The work was supported in part by funding from Alberta Livestock and Meat Agency and Natural Science and Research Council Discovery grant to S. D. Proctor.

כל הנהלים על חיות ניסוי המתוארות הוא סרטון ואת כתב היד אושרו על ידי ועדת הטיפול בבעלי החיים המוסדיים השתמש ועקב אחר ההנחיות שנקבעו על ידי המועצה הקנדית של טיפול בבעלי החיים. 1. הרדמה כירורגית והכנת כירורגים של החזירים הילודים <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> בחדר כניסה נפרדת, premedicate 25 חזירים ק&quot;ג סמוך לבסיס של הצוואר עם קוקטייל תרופות הרגעה-הרדמה תוך שרירית המכיל: azaperone (0.3 מ&quot;ג / ק&quot;ג), קטמין הידרוכלוריד (10 מ&quot;ג / ק&quot;ג), dexmedetomidine (15 מיקרוגרם / ק&quot;ג). הערה: הוסף עצירות (0.005-.02 מ&quot;ג / ק&quot;ג) של קוקטייל התרופות מראש הרדמה לשיכוך כאבים התוך אופרטיבית משופרת. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> להרדים את חזירים בגז משאיפת isoflurane בשאיפה (isoflurane 4-5% ב 500 מ&quot;ל-1000 מ&quot;ל / דקה O 2) באמצעות מסיכת פנים. דמיינו את מיתרי הקול באמצעות היקף בגרון וטרינרי (ארוך להב ישר 17-25 ס&quot;מ), ולהחיל עיקור לידוקאין 10% אקטואלי אל ווקאליתמייתרים. אפשר ספריי לידוקאין לפנות מיתרי הקול 30-60 שניות לפני אינטובציה כדי לצמצם את האפשרות של התכווצות מיתרי הקול ואת חסימה בדרכי הנשימה. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> לצנרר החזירים על ידי העברת הטובוס אזוקים (5.0-7.0 מ&quot;מ קוטר פנימי (ID)) בין מיתרי הקול ולשמור על הרדמה בגז isoflurane (isoflurane 0.5-2.0% ב 1,000-2,000 מ&quot;ל / דקה O 2) באמצעות ארגז סגור מעגל rebreathing מערכת הרדמה במהלך הניתוח. להעריך את רמת הרדמה מטון לסת, ושניהם תגובות רפלקס דוושת palpebral. גז הרדמה פג תוקף הוא יישחט פרק מחוץ לחדרי הניתוח. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> נקה את המשטח החיצוני של האוזן עם פתרון לקרצף כירורגית 2.0% chlorhexidine ואחריו שטיפת אלכוהול איזופרופיל 70%. עם קטטר 20 G תוך ורידי, קטטר וריד האוזן לספק עירוי נוזלים (פתרון Ringer Lactated; 5-10 מ&quot;ל / ק&quot;ג / שעה) במהלך הניתוח. Secure דופק oximeter אל פני השטח הרירי של הלשון עם medקלטת iCal כדי לפקח על קצב לב ואת הרוויה של חמצון דם היקפי (SpO 2). </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> הנח את החזיר הרדים בעמדת גב שכיבתה לגלח את בטן הגחון מאמצע חזה caudally להיבט הגחון של החיק. נקו בתחום זה עם שני לסירוגין כלורהקסידין 2.0% סקראבס כירורגית ושוטף במים סטרילית. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> מעביר את החזיר המורדם כדי לחדרי הניתוח ולהחיל את לקרצף כירורגית הסופית של שטיפת אלכוהול איזופרופיל 70%, לאפשר לו להתייבש, ולאחר מכן לעטוף את החיה. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> הכנס בדיקת טמפרטורת רקטלית כ ​​סנטימטר 2-4 לתוך פי הטבעת כדי לפקח על טמפרטורת גוף. מניחים החזירים על כרית חימום הסירקולציה המחודשת מים כדי לשמור על טמפרטורת גוף נורמלית (C ° 38-40) במהלך ההליך הכירורגי. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> לכרוך את החזיר עם וילונות ארבעה מגבות להציב דפוס ברבע שמעליה ברחבי הבטן. מניח את הווילון הראשון ברחבי xiphisternum, הווילון השני לאורך בצד הלטרלי של הבטן כ 5 גמ &#39;לרוחב קו אמצע הבטן. מניח את הווילון השלישי ברחבי ציצת ​​ileal של האגן ואת הווילון הרביעי, כמו הווילון השני (אם כי בצד הנגדי), מושם לאורך בצד הלטרלי של הבטן כ 5 סנטימטרים לרוחב קו אמצע הבטן. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> מניחים וילון שולחן גדול, עם פתיחת חריץ המאפשר גישה לאתר כירורגית, על וילונות מגבת שבבסיס ולכסות את חזיר ושולחן הכירורגי כולו. הווילון הסופי הוא וילון Steri-הפנויה מונח על וילון השולחן הגדול. </li></ol> 2. ניתוח בטן צנתור של טרונק הלימפה המעיים <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> לעשות חתך בעור 20 ס&quot;מ עם להב סכין המנתחים כדי לחשוף את שרירי הבטן הבסיסית. לחתוך את שכבות שרירי הבטן עם electrocautery מונו-קוטבית (20 הגדרה ואט) לחשוף את הצפק הקודקודית. פתח קטע ליניארי 20 ס&quot;מ של הצפק הקודקודית במספריים מצנבאום לגשת הקרביים בטן וכלי הלימפה. </li><li&gt; צב מפשקים על ההיבט גולגולתי של החתך הניתוחי לשמור על חלל הבטן פתוח למשך הניתוח. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> להרטיב את כל הרקמות עם חם (37 מעלות צלזיוס) תמיסת מלח סטרילית עבור ההליך הכירורגי כולו. הרם בעדינות פלח גדול של המעי כולל המעי הגס, cecum, מעי והמעי הריק יתכן שרמת מחלל הבטן exteriorize אותו בכנף שמאל של חזיר כדי לגשת בבטן העליונה, כבד וכלי הלימפה. אבטח את המעי exteriorized בעמדה עם וילונות מגבת נוספת לגבש קלע לתמוך המעי בעדינות. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> אתר את כלי הלימפה, היא מטילה כ 4 סנטימטרים גולגולתי המדיאלי של הווריד התקין כליות, 6 סנטימטרים זנב-medial- גחון של מנהלי עבודת caval ומתחת ההיבט הקרבי של האונה הכבדה ממש ליד הלבלב 22,36,37. זהה את כלי הלימפה כמבנה שקוף חופף למגזר הגחון הימני של וריד שער 36,37. