This work was supported in part by NIH grant RO1GM60124 (to H.S.). H.S. is an Investigator with the Howard Hughes Medical Institute. Y.F. is supported by the Deloro Career Advancement Chair and The German Israeli Foundation (I-2381-412.13/2015). D.S. is supported by the Coleman-Cohen post-doctoral fellowship.

מחקר זה בוצע בהתאם קפדנית עם המלצות שהותוו מדריך לטיפול ושימוש בחיות מעבדה של משרד הבריאות הישראלי. כל החיות טופלו על פי פרוטוקול טיפול בבעלי חיים מוסדי המאושר IL-02302-2015 של הטכניון טכנולוגי. 1. הכנה ניסויית <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> הכין בסרום שור העוברי chelated הערה: תאי אפיתל רגישים מאוד סידן ולכן חשוב לשלוט על החשיפה של תאים אלה סידן. על מנת להבטיח כי התאים אינם חשופים סידן במהלך קלאציה תהליך הבידוד משמש כדי להסיר כל סידן שיורית מן בסרום שור עוברית המשמש להכנת חיץ מכתים 29. הפרוטוקול הבא מכין כ 1 ליטר של החופשי סידן עוברי שור סרום הנדרש למאגר מכתים הכנת FACS. <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> להוסיף 400 גרם של חומר chelating יבש, למשל., Chelex, לתוך מבחנה 4 L ולהוסיף מזוקקים H 2 O ל בהיקף כולל 4 ל כיסוי ומתמשך מוקפצים באמצעות בוחש מגנטי. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> התאם ל- pH 7.4 באמצעות 10 N פתרון HCl תוך ערבוב. המשך ערבוב במשך 20 דקות מחדש ולהתאים את ה- pH לפי הצורך עד pH נשאר יציב במשך יותר מ -20 דקות. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> דגירת כוס לני 4 ° C. כדי לאפשר את חומר chelating לגבש גלולה קומפקטית. בזהירות לשאוב H 2 O ולהוסיף מזוקקים טריים H 2 O ל בהיקף כולל של 4 ל &#39; </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> חזור על התאמת pH כמו בשלב 1.1.2. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> מניח את הכוס על 4 מעלות צלזיוס במשך שעה 1. כדי לאפשר את חומר chelating לגבש גלולה קומפקטית. בזהירות לשאוב H 2 O. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> לאט לאט מוסיפים שתי 500 מ&quot;ל בקבוקי בסרום שור העובר לחומר chelating. מערבבים לאט על 4 מעלות צלזיוס במשך שעה 1. להבטיח כי הגדרת המהירות אינה מייצרת בועות. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> מניחים את הכוס על 4 מעלות צלזיוס במשך שעה 1. כדי לאפשר את החומר chelating להקים חינמוןלפעול גלולה. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> להעביר בזהירות את הנוזל לתוך בקבוק 1 ליטר זכוכית לסנן אותה דרך פילטר עליון בקבוק בתנאים סטריליים. אחסן את בסרום chelated ב -20 ° C או להשתמש מיד. </li></ol></li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> הכנת מאגר מכתים <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> הכן 100 מ&quot;ל של 3% chelated FBS ב PBS ללא Ca 2 + ו Mg 2+ ולשמור על הקרח. </li></ol></li></ol> בידוד 2. של זקיקי השיער למבוגרים אפידרמיס <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> להרדים עכברים באמצעות isoflurane 5% באמצעות תיבת אינדוקציה. הפרוטוקול המתואר כאן היה מותאם באמצעות עכברים ישנים 50-80 יום נמצאים בשלב telogen של מחזור HF. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> להרדים עכברים על פי נהלי מעבדה סטנדרטיים. הנה, להרדים עכברים באמצעות מנת יתר CO 2 בתא המתת חסד. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> לגלח את כל השיער מן העור הגבה באמצעות קוצץ חשמלי. הימנע ראש וגפיים. שמור את הקוצץ קרוב ככל האפשר לעור. למנוע נזק לעור השכבה התת עורית. </li&gt; <li style=";text-align:right;direction:rtl"> כאשר כל השיער מוסר, להשתמש 70% אתנול כדי להסיר שאריות שיער כדי לחטא את עור הגב. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> מניחים את העכבר על כרית לנתח, מלקחיים באמצעות להרים את העור ליד הזנב ולעשות ניק קטן בעזרת מספריים. חותך את עור הגב כולו בכיוון אחורי-קדמי על ידי חיתוך בזהירות את העור ומפריד בינה לבין fascia. למנוע נזק השכבה התת עורית. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> מניחים את העור על מחצלת לנתח, בצד השיער כלפי מטה, להצמיד שני הקצוות הסמוכים של העור לתקן במקום. בעדינות לגרד את השומן, באמצעות אזמל בוטה עד הדרמיס ברור ומסודר. הערה: כאשר מגרדים את השומן, להשתמש במלקחיים מעוקל כדי להפעיל לחץ עדין על העור. החל לחץ על העור באמצעות הצד המעוגל של מלקחיים. פעולה זו תמנע את העור מקריעה. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> מניחים את העור, הדרמיס בצד למטה, ב 100 מ&quot;מ צלחת תרבות סטרילי, ויישר את העור על מנת להבטיח כי אין קפלים. הוסף 10 מ&quot;ל של PBS ללא Ca 2 + </sup&gt; ו Mg 2+ (PBS -) כדי בצלחת תרבות וליישר את העור במידת הצורך. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> לשאוב PBS ולהוסיף 10 מ&quot;ל של טריפסין 0.25%. ודא כי העור הוא פרש והוא צף בחופשיות. דגירה פיסת עור אחד לכל 10 מ&quot;ל של טריפסין 0.25%. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> דגירת דגימות ב 37 מעלות צלזיוס במשך 30-120 דקות או ב 4 מעלות צלזיוס למשך הלילה. </li></ol> 3. הכנת תרחיף תא בודד מ&#39;שיער&#39; זקיקים <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> גרד את כל השיער מעל העור באמצעות מלקחיים מעוקלים אזמל, ב קדמי לכיוון אחורי. מתחי את העור במקום באמצעות צדו הקמור של מלקחיים ולהשתמש אזמל כדי לגרד את השיער. הערה: אל תגרד את השיער לתוך התמיסה טריפסין הוסיף בשלב 2.8. התחל הזנב ופעל בכיוון צמיחת השיער. מגרדים נגד כיוון צמיחת שיער יגרום לאובדן משמעותי של HFS ו ירידה בתשואת תא. HFS נוטה לדבוק זה יחד ויוצר גושים קטנים; על מנת לצמצם הגודל דואר של גושי HF לנסות לגרד שטח קטן בכל פעם. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> מעבירים את העור ללא שיער כדי בצלחת תרבות חדשה ולהוסיף 10 מ&quot;ל של PBS - כדי למנוע התייבשות. בדוק את העור לגרד כל שיער נותר. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> לשבור את HFS באמצעות אזמל מלקחיים עד השעית HF יחידה מתקבלת. במרץ triturate השעית HF באמצעות פיפטה 10 מיליליטר במשך כמה דקות כדי לשבור את כל גושי השיער. הערה: בצע את כל השלבים הבאים על קרח. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> מעבירים את ההשעיה HF בצינור 50 מ&quot;ל מראש שכותרתו. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> לשאוב PBS - מן העור ולהשתמש בו כדי לשטוף את צלחת תרבית תאים שהכילה השעית HF; להעביר את הצינור 50 מ&quot;ל. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> כְּבָסִים <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> סנן את ההשעיה על ידי עובר דרך מסננת תא 70 מיקרומטר מצויד על צינור 50 מ&quot;ל. שטפו את שפופרת 50 מ&quot;ל הראשונית ואת מסננת עם 10 מ&quot;ל של חיץ מכתים (PBS - עם 3% chelated FBS). </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> סנן את ההשעיה על ידי העברהתא מסנן דרך 40 מיקרומטר מצויד על צינור 50 מיליליטר. לשטוף את הצינור עם 5-10 מ&quot;ל של חיץ מכתים על מנת להבטיח כי כל התאים הועברו אל צינור חדש. שמור את ההשעיה על הקרח עד שכל החיות עובדו. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> צנטריפוגה במשך 15 דקות ב 300 XG ב 4 מעלות צלזיוס. supernatant לשאוב בזהירות מבלי להפריע גלולה ו resuspend גלולה ב 5 מ&quot;ל של חיץ מכתים. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> צנטריפוגה במשך 5 דקות XG 300 ב 4 מעלות צלזיוס. בזהירות לשאוב supernatant ו resuspend התא גלולה ב 800 μl של חיץ מכתים. הערה: הכרכים המפורטים לעיל מספיק תאים מכתימים נגזרים משני עכברים בוגרים. </li></ol></li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> השעיה העביר לתוך צינורות FACS שכותרתו קדם. <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> עבור צינורות שולטים, לקחת 25-50 μl של השעית תא (או כל שמאל שיורית מן השעית התא) ולעשות עד בהיקף כולל של 300 μl עם חיץ מכתים. הערה: הכין צינורות מלאים (μl נפח הכולל 300) עבור בלא כתם (לא נוגדןואין DAPI); DAPI בלבד; Integrin β1; Integrin α6; SCA-1; CD34. </li></ol></li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> מוסיף את הנוגדנים הראשוניים DAPI (ראה טבלת חומרי דילולים מתאימים) בריכוזים הרצויים אל הצינור המתאים. בעדינות קפיצית את הצינורות כדי לערבב את השעית התא. חזור על קרח מכסים ברדיד אלומיניום כדי להגן מפני אור. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> דגירה במשך 30 דקות על קרח בעדינות קפיץ הצינורות כל 10 דקות כדי להבטיח תאים נשמרים השעיה. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> שטפו תאים על ידי מילוי כל צינור FACS עם חיץ מכתים (כ 4 מ&quot;ל לכל צינור); צנטריפוגות במשך 5 דקות ב 300 XG ב 4 מעלות צלזיוס. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> בזהירות לשאוב supernatant ו resuspend התא גלולה ב 800 μl של חיץ מכתים. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> להעביר את השעית תא לתוך צינור FACS עם כובעים מסננים תא כדי להבטיח השעית תא בודדת. </li></ol> 4. ניתוח cytometry זרימה <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> המשך מיון תאים באמצעות מיד cytometer זרימה עם מסננים מתאימים עבור סיגנהאיתור l. השתמש 405 סגול ננומטר (למדידות DAPI), 488 ננומטר כחול (למדידות FSC, SSC, PE, PE-Cy7 ו FITC) ו 633 לייזרים אדומים ננומטר (עירור של APC) הערה: ודא כי מכשיר הקלטה מ גלאי עבור כל שלושת ערוצי הניאון. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> שערי קרינה מוגדרת על סמך דגימות בלא כתם ופיצוי עבור חפיפה ספקטרלית באמצעות פקדים מוכתמים יחידים. הערה: השתמש בפקדים צבעוניים אחת להתאמת הפיצוי בין ערוצים על מנת לחסל כל חפיפת אותות הניאון. התאמת התגמול יהיה תלוי סדרן FACS בשימוש. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> הגדרת שערים העיקרי מבוסס על DAPI להוציא תאים מתים. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> התאם את עלילת הפיזור (SSC-A vs-A FSC) כדי לבחור לאירועי גופייה. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> הגדרת FSC וגובה SSC ופרמטרים רוחב לחסל עבור כפילויות ולהפלות לאירועים גופיה. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> תאי שער עם α6 גבוה והבעה β1 ומתוך אוכלוסייה זו תאי שער גם עם CD34 ביטוי גבוה או ביטוי גבוה Sca1. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> תאים מיין לתוך צינור FACS מראש שכותרתו. הערה: שתי אוכלוסיות של תאים יכול להיות מבודד; α6 + / β1 + / CD34 + / SCA-1 - ו α6 + / β1 + / SCA-1 + / CD34 -. תאים ממוינים צריכים להישמר על קרח בכל העת עד שהם משמשים ביישומים במורד כגון תרבית תאים או בידוד RNA </li></ol>

