding, S., Munk, O. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Effect+of+hypercapnia+on+cerebral+blood+flow+and+blood+volume+in+pigs+studied+by+positron+emission+tomography.">Effect of hypercapnia on cerebral blood flow and blood volume in pigs studied by positron emission tomography.</a> Comp Med. 56, 416-420 (2006).</li><li>Jonkers, B. W., Sterk, J. C., Wouterlood, F. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Transcardial+perfusion+fixation+of+the+CNS+by+means+of+a+compressed-air-driven+device.">Transcardial perfusion fixation of the CNS by means of a compressed-air-driven device.</a> J Neurosci Methods. 12, 141-149 (1984).</li></ol>

כל ההליכים אושרו על ידי בעלי חיים הדני פקוח ניסויית, הדני משרד המשפטים נערכו על פי &quot;עקרונות של טיפול בבעלי חיים במעבדה&quot; (NIH פרסום מס &#39;86-23, מתוקנת 1985).

מצגת זו מספקת צעד אחר צעד הוראות ויזואלי כיצד לבצע ארבע פרוצדורות משמשים לעתים קרובות minipig מחקר 12,13. הטכניקות המתוארות ניתן להשתמש הסתגלות קטנה או לא חזירים landrace ושאר חיות מחקר גדולים כמו כלבים וכבשים 14. טכניקה אספטי חייב להיות מועסק על מנת למנוע זיהומים, בעת ביצוע הנהלים המתואר מחקרים הישרדות. אינדוקציה של הרדמה חשוב למען רווחת בעלי חיים מסיבות מדעיות, ויש לספק העדר רפלקסים של הקרנית ואת הרפיית שרירים טובה, לפני אינטובציה endotracheal הוא ניסה. עם זאת, כי הרדמה המשמשים אינדוקציה לא ניתנות במינונים קבועים, אבל מנוהל עד האפקט הרצוי הוא ציין, חשוב לעקוב מקרוב אחר בעלי חיים עקב הסכנה של דום נשימה, במיוחד אם באמצעות propofol 6,10. עבור אינטובציה לקנה הנשימה, השימוש בתרסיס xylocaine או להרפיית שרירים יכולים להקל על החדרת הצינור, אבל השימוש של חוסמי neuromuscular צריכים להיעשות רק על ידי אנשי שאינם מאומנים היטב בהליכים כאלה כדי בקנה אחד עם דרישות אתיות. יש להקפיד לא טראומה מעבר בגרון במהלך אינטובציה, על מנת למנוע נפיחות ובצקת קנה הנשימה לבין. בצקת בדרכי הנשימה יכולים להיות מטופלים עם