עבודה זו ממומנת על ידי קרן Krembil (הפעלה גרנט CMM). WX היה זוכת הפרס סטודנט קרלטון מרגריט סמית. NL קיבל מלגת בוגר אונטריו.

פרוטוקול זה אושרה על ידי הוועדה אכפת לי חיה ב אוניברסיטת טורונטו, תואם "מדריך כדי טיפול, שימוש של ניסיוני החיות" (2nd Edition, המועצה הקנדית על חיה על עצמך, 2017).
1. ניתוח פגיעה בחוט השדרה מינימלי
הערה: לפני הניתוח לוודא כי כל מכשירי ניתוח והחומרים סטריליים על ידי שיטות המתאימות (איור 1 א').
<ol><li>לבנות קשת תמיכה בית החזה על ידי סיכום 4 – 5 ריבועים של גזה, להדביק אותם ביחד באמצע כדי להשיג את גליל קבוע של גזה.</li>
	<li>הנח את העכבר בבית הבליעה אינדוקציה וליזום הרדמה עם 5% איזופלוריין. אשר היעדר רפלקס קמצוץ הבוהן לפני שתמשיך, כמו גם לאורך כל ההליך. ככל שהניתוח יכול לקחת יותר מ 30 דקות כדי להשלים, למטב לחשיפה איזופלוריין מינימלי (5 דקות ב-5%) ואת הזמן הנותר ב 2-3%.</li>
	<li>להעביר את העכבר קונוס האף מחובר למכונת הרדמה במינון תחזוקה של 2-3% איזופלוריין. השתמש קוצץ שיער כדי להסיר dorsum של החיה מן אמצע הגב עד הצוואר/האוזניים לחשוף אזור מלבני רחב של העור לניתוח פרווה.</li>
	<li>להעביר את העכבר נגינה stereotaxic על-ידי הצבת אפה קונוס האף המצורפת ייצוב הגולגולת עם האוזן ברים. לשמור איזופלוריין ב-5% במהלך ההשמה של הסורגים האוזן והתחתון חזרה ל- 2-3% ברגע העכבר מאובטחת במכשיר stereotaxic.</li>
	<li>להזריק תרופות להרגעה לפני הניתוח intraperitoneally — Meloxicam (2.0 mg/kg). בנדיבות להחיל סיכוך עין על גבי העיניים פתוח העכבר כדי למנוע לייבוש הקרנית כאשר תחת הרדמה.</li>
	<li>במקום קשת תמיכה בית החזה מתחת בבטן העכבר בעודכם מנסים לסדר את גוף העכבר ואת עמוד השדרה על ידי משיכת בקלילות על בסיס הזנב. השתמש מעבדה תיוג הקלטת כדי לאבטח את הזנב ואת כל האיברים המורחבת בעמדה כמו כוכב. ברגע מאובטח, לדחוף את קשת תמיכה בית החזה rostrally, מהבטן העכבר לכיוון בית החזה העליון — כדי לתמוך בעמוד השדרה החזי (איור 1B).</li>
	<li>להכין שדה כירורגי סטרילי וחיטוי באזור העור שנחתכו פרווה מוכן בשלב 1.3 עם 70% אתנול, ואחריו povidone יוד. חזור על פעמיים. החל תלוי כירורגי סטרילי כדי לשמור על שדה רחב סטרילי.</li>
	<li>באמצעות סכין #10 אזמל, לבצע חתך אנכי המקביל לציר האורך של בעל החיים מנקודת אמצע של שתי השכמות עקמת בעמוד השדרה החזי. . משכי את העור כדי לחשוף רקמה רכה, את קווי המתאר של עמוד השדרה (איור 1C).</li>
	<li>לזהות את הגבול התחתון של משטח השמן suprascapular (זה demarcates את רמת בחוליות של T4/5). עם הלהב #10 באותו, בזהירות, אבל עם כוח, לחתוך לאורך שני צידי העצם בחוליות T5-T8/9 כדי לנתק את הגידים שרירי הגב מן העמודה.</li>
	<li>הכנס השיניים של רטרקטורים האתרים החתך משני צדי עמוד השדרה. להתאים את החשיפה על ידי הרחבת רטרקטורים להעלות מספיק את עמוד השדרה מבלי יותר מדי עומס על הרבדים שקועה שריר (איור 1D).</li>
	<li>תחת מיקרוסקופ כירורגי, בזהירות לנקות את השריר שיורית, רקמות רכות אחרות המכסים השדרה כדי לחשוף את העצם בחוליות (איור 1E). לזהות את החוליה זה יוסרו על ידי לופתות את תהליכים קוצניים של החוליות עם מלקחיים במיתולגיות והזזתה למעלה ולמטה. הערה: זה אמור לאפשר זיהוי של המפרקים בין-חולייתי, לחשוף את הפתחים קטנים (בין-חולייתי foramina) מתחת החוליות עניין.</li>
	<li>להכניס ראש אחד של המספריים קהות מעוקל משני צידי נקב בין-חולייתי חשוף, סימטרית כדי הנדן בחוליות כדי להוציא החוצה, וחותכים את המפרקים בין-חולייתי חיבור דו צדדיים.</li>
	<li>הרם את הנדן כלפי מעלה, לחתוך את הקובץ המצורף העליון של הנדן לבודד ולהסיר את העצם. הערה: זו תחשוף את קרום השדרה שלם המכיל את חוט השדרה (איור 1F). אולי יש עודף דימום אשר יכול להיות נשלט על ידי הצבת חתוכים 1 ס"מ על 1 ס"מ גזה על האזורים הנגועים ו/או לשטוף עם PBS סטרילי.</li>
	<li>עם הווריד של קו האמצע הגבי משמש נקודת ציון, להוסיף מוט כפוף 45° של קצה המחט 30 G (עם מחט המשופעת כלפי מעלה) לתוך השטח דורסולטרלי של חוט השדרה (כ 1 מ מ עמוקה)-כ-0.5 מ מ לרוחב כדי משני צידי הקו האמצעי.</li>
	<li>להזיז את המחט ~ 2 מ מ מ סימטרית rostral (מקביל האמצע) כך לכל אורכה של השיקוע של המחט מוכנס לתוך החוט. הסר את המחט על-ידי חזרה על דרך הנתיב של הפוסט (איור 1 ג'י). הערה: צריך להיות אין דימום, אך ניתן לראות נפיחות של הרקמה בעמוד השדרה בשלב זה.</li>
	<li>כדי לסגור את הפצע, להסיר את המדחק, תפר את שרירי הגב משני צדי הפגיעה יחד האמצע באמצעות בתפר שנספג 6-0. השתמש 4-0 בתפר משי סטרילי לסגור לאחר מכן העור שמעליה.</li>
	<li>אנטיביוטית חלות על החלק העליון של העור sutured שטחית כדי למנוע זיהום לאחר הניתוח באמצעות קצה ספוגית כותנה. לנהל כאבים לאחר הניתוח של 0.1 mg/kg של הבופרנורפין subcutaneously יחד עם נוזלים (1 מ"ל של תמיסת הרטמן).</li>
	<li>כבה את מכשיר אידוי איזופלוריין ואת חמצן. הסר את העכבר המכשיר stereotaxic והמקום בתוך כלוב נקי ללא מצע.</li>
	<li>הנח את העכבר בכלוב כ 30 ס מ מן מנורת חימום ההתאוששות מן ההרדמה והתנהגות צג בעקבות ההתעוררות. העכבר צריך להתעורר בתוך 5-10 דקות, יש את הפונקציה הינד-האיבר עם paresis אפשרי ו/או חולשה הזנב עם התעוררותו.</li>
	<li>עקוב אחר אופן ההתנהגות של העכבר מעל בימים הקרובים ולספק טיפול לאחר הניתוח, משככי כאבים (קרי, מחית, lactated פתרון נוזלים תת-עורי, 0.1 מ"ג/ק"ג. הבופרנורפין רינגר 2 x מדי יום subcutaneously, 2 – 3 ימים ומעקב משקל מתאים ) בהתאם לתקנות מתקן בעלי חיים המקומי, על בסיס אישי כמו שחזור עשויות להשתנות.</li>
</ol>2. Neurosphere Assay לנתיחה
הערה: בצע את ההליכים תרביות רקמה סטרילי המתאים לכל אורך.
<ol><li>פתרון אנזימטי הכנה
	<ol>
<li>להוסיף 32 מ"ל מאוזנת מלח פתרון (EBSS של ארל) אלבומין ovomucoid מעכב בקבוק זכוכית המכיל ובעדינות מערבולת עד התפרקה.</li>
		<li>הוסף 5 מ של EBSS בקבוקון זכוכית פפאין מראש מנות אישיות ומניחים בתוך אמבט מים 37 ° C כדי להמיס. הפתרון יהיה לנקות (פתרון 1).</li>
		<li>קח 500 µL של EBSS ולהוסיף DNase מראש מנות אישיות שאני זכוכית המבחנה בריכוז של 1 מ"ג/מ"ל (2 פתרון). לערבב בעדינות על ידי הטיית המבחנה הלוך ולהוסיף µL 250 של תערובת זו פתרון 1. הערה: כל הפתרונות גרם (פתרון 1 ו- 2) מספיקים לצורך עיבוד של שני חלקי הרקמה. אם עיבוד חלקים נוספים של רקמות, להכיל עם הכנה פתרון נוסף.</li>