<ol>
	<li>Wagers, A. J., Weissman, I. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Plasticity+of+adult+stem+cells.">Plasticity of adult stem cells.</a> Cell. 116, 639-648 (2004).</li><li>Blanpain, C., Lowry, W. E., Geoghegan, A., Polak, L., Fuchs, E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Self-renewal,+multipotency,+and+the+existence+of+two+cell+populations+within+an+epithelial+stem+cell+niche.">Self-renewal, multipotency, and the existence of two cell populations within an epithelial stem cell niche.</a> Cell. 118, 635-648 (2004).</li><li>Fuchs, E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Scratching+the+surface+of+skin+development.">Scratching the surface of skin development.</a> Nature. 445, 834-842 (2007).</li><li>Hsu, Y. C., Fuchs, E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+family+business:+stem+cell+progeny+join+the+niche+to+regulate+homeostasis.">A family business: stem cell progeny join the niche to regulate homeostasis.</a> Nat Rev Mol Cell Biol. 13, 103-114 (2012).</li><li>Blanpain, C., Fuchs, E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Epidermal+homeostasis:+a+balancing+act+of+stem+cells+in+the+skin.">Epidermal homeostasis: a balancing act of stem cells in the skin.</a> Nat Rev Mol Cell Biol. 10, 207-217 (2009).</li><li>Alonso, L., Fuchs, E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+hair+cycle.">The hair cycle.</a> J Cell Sci. 119, 391-393 (2006).</li><li>Muller-Rover, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+comprehensive+guide+for+the+accurate+classification+of+murine+hair+follicles+in+distinct+hair+cycle+stages.">A comprehensive guide for the accurate classification of murine hair follicles in distinct hair cycle stages.</a> J Invest Dermatol. 117, 3-15 (2001).</li><li>Zhang, Y. V., Cheong, J., Ciapurin, N., McDermitt, D. J., Tumbar, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Distinct+self-renewal+and+differentiation+phases+in+the+niche+of+infrequently+dividing+hair+follicle+stem+cells.">Distinct self-renewal and differentiation phases in the niche of infrequently dividing hair follicle stem cells.</a> Cell Stem Cell. 5, 267-278 (2009).</li><li>Ito, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Stem+cells+in+the+hair+follicle+bulge+contribute+to+wound+repair+but+not+to+homeostasis+of+the+epidermis.">Stem cells in the hair follicle bulge contribute to wound repair but not to homeostasis of the epidermis.</a> Nat Med. 11, 1351-1354 (2005).</li><li>Hsu, Y. C., Pasolli, H. A., Fuchs, E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Dynamics+between+stem+cells,+niche,+and+progeny+in+the+hair+follicle.">Dynamics between stem cells, niche, and progeny in the hair follicle.</a> Cell. 144, 92-105 (2011).</li><li>Fuchs, E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+tortoise+and+the+hair:+slow-cycling+cells+in+the+stem+cell+race.">The tortoise and the hair: slow-cycling cells in the stem cell race.</a> Cell. 137, 811-819 (2009).</li><li>Plikus, M. V., Chuong, C. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Complex+hair+cycle+domain+patterns+and+regenerative+hair+waves+in+living+rodents.">Complex hair cycle domain patterns and regenerative hair waves in living rodents.</a> J Invest Dermatol. 128, 1071-1080 (2008).</li><li>Ito, M., Kizawa, K., Hamada, K., Cotsarelis, G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Hair+follicle+stem+cells+in+the+lower+bulge+form+the+secondary+germ,+a+biochemically+distinct+but+functionally+equivalent+progenitor+cell+population,+at+the+termination+of+catagen.">Hair follicle stem cells in the lower bulge form the secondary germ, a biochemically distinct but functionally equivalent progenitor cell population, at the termination of catagen.</a> Differentiation. 72, 548-557 (2004).</li><li>Cotsarelis, G., Sun, T. T., Lavker, R. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Label-retaining+cells+reside+in+the+bulge+area+of+pilosebaceous+unit:+implications+for+follicular+stem+cells,+hair+cycle,+and+skin+carcinogenesis.">Label-retaining cells reside in the bulge area of pilosebaceous unit: implications for follicular stem cells, hair cycle, and skin carcinogenesis.</a> Cell. 61, 1329-1337 (1990).</li><li>Cotsarelis, G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Epithelial+stem+cells:+a+folliculocentric+view.">Epithelial stem cells: a folliculocentric view.</a> J Invest Dermatol. 126, 1459-1468 (2006).</li><li>Trempus, C. S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Enrichment+for+living+murine+keratinocytes+from+the+hair+follicle+bulge+with+the+cell+surface+marker+CD34.">Enrichment for living murine keratinocytes from the hair follicle bulge with the cell surface marker CD34.</a> J Invest Dermatol. 120, 501-511 (2003).</li><li>Morris, R. J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Capturing+and+profiling+adult+hair+follicle+stem+cells.">Capturing and profiling adult hair follicle stem cells.</a> Nat Biotechnol. 22, 411-417 (2004).</li><li>Lyle, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+C8/144B+monoclonal+antibody+recognizes+cytokeratin+15+and+defines+the+location+of+human+hair+follicle+stem+cells.">The C8/144B monoclonal antibody recognizes cytokeratin 15 and defines the location of human hair follicle stem cells.</a> J Cell Sci. 111 (Pt 21), 3179-3188 (1998).</li><li>Liu, Y., Lyle, S., Yang, Z., Cotsarelis, G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Keratin+15+promoter+targets+putative+epithelial+stem+cells+in+the+hair+follicle+bulge.">Keratin 15 promoter targets putative epithelial stem cells in the hair follicle bulge.</a> J Invest Dermatol. 121, 963-968 (2003).</li><li>Vidal, V. P., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Sox9+is+essential+for+outer+root+sheath+differentiation+and+the+formation+of+the+hair+stem+cell+compartment.">Sox9 is essential for outer root sheath differentiation and the formation of the hair stem cell compartment.</a> Curr Biol. 15, 1340-1351 (2005).</li><li>Snippert, H. J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Lgr6+marks+stem+cells+in+the+hair+follicle+that+generate+all+cell+lineages+of+the+skin.">Lgr6 marks stem cells in the hair follicle that generate all cell lineages of the skin.</a> Science. 327, 1385-1389 (2010).</li><li>Nijhof, J. G., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+cell-surface+marker+MTS24+identifies+a+novel+population+of+follicular+keratinocytes+with+characteristics+of+progenitor+cells.">The cell-surface marker MTS24 identifies a novel population of follicular keratinocytes with characteristics of progenitor cells.</a> Development. 133, 3027-3037 (2006).</li><li>Jensen, U. B., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+distinct+population+of+clonogenic+and+multipotent+murine+follicular+keratinocytes+residing+in+the+upper+isthmus.">A distinct population of clonogenic and multipotent murine follicular keratinocytes residing in the upper isthmus.</a> J Cell Sci. 121, 609-617 (2008).</li><li>Jensen, K. B., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Lrig1+expression+defines+a+distinct+multipotent+stem+cell+population+in+mammalian+epidermis.">Lrig1 expression defines a distinct multipotent stem cell population in mammalian epidermis.</a> Cell Stem Cell. 4, 427-439 (2009).</li><li>Jaks, V., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Lgr5+marks+cycling,+yet+long-lived,+hair+follicle+stem+cells.">Lgr5 marks cycling, yet long-lived, hair follicle stem cells.</a> Nat Genet. 40, 1291-1299 (2008).</li><li>Horsley, V., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Blimp1+defines+a+progenitor+population+that+governs+cellular+input+to+the+sebaceous+gland.">Blimp1 defines a progenitor population that governs cellular input to the sebaceous gland.</a> Cell. 126, 597-609 (2006).</li><li>Goldstein, J., Horsley, V. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Home+sweet+home:+skin+stem+cell+niches.">Home sweet home: skin stem cell niches.</a> Cell Mol Life Sci. 69, 2573-2582 (2012).</li><li>Fuchs, Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Sept4/ARTS+regulates+stem+cell+apoptosis+and+skin+regeneration.">Sept4/ARTS regulates stem cell apoptosis and skin regeneration.</a> Science. 341, 286-289 (2013).</li><li>Nowak, J. A., Fuchs, E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Isolation+and+culture+of+epithelial+stem+cells.">Isolation and culture of epithelial stem cells.</a> Methods Mol Biol. 482, 215-232 (2009).</li></ol>

