이 작품은 Krembil 재단 (운영 보조금 CMM)에 의해 자금을. WX 칼튼 마가렛 스미스 학생 상 받는 했다. NL는 온타리오 대학원 장학금을 받았다.

이 프로토콜 토론토 대학에서 동물 관리 위원회에 의해 승인 되었다 하 고 "가이드에는 관리 및 사용의 실험 동물"은 (2차 버전, 동물 관리에 캐나다 위원회 2017).
1. 최소한의 척수 상해 수술
참고: 수술 전에 있는지 확인 하십시오 모든 수술 기구와 자료 (그림 1A)는 적절 한 방법으로 살 균 된다.
<ol><li>거 즈의 4-5 사각형을 고를 거 즈의 고정된 롤 중간에 그들을 함께 찍고 여 흉부 지원 아치를 구축 합니다.</li>
	<li>유도 챔버에 마우스를 놓고 5 %isoflurane 마 취를 시작 합니다. 진행 하기 전에, 뿐만 아니라 절차 전체 발가락 핀치 반사의 부재를 확인 합니다. 으로 수술 완료 하는 데 30 분 이상 걸릴 수 있습니다, 5% (5 분)와 남은 시간 2-3%에서 최소 isoflurane 노출에 대 한 최적화.</li>
	<li>코 콘 2-3 %isoflurane 유지 보수 복용량 마 취 기계에 연결 된 마우스를 전송 합니다. 발기를 사용 하 여 중간 다시 목/귀 수술에 대 한 피부의 넓은 직사각형 영역을 노출 하에서 동물의 등에서 털을 제거 하.</li>
	<li>연결 된 원뿔에 그것의 코를 놓고 귀 바 두개골 안정화 stereotaxic 악기를 마우스를 전송. 마우스 stereotaxic 장치에 고정 되 면 5%에서 isoflurane 귀 바 및 2-3%를 다시 배치 하는 동안 유지 합니다.</li>
	<li>Intraperitoneally 수술 전 진통 약물 관리-Meloxicam (2.0 mg/kg). 아낌없이 눈 윤 활 때 취 각 막 건조 방지 하기 위해 오픈 마우스 눈에 적용 됩니다.</li>
	<li>꼬리의 기지에 가볍게 당겨서 마우스 신체 및 척추 교정 하는 동안 마우스 복 부 아래 흉부 지원 아치를 놓습니다. 실험실 라벨 테이프를 사용 하 여 꼬리와 스타 같은 위치에 모든 확장된 사지. 일단 보안, 흉부 지원 아치 rostrally,에서 밀어 위쪽 흉부 쪽으로 마우스 복 부-소품 흉부 척추 (그림 1B)를 위해.</li>
	<li>Povidone-요오드 뒤 70% 에탄올, 단계 1.3에서에서 준비 모피 잘린 피부 영역을 소독 하 여 무 균 수술 필드를 준비 합니다. 두 번 반복 합니다. 넓은 살 균 분야를 유지 하는 불 임 수술 드 레이프를 적용 합니다.</li>
	<li>#10 메스 블레이드를 사용 하 여, 수직 절 개를 두 어깨에 날개의 중간 지점에서 동물의 종 축에 평행 하 게 흉부 척추의 곡률. 피부 연 조직와 척추 컨투어가 (그림 1C)을 철회.</li>
	<li>(이 정하는 T4/5 척추 수준) suprascapular 지방 패드의 아래쪽 테두리를 식별 합니다. 동일한 #10 블레이드, 신중 하 게 하지만 강제로 잘라 양쪽 열에서 다시 근육 힘 줄을 분리 하려면 척추 뼈 T5-T8/9.</li>
	<li>척추의 양쪽에 절 개 사이트에 견인 기의 치아를 삽입 합니다. 충분히 끌어 넣어진된 근육 층 (그림 1D)에 너무 많은 부담을 주지 않고 척추를 상승 견인 기를 확장 하 여 노출을 조정 합니다.</li>
	<li>수술 현미경 잔여 근육과 척추 뼈 (그림 1E) 노출를 overlying 다른 부드러운 조직 청소 신중 하 게. 이빨된 집게와 척추의 spinous 프로세스 clasping 약간 최대 그것을 이동 하 여 제거 되 고 아래로 척추를 식별 합니다. 참고:이 척추 관절의 id를 허용 하 고 관심의 척추 아래 작은 구멍 (척추 foramina)을 노출 해야 합니다.</li>
	<li>곡선 무딘가 위 한 머리, excised를 척추 lamina에 꼬리 노출된 척추 구멍의 양쪽에 삽입 하 고 양측 연결 척추 관절을 잘라.</li>
	<li>lamina를 위쪽으로 들어올리고 격리 하 고 뼈를 제거 lamina의 위 첨부 파일을 차단 합니다. 참고:이 그대로 듀 럴 색 들어 있는 척수 (그림 1 층)을 노출 합니다. 과도 한 있을 수 있습니다 영향을 받는 지역에 1 cm x 1cm 거 즈 precut를 배치 하 여 통제 될 수 있다 출혈 또는 살 균 PBS로 세척.</li>