תרופות אנטי דלקתיות NSAID או דומה 10. חזירים יכולים שיצנררו מעמדות שונים, אבל בעל חיים על גבו נוטה להיות קל יותר למי בקביעות לבצע אינטובציה האנושי, כפי שהוא מציג את דרכי הנשימה בצורה דומה 6. השגיאה הנפוצה ביותר במהלך אינטובציה הוא מיקום מכוונת של צינור הוושט, הנמצא ממש מתחת למעבר בגרון כאשר החיה מושם על גבו. שים לב, הצינור לא צריך להיות מתקדם, מבלי בבירור בזיהוי arytenoids הסחוסים ואת מיתרי הקול. צנתור Transurethral של שלפוחית ​​השתן דרך השופכה נעשית בקלות חזירות, בעוד הליך זה קשה מאוד, ואולי בלתי אפשרי, אצל גברים 6. יצוין, כי מאז פתח השופכה הנשית הקדמי אל הנרתיק, את פתח הנרתיק גדולים יותר ניתן צינתור בטעות. השימוש סיכה סטרילי וחיטוי מומלץ ללימודי ההישרדות. בנוסף, חומר סיכה עם אפקט הרדמה מקומית עשוי להקל על הליך צנתור. בעת ביצוע עורק הירך ואת catherization וריד, הבחירה של צנתרים כלי וכיצד הן מובטחות הבדלים בין הישרדות אי ומחקרים הישרדות, במיוחד כאשר צנתרים מושתלים לתקופה ממושכת של זמן 6. עבור צנתרים למשל להשתלה כרוני צריך להיות ביולוגית מאוד, יש חרוזים השמירה או אזיקים על קיבעון, כמו גם לא טראומה הקיר כלי לאורך זמן, ובכך גרימת פקקת או שחיקה 6. בסרטון הנוכחי, אנו משתמשים מערכת סגורה מופעל על ידי אוויר דחוס עבור זלוף transcardial. אפשרות נוספת היא להשתמש במערכת מונע על ידי כוח הכבידה. היתרון של מערכות הכבידה בהשוואה למערכות ניצול אוויר דחוס הוא שהם פשוט, יעיל להציג שום סיכון של אוויר דחוס הכניסה למערכת כלי הדם. עם זאת, הלחץ ההידרוסטטי המופעל על ידי מערכות הכובד משתנה ללא הרף במהלך זלוף, וזה יכול להשפיע על תוצאות היסטולוגית 15. בהתאם לסוג של מחקרים histopathological אחד לא רוצה לבצע, זה עשוי להיות יתרון perfuse החיה עם מלוחים heparinized הראשון. זהו importantance בפרט בעת ביצוע מכתים immunofluorescent על מנת למנוע בעיות autofluorescence שנגרמו אריתרוציטים. יתר על כן, אם האיבר של עניין הוא המוח, אבי העורקים היורד יכול להיות מהודק כדי להציל מקבע. עם זאת, חזירים, צעד זה כרוך בניתוח נוסף ויהיה להאריך את ההליך.