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> הפרד את הלימפה Vessאל מן fascia שמסביב ידי מנסים לשחזר את הרקמה המצורפת בעדינות עם אפליקטורים Q-Tip. לאחר ההיבטים לרוחב של כלי מופרדים מן הרקמה הסובבת, ליצור פתח &quot;מנהרה&quot; מתחת לכלי השייט עם בוטה קנס שקצהו מלקחיים. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> לעבור שלושה 2-0 תפרי משי מתחת לכלי השייט הלימפה עם מלקחיים בסדר. ולקשור את תפר הזנב ביותר הראשון כדי לחסום, להתרחב ולמלא את הכלי עם הלימפה. Purposefully לעזוב את הקצוות של תפר זה ארוך יחסית (4 ס&quot;מ) כדי לאבטח את הקטטר אל כלי הלימפה. מניח שני תפרים אחרים מופרדים 1.0 סנטימטר אחד מהשני והם כ 1.0-1.5 סנטימטר גולגולתי אל תפר הזנב המאובטח. להשאיר את שני התפרים הללו עם &quot;עניבה ליגטורה רופפת יחידה &#39;כדי לאפשר לאבטחה מהירה יותר של קטטר לתוך הכלי. הערה: הקטע של כלי הלימפה ממוקם בין תפר ligating הזנב ביותר התפר באמצע (של שני תפרי הגולגולת) הוא האתר עבור צנתור. לגבי suחומר ture, 2-0 תפר polyglactin יכול להוות תחליף 2-0 תפרי משי במידת צורך. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> חותכי חור קטן לתוך הכלי עם מספרי איריס להרחיב את הכלי עם מלקחיים בוטים בסדר. הכנס כ 1.0-1.5 סנטימטר של צינורות קטטר מיוחדים (4.06 קוטר חיצוני (OD) X 2.31 מזהים מ&quot;מ) עם קצה משופע לתוך הכלי ולקשור שני תפרי הגולגולת כדי לאבטח את הקטטר במקום. השתמש קצות התפר הארוכים של תפר הזנב כדי לאבטח את הקטטר אל כלי השיט. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> שטוף את מעי exteriorized עם כמויות של מלח חם ובעדינות להחזירו חלל הבטן להבטיח מיצוב אנטומי נכון של המעיים. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> Exteriorize הקטטר את פרוותו אמצע שמאל (5-10 ס&quot;מ ventrally מן fossa paralumbar). לעשות חתך בעור עם אזמל להעביר נקז מחלל הבטן אל פני העור כדי ליצור פתח עבור ההחצנה של הקטטר. השתמש מלקחיים גדולים קלי exteriorize הקטטר מן CAV בטןity דרך פתח הנקז. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> סגור את הצפק הקודקודית עם דפוס תפר מתמשך פשוט של תפר 2-0 polyglactin עם מחט עגול (קונים). סגור את שכבות שרירי הבטן עם דפוס תפר קטע פשוט עם תפר 2-0 polyglactin על מחט עגול. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> סגור את העור בדפוס subcuticular עם 2-0 תפר polyglactin על מחט חיתוך. Secure את הקטטר exteriorized על העור עם דפוס תפר ארנק חוט תפר ניילון 2-0 על מחט חיתוך. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> מניח מעייל מיוחד על החזיר ועדיין מורדם להקל מיקומה ולהפחית את הלחץ של החזיר במהלך התאוששות. </li></ol> שחזור 3. פוסט-כירורגית אוסף לימפה <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> כ -10 דקות לפני הפסקת הרדמה משאיפת, לנהל bupenorphine (0.1 מ&quot;ג / ק&quot;ג) לשריר כדי לספק שיכוך כאבים שלאחר ניתוח מיידי. המשך bupenorphine (0.1 מ&quot;ג / ק&quot;ג) כל 12 שעות במשך 24-48 שעות כדי לשמור עלשיכוך כאבים שלאחר ניתוח. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> צג החזירים לסיבוכים ניתוחים דואר בכל שעות 8-12 לתקופה של 7 ימים. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> אסוף את הלימפה 500 מ&quot;ל בקבוקים לשטוף פוליפרופילן, מצופה חומצה ethylenediamine tetraacetic (EDTA), שיושלם עם אנטיביוטיקה; פניצילין (6,000 IU), סטרפטומיצין (6 מ&quot;ג) ו- B amphotericin (3 מ&quot;ג) כל 12 שעות למשך 7 ימים. </li></ol> 4. כימות ApoB48 ליפופרוטאין, טריגליצריד, כולסטרול וחלבון הסכום שנגבה מן לימפה <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> צנטריפוגה מדגם הלימפה 1,800 XG במשך 5 דקות ב 4 ° C.. איסוף supernatant ולהשתמש בו עבור כימות של טריגליצרידים, כולסטרול וחלבון כולל. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> מחלק את supernatant לשלוש דוגמאות: מדגם חי, מים מזוקקים מדולל מדגם 1:20 מדגם סופי המדולל 1: 100 עם מים מזוקקים. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> השתמש supernatant חי כדי למדוד את רמות כולסטרול, עם ערכה זמינה מסחרי. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> השתמש 1:20 01:100 דגימות בדילול למדוד טריגליצרידים ורמות חלבון הכולל עם ערכה זמינה מסחרי ואת assay חלבון bicinchoninic סך-חומצת בהתאמה. </li></ol> 5. כימות של ליפופרוטאין ApoB48, שנאספו לימפה 38 <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> קבע את הריכוז של ליפופרוטאין ApoB48 עם שיטה מערבית סופגת מותאמת חיסון 38. הלימפה הכולל הפרד (SDS-PAGE) ג&#39;ל אלקטרופורזה polyacrylamide סולפט dodecyl נתרן טריס-acetate- 3-8%. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> מעבירים את החלבונים מופרדים אל קרום פלואוריד polyvinylidene (0.45 מיקרומטר) דגירה אותם עם נוגדן polyclonal עז אל apoB (1: 4,000), ולאחר מכן לאגד את זה עם נוגדנים משני אנטי-עז. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> לכמת את ליפופרוטאין ApoB48 עם chemiluminescence באמצעות השוואה ליניארי densitometric עם תקן חלבון ApoB48 מכרסם מטוהרים. </li></ol>

The authors have nothing to disclose.