	<li>랜드마크 역할 등 중간 정 맥 (바늘 베벨 위쪽으로 향하게)와 30 G 바늘 팁의 45 ° 구부러진된 샤프트는 중간의 어느 한쪽에 약 0.5 m m 측면에서 척수 (대략 1 밀리미터 깊은)의 dorsolateral 표면으로 삽입.</li>
	<li>이동 ~ 2 m m 바늘 꼬리에서 rostral는 중간에 (병렬로) 바늘의 베벨의 전체 길이 코드에 삽입 됩니다. 항목 (그림 1G)의 경로 통해 되돌아 바늘을 제거 합니다. 참고: 아무 출혈 해야 하지만이 단계에서 척추 조직의 붓기를 볼 수 있습니다.</li>
	<li>상처를 닫으려면 견인 기를 제거 하 고 6-0 흡수 봉합 사를 사용 하 여 중간에 함께 상해의 양쪽에 다시 근육을 봉합 합니다. 4-0 살 균 실크 봉합 사를 사용 하 여 이후에 overlying 피부를 닫습니다.</li>
	<li>면봉의 끝을 사용 하 여 수술 후 감염을 방지 하기 위해 표면 sutured 스킨의 상단에 항생제 연 고를 적용 합니다. 0.1 mg/kg 피하 체액 (lactated 벨의 솔루션의 1 mL)을 함께 Buprenorphine의 수술 후 진통제를 관리 합니다.</li>
	<li>Isoflurane 기화 기 및 산소를 해제 합니다. 없는 침구와 깨끗 한 장에 장소와 stereotaxic 장치에서 마우스를 제거 합니다.</li>
	<li>케이지 마 취와 모니터 동작을 보 니 다음에서 복구에 대 한 열 램프에서 약 30 ㎝에에서 마우스를 놓습니다. 마우스 해야 5-10 분 이내 그리고 가능한 paresis 또는 깨어 있는 시 꼬리 약점 뒷 다리-다리 기능.</li>
	<li>앞으로 몇 일 동안 마우스 동작을 모니터링 하 고 적절 한 수술 치료 및 진통제 제공 (즉, 매 시, 벨의 솔루션 유체 피하, 0.1 mg/kg buprenorphine 2 lactated 매일 피하 2-3 일, 그리고 적절 한 무게 모니터링에 대 한 x )에 따라 현지 동물 시설 규정을 개별적으로 복구로 다를 수 있습니다.</li>
</ol>2. Neurosphere 분석 결과 해 부
참고: 적절 한 무 균 조직 문화 프로시저를 따릅니다.
<ol><li>효소 솔루션 준비
	<ol>
<li>알 부 민 ovomucoid 억제제 포함 하 유리 병 및 부드럽게 녹아 때까지 소용돌이를 32 mL의 얼의 균형 소금 솔루션 (EBSS)를 추가 합니다.</li>
		<li>미리 나누어진된 papain 유리 유리병에 EBSS의 5 mL을 추가 하 고 해산 하는 37 ° C 물 목욕에. 솔루션이 될 것 이다 (솔루션 1) 취소.</li>
		<li>EBSS의 500 µ L 고 나 유리 유리병 (솔루션 2) 1 mg/mL의 농도를 미리 나누어진된 DNase를 추가. 유리병을 앞뒤로 기울이기로 아주 부드럽게 혼합 하 고 추가이 혼합물의 250 µ L 솔루션 1. 참고: 모든 솔루션 만든 (솔루션 1과 2) 조직의 두 가지의 처리를 위해 충분 하다. 조직의 처리 하는 경우 더 많은 솔루션 준비와 수용.</li>
	</ol></li>
	<li>조직 준비 및 해 부
	<ol>
<li>실험실 정리 마우스 케이지에 isoflurane에 배어 장소와 완전히 마우스 anesthetize에 증기에 대 한 2-3 분을 허용. 다음 녹아웃, 케이지에서 마우스를 제거 하 고 발가락 핀치 반사의 부재를 확인.</li>
		<li>자 궁 경부 전위 무딘 금속 개체 (즉, 금속 케이지 카드) 동물 안락사를 수행 합니다. 스프레이 70% 에탄올과 넉넉한 중반 뒤로 그것의 목에서 안락사 동물.</li>
		<li>두개골의 기지에서가 위를 사용 하 여 머리를 잘라와 바이오 가방에 삭제. 다시 근육과 척추 뼈 윤곽 (그림 2A) 노출의 전체 길이 따라 피부에 절 개를 중간 선을 확인 합니다.</li>
		<li>각 견 갑 골의 중간 부분을 리프트 (즉., 어깨 블레이드-지방 패드를 overlying 식별)가 위를 사용 하 여 부드러운 조직 (견과 척추) 사이 버려야 하 고. 기본 척추 열을 노출 하는 완전히 별도.</li>