	</ol></li>
	<li>ניתוח והכנה של רקמות
	<ol>
<li>במקום למחוק מעבדה טבולים איזופלוריין לתוך הכלוב העכבר ולאפשר 2-3 דקות על האדים לחלוטין עזים ומתנגד העכבר. נוקאאוט הבאים, להסיר את העכבר מן הכלוב ואשר העדרו של רפלקס הבוהן-קורט.</li>
		<li>לבצע פריקה צוואר הרחם עם חפץ מתכת קהה (כלומר, כרטיס כלוב מתכת) כדי להרדימו. תרסיס החיה לאללה מהצוואר שלו אל אמצע הגב בנדיבות עם 70% אתנול.</li>
		<li>בבסיס הגולגולת, להשתמש במספריים כדי לחתוך את הראש ולמחוק לתוך שקית ביו. עושים חתך קו האמצע של העור לאורך כל הגב כדי לחשוף את השרירים ואת העצם בחוליות מתאר (איור 2 א).</li>
		<li>הרם את האספקט המדיאלי של כל עצם השכם (כלומר., השכמה — המזוהה על-ידי המכסים fat pad), להשתמש במספריים לחתוך משם רקמות רכות (בין חוליות השכם). נפרדת לחלוטין לחשוף את עמוד השדרה המשמש כבסיס.</li>
		<li>בעקבות העקמומיות של עמוד השדרה, להכניס אותו זוג מספריים הצמצם בית החזה העליון, לבודד את עמוד השדרה על ידי חיתוך משם צלעות המחוברים השרירים, האיברים הפנימיים (איור 2B).</li>
		<li>להכניס מספריים סימטרית בחוליות נקב/פתיחת וחותכים את המפרקים בין-חולייתי משני צדי סחוס (המשטח הגבי). לקחת את הטיפול בפרט כדי לא לגרום נזק חוט שלם. המשך בתהליך זה עד הרמה הרצויה ו/או אורך החוט חשוף.</li>
		<li>לחתוך בזהירות את spinal nerve(s) הרחבת רוחבית של החוט לפני העברת הרקמה חוט השדרה לתוך צלחת פטרי עם נוזל מוחי שדרתי מלאכותי קבוע. שמור את הדגימה על קרח (איור 2C).</li>
		<li>תחת מיקרוסקופ חיתוך, לחתוך הרקמה חוט השדרה כדי לכלול ~ 2 מ מ rostral וסימטרית לאתר פציעה. להשתמש שני זוגות של מלקחיים להפריד בעדינות את הכבל 2 חצאים longitudinally לאורך סדקים הגבי ו הגחון (איור 2C").</li>
		<li>עם microscissors, לגזור בחומר הלבן דורסולטרלי פצועים. מניחים את החלק לתוך צינור חרוטי 15 מ"ל.</li>
		<li>חצי חוט השדרה למטה עם מלקחיים, אוחזת להקניט ולהסיר חומר לבן באמצעות עוד זוג מלקחיים בסדר לאורך היקף rostrocaudal של חוט השדרה כדי לבודד את האזור הרצוי periventricular. חזור על החצי השני של חוט השדרה.</li>
		<li>המקום פיסות רקמת periventricular לתוך צינורות חרוט נפרד 15 מ"ל. השתמש microscissors, בעדינות מינצ הרקמה כנגד דפנות הצינורות חרוט. הערה: רקמת דיסוציאציה שינויים הם פפאין דיסוציאציה מערכת פרוטוקול23 ו רקמת שתואר לעיל הכנת נהלים24.</li>
		<li>להוסיף 2.5 מ של פתרון חדש 1 (שלב 2.1.3) דגימת הרקמות ומניחים על כיסא נדנדה ב 37 מעלות צלזיוס למשך 30 דקות.</li>
		<li>בעדינות triturate הרקמה בתמיסה עם טיפ פיפטה 1,000 µL. Centrifuge התליה תא מעונן ב x 300 גרם במשך 5 דקות ב- RT.</li>
		<li>להכין 3 פתרון עם 2.7 מיליליטר של ארל מאוזנת תמיסת מלח, µL 300 של ovomucoid מעכב פתרון (שלב 2.1.1) ו- µL 150 של DNase אני פתרון (שלב 2.1.3).</li>
		<li>למחוק את תגובת שיקוע מ שלב (שלב 2.2.13), resuspend ב 1.5 מ של פתרון 3 מהשלב הקודם (שלב 2.2.14).</li>
		<li>שכבת ההשעייה תא חדש (שלב 2.2.15) מעל 5 מ של ovoimucoid פתרון מעכב (שלב 2.1.1) 15מל חרוט צינור כדי ליצור מעבר הדרגתי צפיפות מקוטע. צנטריפוגה ב x 300 גרם במשך 5 דקות ב- RT.</li>
		<li>למחוק את תגובת שיקוע, resuspend ב 2 מ"ל של המדיה neurobasal. צנטריפוגה ב x 300 גרם במשך 3 דקות ב- RT.</li>
		<li>למחוק את תגובת שיקוע, resuspend ב 1 מ"ל של המדיה neurobasal. לסנן את המתלים. באמצעות מסננת תא 20 מיקרומטר ואחריו 4 מ"ל של מדיה עבור הנפח הכולל של 5 מ.</li>
	</ol></li>
	<li>יופיצ
	<ol>
<li>להכין תרבות המדיה לצמיחה neurosphere על-ידי שכשהם neurobasal מדיה עם גורם הגדילה באפידרמיס (20 ng/mL) / הצמיחה פיברובלסט גורם (20 ng/mL) / הפרין (2 µg/mL) [עבור NSCs סופית] או leukemina מעכבות פקטור (10 ng/mL) [עבור NSCs פרימיטיבי]. להוסיף 10 מ של מדיה או לתוך בקבוקון תרביות רקמה 25 מ.</li>
		<li>להשתמש hemocytometer וצבע Trypan blue כדי לחשב את מספר התאים ההשעיה (שלב 2.2.18)25. ברגע מחושב, להוסיף תאים מבחנות תרביות רקמה המבושלות (שלב 2.3.1) כדי צפיפות המשובטים של 10 תאים/µL ומקום תרביות רקמה את הבקבוק עם תאים נוספת לתוך החממה במשך 24 שעות ביממה (37 מעלות צלזיוס, 95% לחות, 5% CO2). הערה: דוגמה לשיטת הספירה הוא כדלקמן: לוקח 10 µL של התא ההשעיה, לערבב עם µL 10 של צבע Trypan blue. להוסיף 10 µL של תערובת זו hemocytometer. תחת 10 X בסיוע מיקרוסקופ אור, לספור את המספרים של תאים חיים, לסכם את כל התאים ספרתי בתוך 4 הרביעים 4 x 4. להשתמש בנוסחה: 100,000/[(X cells/4) x 2 x 10 x 1,000] כדי לתת נפח תא ההשעיה כדי להיות מצופה את הבקבוק תרביות רקמה 25 מ ל כל אחד כדי להבטיח המשובטים צפיפות (10 תאים µL).</li>
		<li>לאחר 24 שעות, בעדינות מערבולת את הבקבוקון ויוצקים תוכן לתוך צינור חרוטי 15 מ"ל. צנטריפוגה ב x 300 גרם במשך 5 דקות ב- RT.</li>
		<li>למחוק את תגובת שיקוע והשהה מחדש את התאים 1 – 2 מ"ל של מדיה neurobasal טריים.</li>
		<li>חזור על שלב 2.3.2 כדי לספור את מספר התאים בתאים ההשעיה וצלחת -צפיפות המשובטים בצלחת תרביות רקמה 24-ובכן המכיל 500 µL כל המדיה המתאימים mitogen בתוספת שלהם (EFH לצמיחה לבטחון לאומי סופית) ו- LIF לצמיחה לבטחון לאומי פרימיטיבי. הערה: השתמש בנוסחה מותאם (5,000 [X / תאים/4) x 2 x 10 x 1,000) לחישוב הנפח של התליה תא כדי להיות מצופה בכל טוב המכיל 500 µL של התקשורת.</li>
		<li>מניחים צלחות המכיל תאים בחממה (37 מעלות צלזיוס, 95% לחות, 5% CO2) לגדול במשך 7 ימים.</li>
	</ol></li>
	<li>סופר
	<ol>
<li>לאחר 7 ימים בתרבות, להסיר את הלוחות ולהציג תחת מיקרוסקופ אור. לכמת neurospheres על ידי ספירת מושבות כדוריות הנמצאות > 80 מיקרומטר בקוטר של תרבויות dNSCs ו > קוטר 50 מיקרומטר pNSCs תרבויות. הערה: אם רצונך בכך, neurospheres יכול להיות עוד יותר passaged26 או הבדיל. אם התאים אינם נחוצים, תשליך על-ידי הוספת מואצת מימן על-חמצני הבארות (כ – 1 מ"ל) במשך 20 דקות כך הצבע של המדיום לצהוב. . ואז להשליך...</li>
	</ol></li>
</ol>