איסוף לימפה במעי הוא שיטה מצוינת לחקור מנגנוני המעורבים שומנים 8-12 ו מטבוליזם התרופה 13-15, סרטן גרורות 16,17, סחר תא ותפקוד מערכת חיסון 18-26, במודלים של בעלי חיים שונים הניסיונות. ואכן, את היכולת לקצור כמויות גדולות של מי היקפי (מביא) ומרכז (efferent וכלי ?...

מערכת הלימפה היא שטח אלתר של פיזיולוגיה. במודלים פרה של צנתור הלימפה להתרחש מיני בעלי חיים שונה 1-8 ומשמשים והפרמצבטיקה ומכוני מחקר לחקור מנגנוני המעורבים שומנים 8-12 סמים מטבוליזם 13-15, גרורות סרטן 16 עם טיפול ניסיוני 17, ו -18 תפקוד מערכת החיסון -26. מחקר זה בוחן את שימוש צנתור מטען לימפה במעי במודל חזיר בית למדוד רכיבים של מטבוליזם שומנים בדם. מטבוליזם Lipoprotein מעורב בייצור הפרשת chylomicrons, כמו גם משינויים בשיעורי שומנים הקשורים חלבון כולל. אלה הם שיקולים חשובים כמו שיש הבדלים גדולים במטבוליזם שומנים בין במודלים של מכרסמים נפוצים ובני אדם וככזה, במודלי חזירים לאסוף לימפה במעי יכולים לספק מידע דומה יותר ללימוד שומנים ליtabolism באנשים 27-31. מספר טכניקות כירורגיות משמשות כדי לאסוף את לימפה במעי במינים של בעלי חיים גדולים: גישת כתף גולגולתי (כלומר, צנתור צינור חזה) 5, גישת אגף העליון לרוחב 32-34, וכן קו אמצע גחון או גישת paramedian 22,35. וידאו זה מתאר בפירוט את ההליך הניתוח חזירים בגישה כירורגית קו אמצע גחון עבור הצנתור של המטען לימפה במעי. היתרי טכניקה כירורגית זהירות שיטה זו של צנתור הלימפה לאסוף כמויות גדולות של הלימפה מרכיביו לאורך תקופות ממושכות של זמן. טכניקה זו פותחת מספר עצום של יישומים לתחומים רבים לבחון פונקציות פיסיולוגיות שונות. יישומים יכולים לכלול, אך אינם מוגבלים, ליפופרוטאין גוף וחילוף חומרי שומנים, immunosurveillance, בראשית גידול וגרור, תפקוד מעיים, ואת developmאף אוזן גרון והתקדמות של מחלה דלקתית של המעי.