		<li>척추의 곡률에 따라 상부 흉부 조리개가 위의 동일한 쌍을 삽입 하 고 연결 된 늑 골, 근육, 및 내부 장기 (그림 2B) 멀리 절단 하 여 척추 열을 격리.</li>
		<li>꼬리 척추 구멍/오프닝으로가 위를 삽입 하 고 하기 (등 쪽 표면)의 양쪽에 척추 관절을 잘라. 그대로 코드를 손상 하지을 특정 주의 분리 했습니다. 원하는 수준까지이 과정을 계속 하거나 코드의 길이 노출 합니다.</li>
		<li>조심 스럽게 잘라 옆으로 척수 조직 일반 인공 척수와 페 트리 접시에 전송 하기 전에 코드에서 확장 하는 spinal nerve(s). 얼음 (그림 2C)에 샘플을 유지.</li>
		<li>해 부 현미경 척수 조직 포함 ~ 2 mm rostral와 부상 사이트에 꼬리를 잘라. 집게의 두 쌍을 사용 하 여 부드럽게 경도 등 쪽과 복 부 균열을 따라 2 반으로 코드를 분리 (그림 2C').</li>
		<li>Microscissors, 부상된 dorsolateral 백색 질 밖으로 잘라. 15 mL 원뿔 튜브에 조각을 넣으십시오.</li>
		<li>들고 겸,으로 아래로 척수의 절반 애타게 하 고 원하는 뇌 영역을 분리 하는 척수의 rostrocaudal 범위에 따라 미세 집게의 다른 쌍을 사용 하는 백색 물질을 제거. 척수의 나머지 절반에 대 한 반복 합니다.</li>
		<li>별도 15 mL 원뿔 튜브로 뇌 조직의 조각을 놓으십시오. Microscissors를 사용 하 고 조심 스럽게 말하다 원뿔 관의 벽에 대 한 조직. 참고: 조직 분리 수정 Papain 분리 시스템 프로토콜23 , 앞에서 설명한 조직 준비 절차24에서 있습니다.</li>
		<li>조직 샘플을 새로운 솔루션 1 (2.1.3 단계)의 2.5 mL을 추가 하 고 30 분 동안 37 ° C에서 로커에.</li>
		<li>부드럽게 1000 µ L 피 펫 팁 솔루션에서 조직 triturate. 실시간에서 5 분에 대 한 300 x g 에서 흐린 세포 현 탁 액을 원심</li>
		<li>얼의 균형 소금 솔루션, ovomucoid 억제제 솔루션 (2.1.1 단계)의 300 µ L의 2.7 mL 솔루션 3 준비와 DNase의 150 µ L 내가 솔루션 (2.1.3 단계).</li>
		<li>단계 (단계 2.2.13)에서 상쾌한 삭제 하 고 이전 단계 (단계 2.2.14)에서 솔루션 3의 1.5 ml resuspend.</li>
		<li>이 새로운 세포 현 탁 액 (단계 2.2.15) 불연속 밀도 그라디언트를 만들 새로운 15 mL 원뿔 튜브에 ovoimucoid 억제제 솔루션 (2.1.1 단계)의 5 mL 위에 레이어. 실시간에서 5 분에 대 한 300 x g 에서 원심 분리기</li>
		<li>상쾌한 삭제 하 고 neurobasal 미디어의 2 mL에 resuspend. 실시간에서 3 분에 대 한 300 x g 에서 원심 분리기</li>
		<li>상쾌한 삭제 하 고 neurobasal 미디어의 1 mL에 resuspend. 서 스 펜 션 뒤에 5 mL의 전체 볼륨에 대 한 미디어의 4 mL 20 µ m 셀 스 트레이너를 사용 하 여 필터링 합니다.</li>
	</ol></li>
	<li>도금
	<ol>
<li>표 피 성장 인자 (20 ng/mL)와 neurobasal 미디어를 보완 하 여 문화 미디어 neurosphere 성장을 위한 준비 / 섬유 아 세포 성장 인자 (20 ng/mL) / 헤 파 린 (2 µ g/mL) [대 한 확실 한 NSCs] 또는 [기본 NSCs]에 대 한 leukemina 억제 요소 (10 ng/mL). 25 mL 조직 배양 플라스 크에 10 mL의 어느 미디어를 추가 합니다.</li>