<ol>
	<li>Johansson, C. B., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Identification+of+a+neural+stem+cell+in+the+adult+mammalian+central+nervous+system.">Identification of a neural stem cell in the adult mammalian central nervous system.</a> Cell. 96 (1), 25-34 (1999).</li><li>McKay, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Stem+cells+in+the+central+nervous+system.">Stem cells in the central nervous system.</a> Science. 276 (5309), 66-71 (1997).</li><li>Gage, F. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Mammalian+neural+stem+cells.">Mammalian neural stem cells.</a> Science. 287 (5457), 1433-1438 (2000).</li><li>Temple, S., Alvarez-Buylla, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Stem+cells+in+the+adult+mammalian+central+nervous+system.">Stem cells in the adult mammalian central nervous system.</a> Current Opinion in Neurology. 9 (1), 135-141 (1999).</li><li>Zhang, R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Activated+neural+stem+cells+contribute+to+stroke-induced+neurogenesis+and+neuroblast+migration+toward+the+infarct+boundary+in+adult+rats.">Activated neural stem cells contribute to stroke-induced neurogenesis and neuroblast migration toward the infarct boundary in adult rats.</a> Journal Of Cerebral Blood Flow And Metabolism. 24 (4), 441-448 (2004).</li><li>Komitova, M., Mattsson, B., Johansson, B. B., Eriksson, P. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Enriched+environment+increases+neural+stem/progenitor+cell+proliferation+and+neurogenesis+in+the+subventricular+zone+of+stroke-lesioned+adult+rats.">Enriched environment increases neural stem/progenitor cell proliferation and neurogenesis in the subventricular zone of stroke-lesioned adult rats.</a> Stroke. 36 (6), 1278-1282 (2005).</li><li>Faiz, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Adult+neural+stem+cells+from+the+subventricular+zone+give+rise+to+reactive+astrocytes+in+the+cortex+after+stroke.">Adult neural stem cells from the subventricular zone give rise to reactive astrocytes in the cortex after stroke.</a> Cell Stem Cell. 17 (5), 624-634 (2015).</li><li>Ren, Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Ependymal+cell+contribution+to+scar+formation+after+spinal+cord+injury+is+minimal,+local+and+dependent+on+direct+ependymal+injury.">Ependymal cell contribution to scar formation after spinal cord injury is minimal, local and dependent on direct ependymal injury.</a> Science Reports - UK. 7, (2017).</li><li>Mothe, A. J., Tator, C. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Proliferation,+migration,+and+differentiation+of+endogenous+ependymal+region+stem/progenitor+cells+following+minimal+spinal+cord+injury+in+the+adult+rat.">Proliferation, migration, and differentiation of endogenous ependymal region stem/progenitor cells following minimal spinal cord injury in the adult rat.</a> Neuroscience. 131 (1), 177-187 (2005).</li><li>Thuret, S., Moon, L. D., Gage, F. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Therapeutic+interventions+after+spinal+cord+injury.">Therapeutic interventions after spinal cord injury.</a> Nature Reviews Neuroscience. 7 (8), 628-643 (2006).</li><li>Bethea, J. R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Systemically+administered+interleukin-10+reduces+tumor+necrosis+factor-alpha+production+and+significantly+improves+functional+recovery+following+traumatic+spinal+cord+injury+in+rats.">Systemically administered interleukin-10 reduces tumor necrosis factor-alpha production and significantly improves functional recovery following traumatic spinal cord injury in rats.</a> Journal of Neurotrauma. 16 (10), 851-863 (1999).</li><li>Donnelly, D. J., Popovich, P. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Inflammation+and+its+role+in+neuroprotection,+axonal+regeneration+and+functional+recovery+after+spinal+cord+injury.">Inflammation and its role in neuroprotection, axonal regeneration and functional recovery after spinal cord injury.</a> Experimental Neurology. 209 (2), 378-388 (2008).</li><li>Cummings, B. J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Human+neural+stem+cells+differentiate+and+promote+locomotor+recovery+in+spinal+cord-injured+mice.">Human neural stem cells differentiate and promote locomotor recovery in spinal cord-injured mice.</a> Proceedings of the National Academy of Sciences USA. 102 (39), 14069-14074 (2005).</li><li>Beattie, M. S., Hermann, G. E., Rogers, R. C., Bresnahan, J. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Cell+death+in+models+of+spinal+cord+injury.">Cell death in models of spinal cord injury.</a> Progress in Brain Research. 137, 37-47 (2002).</li><li>Metz, G. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Validation+of+the+weight-drop+contusion+model+in+rats:+a+comparative+study+of+human+spinal+cord+injury.">Validation of the weight-drop contusion model in rats: a comparative study of human spinal cord injury.</a> Journal of Neurotrauma. 17 (1), 1-17 (2000).</li><li>Faulkner, J. R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Reactive+astrocytes+protect+tissue+and+preserve+function+after+spinal+cord+injury.">Reactive astrocytes protect tissue and preserve function after spinal cord injury.</a> Journal of Neuroscience. 24 (9), 2143-2155 (2004).</li><li>Cheriyan, T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Spinal+cord+injury+models:+a+review.">Spinal cord injury models: a review.</a> Spinal Cord. 52 (8), 588-595 (2014).</li><li>Deleyrolle, L. P., Reynolds, B. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Isolation,+expansion,+and+differentiation+of+adult+Mammalian+neural+stem+and+progenitor+cells+using+the+neurosphere+assay.">Isolation, expansion, and differentiation of adult Mammalian neural stem and progenitor cells using the neurosphere assay.</a> Neural Cell Transplantation: Methods and Protocols. , 91-101 (2009).</li><li>Singec, I., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Defining+the+actual+sensitivity+and+specificity+of+the+neurosphere+assay+in+stem+cell+biology.">Defining the actual sensitivity and specificity of the neurosphere assay in stem cell biology.</a> Nature Methods. 3 (10), (2006).</li><li>Mignone, J. L., Kukekov, V., Chiang, A. S., Steindler, D., Enikolopov, G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Neural+stem+and+progenitor+cells+in+nestin-GFP+transgenic+mice.">Neural stem and progenitor cells in nestin-GFP transgenic mice.</a> The Journal of Comparative Neurology. 469 (3), 311-324 (2004).</li><li>Xu, W., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Myelin+basic+protein+regulates+primitive+and+definitive+neural+stem+cell+proliferation+from+the+adult+spinal+cord.">Myelin basic protein regulates primitive and definitive neural stem cell proliferation from the adult spinal cord.</a> Stem Cells. 35 (2), 485-496 (2017).</li><li>Sachewsky, N., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Primitive+neural+stem+cells+in+the+adult+mammalian+brain+give+rise+to+GFAP-expressing+neural+stem+cells.">Primitive neural stem cells in the adult mammalian brain give rise to GFAP-expressing neural stem cells.</a> Stem Cell Reports. 2 (6), 810-824 (2014).</li><li>Mothe, A., Tator, C. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Isolation+of+neural+stem/progenitor+cells+from+the+periventricular+region+of+the+adult+rat+and+human+spinal+cord.">Isolation of neural stem/progenitor cells from the periventricular region of the adult rat and human spinal cord.</a> Journal of Visualized Experiments. (99), (2015).</li><li>Absher, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Hemocytometer+counting.">Hemocytometer counting.</a> Tissue Culture. , 395-397 (1973).</li><li>Azari, H., Rahman, M., Sharififar, S., Reynolds, B. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Isolation+and+expansion+of+the+adult+mouse+neural+stem+cells+using+the+neurosphere+assay.">Isolation and expansion of the adult mouse neural stem cells using the neurosphere assay.</a> Journal of Visualized Experiments. (45), (2010).</li><li>Xiong, L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Preconditioning+with+isoflurane+produces+dose-dependent+neuroprotection+via+activation+of+adenosine+triphosphate-regulated+potassium+channels+after+focal+cerebral+ischemia+in+rats.">Preconditioning with isoflurane produces dose-dependent neuroprotection via activation of adenosine triphosphate-regulated potassium channels after focal cerebral ischemia in rats.</a> Anesthesia and Analgesia. 96 (1), 233-237 (2003).</li><li>Metz, G. A., Merkler, D., Dietz, V., Schwab, M. E., Fouad, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Efficient+testing+of+motor+function+in+spinal+cord+injured+rats.">Efficient testing of motor function in spinal cord injured rats.</a> Brain Research. 883 (2), 165-177 (2000).</li><li>Hamers, F. P., Koopmans, G. C., Joosten, E. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=CatWalk-assisted+gait+analysis+in+the+assessment+of+spinal+cord+injury.">CatWalk-assisted gait analysis in the assessment of spinal cord injury.</a> Journal of Neurotrauma. 23 (3-4), 537-548 (2006).</li></ol>

המחברים אין לחשוף.

