We thank Rachelle Kanippayoor for her help in identifying the new wild-type strain as being of the melanogaster species. R.W.F, O.F. and A.F.S were responsible for research design; R.W.F, M.N. and O.F. performed the experiments. R.W.F, M.N., O.F. and A.F.S. analyzed the data; R.W.F., I.S.M. and A.F.S. wrote the manuscript. 
This work was supported by PSC-CUNY research awards, jointly funded by The Professional Staff Congress and The City University of New York to A.F.S.; by internal funding from Western University to A.F.S. and I.S.M.; by a training support from the National Alliance for Hispanic Health&#8217;s Alliance/Merck Ciencia (Science) Hispanic Scholars Program and a University Fellowship from the Yale Graduate School of Arts and Sciences to R.W.F.

1. ציוד וריאגנטים שנוצרו בבית (ראה רשימה של חומר לאחרים) <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> הכן מנגנון הרדמה קרה תסיסנית לבצע עבודת זבוב. <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> חותך גיליון פוליאתילן נקבובי כדי לכסות קופסא קטנה מפלסטיק (12.7 סנטימטרים, רוחב 10.2 סנטימטרים), בדרך כלל את המכסה העליון של תיבת טיפים פיפטה (12.7 סנטימטר, רוחב 10.2 סנטימטר, 3.8 סנטימטרים עומק). </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> למלא את התיבה עם קרח כתוש, מכסה בגיליון פוליאתילן הנקבובי. </li></ol></li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> הכן מנגנון T-מבוך; להתאים את המנגנון שתואר קודם לכן בפרטי 28-31. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> הכן aspirator לטוס כמתואר 32. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> הכן מנגנון תגובת Phototaxis לעקור זבובים ובמתוך בקבוקוני מבחן בלי לחץ: <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> השתמש במנגנון נגדי, כפי שתואר על ידי 29,33. </li></ol></li></ol> הערה: גם T-המבוך יכול לשמש למטרות אחרות, כפי שתואר על ידי 28. <ol start="5" style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> ודא Homתנאי תאורת ogeneous: לבצע את הניסוי על ספסל מכוסה בכיסוי ספסל לבן, ומול לוח לבן. הערה: בניסויים אלה, זנים לטוס השתמשו היו דרוזופילה melanogaster wild-סוגים: קנטון-S, אורגון וסמרקנד עף ממניות המעבדה שלנו 34; זבובי אלווד נאספו בסתיו 2011 בשכונת אלווד של הנטינגטון, בלונג איילנד, ניו יורק, ארה&quot;ב. </li></ol> 2. הכנת הזבובים לפני הניסוי 1-2 ימים לפני ביצוע הניסוי: <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> לשמור על זבובים בקמח תירס-אגר-מולסה-שמרים בינוניים סטנדרטי של 25 מעלות צלזיוס בשעתי אור 12 / מחזור כהה. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> לאסוף את הזבובים מגיבים בהרדמה קרה 1-2 ימים לפני ביצוע הניסוי <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> העבר את הזבובים מהבקבוקים שבו הם הועלו לצינורות 50 מיליליטר פלקון, תוך שימוש במשפך. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> מניחים את הצינור הבז עם הזבובים מתחת לרמת קרח, לדלי קרח מבודד. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> מניחים את מנגנון ההרדמה הקר עם קרח כתוש ב-4 ° C לצנן. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> חכה 5 דקות לזבובים להיכנס לתרדמת צינה. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> העבר את הזבובים על גיליון פוליאתילן הנקבובי של מנגנון ההרדמה הקר. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> לאסוף את הזבובים מגיבים על מנגנון ההרדמה הקר. ב RT, תחת סטראו, להפריד גבר בן 3-7 ימים מזבובים נשיים ולשמור על זבובים אלה בקבוצות של 40. </li></ol></li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> לאסוף את זבובי פולט 1-2 ימים לפני ביצוע הניסוי. <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> בעדינות לאסוף מעורב-מין קנטון-S עף מהבקבוקים שלהם, באמצעות aspirator פה, שליטה על מספרם. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> לשמור על זבובים אלה בקבוצה של 60-100, כפי שיהיה קרינה. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> הכן דגימות רבות של קרינה כנקודות הנתונים דרושות. </li></ol></li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> אפשר לפחות לילה של התאוששות לאחר איסוף המגיבים והקרינה, כדי למזער את ההשפעה של בלבול ההרדמה הקרהואוסף הפה aspirator על התנהגות. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> פתח את התיק של בקבוקוני בדיקה, כדי לאפשר לאוויר ריח פלסטיק המעופש בתיק להיות מוחלף על ידי אוויר צח, לפחות יום 1 לפני הניסוי. </li></ol> 2 שעות לפני ביצוע הניסוי: <ol start="6" style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> ודא שהטמפרטורה בחדר שבו הניסוי מתבצע היא סביב 23-25 ​​מעלות צלזיוס, עם אפילו אור, ולחות מעל 30%. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> העבר את המגיבים וזבובי פירות קרינה לתוך צלוחיות מזון טריות על מנת להבטיח כי זבובים אלו אינם מורעבים. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> בואו זבובי הפירות להסתגל לסביבה לשעה 2, על הספסל שבניסוי יבוצע. </li></ol> 3. ביצוע הניסוי החברתי ההימנעות <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> לבצע כל ניסוי באותו הזמן של היום, בטווח של 3-4 שעות בשעתי אחר הצהריים בין הפעם צייטגבר ZT5 וZT9. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> הנח את T-המבוך על משטח הכתישה, ולהדק את הבורג קליפ כל כך tהוא המעלית הוא יציב. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> העבר את הזבובים מגיבים לתוך בקבוקון בדיקה טרי. הצמד בקבוקון זה מכיל את הזבובים מגיבים על החלק העליון של T-המבוך. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> שיפוע מנגנון T-המבוך והקש עליו על המזרן ההולם כל כך זבובי הפירות נופלים במעלית. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> הזז את החלק העליון של המעלית כלפי מטה, כך הזבובים הם בין החלק העליון ותחתון של T-המבוך, אבל לשים לב כדי לשמור על המעלית מעל נקודת הבחירה - כדי למנוע הזבובים לברוח. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> להשיג בקבוקונים עם DSO (ראה סעיף 5 ליצירת בקבוקוני DSO-החופשי שנכבשו בעבר על ידי זבובים). <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> בעוד הזבובים מגיבים להסתגל לסביבה חדשה זו, למקם את זבובי הפולט בבקבוקון מבחן. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> מניחים פיסת צמר גפן כדי לסגור את הבקבוקון כך זבובי פירות שלא יברחו. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> מכאני להתסיס בקבוקון זה על מיני-מערבולת כדלקמן: מערבולת במשך 15 שניות, הסר את הבקבוקון מהמערבולת במשך 5 שניות. חזור 3 פעמים עבור הסכום כולל של 55 שניות. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> ראםאובת זבובי הפולט מתוך הבקבוקון הטרי - על ידי העברה בבקבוקון מזון - ועד מהרה את מקום הבקבוקון זה מילא DSO לאחת משני צידי מכשיר T-המבוך. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> החלף את הצד של מיקום לבקבוקון מולא DSO בכל סיבוב חדש. </li></ol></li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> הנח בקבוקון מבחן טרי בצד השני של T-המבוך האחר. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> להביא את המעלית לגמרי, כך זבובי הפירות יכולים לבחור בין בקבוקון בדיקה הטרי ובקבוקון הבדיקה עם DSO, ולהתחיל את הטיימר. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> בואו הזבובים לבחור בין הבקבוקון הטרי ובקבוקון DSO, 1 דקות, אלא אם צוינו אחרת. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> לאחר 1 דקות, להעביר את המעלית עד להפריד את הזבובים בבקבוקון הטרי, בקבוקון DSO, ואלה תקועים במעלית. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> לספור את מספר הזבובים בכל בקבוקון, ובמעלית. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> חזור על פעולה זו עבור כל גנוטיפ / מצב. </li></ol> 4. ניתוח נתונים החברתי ההימנעות <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> לספור את מספר זבובי פירות בכל בקבוקון לכל חנוטype, ולהעביר את הנתונים לגיליון אלקטרוני. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> שימוש בתוכנת גיליונות אלקטרוניים, לחשב את מדד ביצועים (PI) עבור כל גנוטיפ על ידי הפחתת מספר הזבובים בבקבוקון DSO ממספר הזבובים בבקבוקון DSO-חופשי, ולאחר מכן על ידי חלוקת המספר הכולל של זבובים. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> שקלו את האמצעים &quot;החוקרים הפרטיים באמצעות תוכנת ניתוח סטטיסטית לניתוח התוצאות. <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> באופן אידיאלי, להכין 2-3 חזרות פנימיות עבור כל ניסוי, ו -3 חזרות עצמאיות, ביצע בימים שונים, עם בקבוקים שונים או חוצה 30. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> השתמש במבחנים סטטיסטיים הפצת גאוס, כנתונים מתפלגים נורמלי. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> כאשר בודק השפעה אחד (כלומר, צפיפות - איור 2), להשתמש בכיוון אחד ANOVA, עם פוסט-מבחן להשוואה מרובה (עמודה על ידי טור), או מבחן t פשוט להשוות כל תוצאה לשליטה. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> כאשר ניסויי קבוצה מבוצעים, לבדוק שני תנאים ומינים (בקבוקונים ריקים, הדגישזבובים-הדגיש un ד; והשפעת מגדר - איור 1), באמצעות דו-כיוונית ANOVA. </li></ol></li></ol> 5. צור בקבוקים כבושים בעבר על ידי זבובים unstressed - בצע במקום 3.5-3.6 <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> השתמש Phototaxis להכין בקבוקונים שנכבשו על ידי זבובים שלא היה לחוץ, כביקורת. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> העבר את הזבובים בבקבוקון בדיקה, והצמדת אותו למנגנון נגדי, עם בקבוקונים ריקים טריים במיקום ההפוך. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> הנח את המכשיר בצורה אופקית עם בקבוקון דיסטלי ישירות מול אור מגניב-לבן 15 ניאון W, ולכסות בבד שחור. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> בואו הזבובים בעדינות להזיז בבקבוקון הטרי. זה עלול לקחת כמה דקות. ברגע שרוב הזבובים הולכים לכיוון האור בבקבוקון דיסטלי, להפעיל את הטיימר דקות 1. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> הוצא בעדינות את הבד השחור, לעבור את מיקומו של האור, להתאושש עם הבד השחור, ולאפשר לזבובים לעזוב את בקבוקון המבחן. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> באותו זמן, אניnitiate ניסוי הבחירה כמו ב3.2-3.5. דלג על 3.6 ו -3.7. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> הזז את המחוון של המנגנון, כדי להפריד את הזבובים שפינו את בקבוקון המבחן מהצד השני. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> השתמש בבקבוקון המבחן שהתפנה בT-המבוך מייד לניסוי הבחירה, כמו ב3.7. </li></ol>