<table border="0" cellpadding="0" cellspacing="0" width="567">
	<tbody>
		<tr height="40">
			<td height="40" style="height:40px;width:211px;">Miller laryngoscope blade</td>
			<td style="width:71px;">Welch Allyn</td>
			<td style="width:119px;">68044</td>
			<td style="width:167px;">182 mm length</td>
		</tr>
		<tr height="40">
			<td height="40" style="height:40px;width:211px;">Surgivet advisor: Vital signs monitor</td>
			<td style="width:71px;">Surgivet</td>
			<td style="width:119px;">V9203</td>
			<td style="width:167px;"></td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;width:211px;">Rectal temperature probe</td>
			<td style="width:71px;">Surgivet</td>
			<td style="width:119px;">V3417</td>
			<td style="width:167px;"></td>
		</tr>
		<tr height="40">
			<td height="40" style="height:40px;width:211px;">Mono-polar electrosurgery generator</td>
			<td style="width:71px;">Valley Lab</td>
			<td style="width:119px;"></td>
			<td style="width:167px;"></td>
		</tr>
		<tr height="40">
			<td height="40" style="height:40px;width:211px;">Metzenbaum scissors</td>
			<td style="width:71px;">Fine Science</td>
			<td style="width:119px;">14518-18</td>
			<td style="width:167px;"></td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;width:211px;">Tuffier retractor</td>
			<td style="width:71px;">Stevens</td>
			<td style="width:119px;">162-11-676</td>
			<td style="width:167px;"></td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;width:211px;">Mosquito forceps</td>
			<td style="width:71px;">Stevens</td>
			<td style="width:119px;">162-7-10</td>
			<td style="width:167px;"></td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;width:211px;">Kelly forceps-curved (14cm)</td>
			<td style="width:71px;">Stevens</td>
			<td style="width:119px;">162-7-38</td>
			<td style="width:167px;"></td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;width:211px;">Allis tissue forceps</td>
			<td style="width:71px;">Stevens</td>
			<td style="width:119px;">162-7-38</td>
			<td style="width:167px;"></td>
		</tr>
		<tr height="40">
			<td height="40" style="height:40px;width:211px;">Forceps dressing-eye (10.2cm)</td>
			<td style="width:71px;">Stevens</td>
			<td style="width:119px;">162-18-780</td>
			<td style="width:167px;"></td>
		</tr>
		<tr height="40">
			<td height="40" style="height:40px;width:211px;">Forceps dressing-Adison (12.1cm)</td>
			<td style="width:71px;">Stevens</td>
			<td style="width:119px;">162-17-2510</td>
			<td style="width:167px;"></td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;width:211px;">Needle Drivers</td>
			<td style="width:71px;">Stevens</td>
			<td style="width:119px;">162-V98-42</td>
			<td style="width:167px;"></td>
		</tr>
		<tr height="40">
			<td height="40" style="height:40px;width:211px;">Iris scissors</td>
			<td style="width:71px;">Fine science</td>
			<td style="width:119px;">14058-11</td>
			<td style="width:167px;"></td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;width:211px;">Circulating water pump</td>
			<td style="width:71px;">Jorvet</td>
			<td style="width:119px;">J-783X</td>
			<td style="width:167px;"></td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;width:211px;">Maxitherm-Vinyl blanket</td>
			<td style="width:71px;">Jorvet</td>
			<td style="width:119px;">J-784C</td>
			<td style="width:167px;"></td>
		</tr>
		<tr height="60">
			<td height="60" style="height:60px;width:211px;">Q tip applicators</td>
			<td style="width:71px;">Fisher Scientific</td>
			<td style="width:119px;">22-037-960</td>
			<td style="width:167px;"></td>
		</tr>
		<tr height="80">
			<td height="80" style="height:80px;width:211px;">Catheterization&#160; tubing (4.06 OD X 2.31 ID)</td>
			<td style="width:71px;">Braintree Scientific Inc.</td>
			<td style="width:119px;">MRE-160</td>
			<td rowspan="2" style="width:167px;">Micro-Renethane implantation tubing</td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;width:211px;">2-0 silk suture</td>
			<td style="width:71px;">Ethicon</td>
			<td style="width:119px;">LA556</td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;width:211px;">2-0 polyglactin suture</td>
			<td style="width:71px;">Ethicon</td>
			<td style="width:119px;">J443H</td>
			<td style="width:167px;">2-0 vicryl</td>
		</tr>
		<tr height="60">
			<td height="60" style="height:60px;width:211px;">Large animal jacket</td>
			<td style="width:71px;">Lomir Biomedical Inc.</td>
			<td style="width:119px;">SSJ2YC</td>
			<td style="width:167px;"></td>
		</tr>
		<tr height="60">
			<td height="60" style="height:60px;width:211px;">Polypropylene wash bottles</td>
			<td style="width:71px;">Fisher Scientific</td>
			<td style="width:119px;">03-409-22C</td>
			<td style="width:167px;">500 ml</td>
		</tr>
		<tr height="40">
			<td height="40" style="height:40px;width:211px;">Penicillin-Streptomycin</td>
			<td style="width:71px;">Sigma Aldrich</td>
			<td style="width:119px;">D4333</td>
			<td style="width:167px;"></td>
		</tr>
		<tr height="40">
			<td height="40" style="height:40px;width:211px;">EDTA</td>
			<td style="width:71px;">Sigma Aldrich</td>
			<td style="width:119px;">60-00-4</td>
			<td style="width:167px;"></td>
		</tr>
		<tr height="40">
			<td height="40" style="height:40px;width:211px;">Amphotericin B</td>
			<td style="width:71px;">Sigma Aldrich</td>
			<td style="width:119px;">A2411</td>
			<td style="width:167px;"></td>
		</tr>
		<tr height="60">
			<td height="60" style="height:60px;width:211px;">Azaperone</td>
			<td style="width:71px;">Elanco Animal Health</td>
			<td style="width:119px;"></td>
			<td style="width:167px;">Stresnil</td>
		</tr>
		<tr height="40">
			<td height="40" style="height:40px;width:211px;">Dexmedetomidine hydrochloride</td>
			<td style="width:71px;">Zoetis</td>
			<td style="width:119px;">6295</td>
			<td style="width:167px;">Dexdomitor</td>
		</tr>
		<tr height="60">
			<td height="60" style="height:60px;width:211px;">Isoflurane</td>
			<td style="width:71px;">Abbott Animal&#160; Health</td>
			<td style="width:119px;">05260-5</td>
			<td style="width:167px;">IsoFlo</td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;width:211px;">Ketamine hydrochloride</td>
			<td style="width:71px;">Zoetis</td>
			<td style="width:119px;">2626</td>
			<td style="width:167px;">Ketaset</td>
		</tr>
		<tr height="100">
			<td height="100" style="height:100px;width:211px;">Bupenorphine hydrochloride</td>
			<td style="width:71px;">Champion Alstoe Animal Health</td>
			<td style="width:119px;"></td>
			<td style="width:167px;">DIN:02347510</td>
		</tr>
		<tr height="20">
			<td height="20" style="height:20px;width:211px;">6 mm Endotracheal tube</td>
			<td style="width:71px;">Jorvet</td>
			<td style="width:119px;">J-165d</td>
			<td style="width:167px;"></td>
		</tr>
		<tr height="40">
			<td height="40" style="height:40px;width:211px;">10% Lidocaine spray</td>
			<td style="width:71px;">AstraZeneca</td>
			<td style="width:119px;"></td>
			<td style="width:167px;">DIN:02003767</td>
		</tr>
		<tr height="60">
			<td height="60" style="height:60px;width:211px;">4 % Chlorhexidine surgical scrub</td>
			<td style="width:71px;">Partnar Animal Health</td>
			<td style="width:119px;">PCH-011</td>
			<td style="width:167px;">Diluted: 2.0% solution</td>
		</tr>
		<tr height="60">
			<td height="60" style="height:60px;width:211px;">3M Surgical steri- drape</td>
			<td style="width:71px;">3M Health Care</td>
			<td style="width:119px;">1040</td>
			<td style="width:167px;"></td>
		</tr>
		<tr height="40">
			<td height="40" style="height:40px;width:211px;">SDS page gel</td>
			<td style="width:71px;">Invitrogen</td>
			<td style="width:119px;">EA0375BOX</td>
			<td style="width:167px;">3-8 % tris acetate</td>
		</tr>
		<tr height="40">
			<td height="40" style="height:40px;width:211px;">Polyvinylidene fluoride membrane</td>
			<td style="width:71px;">Millipore</td>
			<td style="width:119px;">IPVH00010</td>
			<td style="width:167px;">0.45 &#956;m pore size</td>
		</tr>
		<tr height="40">
			<td height="40" style="height:40px;width:211px;">ApoB antibody&#160;</td>
			<td style="width:71px;">EMD Millipore</td>
			<td style="width:119px;">AB742</td>
			<td style="width:167px;">1:4000 dilution</td>
		</tr>
		<tr height="80">
			<td height="80" style="height:80px;width:211px;">Donkey anti-goat IgG-HRP</td>
			<td style="width:71px;">Santa Cruz Biotechnology</td>
			<td style="width:119px;">Sc-2304</td>
			<td style="width:167px;"></td>
		</tr>
		<tr height="100">
			<td height="100" style="height:100px;width:211px;">ECL Prime Western Blotting Reagent</td>
			<td style="width:71px;">GE Healthcare LifeSciences</td>
			<td style="width:119px;">RPN2232&#160;&#160;&#160;</td>
			<td style="width:167px;"></td>
		</tr>
		<tr height="80">
			<td height="80" style="height:80px;width:211px;">Triglyceride Kit</td>
			<td style="width:71px;">Wako Pure Chemicals</td>
			<td style="width:119px;">998-40391/994-40491</td>
			<td style="width:167px;"></td>
		</tr>
		<tr height="80">
			<td height="80" style="height:80px;width:211px;">Total Cholesterol Kit</td>
			<td style="width:71px;">Wako Pure Chemicals</td>
			<td style="width:119px;">439-17501</td>
			<td style="width:167px;"></td>
		</tr>
		<tr height="40">
			<td height="40" style="height:40px;width:211px;">Total Protein</td>
			<td style="width:71px;">&#160;Pierce&#160;</td>
			<td style="width:119px;">23225</td>
			<td style="width:167px;">Bicinchoninic Acid Assay</td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