The authors have nothing to declare

הפרוטוקול המתואר כאן הוא מבוסס היטב לבידוד HFSCs מהעור הגבי של עכברים בוגרים אבל יכול להיות מיושם באופן שווה לבידוד של אוכלוסיות אחרות בתוך מבנה HF, בהתבסס על הבחירה של סמנים 2,16,23,28,29. שיטה זו היא יתרון במיוחד על פני שיטות אחרות של בידוד תא, כגון דיסוציאציה רקמות, בכ?...

תאי גזע בוגרים (גיל) הם חיוניים לשמירה על הומאוסטזיס רקמות על ידי החלפת תאים מתים ותיקון רקמות שנפגעו על פציעה. גיל אלה מוגדרים על ידי היכולת שלהם לעבור התחדשות עצמית מתמדת להתמיין שושלות תאים שונות 1-3. המערכות למדו הטוב ביותר, אשר תלוי גיל מבוגר עבור החידוש שלהם, כוללות את מערכת hematopoietic, במעי 1,2,4 העור. במהלך עובר, העור מתחיל כמו שכבה אחת של תאי אפידרמיס. המורפוגנזה של זקיק השיער (HF) מתחילה כאשר תאי mesenchymal לאכלס את העור ומהווה הדרמיס collagenous בסיסי 5. מתמחה תאים mesenchymal, כי מאוחר יותר מהווים את עורי פטמית (העקורים), לארגן ישירות מתחת לשכבת האפידרמיס וממריץ האפיתל כדי ליצור placodes השיער מתחיל לצמוח כלפי מטה 6. מאוד מתרבים תאי מטריקס, ממוקם בחלק התחתון של HF,מעטפת תאי mesenchymal אלה ויוצרים את השיער הנורה, בעוד השכבה הפנימית מתחילה להתמיין גלילים קונצנטריים לגבש השערה (HS) ואת נדן השורש הפנימי שמסביב (IRS) 2,3. לאחר הינקות האפידרמיס בעור מורכב משלושה תאים: האפידרמיס interfollicular (IFE), בלוטת החלב (SG) ואת HF. בניגוד IFE ו SG אשר נמצא במצב מתמיד של הומאוסטזיס, את HF הוא איבר מיני דינמי אשר עובר מחזורים רצופים של צמיחה (anagen), הרס (קטגן) ומנוחה (telogen) 4,7. תאי גזע זקיק שיער (HFSCs) דלק כי במחזוריות בלתי פוסקת זו, הנמצאים ליד גומחה בתוך HF המכונית הבליטה 4. במהלך Anagen HFSCs לצאת הבליטה, העוקבים אחר איתות הפעלה מן העקורים, להתחיל מתרבה ויורד כלפי מטה ובכך ליצור שובל ליניארי ארוך של תאים המכונים נדן השורש החיצוני (ORS) 8-10. תאי מטריקס, כימקיפים את העקורים בבסיס של HF, מחזור במהירות ולהעביר שעברו התמיינות מסוף כלפי מעלה ובכך יצירת HS ואת 10 IRS (איור 1). משך anagen קובע את אורך השיער תלויה יכולת שגשוג והתמיינות של תאי מטריקס 6. כאשר HF נכנס קטגן, התאים מטריקס הגברה במעבר בהפסקת הנורה להתרבות, עוברים אפופטוזיס ו לסגת לחלוטין תוך משיכת העקורים כלפי מעלה עד שהוא מגיע אל החלק הלא-אופניים של 8,11 HF. במהלך הכחשה זו HF יוצרת מבנה זמני הידוע כאפיק אפיתל, אופייני קטגן, ומכילה הרבה תאים אפופטוטיים. בעכברים, קטגן נמשך בין 3-4 ימים, והוא מסונכרן מאוד במחזור השיער הראשון. כאשר HF מגיע telogen כל HFSCs להיות שקט. השלבים ברורים של מחזור HF גם מאופיינים שינויים בצבע העור העכבר של בשל מייצור elanin. השינויים העור משחור במהלך anagen כדי אפור כהה במהלך קטגן לוורוד במהלך telogen 6,7,12,13. <img alt="איור 1" src="/files/ftp_upload/53931/53931fig1.jpg" /> איור 1: מחזור זקיק השיער. HF מורכב בחלקו העליון קבע וחלק שיפוץ נמוך כל הזמן, רכיבה על אופניים, אשר עוברת מחזורים רצוף של צמיחה מהירה (anagen), הרס (קטגן) ושלב קפאון קרוב משפחה או שאר (telogen). <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/53931/53931fig1large.jpg" target="_blank">אנא לחץ כאן כדי להציג גדול גרסה של נתון זה.</a> ה- SCS שמירה על HF זוהה בתחילה באמצעות ניסויי מרדף, עם thymidine tritiated, שחשפו אוכלוסייה של תאי שומרי תווית רכיבה איטית (LRC) ששכנו באזור הקבע של HF ממש מתחת SG 14. התקדמות HFSCאפיון חשף מספר קטן של סמנים כי ניתן להשתמש כדי לזהות ולבודד גיל ספציפי מן הנישה HF 15. אולי הסמן הטוב ביותר להעשרת HFSCs הוא CD34, סמן פני התא מזוהה גם כסמן SC hematopoietic בבני אדם 16. בתוך CD34 זה + אוכלוסיות שתי אוכלוסיות נפרדות גם בודדו מבוסס על integrin α6 ביטוי 2. סמן נוסף הוא קרטין 15 (K15) אשר מבוטא בכמות גבוהה באזור הבליטה, שיתוף לוקליזציה עם ביטוי CD34 ו אמרגן K15 משמש למיקוד ולבודד HFSCs בחיות מהונדסות 15,17-19. בעשור האחרון מספר אוכלוסיות נפרדות אחרות של HFSCs ו ובתאים גם דווחו להתגורר בתוך HF 17,20-27. תכונה מרגשת נוספת של HFSCs תרומתם תיקון עור. בתנאים רגילים HFSCs לחדש את HF ואינו לוקח חלק הומאוסטזיס IFE. HoweVer, בתגובה פציעה, תאים אלה לצאת נישה SC שלהם וסיוע repopulating IFE 9. אנחנו הוכחנו לאחרונה כי עכברים שנמחקו עבור תצוגת הגן הפר-אפופטוטיים Sept4 / ARTS למספר גדל והולך של CD34, K15 ו Sox9 + HFSCs, מה שמראה על התנגדות אפופטוזיס. HFSCs בודד Sept4 / ARTS - / - עורות מגבים ניצול התא מופעל קרינת מיון (FACS) והיה יותר שני גידול של פי מספר CD34 + ו- K15 + HFSCs. ARTS Sept4 / אלה - / - HFSCs הורחב במבחנה ולא הוליד רק מושב יותר אבל היו גם מסוגל לעמוד בתנאים קשים בהשוואה לקבוצת ביקורת 28. כתוצאה מכך שיש מספר גדל של HFSCs, Sept4 / ARTS - / - עכברים נרפאו מהר יותר באופן משמעותי בתגובת פציעות כריתת עור. באופן מפתיע, Sept4 / ARTS - / - עכברים displayeדה מספר רב של HFS מחדש ממיטת הפצע, וצלקות קטנות באופן משמעותי. יתר על כן, העכברים שנמחקו עבור XIAP (X-linked מעכב אפופטוזיס), ליעד ביוכימיים של ARTS, הפגינו ריפוי לקוי 28. תוצאות העבודה שלנו בצעה במעבדות אחרות הראו כי HFSCs לשמש מודל אידיאלי עבור מחקר על הביולוגיה והתפקוד של גיל מבוגר. כאן אנו מתארים את המתודולוגיה של העשרה ובידוד של HFSCs ו קרטינוציטים אפידרמיס מבוסס על הביטוי של ארבעה סמנים: α6 integrin; β1 integrin; SCA-1 (סמן קרטינוציטים אפידרמיס) ו CD34. בידוד דומה K15 + HFSCs יכול גם להתבצע באמצעות עכבר כתב K15-GFP 19.