<table border="1" style=";text-align:right;direction:rtl"><tbody><tr><th> נוהל </th><th> ציוד </th><th> חברה </th><th> קטלוג, מספר </th></tr><tr><td> צנרור </td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td></td><td> מנשים </td><td> Datex Ohmeda-S / S Avance, GE Healthcare </td><td> 1009-9002-000 </td></tr><tr><td></td><td> יניקה עם קצה קהה </td><td> Unomedical </td><td> 34091181 </td></tr><tr><td></td><td> ראי גרון </td><td> טוחן </td><td> 85-0045 (סט ראי גרון) </td></tr><tr><td></td><td> צינור Endotracheal 5.5 מזהה מ&quot;מ </td><td> Smiths Medical אינטרנשיונל בע&quot;מ </td><td> 100/199/055 </td></tr><tr><td></td><td> Stylet </td><td> הדסון RCI </td><td> 5-151001 </td></tr><tr><td></td><td> מזרק 5 מ&quot;ל </td><td></td><td></td></tr><tr><td></td><td> מסכת </td><td> סנונית </td><td> 17-262-00 </td></tr><tr><td></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td> שלפוחית ​​השתן catherization </td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td></td><td> AquaFlate גליצרין קטטר סיליקון פולי 8-צרפתית עם stylet </td><td> Rüsch </td><td> 178003 </td></tr><tr><td></td><td> ספקולום האף </td><td> סנונית </td><td> 36-859-50 </td></tr><tr><td></td><td> ספקולום רקטלית </td><td> סנונית </td><td> 30-613-15 </td></tr><tr><td></td><td> בלאנט, טיפ מלקחיים </td><td> סנונית </td><td> 13-374-16 </td></tr><tr><td></td><td> ג&#39;ל סיכה צנתר </td><td></td><td></td></tr><tr><td></td><td> Cathejell Lidocain </td><td> Montavit </td><td> CJL08501 </td></tr><tr><td></td><td> Instillagel מסרק. </td><td> Farco פארמה </td><td> 08-40-200 </td></tr><tr><td></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td></td><td> שקית שתן A4 ניקוז </td><td> Unomedical </td><td> 38 155 1S </td></tr><tr><td></td><td> סרט דבק </td><td></td><td></td></tr><tr><td></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td> עורק הירך ואת catherization וריד </</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td></td><td> אזמל נתוחים </td><td> סנונית </td><td> 10-295-11 </td></tr><tr><td></td><td> בלאנט, טיפ מספריים כירורגיות </td><td> סנונית </td><td> 11-881-18 </td></tr><tr><td></td><td> רקמות מלקחיים </td><td> סנונית </td><td> 12-100-14 </td></tr><tr><td></td><td> טיפ קטן בוטה, מלקחיים כירורגיים </td><td> סנונית </td><td> 13-375-13 </td></tr><tr><td></td><td> רקמות קטנים עצמית שמירה מפשק </td><td> סנונית </td><td> 15-753-13 </td></tr><tr><td></td><td> Needleholder </td><td> סנונית </td><td> 20-634-14 </td></tr><tr><td></td><td> ניתוחי החלפות </td><td></td><td></td></tr><tr><td></td><td> תפר עם מחט </td><td></td><td></td></tr><tr><td></td><td> מלוח </td><td></td><td></td></tr><tr><td></td><td> Heparine </td><td> LEO </td><td> 585679 </td></tr><tr><td></td><td> 18-מד venflon </td><td> BD Venflon Pro </td><td> 393206 </td></tr><tr><td></td><td> 4-צרפתית קצה Brite הזובנים ההיכרויות וחוטי Seldinger מדריך </td><td> Cordis </td><td> 154-2629-1/0017 </td></tr><tr><td></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td> Transcardial זלוף </td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td></td><td> זלוף בלחץ מערכת </td><td> הבית עשוי חלקים זמינים ברוב החנויות חומרה מקצועית </td><td></td></tr><tr><td></td><td> מיצוי פומה מערכת </td><td> גראם A / S </td><td> 01750000 ו - 0303700 </td></tr><tr><td></td><td> Perfusant 5L </td><td></td><td></td></tr><tr><td></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td></td><td> בלאנט, טיפ מספריים כירורגיות </td><td> סנונית </td><td> 11-881-18 </td></tr><tr><td></td><td> עצם המזמרה </td><td> FST </td><td> 16150-24 </td></tr><tr><td></td><td> גדול מעוקל עצמית מחזיק קצה מלקחיים </td><td> סנונית </td><td> 13-421-18 </td></tr><tr><td></td><td> שמירה עצמית מפשק sternal </td><td> רודולף רפואי </td><td> 7520-10 </td></tr><tr><td></td><td> Pentobarbital</td><td> TheRoyal וטרינרית האוניברסיטה החקלאית (KVL) </td><td> 200 מ&quot;ג / מ&quot;ל </td></tr><tr><td></td><td> 22-מד venflon </td><td> BD Venflon Pro </td><td> 393202 </td></tr></tbody></table>