long-term catheterization of the intestinal lymph trunk and collection of lymph in neonatal pigs

Catheterization of the intestinal lymph trunk in neonatal pigs is a technique allowing for the long-term collection of large quantities of intestinal (central) efferent lymph. Importantly, the collection of central lymph from the intestine enables researchers to study both the mechanisms and lipid constitutes associated with lipid metabolism, intestinal inflammation and cancer metastasis, as well as cells involved in immune function and immunosurveillance. A ventral mid-line surgical approach permits excellent surgical exposure to the cranial abdomen and relatively easy access to the intestinal lymph trunk vessel that lies near the pancreas and the right ventral segment of the portal vein underneath the visceral aspect of the right liver lobe. The vessel is meticulously dissected and released from the surrounding fascia and then dilated with sutures allowing for insertion and subsequent securing of the catheter into the vessel. The catheter is exteriorized and approximately 1 L/24 hr of lymph is collected over a 7 day period. While this technique enables the collection of large quantities of central lymph over an extended period of time, the success depends on careful surgical dissection, tissue handling and close attention to proper surgical technique. This is particularly important with surgeries in young animals as the lymph vessels can easily tear, potentially leading to surgical and experimental failure. The video demonstrates an excellent surgical technique for the collection of intestinal lymph.

<html> צנתור הלימפה של המטען הלימפה מעיים של חזיר בילוד מאפשר איסוף של כ 1 L / 24 שעות של הלימפה מרכזית על תקופה של 7 ימים. הלימפה שנאסף בניסויים זה הכיל רכיבים של מטבוליזם שומנים בדם, כלומר חלבון הלימפה הכולל, ליפופרוטאין ApoB48, טריגליצרידים, חלבון כולל, וכול?...

Watch this Scientific Journal Video about Long-Term Catheterization of the Intestinal Lymph Trunk and Collection of Lymph in Neonatal Pigs at JoVE.com

Long-Term Catheterization of the Intestinal Lymph Trunk and Collection of Lymph in Neonatal Pigs

We present a surgical procedure to catheterize the intestinal lymph trunk in neonatal pigs to collect large quantities of lipid metabolism components from efferent lymph.

צנתור לטווח ארוך של טרונק לימפה במעי וגביית הלימפה חזירים ילודים

Catheterization of the intestinal lymph trunk in neonatal pigs is a technique allowing for the long-term collection of large quantities of intestinal ...

long-term-catheterization-intestinal-lymph-trunk-collection-lymph

Research

JoVE Journal

Medicine

8.6K Views.  University of Alberta. We present a surgical procedure to catheterize the intestinal lymph trunk in neonatal pigs to collect large quantities of lipid metabolism components from efferent lymph.

Video: Long-Term Catheterization of the Intestinal Lymph Trunk and Collection of Lymph in Neonatal Pigs

Multispectral Real-time Fluorescence Imaging for Intraoperative Detection of the Sentinel Lymph Node in Gynecologic Oncology

The prognosis in virtually all solid tumors depends on the presence or absence of lymph node metastases.1-3 Surgical treatment most often combines radical excision of the tumor with a full lymphadenectomy in the drainage area of the tumor. However, removal of lymph nodes is associated with increased morbidity due to infection, wound breakdown and lymphedema.4,5 As an alternative, the sentinel lymph node procedure (SLN) was developed several decades ago to detect the first draining lymph node from the tumor.6 In case of lymphogenic dissemination, the SLN is the first lymph node that is affected (Figure 1). Hence, if the SLN does not contain metastases, downstream lymph nodes will also be free from tumor metastases and need not to be removed. The SLN procedure is part of the treatment for many tumor types, like breast cancer and melanoma, but also for cancer of the vulva and cervix.7 The current standard methodology for SLN-detection is by peritumoral injection of radiocolloid one day prior to surgery, and a colored dye intraoperatively. Disadvantages of the procedure in cervical and vulvar cancer are multiple injections in the genital area, leading to increased psychological distress for the patient, and the use of radioactive colloid.
Multispectral fluorescence imaging is an emerging imaging modality that can be applied intraoperatively without the need for injection of radiocolloid. For intraoperative fluorescence imaging, two components are needed: a fluorescent agent and a quantitative optical system for intraoperative imaging. As a fluorophore we have used indocyanine green (ICG). ICG has been used for many decades to assess cardiac function, cerebral perfusion and liver perfusion.8 It is an inert drug with a safe pharmaco-biological profile. When excited at around 750 nm, it emits light in the near-infrared spectrum around 800 nm. A custom-made multispectral fluorescence imaging camera system was used.9.
The aim of this video article is to demonstrate the detection of the SLN using intraoperative fluorescence imaging in patients with cervical and vulvar cancer. Fluorescence imaging is used in conjunction with the standard procedure, consisting of radiocolloid and a blue dye. In the future, intraoperative fluorescence imaging might replace the current method and is also easily transferable to other indications like breast cancer and melanoma.

Fluorescence imaging is a promising innovative modality for image-guided surgery in surgical oncology. In this video we describe the technical procedure for detection of the sentinel lymph node using fluorescence imaging as showcased in gynecologic oncologicy. A multispectral fluorescence camera system, together with the fluorescent agent indocyanine green, is applied.