<ol>
	<li>Fry, S. N., Rohrseitz, N., Straw, A. D., Dickinson, M. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=TrackFly:+virtual+reality+for+a+behavioral+system+analysis+in+free-flying+fruit+flies.">TrackFly: virtual reality for a behavioral system analysis in free-flying fruit flies.</a> J Neurosci Methods. 171, 110-117 (2008).</li><li>Slawson, J. B., Kim, E. Z., Griffith, L. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=High-resolution+video+tracking+of+locomotion+in+adult+Drosophila+melanogaster.">High-resolution video tracking of locomotion in adult Drosophila melanogaster.</a> J Vis Exp. 24, 1096 (2009).</li><li>Dankert, H., Wang, L., Hoopfer, E. D., Anderson, D. J., Perona, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Automated+monitoring+and+analysis+of+social+behavior+in+Drosophila.">Automated monitoring and analysis of social behavior in Drosophila.</a> Nat Methods. 6, 297-303 (2009).</li><li>Branson, K., Robie, A. A., Bender, J., Perona, P., Dickinson, M. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=High-throughput+ethomics+in+large+groups+of+Drosophila.">High-throughput ethomics in large groups of Drosophila.</a> Nat Methods. 6, 451-457 (2009).</li><li>Simon, J. C., Dickinson, M. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+new+chamber+for+studying+the+behavior+of+Drosophila.">A new chamber for studying the behavior of Drosophila.</a> PLoS One. 5, 8793 (2010).</li><li>Wang, L., Dankert, H., Perona, P., Anderson, D. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Inaugural+Article:+A+common+genetic+target+for+environmental+and+heritable+influences+on+aggressiveness.">Inaugural Article: A common genetic target for environmental and heritable influences on aggressiveness.</a> in Drosophila. Proceedings of the National Academy of Sciences. 105, 5657-5663 (2008).</li><li>Schneider, J., Dickinson, M. H., Levine, J. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Social+structures+depend+on+innate+determinants+and+chemosensory+processing+in+Drosophila.">Social structures depend on innate determinants and chemosensory processing in Drosophila.</a> Proceedings of the National Academy of Sciences. 2, 17174-17179 (2012).</li><li>Miyamoto, T., Amrein, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Suppression+of+male+courtship+by+a+Drosophila+pheromone+receptor.">Suppression of male courtship by a Drosophila pheromone receptor.</a> Nat Neurosci. 11, 874-876 (2008).</li><li>Villella, A., Hall, J. C., Jeffrey, C. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Chapter+3+Neurogenetics+of+Courtship+and+Mating+in+Drosophila.+.">Chapter 3 Neurogenetics of Courtship and Mating in Drosophila. .</a> Advances in Genetics. 62, 67-184 (2008).</li><li>Ejima, A., Griffith, L. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Courtship+Initiation+Is+Stimulated+by+Acoustic+Signals+in+Drosophila+melanogaster.">Courtship Initiation Is Stimulated by Acoustic Signals in Drosophila melanogaster.</a> PLoS ONE. 3, 3246 (2008).</li><li>Mery, F., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Public+Versus+Personal+Information+for+Mate+Copying+in+an+Invertebrate.">Public Versus Personal Information for Mate Copying in an Invertebrate.</a> Current Biology. 19, 730-734 (2009).</li><li>Montell, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+taste+of+the+Drosophila+gustatory+receptors.">A taste of the Drosophila gustatory receptors.</a> Curr. Opin. Neurobiol. 19, 345-353 (2009).</li><li>Billeter, J. -. C., Atallah, J., Krupp, J. J., Millar, J. G., Levine, J. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Specialized+cells+tag+sexual+and+species+identity+in+Drosophila+melanogaster.">Specialized cells tag sexual and species identity in Drosophila melanogaster.</a> Nature. 461, 987-991 (2009).</li><li>Krupp, J. J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Social+experience+modifies+pheromone+expression+and+mating+behavior+in+male+Drosophila+melanogaster.">Social experience modifies pheromone expression and mating behavior in male Drosophila melanogaster.</a> Curr Biol. 18, 1373-1383 (2008).</li><li>Kent, C., Azanchi, R., Smith, B., Formosa, A., Levine, J. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Social+context+influences+chemical+communication+in+D.+melanogaster+males.">Social context influences chemical communication in D. melanogaster males.</a> Curr Biol. 18, 1384-1389 (2008).</li><li>Levine, J. D., Funes, P., Dowse, H. B., Hall, J. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Resetting+the+Circadian+Clock+by+Social+Experience+in+Drosophila+melanogaster.">Resetting the Circadian Clock by Social Experience in Drosophila melanogaster.</a> Science. 298, 2010-2012 (2002).</li><li>Ganguly-Fitzgerald, I., Donlea, J., Shaw, P. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Waking+Experience+Affects+Sleep+Need+in+Drosophila.">Waking Experience Affects Sleep Need in Drosophila.</a> Science. 313, 1775-1781 (2006).</li><li>Billeter, J. -. C., Levine, J. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Who+is+he+and+what+is+he+to+you?