אנו מודים פרנסיסקו Candal, ה-CDC העברת טכנולוגיה Office, אטלנטה ג&#39;ורג&#39;יה עבור HBEC-5i תאים. עבודה זו מומנה על ידי קרן Wellcome (4 בשנה מלגת הלימודים לתואר שלישי ל-AC ו - מלגה בכיר במדעי ביו בסיסי JAR, מענק מספר 084226).

המלצות כלליות אנדותל כלי הדם במוח האדם תאים (HBEC-5i) תרבות תוארה בעבר 6, 8. פ טפילים falciparum היו מתורבתים כמו 9. שני HBEC-5i ו פ falciparum תרבויות טפיל צריך להישמר בתנאים סטריליים בכל עת. ריאגנטים כל צריך להיות מחומם מראש על 37 ° C. אנו ממליצים לבדוק באופן קבוע עבור זיהום mycoplasma 10 על ידי ה-PCR (Minevera Biolabs, הוראות היצרן הבא). הפרוטוקול הוא סיכם באיור 1. 1. תא האנדותל שגרתי תרבות <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> הכן את ריאגנטים הצורך. </li></ol><table border="1" style=";text-align:right;direction:rtl"><tbody><tr><td> בינוני להכין </td><td> ריאגנטים </td><td> כמות </td></tr><tr><td> &quot;שלם DMEM&quot; </td><td> DMEM-F12 חם </td><td> 500ml </td></tr><tr><td> &amp;nbsp; </td><td> L-גלוטמין 200mm </td><td> 5 מ&quot;ל </td></tr><tr><td></td><td> פניצילין / סטרפטומיצין 100x </td><td> 5 מ&quot;ל </td></tr><tr><td></td><td> NaOH 1M </td><td> 1.3 מ&quot;ל (כדי להתאים את ה-pH 7.4) </td></tr><tr><td> &quot;להשלים DMEM&quot; </td><td> &quot;שלם DMEM&quot; </td><td> 450ml </td></tr><tr><td></td><td> Foetal שור סרום חום מומת </td><td> 50 מ&quot;ל </td></tr><tr><td></td><td> תא האנדותל צמיחה תוספת </td><td> 5 מ&quot;ל </td></tr></tbody></table> <ol start="2" style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> תרבות HBEC-5i בבקבוק 25cm 2 עם פרקו בינוני DMEM 10ml להשלים 37 ° C חממה עם 5% CO 2. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> המעבר התאים כאשר הם הופכים ומחוברות. הסר את המדיום הישן על ידי יניקה ולשטוף פעמיים באמצעות מדיום DMEM שלם או בתרבית רקמה כיתה PBS (Ca 2 + ו - Mg 2 + החופשי) מראש לחמם 37 ° C. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> הוסף 1ml של נסה טרום חימםpsin-EDTA (0.025% טריפסין, 0.5mm EDTA), מערבולת לכסות את מכלול הבקבוק ואת דגירה דקות ~ 2 ב 37 ° C. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> בדוק תחת מיקרוסקופ הפוכה, כי לפחות 90% של תאים היו מנותקים. אם יש צורך, לדפוק בעדינות את החלק התחתון של הבקבוק כדי לסלק תאים חסיד. הוסף 10 מ&quot;ל של מדיום DMEM להשלים לחסום את התאים טריפסין ולהעביר לתוך צינור חרוטי 15 מ&quot;ל. צנטריפוגה דקות 4 ב 300 גרם בטמפרטורת החדר (RT). </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> בטל supernatant ו resuspend גלולה עם 10 מ&quot;ל של מדיום DMEM להשלים. פיפטה הפתרון מעלה ומטה כדי ביסודיות resuspend התאים. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> הוסף 1 או 2 מ&quot;ל של השעיה התא לתוך בקבוק תרבות חדשה ולהוסיף 8ml של מדיום חדש כדי לשמור על תרבות. הערכת הצמיחה תרבות מדי יום תחת מיקרוסקופ הפוכה ולשנות בינוני כל 2 או 3 ימים לפני שהוא הופך צהוב. </li></ol> 2. הכנת לתאי אנדותל למבחר <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> יומיים לפני יום של selectio<html> n, להוסיף פיברונקטין מדולל סטרילי PBS (2 מיקרוגרם / cm 2) באחד (או יותר) 60 צלחת פטרי מ&quot;מ. דגירה את המנה דקות 5-20 ב 37 ° C, ולאחר מכן להסיר את הפתרון פיברונקטין, אשר ניתן לאחסן 4 ° C למשך חודש מחדש בשימוש פעם אחת. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> תאים מעבר כמתואר בסעיפים 1.3. עד 1.5. בהנחה תאים ומחוברות 100% היו מנותקים resuspended במדיום DMEM 10ml מלאה (סעיף 1.6., Resuspend עם נפח שווה ערך של המדיום confluency אם הוא נמוך יותר, למשל עם resuspend 8ml אם confluency היה 80%), להוסיף 1.5ml של מושעה התאים את צלחת פטרי פיברונקטין מצופה ועוד 1.5ml של המדיום DMEM להשלים. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> מניחים את צלחת פטרי seeded בחממה. הערה: באופן אידיאלי, confluency יהיה סביב 90% בעת בחירת כעבור יומיים. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> אופציונלי. כדי להפעיל HBEC-5i, מוסיפים את ציטוקינים (נמק פקטור Tumour) TNF בריכוז סופי של 24 שעות 50μg/ml לפני הבחירה. </li></ol>e_title &quot;&gt; 3. Plasmodium falciparum תרבות לשגרה <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> הכנת חומרים כימיים הדרושים (ראה טבלה כאן מתחת). הכן אנושי בתאי דם אדומים (RBC) על ידי הפרדת דם מלא (קבוצת O +) על ידי מעבר דרך מסנן דלדול לויקוציטים (ראה &quot;שיטות מחקר מלריה&quot; פרסום 11 עבור culturing מלריה טפילים כללי). לשטוף RBC פעמיים centrifuging ב 400 גרם דקות 5 ו resuspending אותם עם 10 מ&quot;ל RPMI שלם. שמור RBC שטף ב 4 ° C בינוני שלם על המטוקריט של 50%. </li></ol><table border="1" style=";text-align:right;direction:rtl"><tbody><tr><td> בינוני להכין </td><td> ריאגנטים </td><td> כמות </td></tr><tr><td> &quot;שלם RPMI&quot; </td><td> RPMI 1640 (עם סודה) </td><td> 500ml </td></tr><tr><td></td><td> Hepes 1M </td><td> 12.5ml </td></tr><tr><td></td><td> גלוקוז 20% </td><td> 5 מ&quot;ל </td></tr><tr><td></td&gt; <td> L-גלוטמין 200mm </td><td> 5 מ&quot;ל </td></tr><tr><td></td><td> Gentamycin 50mg/ml </td><td> 250μl </td></tr><tr><td></td><td> NaOH 1M </td><td> 0.7 מ&quot;ל (כדי להתאים את ה-pH 7.2) </td></tr><tr><td> &quot;RPMI שלם&quot; </td><td> &quot;שלם RPMI&quot; </td><td> 450ml </td></tr><tr><td></td><td> משולב האנושי (הלא החיסונית) בסרום </td><td> 50 מ&quot;ל </td></tr></tbody></table> <ol start="2" style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> תרבות פ falciparum נגוע RBC בינוני RPMI להשלים עם המטוקריט ב 2% ו לדגור על 37 מעלות צלזיוס עם 3% CO 2, 1% O 2, ו - 96% N 2. הפוך את כתם Giemsa 11 יום על מנת להעריך את שלב ההתפתחות של טפילים (איור 2). </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> באופן קבוע (בערך פעם בשבוע) לסנכרן את התרבות על ידי טיפול סורביטול 12. יום לפני בחירת השמאי, לשאוף לתרבות טבעת שלב ב parasitaemia 5% או יותר (רצוי לפחות 10%). </li></ol> 4. מבחר פ falciparum עבור cytoadhesion לתאי אנדותל <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> ביום של assay, התרבות הטפיל צריכים להיות בשלב trophozoite פיגמנט (איור 2) (אידיאלי parasitaemia 10%) בעוד HBEC-5i תרבות צריך להיות% 50-100 confluency (רצוי 90%). נפח תא 30μl ארוז התרבות הטפיל יש צורך לכל צלחת פטרי HBEC-5i. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> לשטוף פעמיים על ידי טפילים centrifuging (500 גרם דקות 5) 1.5ml של התרבות הטפיל. בטל supernatant ו resuspend עם 10 מ&quot;ל של טריים, בינוני חימם DMEM, שלם. חזור על לשטוף פעם שנייה. Resuspend נפח תא 30μl ארוז עם 1.5ml של DMEM שלם עם BSA 1%. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> שטפו את HBEC-5i מצופה צלחת פטרי פעמיים aspirating בינוני והוספת 3ml של DMEM שלם. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> מוסיפים את הפתרון של טפילים לצלחת HBEC-5i ו לדגור על 37 ° C עבור 75min. Resuspend טפילים פעמיים (אחרי 30 ו - 60 דקות) בזמן הדגירהעל ידי מנענעת בעדינות את המנה בתוך ארבעת הכיוונים, כמו גם עם כיוון השעון ונגד כיוון השעון. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> לאחר דגירה, לשטוף את המנה 5 פעמים על ידי aspirating בינוני, באמצעות פיפטה פסטר מפלסטיק להוסיף 3 מ&quot;ל של מדיום DMEM חם שלם, נדנדה עדין. אם מאכלים רבים נמצאים בשימוש, לשמור אותם על משטח חם, כמו בקבוק גדול מלא במים ב 37 ° C. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> בדוק את צלחת תחת מיקרוסקופ הפוכה. אם RBC נגוע רבים עדיין לעין, לעשות שוטף יותר כפי שתואר לעיל. טפל צלחת פטרי בזהירות רבה כדי למנוע סיכון של זיהום. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> הסר בינוני מצלחת ולהוסיף 3ml של המדיום RPMI חם להשלים עם נפח תא 40μl ארוז של uRBC טריים. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> מניחים את צלחת בחדר אטום דוגרים, גז זה 3 דקות והמקום קאמרית באינקובטור ב 37 מעלות צלזיוס למשך הלילה. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> למחרת, הקציר טפילים על ידי שטיפה עם המדיום RPMI שלם, באופן דומה, כמתואר בסעיף 4.4. אך ביתר שאת. Keep בינוני כל שימוש (המכיל resuspended RBC) בצינור חרוטי 15 מ&quot;ל. בדוק תחת מיקרוסקופ הפוכה שכל RBC הוסרו מן המנה. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> גלולה הטפילים, להשליך את supernatant, resuspend במדיום RPMI 5 מ&quot;ל מקום להשלים את התערובת בבקבוק עבור culturing נורמלי. </li></ol> 5. נציג תוצאות טפילים שלא נבחר להראות רמה נמוכה של כבילת HBEC-5i (איור 3A). לפיכך, לאחר הסיבוב הראשון של הבחירה, טפילים מעט מאוד יהיה לקצור וזה עשוי להימשך עד חודש של culturing להגיע parasitaemia מספיק בסיבוב השני של הבחירה. אחרי כל סיבוב הבחירה, טפילים יותר ויותר להיקשר לתאי האנדותל את הבחירות ניתן לחזור במרווחי זמן קצרים יותר. אחרי 4-5 סיבובים של בחירה גבוהה מחייב אוכלוסיות הטפיל מתקבלים (איור 3). בידיים שלנו, את הכריכה של HB3-HBEC כדי HBEC-5i או TNF מופעל HBEC-5i היה של הסיםרמת ilar (מידע לא מוצג). הפרוטוקול המתואר כאן נבחנה עם 4 פ &#39; falciparum זנים: HB3, IT/FCR3, 3D7 ו Dd2 (טבלה 1). רק שהאחרון לא הוכיח מסוגל להיקשר HBEC-5i, אפילו לאחר 5 סיבובי בחירה. HB3 טפילים נבחרו גם cytoadherence כדי Dermal ו ריאתי תאים אנושיים אנדותל כלי הדם (HDMEC ו HPMEC). לאחר 4 סיבובים של בחירה, תוך שימוש בשיטה המתוארת כאן, אוכלוסייה גבוהה מחייב הושג משני HDMEC ו HPMEC (איור 4). <img alt="איור 1" src="/files/ftp_upload/3122/3122fig1.jpg" /> באיור 1. סקירה כללית של תהליך הבחירה. <img alt="איור 2" src="/files/ftp_upload/3122/3122fig2.jpg" /> 2. איור פיתוח בשלבים של פ falciparum נגועים בתאי דם אדומים. למרוח Giemsa דמיינו במיקרוסקופ בהגדלה 1000x. <img alt="איור 3" src="/files/ftp_upload/3122/3122fig3.jpg" /> באיור 3. דוגמה אופיינית של טפילים מחייב HBEC-5i. (א) שכבת כחול HBEC-5i קבוע עם glutaraldehyde ומוכתמת עם Giemsa, דמיינו במיקרוסקופ בהגדלה 1000x. התמונות צולמו לאחר uRBC ו iRBC מאוגד נשטפו. הלוח השמאלי מציג פ &#39;יחיד falciparum HB3 (שלא נבחר) טפיל בהכרח HBEC-5i. בלוח הימני HB3-HBEC הטפילים נבחרו 5 סיבובים. (ב) נתונים מייצג את הממוצע של שני ניסויים בלתי תלויים, כל שבוצעו כפולים. מספר טפילים מחויב לכל תא האנדותל נמנה. <img alt="טבלה 1" src="/files/ftp_upload/3122/3122table1.jpg" /> טבלה 1. סיכום של זנים Plasmodium falciparum כי נבחרו בהצלחה מחייב הערה. HBEC-5i כי HB3 נבחר גם על TNF-הופעל HBEC-5i. לאחר 5 סיבובי בחירה, את המתח Dd2 לא הראו עלייה מחייב HBEC-5i לעומת נבחר-Dd2. <img alt="איור 4" src="/files/ftp_upload/3122/3122fig4.jpg" /> איור 4. עקידת פ falciparum HB3 טפילים עד (HPMEC) תאים עורי (HDMEC) ו ריאתי אנדותל, לפני ואחרי 4 סיבובים של הבחירה. למרות בינוני תרבות HDMEC ו HPMEC מעט שונה (ראה הוראות של הספק), את פרוטוקול המשמש הבחירה היתה זהה כמו HBEC-5i. תמונות שצולמו בהגדלה של 400X. <table border="1" style=";text-align:right;direction:rtl"><tbody><tr><td> שם מגיב </td><td> חברה </td><td> מספר קטלוגי </td><td> תגובות </td></tr><tr><td> DMEM-F12 חם </td><td> סיגמא </td><td> D6421 </td><td> במשך בינוני DMEM להשלים </td></tr><tr><td> L-גלוטמין 200mm </td><td>GIBCO </td><td> 25030 </td><td> במשך בינוני DMEM ו RPMI להשלים </td></tr><tr><td> פניצילין / סטרפטומיצין 100x (10,000 יחידות / מ&quot;ל ​​ו 10mg/ml) </td><td> ScienCell </td><td> 0503 </td><td> במשך בינוני DMEM להשלים </td></tr><tr><td> Foetal שור סרום חום מומת </td><td> ScienCell </td><td> 0025 </td><td> במשך בינוני DMEM להשלים </td></tr><tr><td> טריפסין-EDTA (0.025% טריפסין, 0.5mm EDTA) </td><td> ScienCell </td><td> 0103 </td><td></td></tr><tr><td> תא האנדותל צמיחה תוספת </td><td> ScienCell </td><td> 1052 </td><td> במשך בינוני DMEM להשלים </td></tr><tr><td> תרבות רקמות טופלו 60 מ&quot;מ X 15 מ&quot;מ צלחות פטרי </td><td> BD </td><td> 353002 </td><td></td></tr><tr><td> האדם פיברונקטין </td><td> Millipore </td><td> FC010 </td><td> השתמש ב מיקרוגרם 2 / 2 ס&quot;מ </td></tr><tr><td> TNF </td><td> מו&quot;פד מערכות </td><td> 210-TA </td><td> אופציונלי, יש להשתמש ב 50 מיקרוגרם / מ&quot;ל </td></tr><tr><td> RPMI 1640 </td><td> Lonza </td><td> BE12-167F </td><td> במשך בינוני RPMI להשלים </td></tr><tr><td> Gentamycin 50mg/ml </td><td> Lonza </td><td> 17-518Z </td><td> במשך בינוני RPMI להשלים </td></tr><tr><td> Hepes 1M </td><td> Lonza </td><td> BE17-737E </td><td> במשך בינוני RPMI להשלים </td></tr><tr><td> HDMEC </td><td> ScienCell </td><td> 2000 </td><td> תא ראשי קו </td></tr><tr><td> HPMEC </td><td> ScienCell </td><td> 3000 </td><td> תא ראשי קו </td></tr><tr><td> HBEC-5i </td><td></td><td></td><td> המתקבל פרנסיסקו Candal (fcandal@cdc.gov) </td></tr></tbody></table> טבלה 2. חומרים