basic surgical techniques in the g&ouml;ttingen minipig: intubation, bladder catheterization, femoral vessel catheterization, and transcardial perfusion

הופעתם של minipig גטינגן במחקר של נושאים כגון המוח, טוקסיקולוגיה, סוכרת, השמנה, ניתוח ניסיוני משקף את הדמיון קרוב של בעלי חיים אלה האנטומיה של גוף האדם ופיזיולוגיה 1-6. גודלה של minipig גטינגן היתרי השימוש כירורגי ציוד מתקדם הדמיה שיטות דומות לאלה המשמשים בני אדם 6-8. מטרת הוראה זו וידאו היא להגביר את המודעות על הערך של minipigs במחקר ביו, על ידי הוכחת כיצד לבצע אינטובציה לקנה הנשימה, צנתור שלפוחית ​​השתן transurethral, ​​עורק הירך ואת צנתור וריד, כמו גם זלוף transcardial. אינטובציה Endotracheal צריך להתבצע בכל פעם minipig עובר הרדמה כללית, מכיוון שהוא שומר על דרכי הנשימה פטנט, מאפשר אוורור בסיוע מגן על דרכי הנשימה מפני aspirates. צנתור שלפוחית ​​השתן Transurethral יכול לספק מידע שימושי על המדינה על הידרציה כמו גם תפקוד הכליות ואת לב וכלי דם במהלך ניתוחים ארוכים. יתר על כן, צנתור השתן יכולה למנוע זיהום של ציוד לרפואה טכני עדין הרחבה שלפוחית ​​כואבת אשר עלול לפגוע בבעלי חיים שלא לצורך השפעה על הניסוי בשל הטון מחנק מוגברת פיזיולוגיים משתנה. צנתור עורקי וורידי שימושי לקבלת דגימות דם חוזרות ומעקב אחר פרמטרים פיזיולוגיים שונים. צנתור כלי הירך עדיף על צנתור של כלי הצוואר, כדי להקל על הגישה, בעת ביצוע ניסויים הכוללים מסגרת מבוססות נוירוכירורגיה stereotaxic הדמיה מוחית. בעת ביצוע צנתור כלי במחקרים הישרדות, טכניקה קפדנית aseptic חייב להיות מועסק על מנת למנוע זיהומים 6. זלוף Transcardial היא שיטת קיבוע יעיל ביותר, מניב תוצאות הבולטים בעת הכנת איברים minipig עבור היסטולוגיה ו histochemistry 2,9. לקבלת מידע נוסף על ניתוח בהרדמה, וטכניקות ניסיוני החזירים בכלל אנו מתייחסים לרמות 2007. מידע משלים על premedication ו אינדוקציה של הרדמה, אוורור בסיוע, שיכוך כאבים, טיפול לפני ואחרי הניתוח של minipigs גטינגן זמינים דרך האינטרנט ב <a href="http://www.minipigs.com">http://www.minipigs.com</a> 10. למידע מקיף על האנטומיה חזירי אנו מתייחסים ניקל et al. Vol. נובמבר 1-5.

Watch this Scientific Journal Video about Basic Surgical Techniques in the GÃ¶ttingen Minipig: Intubation, Bladder Catheterization, Femoral Vessel Catheterization, and Transcardial Perfusion at JoVE

Basic Surgical Techniques in the G&amp;#246;ttingen Minipig: Intubation, Bladder Catheterization, Femoral Vessel Catheterization, and Transcardial Perfusion

השימוש חזירים מקומיים זעירים במדע גדל באופן משמעותי בשנים האחרונות. באמצעות הוכחת כיצד לבצע אינטובציה, צנתור שלפוחית ​​השתן transurethral, ​​עורק הירך ואת צנתור וריד, כמו גם זלוף transcardial, אנו שואפים להגביר עוד יותר את הערך של גטינגן minipigs במחקר ביו.

טכניקות ניתוחיות בסיסי Minipig גטינגן: אינטובציה, צנתור שלפוחית ​​השתן, צנתור כלי עצם הירך, ו זלוף Transcardial

The emergence of the G&ouml;ttingen minipig in research of topics such as neuroscience, toxicology, diabetes, obesity, and experimental surgery reflects ...

basic-surgical-techniques-gttingen-minipig-intubation-bladder

Research

JoVE Journal

Medicine

Basic Surgical Techniques in the G&ouml;ttingen Minipig: Intubation, Bladder Catheterization, Femoral Vessel Catheterization, and Transcardial Perfusion

69.0K Views.  Aarhus University Hospital. השימוש חזירים מקומיים זעירים במדע גדל באופן משמעותי בשנים האחרונות. באמצעות הוכחת כיצד לבצע אינטובציה, צנתור שלפוחית ​​השתן transurethral, ​​עורק הירך ואת צנתור וריד, כמו גם זלוף transcardial, אנו שואפים להגביר עוד יותר את הערך של גטינגן minipigs במחקר ביו.