+Recognition+in+Drosophila+melanogaster.">Who is he and what is he to you? Recognition in Drosophila melanogaster.</a> Curr. Opin. Neurobiol. 23, 17-23 (2013).</li><li>Suh, G. S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+single+population+of+olfactory+sensory+neurons+mediates+an+innate+avoidance+behaviour+in+Drosophila.">A single population of olfactory sensory neurons mediates an innate avoidance behaviour in Drosophila.</a> Nature. 431, 854-859 (2004).</li><li>Bonini, N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+Tribute+to+Seymour+Benzer+1921-2007.">A Tribute to Seymour Benzer 1921-2007.</a> 180, 1265-1273 (2008).</li><li>Castermans, D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+neurobeachin+gene+is+disrupted+by+a+translocation+in+a+patient+with+idiopathic+autism.">The neurobeachin gene is disrupted by a translocation in a patient with idiopathic autism.</a> Journal of Medical Genetics. 40, 352-356 (2003).</li><li>Medrihan, L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Neurobeachin,+a+protein+implicated+in+membrane+protein+traffic+and+autism,+is+required+for+the+formation+and+functioning+of+central+synapses.">Neurobeachin, a protein implicated in membrane protein traffic and autism, is required for the formation and functioning of central synapses.</a> J Physiol. 587, 5095-5106 (2009).</li><li>Simon, A. F., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+simple+assay+to+study+social+behavior+in+Drosophila:+measurement+of+social+space+within+a+group.">A simple assay to study social behavior in Drosophila: measurement of social space within a group.</a> Genes Brain Behav. 11, 243-252 (2012).</li><li>Venkatesh, T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=.">.</a> Cold Spring Harbor Meeting: From Molecules to Circuit Behavior. , (2013).</li><li>Hamilton, P. J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=De+novo+mutation+in+the+dopamine+transporter+gene+associates+dopamine+dysfunction+with+autism+spectrum+disorder.">De novo mutation in the dopamine transporter gene associates dopamine dysfunction with autism spectrum disorder.</a> Mol Psychiatry. 18, 1315-1323 (2013).</li><li>Gadow, K. D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Association+of+dopamine+gene+variants,+emotion+dysregulation+and+ADHD+in+autism+spectrum+disorder.">Association of dopamine gene variants, emotion dysregulation and ADHD in autism spectrum disorder.</a> Research in Developmental Disabilities. 35, 1658-1665 (2014).</li><li>Fernandez, R. W., Akinleye, A. A., Nurilov, M., Rouzyi, Z., Simon, A. F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=.">.</a> , (2014).</li><li>Ali, Y. O., Escala, W., Ruan, K., Zhai, R. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Assaying+Locomotor,+Learning,+and+Memory+Deficits+in+Drosophila+Models+of+Neurodegeneration.">Assaying Locomotor, Learning, and Memory Deficits in Drosophila Models of Neurodegeneration.</a> J Vis Exp. , 2504 (2011).</li><li>Connolly, J. B., Tully, T., Roberts, D. B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=.">.</a> Drosophila: A Practical Approach. 1, 265-317 (1998).</li><li>Tully, T., Quinn, W. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Classical-conditioning+and+retention+in+normal+and+mutant+Drosophila+melanogaster.">Classical-conditioning and retention in normal and mutant Drosophila melanogaster.</a> J Comp Physiol [A]. 157, 263-277 (1985).</li><li>Krashes, M. J., Waddell, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Drosophila+Aversive+Olfactory+Conditioning.">Drosophila Aversive Olfactory Conditioning.</a> Cold Spring Harbor Protocols. 2011, (2011).</li><li>Ejima, A., Griffith, L. C., Zhang, B., Freeman, M. R., Waddell, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Ch.+30.">Ch. 30.</a> Drosophila Neurobiology, A Laboratory Manual. , 475-481 (2010).</li><li>Benzer, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Behavioral+mutants+of+Drosophila+melanogaster+isolated+by+countercurrent+distribution.">Behavioral mutants of Drosophila melanogaster isolated by countercurrent distribution.</a> PNAS. 58, 1112-1119 (1967).</li><li>Simon, A. F., Shih, C., Mack, A., Benzer, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Steroid+control+of+longevity+in+Drosophila+melanogaster.">Steroid control of longevity in Drosophila melanogaster.</a> Science. 299, 1407-1410 (2003).</li><li>Vaux, D. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Research+methods:+Know+when+your+numbers+are+significant.">Research methods: Know when your numbers are significant.</a> Nature. 492, 180-181 (2012).</li><li>Stowers, L., Logan, D. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Sexual+dimorphism+in+olfactory+signaling.">Sexual dimorphism in olfactory signaling.</a> Curr. Opin. Neurobiol. 20, 770-775 (2010).</li><li>Simon, A. F., Liang, D. T., Krantz, D. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Differential+decline+in+behavioral+performance+of+Drosophila+melanogaster+with+age.">Differential decline in behavioral performance of Drosophila melanogaster with age.</a> Mechanisms of Ageing and Development. , 127-647 (2006).</li></ol>