<ol>
	<li>Scherf, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Antigenic+variation+in+malaria:+in+situ+switching,+relaxed+and+mutually+exclusive+transcription+of+var+genes+during+intra-erythrocytic+development+in+Plasmodium+falciparum.">Antigenic variation in malaria: in situ switching, relaxed and mutually exclusive transcription of var genes during intra-erythrocytic development in Plasmodium falciparum.</a> Embo. J. 17, 5418-5426 (1998).</li><li>MacPherson, G. G., Warrell, M. J., White, N. J., Looareesuwan, S., Warrell, D. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Human+cerebral+malaria.+A+quantitative+ultrastructural+analysis+of+parasitized+erythrocyte+sequestration.">Human cerebral malaria. A quantitative ultrastructural analysis of parasitized erythrocyte sequestration.</a> Am. J. Pathol. 119, 385-401 (1985).</li><li>Seydel, K. B., Milner, D. A., Kamiza, S. B., Molyneux, M. E., Taylor, T. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+distribution+and+intensity+of+parasite+sequestration+in+comatose+Malawian+children.">The distribution and intensity of parasite sequestration in comatose Malawian children.</a> J. Infect. Dis. 194, 208-208 (2006).</li><li>Taylor, T. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Differentiating+the+pathologies+of+cerebral+malaria+by+postmortem+parasite+counts.">Differentiating the pathologies of cerebral malaria by postmortem parasite counts.</a> Nat. Med. 10, 143-145 (2004).</li><li>van der Heyde, H. C., Nolan, J., Combes, V., Gramaglia, I., Grau, G. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+unified+hypothesis+for+the+genesis+of+cerebral+malaria:+sequestration,+inflammation+and+hemostasis+leading+to+microcirculatory+dysfunction.">A unified hypothesis for the genesis of cerebral malaria: sequestration, inflammation and hemostasis leading to microcirculatory dysfunction.</a> Trends. Parasitol. 22, 503-508 (2006).</li><li>Dorovini-Zis, K., Prameya, R., Bowman, P. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Culture+and+characterization+of+microvascular+endothelial+cells+derived+from+human+brain.">Culture and characterization of microvascular endothelial cells derived from human brain.</a> Lab. Invest. 64, 425-436 (1991).</li><li>Rowe, J. A., Claessens, A., Corrigan, R. A., Arman, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Adhesion+of+Plasmodium+falciparum-infected+erythrocytes+to+human+cells:+molecular+mechanisms+and+therapeutic+implications.">Adhesion of Plasmodium falciparum-infected erythrocytes to human cells: molecular mechanisms and therapeutic implications.</a> Expert reviews in molecular medicine. 11, e16-e16 (2009).</li><li>Xiao, L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Plasmodium+falciparum:+involvement+of+additional+receptors+in+the+cytoadherence+of+infected+erythrocytes+to+microvascular+endothelial+cells.">Plasmodium falciparum: involvement of additional receptors in the cytoadherence of infected erythrocytes to microvascular endothelial cells.</a> Exp. Parasitol. 84, 42-55 (1996).</li><li>Corrigan, R. A., Rowe, J. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Strain+variation+in+early+innate+cytokine+induction+by+Plasmodium+falciparum.">Strain variation in early innate cytokine induction by Plasmodium falciparum.</a> Parasite. Immunol. 32, 512-527 (2010).</li><li>Rowe, J. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Implications+of+mycoplasma+contamination+in+Plasmodium+falciparum+cultures+and+methods+for+its+detection+and+eradication.">Implications of mycoplasma contamination in Plasmodium falciparum cultures and methods for its detection and eradication.</a> Mol. Biochem. Parasitol. 92, 177-180 (1998).</li><li>Moll, K., Ljungstr&#246;m, I., Perlmann, H., Scherf, A., Wahlgren, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=.">.</a> Methods in Malaria Research. , (2009).</li><li>Lambros, C., Vanderberg, J. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Synchronization+of+Plasmodium+falciparum+erythrocytic+stages+in+culture.">Synchronization of Plasmodium falciparum erythrocytic stages in culture.</a> J. Parasitol. 65, 418-420 (1979).</li><li>Herricks, T., Antia, M., Rathod, P. K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Deformability+limits+of+Plasmodium+falciparum-infected+red+blood+cells.">Deformability limits of Plasmodium falciparum-infected red blood cells.</a> Cell. Microbiol. , (2009).</li><li>Nakamura, K., Hasler, T., Morehead, K., Howard, R. J., Aikawa, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Plasmodium+falciparum-infected+erythrocyte+receptor(s)+for+CD36+and+thrombospondin+are+restricted+to+knobs+on+the+erythrocyte+surface.">Plasmodium falciparum-infected erythrocyte receptor(s) for CD36 and thrombospondin are restricted to knobs on the erythrocyte surface.</a> J. Histochem. Cytochem. 40, 1419-1422 (1992).</li><li>Wassmer, S. C., Cianciolo, G. J., Combes, V., Grau, G. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=LMP-420,+a+new+therapeutic+approach+for+cerebral+malaria.">LMP-420, a new therapeutic approach for cerebral malaria.</a> Med. Sci. (Paris). 22, 343-345 (2006).</li><li>Wassmer, S. C., Combes, V., Candal, F. J., Juhan-Vague, I., Grau, G. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Platelets+potentiate+brain+endothelial+alterations+induced+by+Plasmodium+falciparum.">Platelets potentiate brain endothelial alterations induced by Plasmodium falciparum.</a> Infect. Immun. 74, 645-653 (2006).</li></ol>