Video: Basic Surgical Techniques in the G&#246;ttingen Minipig: Intubation, Bladder Catheterization, Femoral Vessel Catheterization, and Transcardial Perfusion

Femoral Arterial and Venous Catheterization for Blood Sampling, Drug Administration and Conscious Blood Pressure and Heart Rate Measurements

In multiple fields of study, access to the circulatory system in laboratory studies is necessary. Pharmacological studies in rats using chronically implanted catheters permit a researcher to effectively and humanely administer substances, perform repeated blood sampling and assists in conscious direct measurements of blood pressure and heart rate. Once the catheter is implanted long-term sampling is possible. Patency and catheter life depends on multiple factors including the lock solution used, flushing regimen and catheter material. This video will demonstrate the methodology of femoral artery and venous catheterization of the rat. In addition the video will demonstrate the use of the femoral venous and arterial catheters for blood sampling, drug administration and use of the arterial catheter in taking measurements of blood pressure and heart rate in a conscious freely-moving rat. A tether and harness attached to a swivel system will allow the animal to be housed and have samples taken by the researcher with minimal disruption to the animal. To maintain patency of the catheter, careful daily maintenance of the catheter is required using lock solution (100 U/ml heparinized saline), machine-ground blunt tip syringe needles and the use of syringe filters to minimize potential contamination. With careful aseptic surgical techniques, proper catheter materials and careful catheter maintenance techniques, it is possible to sustain patent catheters and healthy animals for long periods of time (several weeks).

Chronic catheterization of blood vessels in the rat is often required for administration of substances, obtain blood sample over a period of time or for direct conscious blood pressure measurements. Femoral arterial catheterization of the rat and corresponding measurements of blood pressure in the conscious animal will be demonstrated.

צנתור עורקי ורידי הירך עבור דגימה דם, והתרופות ולחץ דם מודעת דרג מדידות הלב

In multiple fields of study, access to the circulatory system in laboratory studies is necessary. Pharmacological studies in rats using chronically ...

Cardiac Stress Test Induced by Dobutamine and Monitored by Cardiac Catheterization in Mice

Dobutamine is a &beta;-adrenergic agonist with an affinity higher for receptor expressed in the heart (&beta;1) than for receptors expressed in the arteries (&beta;2). When systemically administered, it increases cardiac demand. Thus, dobutamine unmasks abnormal rhythm or ischemic areas potentially at risk of infarction. 
Monitoring of heart function during a cardiac stress test can be performed by either ecocardiography or cardiac catheterization. The latter is an invasive but more accurate and informative technique that the former.
Cardiac stress test induced by dobutamine and monitored by cardiac catheterization accomplished as described here allows, in a single experiment, the measurement of the following hemodynamic parameters: heart rate (HR), systolic pressure, diastolic pressure, end-diastolic pressure, maximal positive pressure development (dP/dtmax) and maximal negative pressure development (dP/dtmin), at baseline conditions and under increasing doses of dobutamine.
As expected, in normal mice we observed a dobutamine dose-related increase in HR, dP/dtmax and dP/dtmin. Moreover, at the highest dose tested (12 ng/g/min) the cardiac decompensation of high fat diet-induced obese mice was unmasked.

We describe the protocol to perform a cardiac stress test induced by dobutamine and monitored by cardiac catheterization in normal mice. Also we show its application to unmask subclinical cardiac disease in high fat diet-induced obese mice.

בדיקת מאמץ לב הנגרמת על ידי Dobutamine ופיקוח על ידי צנתור בעכברים

Dobutamine is a &beta;-adrenergic agonist with an affinity higher for receptor expressed in the heart (&beta;1) than for receptors expressed in the ...

Catheterization of the Carotid Artery and Jugular Vein to Perform Hemodynamic Measures, Infusions and Blood Sampling in a Conscious Rat Model

The success of a small animal model to study critical illness is, in part, dependent on the ability of the model to simulate the human condition. Intra-tracheal inoculation of a known amount of bacteria has been successfully used to reproduce the pathogenesis of pneumonia which then develops into sepsis. Monitoring hemodynamic parameters and providing standard clinical treatment including infusion of antibiotics, fluids and drugs to maintain blood pressure is critical to simulate routine supportive care in this model but to do so requires both arterial and venous vascular access. The video details the surgical technique for implanting carotid artery and common jugular vein catheters in an anesthetized rat. Following a 72 hr recovery period, the animals will be re-anesthetized and connected to a tether and swivel setup attached to the rodent housing which connects the implanted catheters to the hemodynamic monitoring system. This setup allows free movement of the rat during the study while continuously monitoring pressures, infusing fluids and drugs (antibiotics, vasopressors) and performing blood sampling.