במהלך ההליך הכירורגי, ישנם כמה צעדים קריטי שבו החוקר צריך תשומת לב מיוחדת על מנת להשיג תוצאות אופטימליות, למזער את השתנות בין בעלי חיים. חייבים להקפיד עם ההרדמה בשאיפה (איזופלוריין) במהלך הניתוח כפי ההרדמה הוכח יש אפקטים neuroprotective עם חשיפה ממושכת27. בהתאם לכך, לומדים יכולת ההתחד?...

מערכת העצבים המרכזית מכילה את subpopulation של תאי גזע עצמי המתחדש, multipotent, כי יש את היכולת להצמיח כל תא עצבי בוגרת אחרת סוגים1,2,3,4. אלה בתאי גזע עצביים (NSCs) שוכנים בתוך נישות מיוחדות במוח ובחוט השדרה, יכול להיות מופעל בעקבות פגיעה כדי להתרבות, להעביר וכדי להבדיל לתוך התאים העצביים בוגרים. NSCs, הצאצאים שלהם הוכחו להעברת אתר פגיעה פגיעה בקליפת המוח מודלים5,6. במוח, NSCs הוכחו להגר מן החדרים הצדדיים האתר של פגיעה בו הם להתמיין האסטרוציטים שתורמים היווצרות צלקת גליה7. בחוט השדרה, עם זאת, מחקרים מעטים נעשו כדי לשאול אם ניתן לשלוט NSCs אנדוגני באותו אלה כדי לקדם את ההחלמה בעקבות פגיעה בחוט השדרה. אכן, אין כיום ויכוח הפעלת הבריכה תאי גזע בחוט השדרה דורשת נזק פיזי ישיר של הגומחה periventricular רירית התעלה המרכזית8 או אם הנזק השדרה כבל parenchyma (עוזב את הגבעול גומחת תאי שלם) מספיקה להפעיל את NSCs אנדוגני9.
היו בשימוש מספר מודלים פציעה (SCI) בחוט השדרה ללמוד הפתופיזיולוגיה של פציעה אקוטי וכרוני. מודלים אלה שימשו גם לבדוק טיפולים פוטנציאליים לטיפול SCI דרך neuroprotection, immunomodulation, המתפתח תא השתלת/החלפה אסטרטגיות10,11,13. המודלים הנוכחיים כוללים פציעות דחיסה ו/או החבורה, אשר לגרום גירעונות פונקציונלי בקנה מידה גדול כמו גם נגעים נרחבים cavitations כבל ה-14,15. צלקות גליה הנובעת יכולה להקיף מספר מקטעים בעמוד השדרה יחד עם הרוב המכריע של ההיקף/הרוחב של השדרה ה-16. לכן, בעוד אלו הדגמים הם הרלוונטית קלינית, הם יכולים להרשות לעצמם אתגרים משמעותיים כדי ללמוד את התגובה של NSCs אנדוגני בעקבות פגיעה. ישנם דגמים כימי של פציעה זה ניתן להתאים לגרום צורות קלות של פציעה יכול לתת לי את התעלה המרכזית17. עם זאת, סוגים אלה של פציעה להתמקד demyelination המשויך SCI, הן לא דוגמניות הרלוונטית קלינית נזק גופני ו/או מכני הקשורים לביוטכנולוגיה טראומטי
כדי לטפל המגבלות של המודלים הנוכחיים של פציעה, אנחנו הסתגלו מחט מסלול מינימלי SCI מודל, שפותחה במקור בשנת החולדה9, עבור היישום במודל עכברים בוגרים. המודל שלנו פגיעה מותאם ניתן ליצור פגיעה עקבית של אזור דורסולטרלי של חוט השדרה העכבר, לוותר על התעלה המרכזית-level(s) של פגיעה. היתרון של מודל זה הוא כי הוא מאפשר המחקר של המועצה לבטחון לאומי קינטיקה בעקבות פציעות והעברה רדיאלי הפוטנציאליים שלהם לאתר של פציעה. השימוש של מודל עכבר מאפשרת גם שימוש העכברים הטרנסגניים המאפשרים מעקב אחר שושלת היוחסין של NSCs אנדוגני, הצאצאים שלהם בעקבות פגיעה. וצריך להעריך את המאפיינים של NSCs עוד יותר באמצעות הטופס ששונתה של במבחנה neurosphere וזמינותו שהוצגה במאמר פרוטוקול זה.
הבדיקה neurosphere היא במבחנה המושבה יוצרי assay המתיר את ניתוקה של NSCs בנוכחות mitogens. -ציפוי המשובטים צפיפויות, NSCs בודדים להתרבות כדי להצמיח לתרשים כדורית מושבות תאים מורכבות של subpopulation קטן של NSCs, הרוב המכריע של אבות18,19. בפרוטוקול שלנו, נדגים את ניתוקה של שני NSCs נפרדים, הקשורים lineally מאזור periventricular של חוט השדרה — בתנאים בסיסית, בעקבות המודל שלנו-SCI מינימלי. מהווים הסופית עצבית גזע nestin אקספרס תאים (dNSCs) ואת החלבון חומצי fibrillary גליה (GFAP), גדלים בנוכחות גורם הגדילה באפידרמיס (EGF), גורם הצמיחה פיברובלסט (FGF) והפרין (הנקרא יחד EFH)20. DNSCs אלה הם נדירים בחוט השדרה תמימה, והוליד מעט מאוד neurospheres במבחנה. עם זאת, אנו מראים כי dNSCs מופעלים בעקבות SCI מינימלי, מרחיבה את המספרים של neurospheres מבודד את אזור periventricular21. תאי גזע עצביים פרימיטיבי (pNSCs) הם הזרם של dNSCs בשושלת תאי גזע עצביים. pNSCs ונדירה, אקספרס רמות נמוכות של דה מרקר pluripotency Oct4, והם לוקמיה מעכבות פקטור (LiF) מגיב22. pNSCs לא עושים בצורת neurospheres כאשר מבודד מן חוט השדרה העכבר למבוגרים בשל נוכחותם של המיאלין הבסיסי חלבון (MBP) בתרבויות הראשי; עם זאת, pNSC neurospheres ניתן לבודד של MBP עכברים לקוי, מספרם הפציעה הבאה המורחב — בדומה dNSCs21. לבסוף, נראה כי נגזר dNSC neurospheres ניתן לבודד מהאתר של פגיעה ב מוקדם פעמים בעקבות לביוטכנולוגיה מינימלי ממצאים אלה מדגימים שלנו דגם פציעה, מבחני יכול להעריך את מאפייני ההפעלה של periventricular NSCs כגון היכולת שלהם להתרבות ולהעביר בתגובה לפציעה.