אין לנו שום דבר לגלות.

סימן ההיכר של קדחת המוח הוא התפיסה של פ falciparum iRBC בתוך המוח microvasculature 2, 3. עם זאת, בתרבויות חוץ גופית של פ falciparum רק cytoadhere גרוע HBEC-5i, מודל האנדותל המוח האנושי כלי הדם. כאן פיתחנו assay פשוט להעשיר את האוכלוסייה מחייב HBEC-5i, יותר &quot;כמו ב-vivo&quot; פנוטיפ. שלושה מתוך 4 פ זנים falciparum נבחרו בהצלחה בשיטה זו. יתר על כן, HB3 נבחר גם על HDMEC ו HPMEC, המעיד על כך פרוטוקול יכול לשמש טפיל שונים וסוגי תא האנדותל. השערות שונות עשויות להסביר את חוסר מחייב עם המתח Dd2. הסיכוי הטוב ביותר להיות העובדה כי קו זה הוא טפיל knobless, אשר עמוק מונעת את cytoadherence 13, 14. אנו ממליצים טפילים culturing נבחר לצד הפרו את הבחירהCess לספק הביקורת. הדבר יאפשר, למשל, להשוות את transcriptome של טפילים מחייב ולא מחייב, בתקווה לגלות מועמדים ליגנד טפיל. TNF היא ציטוקינים נמצא ברמה גבוהה אצל חולי מלריה מוחית כבר להראות לעורר את הביטוי של חלבונים רבים של פני השטח HBEC-5i (Claessens ואח&#39;, כהכנה ו 8, 15, 16). במקרה זה, את כמות iRBC מחויב היה דומה נורמלי HBEC-5i לעומת מופעל HBEC-5i. &quot;מודל התפיסה&quot; זה יכול לשמש גם כדי ללמוד את האינטראקציה המולקולרית בין iRBC ואת תא האנדותל, כמו גם את ההשפעה של תרופות אנטי cytoadherence המשוערת. במקרה זה, אנו ממליצים ציפוי HBEC-5i בבארות קטנים יותר, כגון &quot;8-קאמרית גם שקופיות&quot; (BD 354,628) או &quot;CultureWell&quot; (Sigma-C7735 20EA).

selection of plasmodium falciparum parasites for cytoadhesion to human brain endothelial cells