The authors declare that they have no competing financial interests.

פרוטוקול זה מתאר נוהל מפורט לassay ההימנעות החברתי. קנטון-S רק להימנע מבקבוקון שבטס כבר בעבר באופן מכאני הדגיש, וכי יחסי מין ומספר המגיבים אינם משפיעים על ביצועי שהימנעות חברתיים. עם זאת, רקע גנטי של המגיבים יש השפעה גדולה. להלן כמה צ...

מטרתה של שיטה זו היא לכמת היבט חדש של התנהגות פשוטה חברתית בmelanogaster דרוזופילה, עצמאית מחיזור ותוקפנות בקלות. אינטראקציות חברתיות הן קריטיות להתפתחות התקינה ובריאותו של אדם בחברה, כמו גם את הפונקציונליות של קבוצה חברתית בכללותו. המורכבות גבוהות של אינטראקציות אלה מחייבים גדלי מדגם גדולים ומערכת המאפשרת לפישוט של ההתנהגות כבסיס הגנטי ועצבי של התנהגות חברתית עדיין לא נחקרו מספיק. Melanogaster תסיסנית הוא מודל גנטי רב עוצמה שיכול לשמש לזיהוי הגנטי ו בסיסים עצביים של אינטראקציות חברתיות. ואכן, ד &#39; יש melanogaster רפרטואר של התנהגויות חברתיות מורכבות וכמה מדידות ישירות של סוציאליזציה כבר נעשו 1-7. עם זאת, רוב המאמצים האלה כבר התמקדו התנהגויות חברתיות מורכבות יחסית, כגון aggresאינטראקציות sive 3,6, היבטים שונים של חיזור 3,8-12, וכיצד משפיעים על התנהגויות חברתיות ניסיון אחרים כגון למידה, או קצב היממה 13-17. בנוסף, רב של מבחני אלה מסתמכים על ניתוח דפוסי אינטראקציה מורכבים של קבוצות של זבובים, באמצעות מעקב וידאו ותוכנת מחשב כדי לנתח את השפע של נתונים וכתוצאה מכך. ניתוח כזה הוא לא יסולא בפז, ולהוביל לתובנות חדשות וחשובות כמו הדינמיקה של אינטראקציות לטוס לטוס בקבוצות 7. מגבלה אחת, לעומת זאת, היא הנגישות של מבחני אלה לקהילה בכללותה, והידע המוגבל של המנגנונים העומדים בבסיס הכרה של אחרים. במילים אחרות, הבסיס של הפליטה של אות על ידי אדם אחד וההכרה שלה על ידי אחר עדיין הבין היטב 18. בניגוד לכך, זבובים גם תערוכת התנהגות פשוטה, הימנעות חברתית, שבו אנשים להתרחק מאות הנפלטת על ידי זבובים הדגישו: ד Melanogaster מתח odorant או DSO 19. בassay תפוקה גבוהה, התנהגות זו ניתן לכמת כהימנעות מאות מתח הנפלטת על ידי זבובים אחרים, או הימנעות חברתית 19. זבובים ממוקמים במנגנון T-מבוך וניתנו להם האפשרות להימנע מבקבוקון המכיל DSO. שימוש assay זה, CO 2 הוצג להיות מרכיב של DSO, וחלק מהמעגלים העצביים ההכרחיים להגיב ל- CO 2 היו גזורים 19. Assay ההימנעות החברתי שהוצג כאן הוא דומה מבחינה רעיונית למבחני התנהגות הפשוטים שפותחו במעבדתו של סימור Benzer שאפשרו דורות של חוקרים לנתח התנהגויות מורכבות 20. ניתוח של הימנעות חברתית יכול להתבצע בצורה חסכונית באמצעות assay T-המבוך, ומאפשר למחקר נרחב יותר של התנהגות חברתית. לדוגמא, באמצעות assay זה אנו הוכיחו לאחרונה כי יש לי סיכונים גנטיים שונים לאוטיזם השפעות מנוגדות בb החברתיתמבחני ehavior. מוטציות לגן מועמד לאוטיזם - neurobeachin 21,22 - ליקויים הנוכחיים הן במרחב חברתי (שתוארו במקום אחר 23) והימנעות חברתית 24. איתות דופאמין חריגה היא גם הציעה לשחק תפקיד באטיולוגיה של אוטיזם בבני האדם 25,26. בניגוד לתוצאות שהושגו עם neurobeachin, מצאנו כי ביצועי הימנעות חברתיים היו מושפעים מעלייה או הירידה ברמות של דרוזופילה לפוחי מונואמין Transporter (VMAT) בתאי דופאמין, למרות שהמרחב חברתי הראה המתאם גבוה לרמות של 27 VMAT אלה. התוצאות המנוגדות שהושגו עם neurobeachin וVMAT מדגישות את האפשרות של זיהוי צורות שונות של התנהגות א-סוציאלית, ובכך circuitries העצבי הבסיסי שונה ויסות התגובה לאחרים.

<table><tbody><tr><td>Stereo Zoom Microscope&amp;nbsp;</td><td>Nikon&amp;nbsp;&amp;nbsp;</td><td>SMZ-645</td><td>Any other standard scope for fly handling would work</td></tr><tr><td>Small paint brushes&amp;nbsp;</td><td></td><td></td><td>for pushing flies</td></tr><tr><td>Porous Polyethylene, 12&quot; x 12&quot; Sheet</td><td>Flystuff - Genesee</td><td>46-100</td><td>http://www.flystuff.com/ProductInfo.php?productID=46-100&lt;br/&gt; Porous Plastic sheet for the cold anesthesia box</td></tr><tr><td>Mini-Alarm Timer/Stopwatch</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Sharpie pens</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Adhesive Tape</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Mini vortex</td><td>Fisher</td><td>14-955-151&amp;nbsp;</td><td>http://www.fishersci.com/ecomm/servlet/itemdetail&lt;br/&gt; For mechanical agitation of the flies - any vortex would work.</td></tr><tr><td>Corning Life Sciences DL No.:352017, Falcon test tube; round bottom; disposable; no closure, 14 ml; 17 x 100 mm</td><td>Fisher</td><td>14-959-8 &amp;nbsp;&amp;nbsp;</td><td>http://www.fishersci.com/ecomm/servlet/itemdetail?storeId=10652&amp;amp;langId=-1&amp;amp;catalogId=29104&amp;amp;productId=2771811&amp;amp;distype=0&amp;amp;highlightProductsItemsFlag=Y&amp;amp;fromSearch=1&amp;amp;searchType=PROD&amp;amp;hasPromo=0&lt;br/&gt; These snap in place in the in-house made T-maze and counter-current apparatus (see text)</td></tr><tr><td>cotton balls</td><td></td><td></td><td>to close the vials after the experiment.</td></tr><tr><td>trifold board and white bench cover</td><td></td><td></td><td>to provide a white background, and a homogeneous light.</td></tr><tr><td>white bench cover</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>pounding pad</td><td></td><td></td><td>any mouse pad works.</td></tr><tr><td>large black cloth</td><td></td><td></td><td>to cover the counter-current apparatus in phototaxis response.</td></tr><tr><td>cool-white light&amp;nbsp;</td><td>Home Depot</td><td>1000516563</td><td>http://www.homedepot.ca/product/illume-26-fluorescent-plug-in-linear/911423&lt;br/&gt; any similar linear light with fluorescent light bulb cool-white at 13-15 W would work</td></tr></tbody></table>

straightforward assay for quantification of social avoidance in drosophila melanogaster

Drosophila melanogaster is an emerging model to study different aspects of social interactions. For example, flies avoid areas previously occupied by stressed conspecifics due to an odorant released during stress known as the Drosophila stress odorant (dSO). Through the use of the T-maze apparatus, one can quantify the avoidance of the dSO by responder flies in a very affordable and robust assay. Conditions necessary to obtain a strong performance are presented here. A stressful experience is necessary for the flies to emit dSO, as well as enough emitter flies to cause a robust avoidance response to the presence of dSO. Genetic background, but not their group size, strongly altered the avoidance of the dSO by the responder flies. Canton-S and Elwood display a higher performance in avoiding the dSO than Oregon and Samarkand strains. This behavioral assay will allow identification of mechanisms underlying this social behavior, and the assessment of the influence of genes and environmental conditions on both emission and avoidance of the dSO. Such an assay can be included in batteries of simple diagnostic tests used to identify social deficiencies of mutants or environmental conditions of interest.