<table border="0" cellpadding="0" cellspacing="0" width="815">
	<tbody>
		<tr height="22">
			<td height="22" style="height:22px;width:203px;">Agricola Retractor</td>
			<td style="width:201px;">Fine Science Tools</td>
			<td style="width:197px;">17005-04</td>
			<td style="width:215px;"></td>
		</tr>
		<tr height="43">
			<td height="43" style="height:43px;width:203px;">Moria Vannas-Wolff Spring Scissors (Curved)</td>
			<td style="width:201px;">Fine Science Tools</td>
			<td style="width:197px;">15370-50</td>
			<td style="width:215px;">Customize when ordering to get blunted tips</td>
		</tr>
		<tr height="43">
			<td height="43" style="height:43px;width:203px;">Graefe Forceps (Straight, 1x2 Teeth)</td>
			<td style="width:201px;">Fine Science Tools</td>
			<td style="width:197px;">11053-10</td>
			<td style="width:215px;"></td>
		</tr>
		<tr height="43">
			<td height="43" style="height:43px;width:203px;">Extra Fine Graefe Forceps (Curved, Serrated)</td>
			<td style="width:201px;">Fine Science Tools</td>
			<td style="width:197px;">11152-10</td>
			<td style="width:215px;">Or any other forceps for suturing</td>
		</tr>
		<tr height="43">
			<td height="43" style="height:43px;width:203px;">Hartman Hemostats (Straight)</td>
			<td style="width:201px;">Fine Science Tools</td>
			<td style="width:197px;">13002-10</td>
			<td style="width:215px;">Or any other appropriate for suturing</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:203px;">Scalpel Handle #3</td>
			<td style="width:201px;">Fine Science Tools</td>
			<td style="width:197px;">10003-12</td>
			<td style="width:215px;">Or any other appropriate</td>
		</tr>
		<tr height="64">
			<td height="64" style="height:64px;width:203px;">Hair clippers</td>
			<td style="width:201px;">amazon.ca</td>
			<td style="width:197px;">https://www.amazon.ca/Wahl-Professional-8685-Classic-Clipper/dp/B00011K2BA</td>
			<td style="width:215px;">or any other appropriate</td>
		</tr>
		<tr height="22">
			<td height="22" style="height:22px;width:203px;">Stereotaxic instrument</td>
			<td style="width:201px;">Stoeling</td>
			<td align="right">51500</td>
			<td style="width:215px;">or any other appropriate</td>
		</tr>
		<tr height="22">
			<td height="22" style="height:22px;width:203px;">Buprenorphine</td>
			<td style="width:201px;"></td>
			<td style="width:197px;"></td>
			<td>or any appropirate sanctioned my animal care facility</td>
		</tr>
		<tr height="43">
			<td height="43" style="height:43px;width:203px;">Meloxicam</td>
			<td style="width:201px;"></td>
			<td style="width:197px;"></td>
			<td style="width:215px;">or any appropriate sanctioned by animal care facility</td>
		</tr>
		<tr height="64">
			<td height="64" style="height:64px;width:203px;">Tears Naturale P.M.</td>
			<td style="width:201px;">Alcon</td>
			<td style="width:197px;">https://www.amazon.ca/Alcon-Tear-Gel-Liquid-Eye-Gel/dp/B00HHXGUXE</td>
			<td style="width:215px;">or any other appropriate</td>
		</tr>
		<tr height="43">
			<td height="43" style="height:43px;width:203px;">Isoflurane</td>
			<td style="width:201px;">Baxter International Inc</td>
			<td style="width:197px;">DIN 02225875</td>
			<td style="width:215px;">or any other appropriate for anesthesia</td>
		</tr>
		<tr height="168">
			<td height="168" style="height:168px;width:203px;">Q-tips Cottom Swabs</td>
			<td style="width:201px;">amazon.ca</td>
			<td style="width:197px;">https://www.amazon.ca/Q-Tips-Cotton-Swabs-500-Count/dp/B003M5UO6U/ref=pd_lpo_vtph_194_bs_tr_img_1/140-7113119-8364127?_encoding=UTF8&#38;psc=1&#38;refRID=JC16N542KVRF2N62N3DS</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:203px;">Cotton Gauze</td>
			<td style="width:201px;">Fisher Scientific</td>
			<td>13-761-52</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:203px;">30G Needles</td>
			<td style="width:201px;">Becton Dickinson</td>
			<td align="right" style="width:197px;">305106</td>
			<td>For Injury</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:203px;">25G Needles</td>
			<td style="width:201px;">Becton Dickinson</td>
			<td align="right" style="width:197px;">305122</td>
			<td>For Drug injections</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:203px;">1mL Syringes</td>
			<td style="width:201px;">Becton Dickinson</td>
			<td align="right" style="width:197px;">3090659</td>
			<td>for drug injections</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:203px;">3mL Syringes</td>
			<td style="width:201px;">Becton Dickinson</td>
			<td align="right" style="width:197px;">309657</td>
			<td>for fluid injections</td>
		</tr>
		<tr height="24">
			<td height="24" style="height:24px;width:203px;">4-0 Suture</td>
			<td style="width:201px;">uoftmedstore.com</td>
			<td>2297-VS881</td>
			<td>for skin suturing</td>
		</tr>
		<tr height="24">
			<td height="24" style="height:24px;width:203px;">6-0 Suture</td>
			<td style="width:201px;">uoftmedstore.com</td>
			<td>VS889</td>
			<td>for muscle suturing</td>
		</tr>
		<tr height="22">
			<td height="22" style="height:22px;width:203px;">Polysporin ointment</td>
			<td style="width:201px;">amazon.ca</td>
			<td align="right">102051</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:203px;">Isoflurane Vaporizer</td>
			<td style="width:201px;">VetEquip</td>
			<td align="right" style="width:197px;">901806</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:203px;">15mL conical tubes</td>
			<td style="width:201px;">ThermoFisher</td>
			<td></td>
			<td>Any appropriate</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:203px;">Petri Dishes</td>
			<td style="width:201px;">ThermoFisher</td>
			<td style="width:197px;"></td>
			<td>any appropriate</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:203px;">Trypan Blue</td>
			<td style="width:201px;">ThermoFisher</td>
			<td style="width:197px;"></td>
			<td>Any</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:203px;">Hemocytometer</td>
			<td style="width:201px;">ThermoFisher</td>
			<td style="width:197px;"></td>
			<td>Any appropriate</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:203px;">Centrifuge</td>
			<td style="width:201px;">ThermoFisher</td>
			<td style="width:197px;"></td>
			<td>Any appropriate</td>
		</tr>
		<tr height="22">
			<td height="22" style="height:22px;width:203px;">Standard Dissection Tools</td>
			<td style="width:201px;">Fine Science Tools</td>
			<td style="width:197px;"></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="22">
			<td height="22" style="height:22px;width:203px;">Dissection Microscope</td>
			<td style="width:201px;">Zeiss</td>
			<td style="width:197px;">Stemi 2000</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="22">
			<td height="22" style="height:22px;width:203px;">Counting Microscope</td>
			<td style="width:201px;">Olympus</td>
			<td style="width:197px;">CKX41</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="22">
			<td height="22" style="height:22px;width:203px;">Neural Basal-A Medium</td>
			<td style="width:201px;">Invitrogen</td>
			<td style="width:197px;">10888-022</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="22">
			<td height="22" style="height:22px;width:203px;">B27</td>
			<td style="width:201px;">Invitrogen</td>
			<td style="width:197px;">17404-044</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="22">
			<td height="22" style="height:22px;width:203px;">Penicillin- Streptomycin</td>
			<td style="width:201px;">Gibco</td>
			<td align="right" style="width:197px;">15070</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="22">
			<td height="22" style="height:22px;width:203px;">L- Glutamine</td>
			<td style="width:201px;">Gibco</td>
			<td align="right" style="width:197px;">25030</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="22">
			<td height="22" style="height:22px;width:203px;">DMEM</td>
			<td style="width:201px;">Invitrogen</td>
			<td align="right" style="width:197px;">12100046</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="22">
			<td height="22" style="height:22px;width:203px;">F12</td>
			<td style="width:201px;">Invitrogen</td>
			<td align="right" style="width:197px;">12700075</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:203px;">30% Glucose</td>
			<td style="width:201px;">Sigma</td>
			<td style="width:197px;">G6152</td>
			<td>1M- 9.01g in 100mL dH2O</td>
		</tr>
		<tr height="22">
			<td height="22" style="height:22px;width:203px;">1M Glucose</td>
			<td style="width:201px;"></td>
			<td style="width:197px;"></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:203px;">7.5% NaHCO3</td>
			<td style="width:201px;">Sigma</td>
			<td style="width:197px;">S5761</td>
			<td>155mM- 1.30g in 100mL dH2O</td>
		</tr>
		<tr height="22">
			<td height="22" style="height:22px;width:203px;">155mM NaHCO3</td>
			<td style="width:201px;"></td>
			<td style="width:197px;"></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="24">
			<td height="24" style="height:24px;width:203px;">1M HEPES</td>
			<td style="width:201px;">Sigma</td>
			<td style="width:197px;">H3375</td>
			<td>23.83 g in 100mL dH2O</td>
		</tr>
		<tr height="22">
			<td height="22" style="height:22px;width:203px;">Apo-Transferrin</td>
			<td style="width:201px;">R&#38;D Systems</td>
			<td style="width:197px;">3188-AT</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="22">
			<td height="22" style="height:22px;width:203px;">Putrescine&#160;</td>
			<td style="width:201px;">Sigma</td>
			<td style="width:197px;">P7505</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="22">
			<td height="22" style="height:22px;width:203px;">Insulin</td>
			<td style="width:201px;">Sigma</td>
			<td style="width:197px;">I5500</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="22">
			<td height="22" style="height:22px;width:203px;">Selenium</td>
			<td style="width:201px;">Sigma</td>
			<td style="width:197px;">S9133</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="22">
			<td height="22" style="height:22px;width:203px;">Progesterone</td>
			<td style="width:201px;">Sigma</td>
			<td style="width:197px;">P6149</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="42">
			<td height="42" style="height:42px;width:203px;">Papain Dissociation System&#160;</td>
			<td style="width:201px;">Worthington Biochemical Corporation</td>
			<td style="width:197px;">PDS</td>
			<td>1 vial of papain can be used for 2 samples</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:203px;">Epidermal Growth Factor</td>
			<td style="width:201px;">Invitrogen</td>
			<td style="width:197px;">PMG8041</td>
			<td>Powder reconstituted with 1mL Hormone Mix and aliquoted into 20uL vials to be stored in freezer</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:203px;">Fibroblast Growth Factor</td>
			<td style="width:201px;">Invitrogen</td>
			<td style="width:197px;">PHG0226</td>
			<td>Powder reconstituted with 0.5mL Hormone Mix and aliquoted into 20uL vials to be stored in freezer</td>
		</tr>
		<tr height="22">
			<td height="22" style="height:22px;width:203px;">Heparin</td>
			<td style="width:201px;">Sigma</td>
			<td style="width:197px;">H3149</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="22">
			<td height="22" style="height:22px;width:203px;">Leukemia Inhibitory Factor</td>
			<td style="width:201px;">In House</td>
			<td style="width:197px;"></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="22">
			<td height="22" style="height:22px;width:203px;">Trypan Blue</td>
			<td style="width:201px;"></td>
			<td style="width:197px;"></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="22">
			<td height="22" style="height:22px;width:203px;">Hemocytometer</td>
			<td style="width:201px;"></td>
			<td style="width:197px;"></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="22">
			<td height="22" style="height:22px;width:203px;">24 well Plates</td>
			<td style="width:201px;">NUNC</td>
			<td style="width:197px;"></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:203px;">2M NaCl</td>
			<td style="width:201px;">Sigma</td>
			<td style="width:197px;">S5886</td>
			<td>11.69g in 100mL dH2O</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:203px;">1M KCL</td>
			<td style="width:201px;">Sigma</td>
			<td style="width:197px;">P5405</td>
			<td>7.46g in 100mL dH2O</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:203px;">1M MgCl2</td>
			<td style="width:201px;">Sigma</td>
			<td style="width:197px;">M2393</td>
			<td>20.33g in 100mL dH2O</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:203px;">108mM CaCl2</td>
			<td style="width:201px;">Sigma&#160;</td>
			<td style="width:197px;">C7902</td>
			<td>1.59g in 100mL dH2O</td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