Vascular accesses to measure hemodynamics, provide fluids and perform blood sampling are important to any small animal model study. We present a technique for implanting catheters into the carotid artery and the common jugular vein in an anesthetized rat for connecting to a system to perform monitoring, infusions and sampling.

צנתור של עורק התרדמה וצוואר הווריד לבצע צעדים המודינמית, חליטות ודגימת דם במודל עכברוש מודע

The success of a small animal model to study critical illness is, in part, dependent on the ability of the model to simulate the human condition. ...

Cardiac Catheterization in Mice to Measure the Pressure Volume Relationship: Investigating the Bowditch Effect

Animal models that mimic human cardiac disorders have been created to test potential therapeutic strategies. A key component to evaluating these strategies is to examine their effects on heart function. There are several techniques to measure in vivo cardiac mechanics (e.g., echocardiography, pressure/volume relations, etc.). Compared to echocardiography, real-time left ventricular (LV) pressure/volume analysis via catheterization is more precise and insightful in assessing LV function. Additionally, LV pressure/volume analysis provides the ability to instantaneously record changes during manipulations of contractility (e.g., &#946;-adrenergic stimulation) and pathological insults (e.g., ischemia/reperfusion injury). In addition to the maximum (+dP/dt) and minimum (-dP/dt) rate of pressure change in the LV, an accurate assessment of LV function via several load-independent indexes (e.g., end systolic pressure volume relationship and preload recruitable stroke work) can be attained. Heart rate has a significant effect on LV contractility such that an increase in the heart rate is the primary mechanism to increase cardiac output (i.e., Bowditch effect). Thus, when comparing hemodynamics between experimental groups, it is necessary to have similar heart rates. Furthermore, a hallmark of many cardiomyopathy models is a decrease in contractile reserve (i.e., decreased Bowditch effect). Consequently, vital information can be obtained by determining the effects of increasing heart rate on contractility. Our and others data has demonstrated that the neuronal nitric oxide synthase (NOS1) knockout mouse has decreased contractility. Here we describe the procedure of measuring LV pressure/volume with increasing heart rates using the NOS1 knockout mouse model.

This article describes the measurement of murine left ventricular function via pressure/volume analysis at different heart rates.

צנתור לב בעכברים כדי למדוד את יחסי נפח לחץ: חקירת אפקט Bowditch

Animal models that mimic human cardiac disorders have been created to test potential therapeutic strategies. A key component to evaluating these ...

Ex Situ Normothermic Machine Perfusion of Donor Livers

In contrast to conventional static cold preservation (0-4 &#176;C), ex situ machine perfusion may provide better preservation of donor livers. Continuous perfusion of organs provides the opportunity to improve organ quality and allows ex situ viability assessment of donor livers prior to transplantation. This video article provides a step by step protocol for ex situ normothermic machine perfusion (37 &#176;C) of human donor livers using a device that provides a pressure and temperature controlled pulsatile perfusion of the hepatic artery and continuous perfusion of the portal vein. The perfusion fluid is oxygenated by two hollow fiber membrane oxygenators and the temperature can be regulated between 10 &#176;C and 37 &#176;C. During perfusion, the metabolic activity of the liver as well as the degree of injury can be assessed by biochemical analysis of samples taken from the perfusion fluid. Machine perfusion is a very promising tool to increase the number of livers that are suitable for transplantation.

Ex Situ Normothermic Machine Perfusion of Donor Livers

Here we present a protocol describing oxygenated ex situ machine perfusion of donor liver grafts. This article contains a step by step protocol to procure and prepare the liver graft for machine perfusion, prepare the perfusion fluid, prime the perfusion machine and perform oxygenated normothermic machine perfusion of the liver graft.

באתרו לשעבר Normothermic מכונת זלוף של כבדים תורמים

In contrast to conventional static cold preservation (0-4 &#176;C), ex situ machine perfusion may provide better preservation of donor livers. Continuous ...