Multispectral הדמיה בזמן אמת Fluorescence לגילוי intraoperative של הצומת סנטינל הלימפה גניקולוגיות אונקולוגיה

The prognosis in virtually all solid tumors depends on the presence or absence of lymph node metastases.1-3 Surgical treatment most often combines radical ...

Basic Surgical Techniques in the G&ouml;ttingen Minipig: Intubation, Bladder Catheterization, Femoral Vessel Catheterization, and Transcardial Perfusion

The emergence of the G&ouml;ttingen minipig in research of topics such as neuroscience, toxicology, diabetes, obesity, and experimental surgery reflects the close resemblance of these animals to human anatomy and physiology 1-6.The size of the G&ouml;ttingen minipig permits the use of surgical equipment and advanced imaging modalities similar to those used in humans 6-8. The aim of this instructional video is to increase the awareness on the value of minipigs in biomedical research, by demonstrating how to perform tracheal intubation, transurethral bladder catheterization, femoral artery and vein catheterization, as well as transcardial perfusion. 
Endotracheal Intubation should be performed whenever a minipig undergoes general anesthesia, because it maintains a patent airway, permits assisted ventilation and protects the airways from aspirates. Transurethral bladder catheterization can provide useful information about about hydration state as well as renal and cardiovascular function during long surgical procedures. Furthermore, urinary catheterization can prevent contamination of delicate medico-technical equipment and painful bladder extension which may harm the animal and unnecessarily influence the experiment due to increased vagal tone and altered physiological parameters. Arterial and venous catheterization is useful for obtaining repeated blood samples and monitoring various physiological parameters. Catheterization of femoral vessels is preferable to catheterization of the neck vessels for ease of access, when performing experiments involving frame-based stereotaxic neurosurgery and brain imaging. When performing vessel catheterization in survival studies, strict aseptic technique must be employed to avoid infections6. Transcardial perfusion is the most effective fixation method, and yields preeminent results when preparing minipig organs for histology and histochemistry2,9. For more information about anesthesia, surgery and experimental techniques in swine in general we refer to Swindle 2007. Supplementary information about premedication and induction of anesthesia, assisted ventilation, analgesia, pre- and postoperative care of G&ouml;ttingen minipigs are available via the internet at <a href="http://www.minipigs.com">http://www.minipigs.com</a>10. For extensive information about porcine anatomy we refer to Nickel et al. Vol. 1-511.

Basic Surgical Techniques in the G&#246;ttingen Minipig: Intubation, Bladder Catheterization, Femoral Vessel Catheterization, and Transcardial Perfusion

The use of domestic and miniature pigs in science has increased significantly in recent years. By demonstrating how to perform intubation, transurethral bladder catheterization, femoral artery and vein catheterization, as well as transcardial perfusion, we aim to further increase the value of G&ouml;ttingen minipigs in biomedical research.

טכניקות ניתוחיות בסיסי Minipig גטינגן: אינטובציה, צנתור שלפוחית ​​השתן, צנתור כלי עצם הירך, ו זלוף Transcardial

The emergence of the G&ouml;ttingen minipig in research of topics such as neuroscience, toxicology, diabetes, obesity, and experimental surgery reflects ...

Myocardial Infarction and Functional Outcome Assessment in Pigs

Introduction of newly discovered cardiovascular therapeutics into first-in-man trials depends on a strictly regulated ethical and legal roadmap. One important prerequisite is a good understanding of all safety and efficacy aspects obtained in a large animal model that validly reflect the human scenario of myocardial infarction (MI). Pigs are widely used in this regard since their cardiac size, hemodynamics, and coronary anatomy are close to that of humans. Here, we present an effective protocol for using the porcine MI model using a closed-chest coronary balloon occlusion of the left anterior descending artery (LAD), followed by reperfusion. This approach is based on 90 min of myocardial ischemia, inducing large left ventricle infarction of the anterior, septal and inferoseptal walls. Furthermore, we present protocols for various measures of outcome that provide a wide range of information on the heart, such as cardiac systolic and diastolic function, hemodynamics, coronary flow velocity, microvascular resistance, and infarct size. This protocol can be easily tailored to meet study specific requirements for the validation of novel cardioregenerative biologics at different stages (i.e. directly after the acute ischemic insult, in the subacute setting or even in the chronic MI once scar formation has been completed). This model therefore provides a useful translational tool to study MI, subsequent adverse remodeling, and the potential of novel cardioregenerative agents.

This protocol describes the porcine myocardial infarction (MI) model using a 90 min closed-chest coronary balloon occlusion of the left anterior descending artery (LAD), followed by reperfusion. Furthermore, the protocol for several outcome parameters, such as cardiac function, hemodynamics, microvascular resistance, and infarct size, are also presented.

אוטם שריר לב והערכת תוצאה תפקודית בחזירים

Introduction of newly discovered cardiovascular therapeutics into first-in-man trials depends on a strictly regulated ethical and legal roadmap. One ...

Collection and Extraction of Saliva DNA for Next Generation Sequencing

The preferred source of DNA in human genetics research is blood, or cell lines derived from blood, as these sources yield large quantities of high quality DNA. However, DNA extraction from saliva can yield high quality DNA with little to no degradation/fragmentation that is suitable for a variety of DNA assays without the expense of a phlebotomist and can even be acquired through the mail. However, at present, no saliva DNA collection/extraction protocols for next generation sequencing have been presented in the literature. This protocol optimizes parameters of saliva collection/storage and DNA extraction to be of sufficient quality and quantity for DNA assays with the highest standards, including microarray genotyping and next generation sequencing.

DNA extraction from saliva can provide a readily available source of high molecular weight DNA, with little to no degradation/fragmentation. This protocol provides optimized parameters for saliva collection/storage and DNA extraction to be of sufficient quality and quantity for downstream DNA assays with high quality requirements.

איסוף והפקת DNA רוק לסידור הדור הבא

The preferred source of DNA in human genetics research is blood, or cell lines derived from blood, as these sources yield large quantities of high quality ...