a neurosphere assay to evaluate endogenous neural stem cell activation in a mouse model of minimal spinal cord injury

תאי גזע עצביים (NSCs) בחוט השדרה יונקים בוגרים הם אוכלוסיה יחסית mitotically השבתה הדרגתית של תאים periventricular, כי יכול להיות למד במבחנה באמצעות וזמינותו neurosphere. זה וזמינותו המושבה יוצרי הוא כלי רב עוצמה כדי ללמוד את התגובה של NSCs גורמים אקסוגניים בצלחת; עם זאת, זה יכול לשמש גם כדי לחקור את השפעת ויוו מניפולציות עם ההבנה נכונה היתרונות והמגבלות של וזמינותו. מניפולציה אחת של הריבית קלינית היא ההשפעה של פגיעה על ההפעלה לבטחון לאומי אנדוגני. המודלים הנוכחיים של פגיעה בחוט השדרה לספק אתגר ללמוד זאת כמו חומרת דגמים נפוצים החבורה, דחיסה, חיתוך לגרום להרס של הגומחה לבטחון לאומי באתר של הפגיעה בו שוכנים תאי גזע. כאן נתאר מודל מינימלי פגיעה הגורמת נזק מקומי על פני דורסולטרלי שטחית של רמת בית החזה התחתון (T7/8) של חוט השדרה העכבר למבוגרים. מודל פציעה זה חוסך את התעלה המרכזית ברמה של פציעה, מאפשרת ניתוח של NSCs השוכנים ברמה של הנגע בנקודות זמן שונות בעקבות פגיעה. . הנה, אנחנו מראים איך וזמינותו neurosphere יכול להיות מנוצל כדי ללמוד את ההפעלה של שתי האוכלוסיות ברורה, lineally הקשורות, של NSCs השוכנים באזור periventricular בחוט השדרה - פרימיטיבי ומוחלטת NSCs (pNSCs ו- dNSCs, בהתאמה). נדגים כיצד לבודד, תרבות אלה NSCs מאזור periventricular ברמה של פציעה ואתר פציעה חומר לבן. ניתוח לאחר ניתוח בחוט השדרה שלנו מראים מספר רב יותר של pNSC, neurospheres dNSC, נגזר מאזור periventricular של מיתרי פצוע לעומת שולט, מדבר עם ההפעלה שלהם באמצעות פגיעה. יתר על כן, בעקבות פציעה, נגזר dNSC neurospheres ניתן לבודד מאתר פגיעה — להפגין את היכולת של NSCs להעביר מ משרה periventricular לאתרים של פציעה.

בעקבות הניתוח, העכברים צריך לחוות גירעונות מוטורית מינימלית אשר עשויים לכלול הזנב ואת paresis הינד-איבר אפשרי עבור עד 24 שעות. לאחר תקופה זו, העכברים צריך לחוות אין שיתוק גפיים-הינד ו/או paresis ושינויים מינימליים דהירה.
איור 3 מרא...

Watch this Scientific Journal Video about A Neurosphere Assay to Evaluate Endogenous Neural Stem Cell Activation in a Mouse Model of Minimal Spinal Cord Injury at JoVE.com

A Neurosphere Assay to Evaluate Endogenous Neural Stem Cell Activation in a Mouse Model of Minimal Spinal Cord Injury

Neurosphere Assay כדי להעריך את הפעלת אנדוגני תאי גזע עצביים במודל של עכברים של פגיעה בחוט השדרה מינימלי

. הנה, נדגים את הביצועים של מודל פגיעה בחוט השדרה מינימלי עכבר למבוגרים זה חוסך הנישה התעלה המרכזית דיור אנדוגני תאי גזע עצביים (NSCs). אנו מראים כיצד ניתן להשתמש וזמינותו neurosphere לכמת הפעלה והעברה של NSCs סופית ופרימיטיבי בעקבות פגיעה.

Neural stem cells (NSCs) in the adult mammalian spinal cord are a relatively mitotically quiescent population of periventricular cells that can be studied ...

a-neurosphere-assay-to-evaluate-endogenous-neural-stem-cell

Research

JoVE Journal

Neuroscience

9.8K Views.  University of Toronto. . הנה, נדגים את הביצועים של מודל פגיעה בחוט השדרה מינימלי עכבר למבוגרים זה חוסך הנישה התעלה המרכזית דיור אנדוגני תאי גזע עצביים (NSCs). אנו מראים כיצד ניתן להשתמש וזמינותו neurosphere לכמת הפעלה והעברה של NSCs סופית ופרימיטיבי בעקבות פגיעה.

Video: A Neurosphere Assay to Evaluate Endogenous Neural Stem Cell Activation in a Mouse Model of Minimal Spinal Cord Injury

Dissection and Culture of Commissural Neurons from Embryonic Spinal Cord

Commissural neurons have been widely used to investigate the mechanisms underlying axon guidance during embryonic spinal cord development. The cell bodies of these neurons are located in the dorsal spinal cord and their axons follow stereotyped trajectories during embryonic development. Commissural axons initially project ventrally towards the floorplate. After crossing the midline, these axons turn anteriorly and project towards the brain. Each of these steps is regulated by the action of several guidance cues. Cultures highly enriched in commissural neurons are ideally suited for many experiments addressing the mechanisms of axon pathfinding, including turning assays, immunochemistry and biochemistry. Here, we describe a method to dissect and culture commissural neurons from E13 rat dorsal spinal cord. First, the spinal cord is isolated and dorsal strips are dissected out. The dorsal tissue is then dissociated into a cell suspension by trypsinization and mechanical disruption. Neurons are plated onto poly-L-lysine-coated glass coverslips or tissue-culture dishes. After 30 hours in vitro, most neurons have extended an axon. The purity of the culture (Yam et al. 2009), typically over 90%, can be assessed by immunolabeling with the commissural neuron markers DCC, LH2 and TAG1 (Helms and Johnson, 1998). This neuronal preparation is a useful tool for in vitro studies of the cellular and molecular mechanisms of commissural axon growth and guidance during spinal cord development.