<table border="0" cellpadding="0" cellspacing="0" width="1027">
	<tbody>
		<tr height="32">
			<td height="32" style="height:32px;width:295px;">Isoflurane&#160;</td>
			<td style="width:247px;">Primal Critical Care</td>
			<td style="width:144px;">&#160;66794-017-10</td>
			<td style="width:341px;"></td>
		</tr>
		<tr height="32">
			<td height="32" style="height:32px;">Carbon dioxide</td>
			<td>-</td>
			<td>-</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="32">
			<td height="32" style="height:32px;">Electro Shaver</td>
			<td>Oster&#160;</td>
			<td>Golden A5</td>
			<td>Shaver from any other company could be used</td>
		</tr>
		<tr height="32">
			<td height="32" style="height:32px;">70% ethanol</td>
			<td>Gadot Lab</td>
			<td>830000051</td>
			<td>96% ehtanol diluted with distilled water&#160;</td>
		</tr>
		<tr height="32">
			<td height="32" style="height:32px;">Dissection mat</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td>Dissection tools from any provider can be used</td>
		</tr>
		<tr height="32">
			<td height="32" style="height:32px;">Forceps</td>
			<td>Dumont</td>
			<td>11251-10</td>
			<td>Foreceps from any other company could be used</td>
		</tr>
		<tr height="32">
			<td height="32" style="height:32px;">Scissors&#160;</td>
			<td>Dumont</td>
			<td>14094-11</td>
			<td>Scissors from any other company could be used</td>
		</tr>
		<tr height="32">
			<td height="32" style="height:32px;">Needles/Pins</td>
			<td>-</td>
			<td>-</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="32">
			<td height="32" style="height:32px;">Scalpel</td>
			<td>Albion</td>
			<td>10</td>
			<td>Ensure that the scalpel has a blunt end</td>
		</tr>
		<tr height="32">
			<td height="32" style="height:32px;">Tissue culture dish 60mm x 15mm</td>
			<td>Sigma-Aldrich</td>
			<td>CLS430166</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="32">
			<td height="32" style="height:32px;">PBS</td>
			<td>-</td>
			<td></td>
			<td>In-house PBS without Calcium and Magnesium</td>
		</tr>
		<tr height="59">
			<td height="59" style="height:59px;">0.25% Trypsin/EDTA</td>
			<td>Biological Industries</td>
			<td>03-050-1A</td>
			<td style="width:341px;">Trypsin obtained from a different company might have a different activity and duration of the trypsin digest has to be adjusted accordingly</td>
		</tr>
		<tr height="32">
			<td height="32" style="height:32px;">Pipettes 10ml</td>
			<td>Sigma-Aldrich</td>
			<td>Corning, 4488</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="32">
			<td height="32" style="height:32px;">Ice</td>
			<td>-</td>
			<td>-</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="32">
			<td height="32" style="height:32px;">50 ml sterie centrifuge tubes</td>
			<td>Minplast Ein-shemer</td>
			<td style="width:144px;">35050-43</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="32">
			<td height="32" style="height:32px;">70&#181;M Cell strainer</td>
			<td>Fisher</td>
			<td>22362548</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="32">
			<td height="32" style="height:32px;">40&#181;M Cell strainer</td>
			<td>Fisher</td>
			<td>22362549</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="32">
			<td height="32" style="height:32px;">Staining buffer</td>
			<td>-</td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="32">
			<td height="32" style="height:32px;">Centrifuge</td>
			<td>Eppendorf 5804 R</td>
			<td>5805 000.017</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="32">
			<td height="32" style="height:32px;">FACS tubes with Cell strainer caps&#160;</td>
			<td>Falcon&#160;</td>
			<td>352235</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="32">
			<td height="32" style="height:32px;">FACS tubes&#160;</td>
			<td>Falcon&#160;</td>
			<td>352063</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="32">
			<td height="32" style="height:32px;">Integrin &#946;1</td>
			<td>eBioscience</td>
			<td>25-0291</td>
			<td>1:400</td>
		</tr>
		<tr height="32">
			<td height="32" style="height:32px;">Integrin &#945;6</td>
			<td>eBioscience</td>
			<td>15-0495</td>
			<td>1:600</td>
		</tr>
		<tr height="32">
			<td height="32" style="height:32px;">Sca I</td>
			<td>eBioscience</td>
			<td>11-5981</td>
			<td>1:200</td>
		</tr>
		<tr height="32">
			<td height="32" style="height:32px;">CD34</td>
			<td>eBioscience</td>
			<td>9011-0349</td>
			<td>1:300</td>
		</tr>
		<tr height="32">
			<td height="32" style="height:32px;">DAPI</td>
			<td>Sigma-Aldrich</td>
			<td>D9542</td>
			<td>50ng/ml</td>
		</tr>
		<tr height="32">
			<td height="32" style="height:32px;">Dry Chelex</td>
			<td>BioRad</td>
			<td>142-2842</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="32">
			<td height="32" style="height:32px;">Beaker&#160;</td>
			<td>Pyrex</td>
			<td>-</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="32">
			<td height="32" style="height:32px;">Distilled H2O&#160;</td>
			<td>-</td>
			<td>-</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="32">
			<td height="32" style="height:32px;">Stir bar</td>
			<td>-</td>
			<td>-</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="32">
			<td height="32" style="height:32px;">NHCl</td>
			<td>BioLab</td>
			<td>1903059</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="32">
			<td height="32" style="height:32px;">Fetal bovine serum (FBS)</td>
			<td>Beit Haemek Biological Industries</td>
			<td>400718</td>
			<td>FBS obtained from a different company can be used</td>
		</tr>
		<tr height="32">
			<td height="32" style="height:32px;">1L glass bottle</td>
			<td>Ilmabor</td>
			<td>Boro 3.3</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="32">
			<td height="32" style="height:32px;">Bottle top filter</td>
			<td>Autofil</td>
			<td>1102-RLS</td>
			<td></td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