רוב מקרי המוות ממלריה האדם נגרמות על ידי דם בשלב טפילים Plasmodium falciparum. מלריה מוחין, הסיבוך ביותר סכנת חיים של המחלה, מאופיין על ידי הצטברות של תאים נגועים Plasmodium falciparum הדם האדומים (iRBC) בשלב trophozoite פיגמנט ב microvasculature של המוח 2-4. זו חסימה microvessel (קיבוע) מוביל היפוקסיה חמצת ו ציטוקינים דלקתיים מזיקים (הנסקרת ב 5). תפיסת נמצא גם ברקמות כלי הדם ביותר של גוף האדם 2, 3. המנגנון שבאמצעותו iRBC לצרף את דפנות כלי הדם הוא עדיין ממעטים להבין. המוח הנציח האדם כלי הדם האנדותל Cell קו (HBEC-5i) שימש מודל במבחנה של מחסום דם מוח 6. עם זאת, Plasmodium falciparum iRBC לצרף רק גרוע HBEC-5i במבחנה, בניגוד sequestrat צפוףיון המתרחשת במקרים קדחת המוח. לפיכך, אנו פיתחו assay פנורמי לבחור (להעשיר) פ שונים falciparum זנים של הידבקות HBEC-5i על מנת לקבל אוכלוסיות גבוהה מחייב טפילים, נציג נוסף של המתרחש in vivo. מדגם של תרבות טפיל (תערובת של RBC ו iRBC נגוע) בשלב trophozoite פיגמנט הוא שטף מודגרות על שכבה של HBEC-5i גדל על צלחת פטרי. לאחר דגירה, המנה נשטף בעדינות ללא uRBC ו iRBC מאוגד. URBC טרי מתווספים iRBC המעטים המצורפת HBEC-5i ו מודגרות לילה. כמו טפילים בשלב schizont פרץ, merozoites לפלוש RBC אלה בשלב טפילים טבעת נקצרים למחרת. טפילים הם בתרבית עד מתקבל מספיק חומר (בדרך כלל 2 עד 4 שבועות) ו סבב חדש של בחירה יכול להתבצע. בהתאם P. falciparum זן, 4-7 סיבובים של מבחר נדרשים כדי לקבל אוכלוסיהאיפה הכי טפילים להיקשר HBEC-5i. פנוטיפ הכריכה הוא איבד בהדרגה לאחר כמה שבועות, מה שמעיד על מתג במשטח ביטוי גרסה אנטיגן הגן, ובכך מבחר קבוע HBEC-5i נדרש כדי לשמור על הפנוטיפ. לסיכום, פיתחנו טיוח assay הבחירה פ טפילים falciparum יותר &quot;קדחת המוח דבק&quot; פנוטיפ. היינו יכולים לבחור 3 מתוך 4 פ falciparum זנים על HBEC-5i. Assay זה גם בהצלחה שימשו כדי לבחור טפילים עבור מחייב אנושי לתאי אנדותל עורי ואת ריאתי. חשוב לציין כי בשיטה זו ניתן להשתמש כדי לבחור רקמה ספציפית אוכלוסיות הטפיל על מנת לזהות טפיל ligands מועמד מחייב האנדותל במוח. יתר על כן, assay זה יכול לשמש עבור מסך נגד התפיסה תרופות המשוערת 7.

Watch this Scientific Journal Video about Selection of Plasmodium falciparum Parasites for Cytoadhesion to Human Brain Endothelial Cells at JoVE.com

Selection of Plasmodium falciparum Parasites for Cytoadhesion to Human Brain Endothelial Cells

<em&gt; במבחנה</em&gt; מודל התפיסה מלריה מוחית מתואר<sup&gt; 1</sup&gt;.<em&gt; Plasmodium falciparum</em&gt; תאים נגועים דם אדומים נבחרים מחייב הנציח אדם כלי הדם לתאי המוח אנדותל. הטפילים נבחר להציג פנוטיפ ברורים. תהליך הבחירה יכול להיות מיושם באמצעות שונים<em&gt; פ &#39; falciparum</em&gt; זני קווי תא האנדותל.

מבחר Plasmodium falciparum טפילים עבור Cytoadhesion לתאי המוח האנושי האנדותל

Most human malaria deaths are caused by blood-stage Plasmodium falciparum parasites. Cerebral malaria, the most life-threatening complication of the ...

selection-plasmodium-falciparum-parasites-for-cytoadhesion-to-human

Google

Research

JoVE Journal

Immunology and Infection

Selection of Plasmodium falciparum Parasites for Cytoadhesion to Human Brain Endothelial Cells

18.9K Views.  University of Edinburgh.  במבחנה מודל התפיסה מלריה מוחית מתואר 1. Plasmodium falciparum תאים נגועים דם אדומים נבחרים מחייב הנציח אדם כלי הדם לתאי המוח אנדותל. הטפילים נבחר להציג פנוטיפ ברורים. תהליך הבחירה יכול להיות מיושם באמצעות שונים פ ' falciparum זני קווי תא האנד...

Video: Selection of Plasmodium falciparum Parasites for Cytoadhesion to Human Brain Endothelial Cells

An In vitro Co-infection Model to Study Plasmodium falciparum-HIV-1 Interactions in Human Primary Monocyte-derived Immune Cells

Plasmodium falciparum, the causative agent of the deadliest form of malaria, and human immunodeficiency virus type-1 (HIV-1) are among the most important health problems worldwide, being responsible for a total of 4 million deaths annually1. Due to their extensive overlap in developing regions, especially Sub-Saharan Africa, co-infections with malaria and HIV-1 are common, but the interplay between the two diseases is poorly understood. Epidemiological reports have suggested that malarial infection transiently enhances HIV-1 replication and increases HIV-1 viral load in co-infected individuals2,3. Because this viremia stays high for several weeks after treatment with antimalarials, this phenomenon could have an impact on disease progression and transmission.
The cellular immunological mechanisms behind these observations have been studied only scarcely. The few in vitro studies investigating the impact of malaria on HIV-1 have demonstrated that exposure to soluble malarial antigens can increase HIV-1 infection and reactivation in immune cells. However, these studies used whole cell extracts of P. falciparum schizont stage parasites and peripheral blood mononuclear cells (PBMC), making it hard to decipher which malarial component(s) was responsible for the observed effects and what the target host cells were4,5. Recent work has demonstrated that exposure of immature monocyte-derived dendritic cells to the malarial pigment hemozoin increased their ability to transfer HIV-1 to CD4+ T cells6,7, but that it decreased HIV-1 infection of macrophages8. To shed light on this complex process, a systematic analysis of the interactions between the malaria parasite and HIV-1 in different relevant human primary cell populations is critically needed.
Several techniques for investigating the impact of HIV-1 on the phagocytosis of micro-organisms and the effect of such pathogens on HIV-1 replication have been described. We here present a method to investigate the effects of P. falciparum-infected erythrocytes on the replication of HIV-1 in human primary monocyte-derived macrophages. The impact of parasite exposure on HIV-1 transcriptional/translational events is monitored by using single cycle pseudotyped viruses in which a luciferase reporter gene has replaced the Env gene while the effect on the quantity of virus released by the infected macrophages is determined by measuring the HIV-1 capsid protein p24 by ELISA in cell supernatants.

An In vitro Co-infection Model to Study Plasmodium falciparum-HIV-1 Interactions in Human Primary Monocyte-derived Immune Cells

We have developed an in vitro malaria-HIV-1 co-infection model to study the impact of Plasmodium falciparum on the HIV-1 replicative cycle in human primary monocyte-derived macrophages. This versatile system can easily be adapted to other primary cell types susceptible to HIV-1 infection.