High-frequency Ultrasound Imaging of Mouse Cervical Lymph Nodes

High-frequency ultrasound (HFUS) is widely employed as a non-invasive method for imaging internal anatomic structures in experimental small animal systems. HFUS has the ability to detect structures as small as 30 &#181;m, a property that has been utilized for visualizing superficial lymph nodes in rodents in brightness (B)-mode. Combining power Doppler with B-mode imaging allows for measuring circulatory blood flow within lymph nodes and other organs. While HFUS has been utilized for lymph node imaging in a number of mouse&#160; model systems, a detailed protocol describing HFUS imaging and characterization of the cervical lymph nodes in mice has not been reported. Here, we show that HFUS can be adapted to detect and characterize cervical lymph nodes in mice. Combined B-mode and power Doppler imaging can be used to detect increases in blood flow in immunologically-enlarged cervical nodes. We also describe the use of B-mode imaging to conduct fine needle biopsies of cervical lymph nodes to retrieve lymph tissue for histological&#160; analysis. Finally, software-aided steps are described to calculate changes in lymph node volume and to visualize changes in lymph node morphology following image reconstruction. The ability to visually monitor changes in cervical lymph node biology over time provides a simple and powerful technique for the non-invasive monitoring of cervical lymph node alterations in preclinical mouse models of oral cavity disease.

This protocol describes the application of high-frequency ultrasound (HFUS) for imaging mouse cervical lymph nodes. This technique optimizes visualization and quantification of cervical lymph node morphology, volume and blood flow. Image-guided biopsy of cervical lymph nodes and processing of lymph tissue for histological evaluation is also demonstrated.

בתדירות גבוהה אולטראסאונד הדמיה של בלוטות לימפה עכבר צוואר הרחם

High-frequency ultrasound (HFUS) is widely employed as a non-invasive method for imaging internal anatomic structures in experimental small animal ...

Surgical Placement of Catheters for Long-term Cardiovascular Exercise Testing in Swine

This protocol describes the surgical procedure to chronically instrument swine and the procedure to exercise swine on a motor-driven treadmill. Early cardiopulmonary dysfunction is difficult to diagnose, particularly in animal models, as cardiopulmonary function is often measured invasively, requiring anesthesia. As many anesthetic agents are cardiodepressive, subtle changes in cardiovascular function may be masked. In contrast, chronic instrumentation allows for measurement of cardiopulmonary function in the awake state, so that measurements can be obtained under quiet resting conditions, without the effects of anesthesia and acute surgical trauma. Furthermore, when animals are properly trained, measurements can also be obtained during graded treadmill exercise.
Flow probes are placed around the aorta or pulmonary artery for measurement of cardiac output and around the left anterior descending coronary artery for measurement of coronary blood flow. Fluid-filled catheters are implanted in the aorta, pulmonary artery, left atrium, left ventricle and right ventricle for pressure measurement and blood sampling. In addition, a 20 G&#160;catheter is positioned in the anterior interventricular vein to allow coronary venous blood sampling.
After a week of recovery, swine are placed on a motor-driven treadmill, the catheters are connected to pressure and flow meters, and swine are subjected to a five-stage progressive exercise protocol, with each stage lasting 3 min. Hemodynamic signals are continuously recorded and blood samples are taken during the last 30 sec of each exercise stage.
The major advantage of studying chronically instrumented animals is that it allows serial assessment of cardiopulmonary function, not only at rest but also during physical stress such as exercise. Moreover, cardiopulmonary function can be assessed repeatedly during disease development and during chronic treatment, thereby increasing statistical power and hence limiting the number of animals required for a study.

Here we present a protocol to assess cardiopulmonary function in awake swine, at rest and during graded treadmill exercise. Chronic instrumentation allows for repeated hemodynamic measurements uninfluenced by cardiodepressive anesthetic agents.

מיקום כירורגי של קטטרים לטווח ארוך בדיקת תרגיל לב וכלי דם ב חזירים

This protocol describes the surgical procedure to chronically instrument swine and the procedure to exercise swine on a motor-driven treadmill. Early ...

Laparoscopic Technique for Serial Collection of Liver and Mesenteric Lymph Nodes in Macaques

The mesenteric lymph nodes (MLN) and the liver are exposed to microbes and microbial products from the gastrointestinal (GI) tract, making them immunologically unique. The GI tract and associated MLN are sites of early viral replication in human immunodeficiency virus (HIV) infection and the MLN are likely important reservoir sites that harbor latently-infected cells even after prolonged antiretroviral therapy (ART). The liver has been shown to play a significant role in immune responses to lentiviruses and appears to play a significant role in clearance of virus from circulation. Nonhuman primate (NHP) models for HIV and Acquired Immunodeficiency Syndrome (AIDS) closely mimic these aspects of HIV infection and serial longitudinal sampling of primary sites of viral replication and the associated immune responses in this model will help to elucidate critical events in infection, pathogenesis, and the impact of various intervention strategies on these events. Current published techniques to sample liver and MLN together involve major surgery and/or necropsy, which limits the ability to investigate these important sites in a serial fashion in the same animal. We have previously described a laparoscopic technique for collection of MLN. Here, we describe a minimally invasive laparoscopic technique for serial longitudinal sampling of liver and MLN through the same two port locations required for the collection of MLN. The use of the same two ports minimizes the impact to the animals as no additional incisions are required. This technique can be used with increased sampling frequency compared to major abdominal surgery and reduces the potential for surgical complications and associated local and systemic inflammatory responses that could complicate interpretation of results. This procedure has potential to facilitate studies involving NHP models while improving animal welfare.

Here, we describe a minimally invasive laparoscopic technique for serial sampling of liver and mesenteric lymph nodes (MLN) in macaques that allows for increased sampling frequency, and reduces the potential for surgical complications when compared to performing a laparotomy.

טכניקה לפרוסקופית עבור אוסף סידורי של צומת כבדים Mesenteric הלימפה קופי מקוק

The mesenteric lymph nodes (MLN) and the liver are exposed to microbes and microbial products from the gastrointestinal (GI) tract, making them ...