isolating hair follicle stem cells and epidermal keratinocytes from dorsal mouse skin

The hair follicle (HF) is an ideal system for studying the biology and regulation of adult stem cells (SCs). This dynamic mini organ is replenished by distinct pools of SCs, which are located in the permanent portion of the HF, a region known as the bulge. These multipotent bulge SCs were initially identified as slow cycling label retaining cells; however, their isolation has been made feasible after identification of specific cell markers, such as CD34 and keratin 15 (K15). Here, we describe a robust method for isolating bulge SCs and epidermal keratinocytes from mouse HFs utilizing fluorescence activated cell-sorting (FACS) technology. Isolated hair follicle SCs (HFSCs) can be utilized in various in vivo grafting models and are a valuable in vitro model for studying the mechanisms that govern multipotency, quiescence and activation.

פרוטוקול זה מתאר בפירוט את ההעשרה ובידוד של שני סוגים של אוכלוסיות:. בליטת SCS ו קרטינוציטים אפידרמיס איור 2 מדגימים את השלבים העיקריים של הפרוטוקול. ניצול העור הוסר הגבי האחורי של עכברים בן 8 שבוע, אנו מועשרים גיל בליטה באמצעות סמן CD34, אשר באה...

Watch this Scientific Journal Video about Isolating Hair Follicle Stem Cells and Epidermal Keratinocytes from Dorsal Mouse Skin at JoVE.com

Isolating Hair Follicle Stem Cells and Epidermal Keratinocytes from Dorsal Mouse Skin

An ideal model for studying adult stem cell biology is the mouse hair follicle. Here we present a protocol for isolating different populations of hair follicles stem cells and epidermal keratinocytes, employing enzymatic digestion of mouse dorsal skin followed by FACS analysis.

בידוד תאי גזע זקיק שיער עוריות קרטינוציטים מן עור עכבר הגבה

The hair follicle (HF) is an ideal system for studying the biology and regulation of adult stem cells (SCs). This dynamic mini organ is replenished by ...

isolating-hair-follicle-stem-cells-epidermal-keratinocytes-from

Research

Education

JoVE Journal

JoVE Core

Cell Biology

Developmental Biology

Unit 1

Stem Cell Biology And Renewal in Epithelial Tissue

SCIENTISTS IN ACTION

20.9K Views.  Technion Israel Institute of Technology. An ideal model for studying adult stem cell biology is the mouse hair follicle. Here we present a protocol for isolating different populations of hair follicles stem cells and epidermal keratinocytes, employing enzymatic digestion of mouse dorsal skin followed by FACS analysis.

Video: Isolating Hair Follicle Stem Cells and Epidermal Keratinocytes from Dorsal Mouse Skin

Transfection, Selection, and Colony-picking of Human Induced Pluripotent Stem Cells TALEN-targeted with a GFP Gene into the AAVS1 Safe Harbor

Targeted transgene addition can provide persistent gene expression while circumventing the gene silencing and insertional mutagenesis caused by viral vector mediated random integration. This protocol describes a universal and efficient transgene targeted addition platform in human iPSCs based on utilization of validated open-source TALENs and a gene-trap-like donor to deliver transgenes into a safe harbor locus. Importantly, effective gene editing is rate-limited by the delivery efficiency of gene editing vectors. Therefore, this protocol first focuses on preparation of iPSCs for transfection to achieve high nuclear delivery efficiency. When iPSCs are dissociated into single cells using a gentle-cell dissociation reagent and transfected using an optimized program, >50% cells can be induced to take up the large gene editing vectors. Because the AAVS1 locus is located in the intron of an active gene (PPP1R12C), a splicing acceptor (SA)-linked puromycin resistant gene (PAC) was used to select targeted iPSCs while excluding random integration-only and untransfected cells. This strategy greatly increases the chance of obtaining targeted clones, and can be used in other active gene targeting experiments as well. Two weeks after puromycin selection at the dose adjusted for the specific iPSC line, clones are ready to be picked by manual dissection of large, isolated colonies into smaller pieces that are transferred to fresh medium in a smaller well for further expansion and genetic and functional screening. One can follow this protocol to readily obtain multiple GFP reporter iPSC lines that are useful for in vivo and in vitro imaging and cell isolation.

TALEN-mediated gene editing at the safe harbor AAVS1 locus enables high-efficiency transgene addition in human iPSCs. This protocol describes the procedures for preparing iPSCs for TALEN and donor vector delivery, transfecting iPSCs, and selecting and isolating iPSC clones to achieve targeted integration of a GFP gene to generate reporter lines.

Transfection, בחירה, ומושבת קטיף של תאי גזע האנושי המושרה pluripotent Talen-ממוקד עם גן GFP לSafe Harbor AAVS1

Targeted transgene addition can provide persistent gene expression while circumventing the gene silencing and insertional mutagenesis caused by viral ...