Long-Term Catheterization of the Intestinal Lymph Trunk and Collection of Lymph in Neonatal Pigs

Catheterization of the intestinal lymph trunk in neonatal pigs is a technique allowing for the long-term collection of large quantities of intestinal (central) efferent lymph. Importantly, the collection of central lymph from the intestine enables researchers to study both the mechanisms and lipid constitutes associated with lipid metabolism, intestinal inflammation and cancer metastasis, as well as cells involved in immune function and immunosurveillance. A ventral mid-line surgical approach permits excellent surgical exposure to the cranial abdomen and relatively easy access to the intestinal lymph trunk vessel that lies near the pancreas and the right ventral segment of the portal vein underneath the visceral aspect of the right liver lobe. The vessel is meticulously dissected and released from the surrounding fascia and then dilated with sutures allowing for insertion and subsequent securing of the catheter into the vessel. The catheter is exteriorized and approximately 1 L/24 hr of lymph is collected over a 7 day period. While this technique enables the collection of large quantities of central lymph over an extended period of time, the success depends on careful surgical dissection, tissue handling and close attention to proper surgical technique. This is particularly important with surgeries in young animals as the lymph vessels can easily tear, potentially leading to surgical and experimental failure. The video demonstrates an excellent surgical technique for the collection of intestinal lymph.

We present a surgical procedure to catheterize the intestinal lymph trunk in neonatal pigs to collect large quantities of lipid metabolism components from efferent lymph.

צנתור לטווח ארוך של טרונק לימפה במעי וגביית הלימפה חזירים ילודים

Catheterization of the intestinal lymph trunk in neonatal pigs is a technique allowing for the long-term collection of large quantities of intestinal ...

Shunt Surgery, Right Heart Catheterization, and Vascular Morphometry in a Rat Model for Flow-induced Pulmonary Arterial Hypertension

In this protocol, PAH is induced by combining a 60 mg/kg monocrotalin (MCT) injection with increased pulmonary blood flow through an aorto-caval shunt (MCT+Flow). The shunt is created by inserting an 18-G needle from the abdominal aorta into the adjacent caval vein. Increased pulmonary flow has been demonstrated as an essential trigger for a severe form of PAH with distinct phases of disease progression, characterized by early medial hypertrophy followed by neointimal lesions and the progressive occlusion of the small pulmonary vessels. To measure the right heart and pulmonary hemodynamics in this model, right heart catheterization is performed by inserting a rigid cannula containing a flexible ball-tip catheter via the right jugular vein into the right ventricle. The catheter is then advanced into the main and the more distal pulmonary arteries. The histopathology of the pulmonary vasculature is assessed qualitatively, by scoring the pre- and intra-acinar vessels on the degree of muscularization and the presence of a neointima, and quantitatively, by measuring the wall thickness, the wall-lumen ratios, and the occlusion score.

This protocol describes a surgical procedure to create a model for flow-induced pulmonary arterial hypertension (PAH) in rats and the procedures to analyze the principle hemodynamic and histological end-points in this model.

כירורגיה שאנט, צנתור לב ימני, וכלי הדם Morphometry במודל חולדה עבור נגרמת זרימה ריאתי עורקי יתר לחץ דם

In this protocol, PAH is induced by combining a 60 mg/kg monocrotalin (MCT) injection with increased pulmonary blood flow through an aorto-caval shunt ...

Harvest of Endothelial Cells from the Balloon Tips of Swan-Ganz Catheters after Right Heart Catheterization

A variety of pathologies lead to pulmonary hypertension (PH), which is defined as a mean pulmonary artery pressure exceeding 25 mmHg at rest. To further diagnose and manage PH, patients undergo repeated right heart catheterizations (RHC) wherein a Swan-Ganz catheter is advanced into a branch of the pulmonary artery and a balloon is inflated to wedge the catheter tip. This article illustrates a protocol whereby pulmonary artery endothelial cells (PAECs) may be harvested from the balloon tips of Swan-Ganz catheters after RHC, and purified with an anti- CD146 affinity column technique to purify putative PAECs. These cells might be used to provide an in situ snapshot of the biological state of the pulmonary vasculature endothelium to complement hemodynamic measurements obtained during RHC. Harvested and purified PAECs may be used for either cell culture or for subsequent analytical assays such as flow cytometery.