Flow Cytometry Analysis of Immune Cell Subsets within the Murine Spleen, Bone Marrow, Lymph Nodes and Synovial Tissue in an Osteoarthritis Model

Osteoarthritis (OA) is one of the most prevalent musculoskeletal diseases, affecting patients suffering from pain and physical limitations. Recent evidence indicates a potential inflammatory component of the disease, with both T-cells and monocytes/macrophages potentially associated with the pathogenesis of OA. Further studies postulated an important role for subsets of both inflammatory cell lineages, such as Th1, Th2, Th17, and T-regulatory lymphocytes, and M1, M2, and synovium-tissue-resident macrophages. However, the interaction between the local synovial and systemic inflammatory cellular response and the structural changes in the joint is unknown. To fully understand how T-cells and monocytes/macrophages contribute towards OA, it is important to be able to quantitively identify these cells and their subsets simultaneously in synovial tissue, secondary lymphatic organs and systemically (the spleen and bone marrow). Nowadays, the different inflammatory cell subsets can be identified by a combination of cell-surface markers making multi-color flow cytometry a powerful technique in investigating these cellular processes. In this protocol, we describe detailed steps regarding the harvest of synovial tissue and secondary lymphatic organs as well as generation of single cell suspensions. Furthermore, we present both an extracellular staining assay to identify monocytes/macrophages and their subsets as well as an extra- and intra-cellular staining assay to identify T-cells and their subsets within the murine spleen, bone marrow, lymph nodes and synovial tissue. Each step of this protocol was optimized and tested, resulting in a highly reproducible assay that can be utilized for other surgical and non-surgical OA mouse models.

Here, we describe a detailed and reproducible flow cytometry protocol to identify monocyte/macrophage and T-cell subsets using both extra- and intracellular staining assays within the murine spleen, bone marrow, lymph nodes and synovial tissue, utilizing an established surgical model of murine osteoarthritis.

ניתוח ציתום זרימה של תת-סטים של תאים חיסוניים בתוך הטחול מורין, מח העצם, בלוטות הלימפה ורקמות Synovial במודל דלקת מפרקים ניוונית

Osteoarthritis (OA) is one of the most prevalent musculoskeletal diseases, affecting patients suffering from pain and physical limitations. Recent ...

Analyzing Long-Term Electrocardiography Recordings to Detect Arrhythmias in Mice

Arrhythmias are common, affecting millions of patients worldwide. Current treatment strategies are associated with significant side effects and remain ineffective in many patients. To improve patient care, novel and innovative therapeutic concepts causally targeting arrhythmia mechanisms are needed. To study the complex pathophysiology of arrhythmias, suitable animal models are necessary, and mice have been proven to be ideal model species to evaluate the genetic impact on arrhythmias, to investigate fundamental molecular and cellular mechanisms, and to identify potential therapeutic targets.
Implantable telemetry devices are among the most powerful tools available to study electrophysiology in mice, allowing continuous ECG recording over a period of several months in freely moving, awake mice. However, due to the huge number of data points (&gt;1 million QRS complexes per day), analysis of telemetry data remains challenging. This article describes a step-by-step approach to analyze ECGs and to detect arrhythmias in long-term telemetry recordings using the software, Ponemah, with its analysis modules, ECG Pro and Data Insights, developed by Data Sciences International (DSI). To analyze basic ECG parameters, such as heart rate, P wave duration, PR interval, QRS interval, or QT duration, an automated attribute analysis was performed using Ponemah to identify P, Q, and T waves within individually adjusted windows around detected R waves. 
Results were then manually reviewed, allowing adjustment of individual annotations. The output from the attribute-based analysis and the pattern recognition analysis was then used by the Data Insights module to detect arrhythmias. This module allows an automatic screening for individually defined arrhythmias within the recording, followed by a manual review of suspected arrhythmia episodes. The article briefly discusses challenges in recording and detecting ECG signals, suggests strategies to improve data quality, and provides representative recordings of arrhythmias detected in mice using the approach described above.

Here we present a step-by-step protocol for a semiautomated approach to analyze murine long-term electrocardiography (ECG) data for basic ECG parameters and common arrhythmias. Data are obtained by implantable telemetry transmitters in living and awake mice and analyzed using Ponemah and its analysis modules.

ניתוח הקלטות אלקטרוקרדיוגרפיה ארוכות טווח לאיתור הפרעות קצב בעכברים

Arrhythmias are common, affecting millions of patients worldwide. Current treatment strategies are associated with significant side effects and remain ...

Robot-assisted Total Mesorectal Excision and Lateral Pelvic Lymph Node Dissection for Locally Advanced Middle-low Rectal Cancer

Since their approval for clinical use, da Vinci surgical robots have shown great advantages in gastrointestinal surgical operations, especially in complex procedures. The high-quality 3-D visual, multijoint arm and natural tremor filtration allow the surgeon to expose and dissect more accurately with minimal invasion. Total mesorectal excision is the standard surgical technique for the treatment of resectable rectal cancer. To reduce the lateral recurrence rate, lateral pelvic lymph node dissection can be performed, as it is a safe and feasible procedure for locally advanced middle-low rectal cancer with a high possibility of metastasis to the lateral lymph nodes. However, the complexity of the anatomic structures and the high postoperative complication rate limit its application. Recently, several surgeons have increasingly used robotic techniques for total mesorectal excision and lateral pelvic lymph node dissection. Compared with open and laparoscopic surgery, the robotic technique has several advantages, such as less blood loss, fewer blood transfusions, minimal trauma, shorter postoperative hospitalization, and quicker recovery. A robotic approach is generally regarded as a reasonable alternative for complicated procedures such as lateral pelvic lymph node dissection, although there are a limited number of high-quality prospective randomized controlled studies reporting direct evidence. Here, we provide the detailed steps of robot-assisted total mesorectal excision and lateral pelvic lymph node dissection performed at the First Affiliated Hospital of Xi&#39;an Jiaotong University.

The robotic technique described herein aims to detail a stepwise approach to robot-assisted total mesorectal excision and lateral pelvic lymph node dissection for locally advanced (T3/T4) rectal cancer located below the peritoneal reflection.

כריתה מזורצית בסיוע רובוט וריצוף בלוטות לימפה לרוחב האגן לסרטן רקטלי בינוני-נמוך מתקדם מקומי

Since their approval for clinical use, da Vinci surgical robots have shown great advantages in gastrointestinal surgical operations, especially in complex ...