Generation of Integration-free Human Induced Pluripotent Stem Cells Using Hair-derived Keratinocytes

Recent advances in reprogramming allow us to turn somatic cells into human induced pluripotent stem cells (hiPSCs). Disease modeling using patient-specific hiPSCs allows the study of the underlying mechanism for pathogenesis, also providing a platform for the development of in vitro drug screening and gene therapy to improve treatment options. The promising potential of hiPSCs for regenerative medicine is also evident from the increasing number of publications (>7000) on iPSCs in recent years. Various cell types from distinct lineages have been successfully used for hiPSC generation, including skin fibroblasts, hematopoietic cells and epidermal keratinocytes. While skin biopsies and blood collection are routinely performed in many labs as a source of somatic cells for the generation of hiPSCs, the collection and subsequent derivation of hair keratinocytes are less commonly used. Hair-derived keratinocytes represent a non-invasive approach to obtain cell samples from patients. Here we outline a simple non-invasive method for the derivation of keratinocytes from plucked hair. We also provide instructions for maintenance of keratinocytes and subsequent reprogramming to generate integration-free hiPSC using episomal vectors.

This manuscript provides a step-by-step procedure for the derivation and maintenance of human keratinocytes from plucked hair and subsequent generation of integration-free human induced pluripotent stem cells (hiPSCs) by episomal vectors.

דור של תאי גזע האינטגרציה נטול האדם המושרה pluripotent שימוש קרטינוציטים נגזר שיער

Recent advances in reprogramming allow us to turn somatic cells into human induced pluripotent stem cells (hiPSCs). Disease modeling using ...

Epigenetic Conversion as a Safe and Simple Method to Obtain Insulin-secreting Cells from Adult Skin Fibroblasts

Regenerative medicine requires new, fully functional cells that are delivered to patients in order to repair degenerated or damaged tissues. When such cells are not readily available, they can be obtained using different approaches that include, among the many, reprogramming and trans-differentiation, with advantages and limitations that are specific of the different techniques. Here a new strategy for the conversion of an adult mature fibroblast into an insulin-secreting cell, arbitrarily designated as epigenetic converted cells (EpiCC), is described. The method has been developed, based on the increasing understanding of the mechanisms controlling epigenetic regulation of cell fate and differentiation. In particular, the first step uses an epigenetic modifier, namely 5-aza-cytidine, to drive adult cells into a "highly permissive" state. It then takes advantage of this brief and reversible window of epigenetic plasticity, to re-address cells toward a different lineage. The approach is designated "epigenetic cell conversion". It is a simple and robust way to obtain an efficient, controlled and stable cellular inter-lineage switch. Since the protocol does not involve the use of any gene transfection, it is free of viral vectors and does not involve a stable pluripotent state, it is highly promising for translational medicine applications.

Here, a new method that allows the conversion of adult skin fibroblasts into insulin-secreting cells is presented. This technique is based on epigenetic conversion, does not involve the use of retroviral vectors nor the acquisition of a stable pluripotent state. It is therefore highly promising for translational medicine applications.

מרת אפיגנטיים כאמצעי בטוח ופשוט להשיג תאי מפרישי אינסולין פיברובלסטים עור בוגרים

Regenerative medicine requires new, fully functional cells that are delivered to patients in order to repair degenerated or damaged tissues. When such ...

The Production of Pluripotent Stem Cells from Mouse Amniotic Fluid Cells Using a Transposon System

Induced pluripotent stem (iPS) cells are generated from mouse and human somatic cells by forced expression of defined transcription factors using different methods. Here, we produced iPS cells from mouse amniotic fluid cells, using a non-viral-based transposon system. All obtained iPS cell lines exhibited characteristics of pluripotent cells, including the ability to differentiate toward derivatives of all three germ layers in vitro and in vivo. This strategy opens up the possibility of using cells from diseased fetuses to develop new therapies for birth defects.

In this study, we generate induced pluripotent stem cells from mouse amniotic fluid cells, using a non-viral-based transposon system.

את ייצור תאי גזע פלוריפוטנטיים מתאי מי שפירים עכבר באמצעות מערכת transposon

Induced pluripotent stem (iPS) cells are generated from mouse and human somatic cells by forced expression of defined transcription factors using ...

Horizontal Whole Mount: A Novel Processing and Imaging Protocol for Thick, Three-dimensional Tissue Cross-sections of Skin

Processing a tissue of interest to generate a microscopic image that supports a scientific argument can be challenging. The acquisition of high-quality microscopic images is not entirely dependent upon the quality of the microscope, but also upon the methods of tissue processing, which often involve multiple critical actions or steps. Furthermore, mesenchymal cell types in the skin and other tissues represent a new challenge for tissue preparation and imaging. Here, we present a complete process, from tissue harvest to microscopy. Our technique, called &#34;horizontal whole mount,&#34; is one that novices can quickly become proficient in and that allows for antigen preservation and detection in 60-300 &#181;m-thick sections cut with a cryostat. Sections of this thickness provide enhanced visualization of tissue microarchitecture in a three-dimensional environment. In addition, the protocol preserves mesenchymal cells in a manner that enhances image quality when compared to standard cryostat or paraffin sections, thereby increasing the efficacy and reliability of immunostaining. We believe that this protocol will benefit all laboratories that visualize skin, and possibly other tissues and organs.

This work presents a novel processing and imaging protocol for thick, three-dimensional tissue cross-section analysis that enables the full exploitation of confocal imaging modalities. This protocol preserves antigenicity and represents a robust system to analyze skin histology and potentially other tissue types.

אופקי הר שלם: עיבוד רומן פרוטוקול הדמיה על רקמה עבה, תלת מימדי חתכים של העור

Processing a tissue of interest to generate a microscopic image that supports a scientific argument can be challenging. The acquisition of high-quality ...

Generation and Culturing of Primary Human Keratinocytes from Adult Skin

The main function of keratinocytes is to provide the structural integrity of the epidermis, thereby maintaining a mechanical barrier to the outside world. In addition, keratinocytes play an essential role in the initiation, maintenance, and regulation of epidermal immune responses by being part of the innate immune system responding to antigenic stimuli in a fast, nonspecific manner. Here, we describe a protocol for isolation of primary human keratinocytes from adult skin, and demonstrate that these cells respond to calcium-induced terminal differentiation, as measured by an increased expression of the differentiation marker involucrin. In addition, we show that the isolated keratinocytes are responsive to IL-1&#946;-induced activation of intracellular signaling pathways as measured by the activation of the p38 MAPK pathway. Taken together, we describe a method for isolation and culturing of primary human keratinocytes from adult skin. Because the keratinocytes are the predominant cell type in the epidermis, this method is useful to study molecular mechanisms in cutaneous biology in vitro.

The human skin acts as a first line of defense against the external environment. We present a method for isolating primary human keratinocytes from adult skin. These isolated keratinocytes are useful in numerous experimental setups, and are a highly suitable model for studying molecular mechanisms in cutaneous biology in vitro.