<em&gt; במבחנה</em&gt; שיתוף זיהום דגם ללמוד<em&gt; Plasmodium falciparum</em&gt;-HIV-1 אינטראקציות אדם מונוציטים הנגזרות תאים ראשוניים החיסון

Plasmodium falciparum, the causative agent  of the deadliest form of malaria, and human immunodeficiency virus type-1 (HIV-1) are among the most important ...

A Simple Protocol for Platelet-mediated Clumping of Plasmodium falciparum-infected Erythrocytes in a Resource Poor Setting

P. falciparum causes the majority of severe malarial infections. The pathophysiological mechanisms underlying cerebral malaria (CM) are not fully understood and several hypotheses have been put forward, including mechanical obstruction of microvessels by P. falciparum-parasitized red blood cells (pRBC). Indeed, during the intra-erythrocytic stage of its life cycle, P. falciparum has the unique ability to modify the surface of the infected erythrocyte by exporting surface antigens with varying adhesive properties onto the RBC membrane. This allows the sequestration of pRBC in multiple tissues and organs by adhesion to endothelial cells lining the microvasculature of post-capillary venules 1. By doing so, the mature forms of the parasite avoid splenic clearance of the deformed infected erythrocytes 2 and restrict their environment to a more favorable low oxygen pressure 3. As a consequence of this sequestration, it is only immature asexual parasites and gametocytes that can be detected in peripheral blood.
Cytoadherence and sequestration of mature pRBC to the numerous host receptors expressed on microvascular beds occurs in severe and uncomplicated disease. However, several lines of evidence suggest that only specific adhesive phenotypes are likely to be associated with severe pathological outcomes of malaria. One example of such specific host-parasite interactions has been demonstrated in vitro, where the ability of intercellular adhesion molecule-1 to support binding of pRBC with particular adhesive properties has been linked to development of cerebral malaria 4,5. The placenta has also been recognized as a site of preferential pRBC accumulation in malaria-infected pregnant women, with chondrotin sulphate A expressed on syncytiotrophoblasts that line the placental intervillous space as the main receptor 6. Rosetting of pRBC to uninfected erythrocytes via the complement receptor 1 (CD35)7,8 has also been associated with severe disease 9.
One of the most recently described P. falciparum cytoadherence phenotypes is the ability of the pRBC to form platelet-mediated clumps in vitro. The formation of such pRBC clumps requires CD36, a glycoprotein expressed on the surface of platelets. Another human receptor, gC1qR/HABP1/p32, expressed on diverse cell types including endothelial cells and platelets, has also been shown to facilitate pRBC adhesion on platelets to form clumps 10. Whether clumping occurs in vivo remains unclear, but it may account for the significant accumulation of platelets described in brain microvasculature of Malawian children who died from CM 11. In addition, the ability of clinical isolate cultures to clump in vitro was directly linked to the severity of disease in Malawian 12 and Mozambican patients 13, (although not in Malian 14).
With several aspects of the pRBC clumping phenotype poorly characterized, current studies on this subject have not followed a standardized procedure. This is an important issue because of the known high variability inherent in the assay 15. Here, we present a method for in vitro platelet-mediated clumping of P. falciparum with hopes that it will provide a platform for a consistent method for other groups and raise awareness of the limitations in investigating this phenotype in future studies. Being based in Malawi, we provide a protocol specifically designed for a limited resource setting, with the advantage that freshly collected clinical isolates can be examined for phenotype without need for cryopreservation.

A Simple Protocol for Platelet-mediated Clumping of Plasmodium falciparum-infected Erythrocytes in a Resource Poor Setting

This method investigates the platelet-mediated clumping phenotype of Plasmodium falciparum-infected erythrocytes (pRBC) in clinical isolates. This is performed by isolating and co-incubating platelet-rich plasma and a suspension of pRBC.

פרוטוקול פשוט לclumping טסיות דם בתיווך של<em&gt; Plasmodium falciparum</emאריתרוציטים&gt; נגועים בסביבה מסכנה משאבים

P. falciparum causes the majority of severe malarial infections. The pathophysiological mechanisms underlying cerebral malaria (CM) are not fully ...

Isolation and Analysis of Brain-sequestered Leukocytes from Plasmodium berghei ANKA-infected Mice

We describe a method for isolation and characterization of adherent inflammatory cells from brain blood vessels of P. berghei ANKA-infected mice. Infection of susceptible mouse-strains with this parasite strain results in the induction of experimental cerebral malaria, a neurologic syndrome that recapitulates certain important aspects of Plasmodium falciparum-mediated severe malaria in humans 1,2 . Mature forms of blood-stage malaria express parasitic proteins on the surface of the infected erythrocyte, which allows them to bind to vascular endothelial cells. This process induces obstructions in blood flow, resulting in hypoxia and haemorrhages 3 and also stimulates the recruitment of inflammatory leukocytes to the site of parasite sequestration.
Unlike other infections, i.e neutrotopic viruses4-6, both malaria-parasitized red blood cells (pRBC) as well as associated inflammatory leukocytes remain sequestered within blood vessels rather than infiltrating the brain parenchyma. Thus to avoid contamination of sequestered leukocytes with non-inflammatory circulating cells, extensive intracardial perfusion of infected-mice prior to organ extraction and tissue processing is required in this procedure to remove the blood compartment. After perfusion, brains are harvested and dissected in small pieces. The tissue structure is further disrupted by enzymatic treatment with Collagenase D and DNAse I. The resulting brain homogenate is then centrifuged on a Percoll gradient that allows separation of brain-sequestered leukocytes (BSL) from myelin and other tissue debris. Isolated cells are then washed, counted using a hemocytometer and stained with fluorescent antibodies for subsequent analysis by flow cytometry.
This procedure allows comprehensive phenotypic characterization of inflammatory leukocytes migrating to the brain in response to various stimuli, including stroke as well as viral or parasitic infections. The method also provides a useful tool for assessment of novel anti-inflammatory treatments in pre-clinical animal models.

Isolation and Analysis of Brain-sequestered Leukocytes from Plasmodium berghei ANKA-infected Mice

A method for isolation of adherent inflammatory leukocytes from brain blood vessels of Plasmodium berghei ANKA-infected mice is described. The method allows quantification as well as phenotypic characterization of isolated leukocytes after staining with fluorescent antibodies and subsequent analysis by flow cytometry.

בידוד ואנליזה של Leukocytes המוחי מוחרם מ<em&gt; Plasmodium berghei</em&gt; עכברי אנקה נגוע

We describe a method for isolation and  characterization of adherent inflammatory cells from brain blood vessels of P. berghei ANKA-infected mice. ...