This protocol describes the removal and purification of pulmonary artery endothelial cells (PAECs) that adhere to the balloon tips of Swan-Ganz catheters while they are wedged in the pulmonary artery during right heart catheterization and remain adherent to the deflated balloon following removal from the patient's body.

הקציר של תאי אנדותל של קצות בלון קטטר Swan-גנץ לאחר צנתור הלב הימני

A variety of pathologies lead to pulmonary hypertension (PH), which is defined as a mean pulmonary artery pressure exceeding 25 mmHg at rest. To further ...

Brachial Artery Catheterization in Swine

The video describes in detail the catheterization of the distal brachial artery in swine. This technique enables researchers to measure arterial blood pressure continuously and collect arterial blood samples to assess arterial blood gas measurements. Arterial blood pressures and arterial blood gases are important physiological parameters to monitor during experimental procedures. In swine, four common methods of arterial catheterization have been described, including catheterization of the carotid, femoral, auricular, and medial saphenous arteries. Each of these techniques have advantages, such as ease of access for the auricular artery, and disadvantages that include deep tissue dissection for carotid artery catheterization. The described alternative method of arterial catheterization in swine, the catheterization of the distal aspect of the brachial artery, is a rapid procedure that requires relatively minimal tissue dissection and provides information that is in line with data collected from other arterial catheterization sites. The procedure uses a medial approach along an oblique plane of the lower brachium, positioned between the olecranon and the flexor aspect of the elbow joint, and this approach allows researchers the major advantage of unimpeded freedom for procedures that involve the caudoventral, caudodorsal back, or hind limbs of the pig. Due to the location of the upper forelimb of the catheterized vessel and potential challenges of effective homeostasis following catheter removal from the artery, this technique may be limited to non-recovery procedures.

The video describes in detail the catheterization of the distal brachial artery in swine. This procedure accurately measures arterial blood pressure and is a simple and fast method to collect samples for arterial blood gas measurements.

צנתור עורק נחתכו בחזיר

The video describes in detail the catheterization of the distal brachial artery in swine. This technique enables researchers to measure arterial blood ...

Repeated Orotracheal Intubation in Mice

The literature describes several methods for mouse intubation that either require visualization of the glottis through the oral cavity or incision in the ventral neck for direct confirmation of cannula placement in the trachea. The relative difficulty or the tissue trauma induced to the subject by such procedures can be an impediment to an investigator&#8217;s ability to perform longitudinal studies. This article illustrates a technique in which physical manipulation of the mouse following the use of a depilatory to remove hair from the ventral neck permits transcutaneous visualization of the trachea for orotracheal intubation regardless of degree of skin pigmentation. This method is innocuous to the subject and easily achieved with a limited understanding of murine anatomy. This refined approach facilitates repeated intubation, which may be necessary for monitoring progression of disease or instillation of treatments. Using this method may result in a reduction of the number of animals and technical skill required to measure lung function in mouse models of respiratory disease.

The goal of this article is to describe a refined method of intubation of the laboratory mouse. The method is noninvasive and, therefore, ideal for studies that require serial monitoring of respiratory function and/or instillation of treatments into the lung.

וחזר אורוקנה אל בעכברים

The literature describes several methods for mouse intubation that either require visualization of the glottis through the oral cavity or incision in the ...

טכניקות ניתוחיות בסיסי Minipig גטינגן: אינטובציה, צנתור שלפוחית ​​השתן, צנתור כלי עצם הירך, ו זלוף Transcardial

טכניקות ניתוחיות בסיסי Minipig גטינגן: אינטובציה, צנתור שלפוחית השתן, צנתור כלי עצם הירך, ו זלוף Transcardial