This video demonstrates a method to dissect and culture commissural neurons from E13 rat dorsal spinal cord. Dissociated commissural neurons are useful to study the cellular and molecular mechanisms of axon growth and guidance.

Dissection והתרבות של נוירונים Commissural מחוט השדרה עובריים

Commissural neurons have been widely used to investigate the mechanisms underlying axon guidance during embryonic spinal cord development. The cell bodies ...

Isolation and Expansion of the Adult Mouse Neural Stem Cells Using the Neurosphere Assay

Isolation and expansion of the putative neural stem cells (NSCs) from the adult murine brain was first described by Reynolds and Weiss in 1992 employing a chemically defined serum-free culture system known as the neurosphere assay (NSA). In this assay, the majority of differentiated cell types die within a few days of culture but a small population of growth factor responsive precursor cells undergo active proliferation in the presence of epidermal growth factor (EGF) and/ basic fibroblastic growth factor (bFGF). These cells form colonies of undifferentiated cells called neurospheres, which in turn can be subcultured to expand the pool of neural stem cells. Moreover, the cells can be induced to differentiate, generating the three major cell types of the CNS i.e. neurons, astrocytes, and oligodendrocytes. This assay provides an invaluable tool to supply a consistent, renewable source of undifferentiated CNS precursors, which could be used for in vitro studies and also for therapeutic purposes.
This video demonstrates the NSA method to generate and expand NSCs from the adult mouse periventricular region, and provides technical insights to ensure one can achieve reproducible neurosphere cultures. The procedure includes harvesting the brain from the adult mouse, micro-dissection of the periventricular region, tissue preparation and culture in the NSA. The harvested tissue is first chemically digested using trypsin-EDTA and then mechanically dissociated in NSC medium to achieve a single cell suspension and finally plated in the NSA. After 7-10 days in culture, the resulting primary neurospheres are ready for subculture to reach the amount of cells required for future experiments.

This video protocol demonstrates the neurosphere assay method to generate and expand neural stem cells from the adult mouse periventricular region, and provides technical insights to ensure one can achieve reproducible neurosphere cultures.

בידוד הרחבה של תאים בוגרים עכבר גזע עצביים שימוש Assay Neurosphere

Isolation and expansion of the putative neural stem cells (NSCs) from the adult murine brain was first described by Reynolds and Weiss in 1992 employing a ...

Establishing Embryonic Mouse Neural Stem Cell Culture Using the Neurosphere Assay

In mammalians, stem cells acts as a source of undifferentiated cells to maintain cell genesis and renewal in different tissues and organs during the life span of the animal. They can potentially replace cells that are lost in the aging process or in the process of injury and disease. The existence of neural stem cells (NSCs) was first described by Reynolds and Weiss (1992) in the adult mammalian central nervous system (CNS) using a novel serum&#8208;free culture system, the neurosphere assay (NSA). Using this assay, it is also feasible to isolate and expand NSCs from different regions of the embryonic CNS. These in vitro expanded NSCs are multipotent and can give rise to the three major cell types of the CNS. While the NSA seems relatively simple to perform, attention to the procedures demonstrated here is required in order to achieve reliable and consistent results. This video practically demonstrates NSA to generate and expand NSCs from embryonic day 14-mouse brain tissue and provides technical details so one can achieve reproducible neurosphere cultures. The procedure includes harvesting E14 mouse embryos, brain microdissection to harvest the ganglionic eminences, dissociation of the harvested tissue in NSC medium to gain a single cell suspension, and finally plating cells in NSA culture. After 5-7 days in culture, the resulting primary neurospheres are passaged to further expand the number of the NSCs for future experiments.

This video protocol demonstrates the application of the neurosphere assay for the isolation and expansion of neural stem cells from the ganglionic eminences of embryonic day 14-mouse brain.

הקמת עכבר עובריים גזע עצביים תרבית תאים באמצעות Assay Neurosphere

In mammalians, stem cells acts as a source of undifferentiated cells to maintain cell genesis and renewal in different tissues and organs during the life ...

Neural-Colony Forming Cell Assay: An Assay To Discriminate Bona Fide Neural Stem Cells from Neural Progenitor Cells

The neurosphere assay (NSA) is one of the most frequently used methods to isolate, expand and also calculate the frequency of neural stem cells (NSCs). Furthermore, this serum-free culture system has also been employed to expand stem cells and determine their frequency from a variety of tumors and normal tissues. It has been shown recently that a one-to-one relationship does not exist between neurosphere formation and NSCs. This suggests that the NSA as currently applied, overestimates the frequency of NSCs in a mixed population of neural precursor cells isolated from both the embryonic and adult mammalian brain. This video practically demonstrates a novel collagen based semi- solid assay, the neural-colony forming cell assay (N-CFCA), which has the ability to discriminate stem from progenitor cells based on their long-term proliferative potential, and thus provides a method to enumerate NSC frequency. In the N-CFCA, colonies &ge;2 mm in diameter are derived from cells that meet all the functional criteria of a NSC, while colonies &lt; 2mm are derived from progenitors. The N-CFCA procedure can be used for cells prepared from different sources including primary and cultured adult or embryonic mouse CNS cells. Here we use cells prepared from passage one neurospheres generated from embryonic day 14 mice brain to perform N-CFCA. The cultures are replenished with proliferation medium every seven days for three weeks to allow the plated cells to exhibit their full proliferative potential and then the frequency of neural progenitor and bona fide neural stem cells is calculated respectively by counting the number of colonies that are &lt; 2mm and the ones that are &ge;2mm in reference to the number of cells that were initially plated.

This video protocol demonstrates how to discriminate and enumerate bona fide neural stem cells in a mixed population of neural precursor cells using the neural colony-forming cell assay.

עצבית, המושבה יצירת Assay נייד: Assay להפלות בונה תאים בתום גזע עצביים מן ובתאים עצבית

The neurosphere assay (NSA) is one of the most frequently used methods to isolate, expand and also calculate the frequency of neural stem cells (NSCs). ...

Lateral Fluid Percussion: Model of Traumatic Brain Injury in Mice

Traumatic brain injury (TBI) research has attained renewed momentum due to the increasing awareness of head injuries, which result in morbidity and mortality. Based on the nature of primary injury following TBI, complex and heterogeneous secondary consequences result, which are followed by regenerative processes 1,2. Primary injury can be induced by a direct contusion to the brain from skull fracture or from shearing and stretching of tissue causing displacement of brain due to movement 3,4. The resulting hematomas and lacerations cause a vascular response 3,5, and the morphological and functional damage of the white matter leads to diffuse axonal injury 6-8. Additional secondary changes commonly seen in the brain are edema and increased intracranial pressure 9. Following TBI there are microscopic alterations in biochemical and physiological pathways involving the release of excitotoxic neurotransmitters, immune mediators and oxygen radicals 10-12, which ultimately result in long-term neurological disabilities 13,14. Thus choosing appropriate animal models of TBI that present similar cellular and molecular events in human and rodent TBI is critical for studying the mechanisms underlying injury and repair.
Various experimental models of TBI have been developed to reproduce aspects of TBI observed in humans, among them three specific models are widely adapted for rodents: fluid percussion, cortical impact and weight drop/impact acceleration 1. The fluid percussion device produces an injury through a craniectomy by applying a brief fluid pressure pulse on to the intact dura. The pulse is created by a pendulum striking the piston of a reservoir of fluid. The percussion produces brief displacement and deformation of neural tissue 1,15. Conversely, cortical impact injury delivers mechanical energy to the intact dura via a rigid impactor under pneumatic pressure 16,17. The weight drop/impact model is characterized by the fall of a rod with a specific mass on the closed skull 18. Among the TBI models, LFP is the most established and commonly used model to evaluate mixed focal and diffuse brain injury 19. It is reproducible and is standardized to allow for the manipulation of injury parameters. LFP recapitulates injuries observed in humans, thus rendering it clinically relevant, and allows for exploration of novel therapeutics for clinical translation 20.
We describe the detailed protocol to perform LFP procedure in mice. The injury inflicted is mild to moderate, with brain regions such as cortex, hippocampus and corpus callosum being most vulnerable. Hippocampal and motor learning tasks are explored following LFP.

Lateral fluid percussion (LFP), an established model of traumatic brain injury in mice, is demonstrated. LFP fulfills three major criteria for animal models: validity, reliability and clinical relevance. The procedure, consisting of surgical craniotomy, fixation of hub followed by induction of injury, resulting in focal and diffuse injuries, is described.