Separation of Plasmodium falciparum Late Stage-infected Erythrocytes by Magnetic Means

Unlike other Plasmodium species, P. falciparum can be cultured in the lab, which facilitates its study 1. While the parasitemia achieved can reach the &asymp;40% limit, the investigator usually keeps the percentage at around 10%. In many cases it is necessary to isolate the parasite-containing red blood cells (RBCs) from the uninfected ones, to enrich the culture and proceed with a given experiment. 
When P. falciparum infects the erythrocyte, the parasite degrades and feeds from haemoglobin 2, 3. However, the parasite must deal with a very toxic iron-containing haem moiety 4, 5. The parasite eludes its toxicity by transforming the haem into an inert crystal polymer called haemozoin 6, 7. This iron-containing molecule is stored in its food vacuole and the metal in it has an oxidative state which differs from the one in haem 8. The ferric state of iron in the haemozoin confers on it a paramagnetic property absent in uninfected erythrocytes. As the invading parasite reaches maturity, the content of haemozoin also increases 9, which bestows even more paramagnetism on the latest stages of P. falciparum inside the erythrocyte.
Based on this paramagnetic property, the latest stages of P. falciparum infected-red blood cells can be separated by passing the culture through a column containing magnetic beads. These beads become magnetic when the columns containing them are placed on a magnet holder. Infected RBCs, due to their paramagnetism, will then be trapped inside the column, while the flow-through will contain, for the most part, uninfected erythrocytes and those containing early stages of the parasite.
Here, we describe the methodology to enrich the population of late stage parasites with magnetic columns, which maintains good parasite viability 10. After performing this procedure, the unattached culture can be returned to an incubator to allow the remaining parasites to continue growing.

Separation of Plasmodium falciparum Late Stage-infected Erythrocytes by Magnetic Means

The paramagnetic properties of hemozoin are used to isolate late stages of Plasmodium falciparum-infected red blood cells growing in culture. The method is simple and fast and does not affect the subsequent invasive capabilities of the parasites.

הפרדה<em&gt; Plasmodium falciparum</emאריתרוציטים&gt; שלב מאוחר נגועים באמצעי מגנטי

Unlike other Plasmodium species, P. falciparum can be cultured in the lab, which facilitates its study 1. While the parasitemia achieved can reach the ...

Quantitative In vitro Assay to Measure Neutrophil Adhesion to Activated Primary Human Microvascular Endothelial Cells under Static Conditions

The vascular endothelium plays an integral part in the inflammatory response. During the acute phase of inflammation, endothelial cells (ECs) are activated by host mediators or directly by conserved microbial components or host-derived danger molecules. Activated ECs express cytokines, chemokines and adhesion molecules that mobilize, activate and retain leukocytes at the site of infection or injury. Neutrophils are the first leukocytes to arrive, and adhere to the endothelium through a variety of adhesion molecules present on the surfaces of both cells. The main functions of neutrophils are to directly eliminate microbial threats, promote the recruitment of other leukocytes through the release of additional factors, and initiate wound repair. Therefore, their recruitment and attachment to the endothelium is a critical step in the initiation of the inflammatory response. In this report, we describe an in vitro neutrophil adhesion assay using calcein AM-labeled primary human neutrophils to quantitate the extent of microvascular endothelial cell activation under static conditions. This method has the additional advantage that the same samples quantitated by fluorescence spectrophotometry can also be visualized directly using fluorescence microscopy for a more qualitative assessment of neutrophil binding.

Quantitative In vitro Assay to Measure Neutrophil Adhesion to Activated Primary Human Microvascular Endothelial Cells under Static Conditions

Neutrophil adherence to the activated endothelium at sites of infection is an integral component of the host's inflammatory response. Described in this report is a neutrophil binding assay that allows for the in vitro quantitation of primary human neutrophil binding to endothelial cells activated by inflammatory mediators under static conditions.

כמותי<em&gt; במבחנה</em&gt; Assay כדי למדוד הידבקות נויטרופילים לתאים מופעלים עיקריים אדם אנדותל כלי הדם בתנאים סטטיים

The vascular  endothelium plays an integral part in the inflammatory response. During the  acute phase of inflammation, endothelial cells (ECs) are ...

Isolation of Myeloid Dendritic Cells and Epithelial Cells from Human Thymus

In this protocol we provide a method to isolate dendritic cells (DC) and epithelial cells (TEC) from the human thymus. DC and TEC are the major antigen presenting cell (APC) types found in a normal thymus and it is well established that they play distinct roles during thymic selection. These cells are localized in distinct microenvironments in the thymus and each APC type makes up only a minor population of cells. To further understand the biology of these cell types, characterization of these cell populations is highly desirable but due to their low frequency, isolation of any of these cell types requires an efficient and reproducible procedure. This protocol details a method to obtain cells suitable for characterization of diverse cellular properties. Thymic tissue is mechanically disrupted and after different steps of enzymatic digestion, the resulting cell suspension is enriched using a Percoll density centrifugation step. For isolation of myeloid DC (CD11c+), cells from the low-density fraction (LDF) are immunoselected by magnetic cell sorting. Enrichment of TEC populations (mTEC, cTEC) is achieved by depletion of hematopoietic (CD45hi) cells from the low-density Percoll cell fraction allowing their subsequent isolation via fluorescence activated cell sorting (FACS) using specific cell markers. The isolated cells can be used for different downstream applications.

This protocol details a method to isolate antigen presenting cells from human thymus via different steps of enzymatic digestion of the tissue followed by density centrifugation of the single cell suspension and finally magnetic and/or FACS sorting of the cell populations of interest.

בידוד של תאי מיאלואידית דנדריטים ותאי האפיתל מקורנית האדם

In this protocol we provide a method to isolate dendritic cells (DC) and epithelial cells (TEC) from the human thymus. DC and TEC are the major antigen ...

High Yield Purification of Plasmodium falciparum Merozoites For Use in Opsonizing Antibody Assays

Plasmodium falciparum merozoite antigens are under development as potential malaria vaccines. One aspect of immunity against malaria is the removal of free merozoites from the blood by phagocytic cells. However assessing the functional efficacy of merozoite specific opsonizing antibodies is challenging due to the short half-life of merozoites and the variability of primary phagocytic cells. Described in detail herein is a method for generating viable merozoites using the E64 protease inhibitor, and an assay of merozoite opsonin-dependent phagocytosis using the pro-monocytic cell line THP-1. E64 prevents schizont rupture while allowing the development of merozoites which are released by filtration of treated schizonts. &#160;Ethidium bromide labelled merozoites are opsonized with human plasma samples and added to THP-1 cells. Phagocytosis is assessed by a standardized high throughput protocol. Viable merozoites are a valuable resource for assessing numerous aspects of P. falciparum biology, including assessment of immune function. Antibody levels measured by this assay are associated with clinical immunity to malaria in naturally exposed individuals. The assay may also be of use for assessing vaccine induced antibodies. &#160;

High Yield Purification of Plasmodium falciparum Merozoites For Use in Opsonizing Antibody Assays

Measuring antibody function is key to understanding immunity to Plasmodium falciparum malaria. This method describes the purification of viable merozoites, and measurement of opsonization-dependent phagocytosis by flow cytometry.