דור, Culturing של ראשי Keratinocytes האדם מן העור למבוגרים

The main function of keratinocytes is to provide the structural integrity of the epidermis, thereby maintaining a mechanical barrier to the outside world. ...

Identification of Skeletal Muscle Satellite Cells by Immunofluorescence with Pax7 and Laminin Antibodies

Immunofluorescence is an effective method that helps to identify different cell types on tissue sections. In order to study the desired cell population, antibodies for specific cell markers are applied on tissue sections. In adult skeletal muscle, satellite cells (SCs) are stem cells that contribute to muscle repair and regeneration. Therefore, it is important to visualize and trace the satellite cell population under different physiological conditions. In resting skeletal muscle, SCs reside between the basal lamina and myofiber plasma membrane. A commonly used marker for identifying SCs on the myofibers or in cell culture is the paired box protein Pax7. In this article, an optimized Pax7 immunofluorescence protocol on skeletal muscle sections is presented that minimizes non-specific staining and background. Another antibody that recognizes a protein (laminin) of the basal lamina was also added to help identify SCs. Similar protocols can also be used to perform double or triple labeling with Pax7 and antibodies for additional proteins of interest.

The precise identification of satellite cells is essential for studying their functions under various physiological and pathological conditions. This article presents a protocol to identify satellite cells on adult skeletal muscle sections by immunofluorescence-based staining.

זיהוי של שרירי השלד תאים הלוויין על-ידי Immunofluorescence עם Pax7 ו- Laminin נוגדנים

Immunofluorescence is an effective method that helps to identify different cell types on tissue sections. In order to study the desired cell population, ...

Computational Analysis of the Caenorhabditis elegans Germline to Study the Distribution of Nuclei, Proteins, and the Cytoskeleton

The Caenorhabditis elegans (C. elegans) germline is used to study several biologically important processes including stem cell development, apoptosis, and chromosome dynamics. While the germline is an excellent model, the analysis is often two dimensional due to the time and labor required for three-dimensional analysis. Major readouts in such studies are the number/position of nuclei and protein distribution within the germline. Here, we present a method to perform automated analysis of the germline using confocal microscopy and computational approaches to determine the number and position of nuclei in each region of the germline. Our method also analyzes germline protein distribution that enables the three-dimensional examination of protein expression in different genetic backgrounds. Further, our study shows variations in cytoskeletal architecture in distinct regions of the germline that may accommodate specific spatial developmental requirements. Finally, our method enables automated counting of the sperm in the spermatheca of each germline. Taken together, our method enables rapid and reproducible phenotypic analysis of the C. elegans germline.

Computational Analysis of the Caenorhabditis elegans Germline to Study the Distribution of Nuclei, Proteins, and the Cytoskeleton

We present an automated method for three-dimensional reconstruction of the Caenorhabditis elegans germline. Our method determines the number and position of each nucleus within the germline and analyses germline protein distribution and cytoskeletal structure.

ניתוח חישובית של Germline Caenorhabditis elegans ללמוד הפצה של גרעינים, חלבונים ו את שלד התא

The Caenorhabditis elegans (C. elegans) germline is used to study several biologically important processes including stem cell development, apoptosis, and ...

A Simplified and Efficient Method to Isolate Primary Human Keratinocytes from Adult Skin Tissue

Primary human keratinocytes isolated from fresh skin tissues and their expansion in vitro have been widely used for laboratory research and for clinical applications. The conventional isolation method of human keratinocytes involves a two-step sequential enzymatic digestion procedure, which has been proven to be inefficient in generating primary cells from adult tissues due to the low cell recovery rate and reduced cell viability. We recently reported an advanced method to isolate human primary epidermal progenitor cells from skin tissues that utilizes the Rho kinase inhibitor Y-27632 in the medium. Compared with the traditional protocol, this new method is simpler, easier, and less time-consuming, and increases epithelial stem cell yield and enhances their stem cell characteristics. Moreover, the new methodology does not require the separation of the epidermis from the dermis, and, therefore, is suitable for isolating cells from different types of adult tissues. This new isolation method overcomes the major shortcomings of conventional methods and is more suitable for producing large numbers of epidermal cells with high potency both for laboratory and for clinical applications. Here, we describe the new method in detail.

Here we present a protocol to efficiently isolate primary human keratinocytes from adult skin tissues. This method simplifies the conventional procedure by using the ROCK Inhibitor Y-27632 in the inoculation medium to spontaneously separate epidermal cells from dermal cells.

שיטה פשוטה ויעילה כדי לבודד Keratinocytes האנושי העיקרי של רקמת עור מבוגר

Primary human keratinocytes isolated from fresh skin tissues and their expansion in vitro have been widely used for laboratory research and for clinical ...

Generation of 3D Skin Organoid from Cord Blood-derived Induced Pluripotent Stem Cells

The skin is the body&#8217;s largest organ and has many functions. The skin acts as a physical barrier and protector of the body and regulates bodily functions. Biomimetics is the imitation of the models, systems, and elements of nature for the purpose of solving complex human problems1. Skin biomimetics is a useful tool for in vitro disease research and in vivo regenerative medicine. Human induced pluripotent stem cells (iPSCs) have the characteristic of unlimited proliferation and the ability of differentiation to three germ layers. Human iPSCs are generated from various primary cells, such as blood cells, keratinocytes, fibroblasts, and more. Among them, cord blood mononuclear cells (CBMCs) have emerged as an alternative cell source from the perspective of allogeneic regenerative medicine. CBMCs are useful in regenerative medicine because human leukocyte antigen (HLA) typing is essential to the cell banking system. We provide a method for the differentiation of CBMC-iPSCs into keratinocytes and fibroblasts and for generation of a 3D skin organoid. CBMC-iPSC-derived keratinocytes and fibroblasts have characteristics similar to a primary cell line. The 3D skin organoids are generated by overlaying an epidermal layer onto a dermal layer. By transplanting this 3D skin organoid, a humanized mice model is generated. This study shows that a 3D human iPSC-derived skin organoid may be a novel, alternative tool for dermatologic research in vitro and in vivo.

We propose a protocol that shows how to differentiate induced pluripotent stem cell-derived keratinocytes and fibroblasts and generate a 3D skin organoid, using these keratinocytes and fibroblasts. This protocol contains an additional step of generating a humanized mice model. The technique presented here will improve dermatologic research.

דור של תא צורב עור תלת-ממד של כבל דם-derived המושרה בתאי גזע Pluripotent

The skin is the body&#8217;s largest organ and has many functions. The skin acts as a physical barrier and protector of the body and regulates bodily ...