Assay ההימנעות החברתי הוא מבחן חזק כימות היכולת של דרוזופילה melanogaster להכיר אות מתח (DSO) הנפלטת על ידי זבובים אחרים, ובכך להעריך היבט אחד של אינטראקציות חברתיות. Assay מתבצע באמצעות מנגנון נפוץ במבחני התנהגות שונים המכונים T-מבוך, המציג את הזבובים עם בחירה בין שתי אפשרוי...

Watch this Scientific Journal Video about Straightforward Assay for Quantification of Social Avoidance in Drosophila melanogaster at JoVE.com

Straightforward Assay for Quantification of Social Avoidance in Drosophila melanogaster

Here, we present a protocol to quantify the avoidance of stressed individuals. This paradigm is powerful yet user-friendly and can be used to assess the influence of genes and environment on one kind of social interaction in Drosophila melanogaster.

Assay הפשוט לכימות חברתיות הימנעות ב<em&gt; Melanogaster דרוזופילה</em

Drosophila melanogaster is an emerging model to study different aspects of social interactions. For example, flies avoid areas previously occupied by ...

straightforward-assay-for-quantification-social-avoidance-drosophila

Research

JoVE Journal

Neuroscience

Straightforward Assay for Quantification of Social Avoidance in Drosophila melanogaster

11.2K Views.  Yale University. Here, we present a protocol to quantify the avoidance of stressed individuals. This paradigm is powerful yet user-friendly and can be used to assess the influence of genes and environment on one kind of social interaction in Drosophila melanogaster.

Video: Straightforward Assay for Quantification of Social Avoidance in Drosophila melanogaster

Assaying Locomotor, Learning, and Memory Deficits in Drosophila Models of Neurodegeneration

Advances in genetic methods have enabled the study of genes involved in human neurodegenerative diseases using Drosophila as a model system1. Most of these diseases, including Alzheimer's, Parkinson's and Huntington's disease are characterized by age-dependent deterioration in learning and memory functions and movement coordination2. Here we use behavioral assays, including the negative geotaxis assay3 and the aversive phototaxic suppression assay (APS assay)4,5, to show that some of the behavior characteristics associated with human neurodegeneration can be recapitulated in flies. In the negative geotaxis assay, the natural tendency of flies to move against gravity when agitated is utilized to study genes or conditions that may hinder locomotor capacities. In the APS assay, the learning and memory functions are tested in positively-phototactic flies trained to associate light with aversive bitter taste and hence avoid this otherwise natural tendency to move toward light. Testing these trained flies 6 hours post-training is used to assess memory functions. Using these assays, the contribution of any genetic or environmental factors toward developing neurodegeneration can be easily studied in flies.

Assaying Locomotor, Learning, and Memory Deficits in Drosophila Models of Neurodegeneration

Behavior assays for measuring locomotor functions, learning, and memory abilities in Drosophila.

Assaying של תנועה, למידה, וזיכרון גירעונות תסיסנית מודלים של ניוון מוחיים

Advances in genetic methods have enabled the study of genes involved in human neurodegenerative diseases using Drosophila as a model system1. Most of ...

Methods to Assay Drosophila Behavior

Drosophila melanogaster, the fruit fly, has been used to study molecular mechanisms of a wide range of human diseases such as cancer, cardiovascular disease and various neurological diseases1. We have optimized simple and robust behavioral assays for determining larval locomotion, adult climbing ability (RING assay), and courtship behaviors of Drosophila. These behavioral assays are widely applicable for studying the role of genetic and environmental factors on fly behavior. Larval crawling ability can be reliably used for determining early stage changes in the crawling abilities of Drosophila larvae and also for examining effect of drugs or human disease genes (in transgenic flies) on their locomotion. The larval crawling assay becomes more applicable if expression or abolition of a gene causes lethality in pupal or adult stages, as these flies do not survive to adulthood where they otherwise could be assessed. This basic assay can also be used in conjunction with bright light or stress to examine additional behavioral responses in Drosophila larvae. Courtship behavior has been widely used to investigate genetic basis of sexual behavior, and can also be used to examine activity and coordination, as well as learning and memory. Drosophila courtship behavior involves the exchange of various sensory stimuli including visual, auditory, and chemosensory signals between males and females that lead to a complex series of well characterized motor behaviors culminating in successful copulation. Traditional adult climbing assays (negative geotaxis) are tedious, labor intensive, and time consuming, with significant variation between different trials2-4. The rapid iterative negative geotaxis (RING) assay5 has many advantages over more widely employed protocols, providing a reproducible, sensitive, and high throughput approach to quantify adult locomotor and negative geotaxis behaviors. In the RING assay, several genotypes or drug treatments can be tested simultaneously using large number of animals, with the high-throughput approach making it more amenable for screening experiments.

Methods to Assay Drosophila Behavior

Drosophila melanogaster is a genetically and behaviorally tractable model system that has been used to understand the molecular and cellular basis of many important biological processes for over a century 1. Drosophila has been well exploited to gain insights into the genetic basis of fly behavior.