טיהור תשואה גבוהה של<em&gt; Falciparum Plasmodium</em&gt; Merozoites לשימוש בOpsonizing נוגדן מבחני

Plasmodium falciparum merozoite antigens are under development as potential malaria vaccines. One aspect of immunity against malaria is the removal of ...

Methods to Investigate the Regulatory Role of Small RNAs and Ribosomal Occupancy of Plasmodium falciparum

The genetic variation responsible for the sickle cell allele (HbS) enables erythrocytes to resist infection by the malaria parasite, P. falciparum. The molecular basis of this resistance, which is known to be multifactorial, remains incompletely understood. Recent studies found that the differential expression of erythrocyte microRNAs, once translocated into malaria parasites, affect both gene regulation and parasite growth. These miRNAs were later shown to inhibit mRNA translation by forming a chimeric RNA transcript via 5&#39; RNA fusion with discreet subsets of parasite mRNAs. Here, the techniques that were used to study the functional role and putative mechanism underlying erythrocyte microRNAs on the gene regulation and translational potential of P. falciparum, including the transfection of modified synthetic microRNAs into host erythrocytes, will be detailed.&#160; Finally, a polysome gradient method is used to determine the extent of translation of these transcripts. Together, these techniques allowed us to demonstrate that the dysregulated levels of erythrocyte microRNAs contribute to cell-intrinsic malaria resistance of sickle erythrocytes.

Methods to Investigate the Regulatory Role of Small RNAs and Ribosomal Occupancy of Plasmodium falciparum

Human microRNAs translocate from host erythrocytes to Plasmodium falciparum parasites. Here, the techniques used to transfect synthetic microRNAs into host erythrocytes and isolate all RNAs from P. falciparum are described. In addition, this paper will detail a method of polysome isolation in P. falciparum to determine the ribosomal occupancy and translational potential of parasite transcripts.

שיטות כדי לחקור את תפקיד הרגולציה של RNA הקטן וריבוזומלי תפוסה של<em&gt; Falciparum Plasmodium</em

The genetic variation responsible for the sickle cell allele (HbS) enables erythrocytes to resist infection by the malaria parasite, P. falciparum. The ...

Pneumococcus Infection of Primary Human Endothelial Cells in Constant Flow

Interaction of Streptococcus pneumoniae with the surface of endothelial cells is mediated in blood flow via mechanosensitive proteins such as the Von Willebrand Factor (VWF). This glycoprotein changes its molecular conformation in response to shear stress, thereby exposing binding sites for a broad spectrum of host-ligand interactions. In general, culturing of primary endothelial cells under a defined shear flow is known to promote the specific cellular differentiation and the formation of a stable and tightly linked endothelial layer resembling the physiology of the inner lining of a blood vessel. Thus, the functional analysis of interactions between bacterial pathogens and the host vasculature involving mechanosensitive proteins requires the establishment of pump systems that can simulate the physiological flow forces known to affect the surface of vascular cells.
The microfluidic device used in this study enables a continuous and pulseless recirculation of fluids with a defined flow rate. The computer-controlled air-pressure pump system applies a defined shear stress on endothelial cell surfaces by generating a continuous, unidirectional, and controlled medium flow. Morphological changes of the cells and bacterial attachment can be microscopically monitored and quantified in the flow by using special channel slides that are designed for microscopic visualization. In contrast to static cell culture infection, which in general requires a sample fixation prior to immune labeling and microscopic analyses, the microfluidic slides enable both the fluorescence-based detection of proteins, bacteria, and cellular components after sample fixation; serial immunofluorescence staining; and direct fluorescence-based detection in real time. In combination with fluorescent bacteria and specific fluorescence-labeled antibodies, this infection procedure provides an efficient multiple component visualization system for a huge spectrum of scientific applications related to vascular processes.

This study describes the microscopic monitoring of pneumococcus adherence to von Willebrand factor strings produced on the surface of differentiated human primary endothelial cells under shear stress in defined flow conditions. This protocol can be extended to detailed visualization of specific cell structures and quantification of bacteria by applying differential immunostaining procedures.

זיהום פנאומטי של תאים אנושיים ראשוניים של האדם בזרימה קבועה

Interaction of Streptococcus pneumoniae with the surface of endothelial cells is mediated in blood flow via mechanosensitive proteins such as the Von ...

Neisseria meningitidis Infection of Induced Pluripotent Stem-Cell Derived Brain Endothelial Cells

Meningococcal meningitis is a life-threatening infection that occurs when Neisseria meningitidis (meningococcus, Nm) can gain access to the central nervous system (CNS) by penetrating highly specialized brain endothelial cells (BECs). As Nm is a human-specific pathogen, the lack of robust in vivo model systems makes study of the host-pathogen interactions between Nm and BECs challenging and establishes a need for a human based model that mimics native BECs. BECs possess tighter barrier properties when compared to peripheral endothelial cells characterized by complex tight junctions and elevated trans-endothelial electrical resistance (TEER). However, many in vitro models, such as primary BECs and immortalized BECs, either lack or rapidly lose their barrier properties after removal from the native neural microenvironment. Recent advances in human stem-cell technologies have developed methods for deriving brain-like endothelial cells from induced pluripotent stem-cells (iPSCs) that better phenocopy BECs when compared to other in vitro human models. The use of iPSC-derived BECs (iPSC-BECs) to model Nm-BEC interaction has the benefit of using human cells that possess BEC barrier properties, and can be used to examine barrier destruction, innate immune activation, and bacterial interaction. Here we demonstrate how to derive iPSC-BECs from iPSCs in addition to bacterial preparation, infection, and sample collection for analysis.

Neisseria meningitidis Infection of Induced Pluripotent Stem-Cell Derived Brain Endothelial Cells

The protocol described here highlights the major steps in the differentiating induced pluripotent stem-cell derived brain-like endothelial cells, the preparation of Neisseria meningitidis for infection, and sample collection for other molecular analyses.

Neisseria meningitidis זיהום של תאי גזע פלוריפוטנטיים המושרים שמקורם בתאי אנדותל במוח

Meningococcal meningitis is a life-threatening infection that occurs when Neisseria meningitidis (meningococcus, Nm) can gain access to the central ...