נוזל הקשה Lateral: דגם של פגיעה מוחית טראומטית של עכברים

Traumatic brain injury (TBI) research has attained renewed momentum due to the increasing awareness of head injuries, which result in morbidity and ...

An Ex Vivo Laser-induced Spinal Cord Injury Model to Assess Mechanisms of Axonal Degeneration in Real-time

Injured CNS axons fail to regenerate and often retract away from the injury site. Axons spared from the initial injury may later undergo secondary axonal degeneration. Lack of growth cone formation, regeneration, and loss of additional myelinated axonal projections within the spinal cord greatly limits neurological recovery following injury. To assess how central myelinated axons of the spinal cord respond to injury, we developed an ex vivo living spinal cord model utilizing transgenic mice that express yellow fluorescent protein in axons and a focal and highly reproducible laser-induced spinal cord injury to document the fate of axons and myelin (lipophilic fluorescent dye Nile Red) over time using two-photon excitation time-lapse microscopy. Dynamic processes such as acute axonal injury, axonal retraction, and myelin degeneration are best studied in real-time. However, the non-focal nature of contusion-based injuries and movement artifacts encountered during in vivo spinal cord imaging make differentiating primary and secondary axonal injury responses using high resolution microscopy challenging. The ex vivo spinal cord model described here mimics several aspects of clinically relevant contusion/compression-induced axonal pathologies including axonal swelling, spheroid formation, axonal transection, and peri-axonal swelling providing a useful model to study these dynamic processes in real-time. Major advantages of this model are excellent spatiotemporal resolution that allows differentiation between the primary insult that directly injures axons and secondary injury mechanisms; controlled infusion of reagents directly to the perfusate bathing the cord; precise alterations of the environmental milieu (e.g., calcium, sodium ions, known contributors to axonal injury, but near impossible to manipulate in vivo); and murine models also offer an advantage as they provide an opportunity to visualize and manipulate genetically identified cell populations and subcellular structures. Here, we describe how to isolate and image the living spinal cord from mice to capture dynamics of acute axonal injury.

An Ex Vivo Laser-induced Spinal Cord Injury Model to Assess Mechanisms of Axonal Degeneration in Real-time

We present a protocol utilizing two-photon excitation time-lapse microscopy to simultaneously visualize the dynamics of axon and myelin injuries in real time. This proposed protocol permits studies of both intrinsic and extrinsic factors which can influence central myelinated axon fate after injury and contribute to permanent clinical disability.

<em&gt; Ex Vivo</em&gt; חוט השדרה מושרה לייזר הפגיעה דגם להערכת מנגנוני axonal הניוון בזמן אמת

Injured CNS axons fail to regenerate and often retract away from the injury site. Axons spared from the initial injury may later undergo secondary axonal ...

Imaging Neural Activity in the Primary Somatosensory Cortex Using Thy1-GCaMP6s Transgenic Mice

The mammalian brain exhibits marked symmetry across the sagittal plane. However, detailed description of neural dynamics in symmetric brain regions in adult mammalian animals remains elusive. In this study, we describe an experimental procedure for measuring calcium dynamics through dual optical windows above bilateral primary somatosensory corticies (S1) in Thy1-GCaMP6s transgenic mice using 2-photon (2P) microscopy. This method enables recordings and quantifications of neural activity in bilateral mouse brain regions one at a time in the same experiment for a prolonged period in vivo. Key aspects of this method, which can be completed within an hour, include minimally invasive surgery procedures for creating dual optical windows, and the use of 2P imaging. Although we only demonstrate the technique in the S1 area, the method can be applied to other regions of the living brain facilitating the elucidation of structural and functional complexities of brain neural networks.

Imaging Neural Activity in the Primary Somatosensory Cortex Using Thy1-GCaMP6s Transgenic Mice

We describe an experimental procedure for measuring neuronal activity through dual optical windows above bilateral primary somatosensory corticies (S1) in Thy1-GCaMP6s transgenic mice using 2-photon (2P) microscopy in vivo.

הדמיה פעילות עצבית בתוך קליפת המגע הראשי באמצעות Thy1-העכברים הטרנסגניים GCaMP6s

The mammalian brain exhibits marked symmetry across the sagittal plane. However, detailed description of neural dynamics in symmetric brain regions in ...

Laminectomy and Spinal Cord Window Implantation in the Mouse

This protocol describes a method for spinal cord laminectomy and glass window implantation for in vivo imaging of the mouse spinal cord. An integrated digital vaporizer is utilized to achieve a stable plane of anesthesia at a low-flow rate of isoflurane. A single vertebral spine is removed, and a commercially available cover-glass is overlaid on a thin agarose bed. A 3D-printed plastic backplate is then affixed to the adjacent vertebral spines using tissue adhesive and dental cement. A stabilization platform is used to reduce motion artifact from respiration and heartbeat. This rapid and clamp-free method is well-suited for acute multi-photon fluorescence microscopy. Representative data are included for an application of this technique to two-photon microscopy of the spinal cord vasculature in transgenic mice expressing eGFP:Claudin-5 &#8212; a tight junction protein.

This protocol describes implantation of a glass window onto the spinal cord of a mouse to facilitate visualization by intravital microscopy.

כריתת למינציה ואת חוט השדרה חלון השרשה בעכבר

This protocol describes a method for spinal cord laminectomy and glass window implantation for in vivo imaging of the mouse spinal cord. An integrated ...

Intra-Arterial Delivery of Neural Stem Cells to the Rat and Mouse Brain: Application to Cerebral Ischemia

Neural stem cell (NSC) therapy is an emerging innovative treatment for stroke, traumatic brain injury and neurodegenerative disorders. As compared to intracranial delivery, intra-arterial administration of NSCs is less invasive and produces a more diffuse distribution of NSCs within the brain parenchyma. Further, intra-arterial delivery allows the first-pass effect in the brain circulation, lessening the potential for trapping of cells in peripheral organs, such as liver and spleen, a complication associated with peripheral injections. Here, we detail the methodology, in both mice and rats, for delivery of NSCs through the common carotid artery (mouse) or external carotid artery (rat) to the ipsilateral hemisphere after an ischemic stroke. Using GFP-labeled NSCs, we illustrate the widespread distribution achieved throughout the rodent ipsilateral hemisphere at 1 d, 1 week and 4 weeks after postischemic delivery, with a higher density in or near the ischemic injury site. In addition to long-term survival, we show evidence of differentiation of GFP-labeled cells at 4 weeks. The intra-arterial delivery approach described here for NSCs can also be used for administration of therapeutic compounds, and thus has broad applicability to varied CNS injury and disease models across multiple species.

A method for delivering neural stem cells, adaptable for injecting solutions or suspensions, through the common carotid artery (mouse) or external carotid artery (rat) after ischemic stroke is reported. Injected cells are distributed broadly throughout the brain parenchyma and can be detected up to 30 d after delivery.

משלוח פנים-עורקי של תאי גזע עצביים למוח עכברוש ועכבר: יישום איסכמיה מוחין

Neural stem cell (NSC) therapy is an emerging innovative treatment for stroke, traumatic brain injury and neurodegenerative disorders. As compared to ...

Induction of Complete Transection-Type Spinal Cord Injury in Mice

Spinal cord injury (SCI) largely leads to irreversible and permanent loss of function, most commonly as a result of trauma. Several treatment options, such as cell transplantation methods, are being researched to overcome the debilitating disabilities arising from SCI. Most pre-clinical animal trials are conducted in rodent models of SCI. While rat models of SCI have been widely used, mouse models have received less attention, even though mouse models can have significant advantages over rat models. The small size of mice equates to lower animal maintenance costs than for rats, and the availability of numerous transgenic mouse models is advantageous for many types of studies. Inducing repeatable and precise injury in the animals is the primary challenge for SCI research, which in small rodents requires high-precision surgery. The transection-type injury model has been a commonly used injury model over the last decade for transplantation-based therapeutic research, however a standardized method for inducing a complete transection-type injury in mice does not exist. We have developed a surgical protocol for inducing a complete transection type injury in C57BL/6 mice at thoracic vertebral level 10 (T10). The procedure uses a small tip drill instead of rongeurs to precisely remove the lamina, after which a thin blade with rounded cutting edge is used to induce the spinal cord transection. This method leads to reproducible transection-type injury in small rodents with minimal collateral muscle and bone damage and therefore minimizes confounding factors, specifically where behavioral functional outcomes are analyzed.

This protocol describes how to create a precise laminectomy for induction of stable transection-type spinal cord injury in the mouse model, with minimal collateral damage for spinal cord injury research.

אינדוקציה של פגיעה מלאה בחוט השדרה מסוג טרנס-פעולה בעכברים

Spinal cord injury (SCI) largely leads to irreversible and permanent loss of function, most commonly as a result of trauma. Several treatment options, ...