שיטות Assay תסיסנית התנהגות

Drosophila melanogaster, the fruit fly, has been used to study molecular mechanisms of a wide range of human diseases such as cancer, cardiovascular ...

A Single-fly Assay for Foraging Behavior in Drosophila

For many animals, hunger promotes changes in the olfactory system in a manner that facilitates the search for appropriate food sources. In this video article, we describe an automated assay to measure the effect of hunger or satiety on olfactory dependent food search behavior in the adult fruit fly Drosophila melanogaster. In a light-tight box illuminated by red light that is invisible to fruit flies, a camera linked to custom data acquisition software monitors the position of six flies simultaneously. Each fly is confined to walk in individual arenas containing a food odor at the center. The testing arenas rest on a porous floor that functions to prevent odor accumulation. Latency to locate the odor source, a metric that reflects olfactory sensitivity under different physiological states, is determined by software analysis. Here, we discuss the critical mechanics of running this behavioral paradigm and cover specific issues regarding fly loading, odor contamination, assay temperature, data quality, and statistical analysis.

A Single-fly Assay for Foraging Behavior in Drosophila

In this video article, we describe an automated assay to measure the effect of hunger or satiety on olfactory dependent food search behavior in the adult fruit fly Drosophila melanogaster.

יחיד לטוס Assay עבור התנהגות שיחור מזון ב<em&gt; דרוזופילה</em

For many animals, hunger promotes changes in the olfactory system in a manner that facilitates the search for appropriate food sources. In this video ...

Testing Drosophila Olfaction with a Y-maze Assay

Detecting signals from the environment is essential for animals to ensure their survival. To this aim, they use environmental cues such as vision, mechanoreception, hearing, and chemoperception through taste, via direct contact or through olfaction, which represents the response to a volatile molecule acting at longer range. Volatile chemical molecules are very important signals for most animals in the detection of danger, a source of food, or to communicate between individuals. Drosophila melanogaster is one of the most common biological models for scientists to explore the cellular and molecular basis of olfaction. In order to highlight olfactory abilities of this small insect, we describe a modified choice protocol based on the Y-maze test classically used with mice. Data obtained with Y-mazes give valuable information to better understand how animals deal with their perpetually changing environment. We introduce a step-by-step protocol to study the impact of odorants on fly exploratory response using this Y-maze assay.

Testing Drosophila Olfaction with a Y-maze Assay

We present a choice test to reveal the influence of odorants on Drosophila behavior using a Y-maze assay.

בדיקה<em&gt; דרוזופילה</em&gt; Olfaction עם Assay Y-מבוך

Detecting signals from the environment is essential for animals to ensure their survival. To this aim, they use environmental cues such as vision, ...

Drosophila Passive Avoidance Behavior as a New Paradigm to Study Associative Aversive Learning

This protocol describes a new paradigm for analyzing aversive associative learning in adult flies (Drosophila melanogaster). The paradigm is analogous to passive avoidance behavior in laboratory rodents in which animals learn to avoid a compartment where they have previously received an electric shock. The assay takes advantage of negative geotaxis in flies, which manifests as an urge to climb up when they are placed on a vertical surface. The setup consists of vertically oriented upper and lower compartments. On the first trial, a fly is placed into a lower compartment from where it usually exits&#160;within 3-15 s, and steps into the upper compartment where it receives an electric shock. During the second trial, 24 h later, the latency is significantly increased. At the same time, the number of shocks is decreased compared to the first trial, indicating that flies formed long-term memory about the upper compartment. The recordings of latencies and number of shocks could be performed with a tally counter and a stopwatch or with an Arduino-based simple device. To illustrate how the assay can be used, the passive avoidance behavior of D. melanogaster and D. simulans male and female were characterized here. Comparison of latencies and number of shocks revealed that both D. melanogaster and D. simulans flies efficiently learned the passive avoidance behavior. No statistical differences were observed between male and female flies. However, males were a little faster while entering the upper compartment on the first trial, while females received a slightly higher number of shocks in every retention trial. The Western diet (WD) significantly impaired learning and memory in male flies while flight exercise counterbalanced this effect. Taken together, the passive avoidance behavior in flies offers a simple and reproducible assay that could be used for studying basic mechanisms of learning and memory.

Drosophila Passive Avoidance Behavior as a New Paradigm to Study Associative Aversive Learning

This work describes a simple behavioral paradigm that allows the analysis of aversive associative learning in adult fruit flies. The method is based on suppressing the innate negative geotaxis behavior due to the association formed between a specific environmental context and an electric shock.

דרוסופילה התנהגות הימנעות פסיבית כפרדיגמה חדשה לחקר למידה אסוציאטיבית מרתיעה

This protocol describes a new paradigm for analyzing aversive associative learning in adult flies (Drosophila melanogaster). The paradigm is analogous to ...

Behavior

A Simple Technique to Assay Locomotor Activity in Drosophila

Drosophila melanogaster is an ideal model organism for studying various diseases due to its abundance of advanced genetic manipulation techniques and diverse behavioral features. Identifying behavioral deficiency in animal models is a crucial measure of disease severity, for example, in neurodegenerative diseases where patients often experience impairments in motor function. However, with the availability of various systems to track and assess motor deficits in fly models, such as drug-treated or transgenic individuals, an economical and user-friendly system for precise evaluation from multiple angles is still lacking. A method based on the AnimalTracker application programming interface (API) is developed here, which is compatible with the Fiji image processing program, to systematically evaluate the movement activities of both adult and larval individuals from recorded video, thus allowing for the analysis of their tracking behavior. This method requires only a high-definition camera and a computer peripheral hardware integration to record and analyze behavior, making it an affordable and effective approach for screening fly models with transgenic or environmental behavioral deficiencies. Examples of behavioral tests using pharmacologically treated flies are given to show how the techniques can detect behavioral changes in both adult flies and larvae in a highly repeatable manner.

A Simple Technique to Assay Locomotor Activity in Drosophila

The present protocol assesses the locomotor activity of Drosophila by tracking and analyzing the movement of flies in a hand-made arena using open-source software Fiji, compatible with plugins to segment pixels of each frame based on high-definition video recording to calculate parameters of speed, distance, etc.

טכניקה פשוטה להערכת פעילות לוקומוטורית בדרוזופילה

Drosophila melanogaster is an ideal model organism for studying various diseases due to its abundance of advanced genetic manipulation techniques and ...

Conditions Affecting Social Space in Drosophila melanogaster

The social space assay described here can be used to quantify social interactions of Drosophila melanogaster &#8212; or other small insects &#8212; in a straightforward manner. As we previously demonstrated 1, in a two-dimensional chamber, we first force the flies to form a tight group, subsequently allowing them to take their preferred distance from each other. After the flies have settled, we measure the distance to the closest neighbor (or social space), processing a static picture with free online software (ImageJ). The analysis of the distance to the closest neighbor allows researchers to determine the effects of genetic and environmental factors on social interaction, while controlling for potential confounding factors. Diverse factors such as climbing ability, time of day, sex, and number of flies, can modify social spacing of flies. We thus propose a series of experimental controls to mitigate these confounding effects. This assay can be used for at least two purposes. First, researchers can determine how their favorite environmental shift (such as isolation, temperature, stress or toxins) will impact social spacing 1,2. Second, researchers can dissect the genetic and neural underpinnings of this basic form of social behavior 1,3. Specifically, we used it as a diagnostic tool to study the role of orthologous genes thought to be involved in social behavior in other organisms, such as candidate genes for autism in humans 4.

Conditions Affecting Social Space in Drosophila melanogaster

The effect of genes and environment on social space of Drosophila melanogaster can be quantified through a powerful but straightforward analytical paradigm. We show here different factors that can affect this social space, and thus need to be taken into consideration when designing experiments in this paradigm.

תנאים המשפיעים על המרחב חברתי ב<em&gt; תסיסנית melanogaster</em

The social space assay described here can be used to quantify social interactions of Drosophila melanogaster &#8212; or other small insects &#8212; in a ...

דרוזופילה מודלים לתכונות גנטיות והתנהגותיות של הפרעת הספקטרום האוטיסטי

Paradigms for Behavioral Assessment in Drosophila Model of Autism Spectrum Disorder

Autism Spectrum Disorder (ASD) encompasses a heterogeneous group of neurodevelopmental disorders with common behavioral symptoms including deficits in social interaction and ability for communication, enhanced restricted or repetitive behaviors, and also, in some cases, learning disability and motor deficit. Drosophila has served as an unparalleled model organism for modeling a great number of human diseases. As many genes have been implicated in ASD, fruit flies have emerged as a powerful and efficient way to test the genes putatively involved with the disorder. As hundreds of genes, with varied functional roles, are implicated in ASD, a single genetic fly model of ASD is unfeasible; instead, individual genetic mutants, gene knockdowns, or overexpression-based studies of the fly homologs of ASD-associated genes are the common means for gaining insight regarding molecular pathways underlying these gene products. A host of behavioral techniques are available in Drosophila which provide easy readout of deficits in specific behavioral components. Social space assay and aggression and courtship assays in flies have been shown to be useful in assessing defects in social interaction or communication. Grooming behavior in flies is an excellent readout of repetitive behavior. Habituation assay is used in flies to estimate the ability for habituation learning, which is found to be affected in some ASD patients. A combination of these behavioral paradigms can be utilized to make a thorough assessment of the human ASD-like disease state in flies. Using Fmr1 mutant flies, recapitulating Fragile-X syndrome in humans, and POGZ-homolog row knockdown in fly neurons, we have shown quantifiable deficits in social spacing, aggression, courtship behavior, grooming behavior, and habituation. These behavioral paradigms are demonstrated here in their simplest and straightforward forms with an assumption that it would facilitate their widespread use for research on ASD and other neurodevelopmental disorders in fly models.

מחבר זרקור: חקר תסמיני הפרעת הספקטרום האוטיסטי בזבובי פירות – מודלים גנטיים ומבחנים התנהגותיים

Autism Spectrum Disorder (ASD) is associated with impaired social and communicative behavior and the emergence of repetitive behavior. For studying the interrelation between ASD genes and behavioral deficits in the Drosophila model, five behavioral paradigms are described in this paper for assaying social spacing, aggression, courtship, grooming, and habituation behavior.

פרדיגמות להערכה התנהגותית במודל דרוזופילה של הפרעת הספקטרום האוטיסטי

Autism Spectrum Disorder (ASD) encompasses a heterogeneous group of neurodevelopmental disorders with common behavioral symptoms including deficits in ...

Assay הפשוט לכימות חברתיות הימנעות ב

Summary

Explore More Videos

Chapters in this video

Assaying של תנועה, למידה, וזיכרון גירעונות תסיסנית מודלים של ניוון מוחיים

שיטות Assay תסיסנית התנהגות

יחיד לטוס Assay עבור התנהגות שיחור מזון ב

בדיקה

דרוסופילה התנהגות הימנעות פסיבית כפרדיגמה חדשה לחקר למידה אסוציאטיבית מרתיעה

טכניקה פשוטה להערכת פעילות לוקומוטורית בדרוזופילה

תנאים המשפיעים על המרחב חברתי ב

פרדיגמות להערכה התנהגותית במודל דרוזופילה של הפרעת הספקטרום האוטיסטי

פרדיגמות להערכה התנהגותית במודל דרוזופילה של הפרעת הספקטרום האוטיסטי

פרדיגמות להערכה התנהגותית במודל דרוזופילה של הפרעת הספקטרום האוטיסטי