		<li>Hemocytometer 고 Trypan blue 염료를 사용 하 여 (단계 2.2.18)25에 셀의 수를 계산 하. 일단 계산 하 고, 조직 배양 플라스 크 (2.3.1 단계)에서 준비에 셀을 추가 (37 ° C, 습도 95%, 5% CO2) 24 h에 대 한 인큐베이터에 추가 셀 10 셀 / µ L 및 장소 조직 문화 술병의 클론 밀도. 참고: 계산 방법의 예는 다음과 같습니다: 10 µ L Trypan blue 염료와 세포 현 탁 액 및 혼합의 받아 10 µ L. hemocytometer로이 혼합물의 10 µ L를 추가 합니다. 가벼운 현미경 X 10에서 라이브 셀의 숫자를 계산 하 고 모든 셀 4 x 4 사분면의 4에서 계산 합계 합니다. 수식을 사용 하 여: 100000/2 x 10 x 1000 x [(X cells/4)] 클론 밀도 (10 셀 / µ L) 되도록 각 25 mL 조직 배양 플라스 크에 도금을 셀 서 스 펜 션의 볼륨 주고.</li>
		<li>24 h 후 부드럽게 플라스 크를 소용돌이 고 15 mL 원뿔 튜브에 내용을 붓는 다. 실시간에서 5 분에 대 한 300 x g 에서 원심 분리기</li>
		<li>상쾌한 삭제 하 고 다시 1-2 ml 신선한 neurobasal 미디어의 세포를 중단.</li>
		<li>2.3.2 펜션과 플레이트 세포 클론 밀도 500 µ L 각 그들의 각각 물질 보충 미디어 (확실 한 NSC 성장 위한 EFH) 및 기본 NSC 성장 위한 LIF의를 포함 하는 24-잘 조직 문화 접시에서에 있는 셀의 수를 세 단계를 반복 합니다. 참고: 2 x 10 x 1000 x 적응된 수식을 (5000 / [셀/4 X) 사용 하 여) 계산 잘 포함 하는 미디어의 500 µ L 각 도금을 셀 서 스 펜 션의 볼륨을.</li>
		<li>7 일 동안 인큐베이터 (37 ° C, 습도 95%, 5% CO2) 성장에 세포를 포함 하는 접시를 놓습니다.</li>
	</ol></li>
	<li>계산
	<ol>
<li>7 일 문화에서 다음 접시를 제거 하 고 가벼운 현미경 아래를 볼. Neurospheres는 구형 식민지를 계산 하 여 계량 > dNSCs 문화에 대 한 직경 80 µ m 및 > 50 µ m 직경 pNSCs 문화에 대 한. 참고: 원하는 경우 neurospheres passaged26 추가 될 수 또는 분화. 셀은 더 이상 필요한 경우, 매체의 색깔 노란색을 20 분 대 한 웰 스 (약 1 mL)을 가속된 과산화 수소를 추가 하 여 삭제 합니다. 다음 삭제 합니다.</li>
	</ol></li>
</ol>

<ol>
	<li>Johansson, C. B., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Identification+of+a+neural+stem+cell+in+the+adult+mammalian+central+nervous+system.">Identification of a neural stem cell in the adult mammalian central nervous system.</a> Cell. 96 (1), 25-34 (1999).</li><li>McKay, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Stem+cells+in+the+central+nervous+system.">Stem cells in the central nervous system.</a> Science. 276 (5309), 66-71 (1997).</li><li>Gage, F. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Mammalian+neural+stem+cells.">Mammalian neural stem cells.</a> Science. 287 (5457), 1433-1438 (2000).</li><li>Temple, S., Alvarez-Buylla, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Stem+cells+in+the+adult+mammalian+central+nervous+system.">Stem cells in the adult mammalian central nervous system.</a> Current Opinion in Neurology. 9 (1), 135-141 (1999).</li><li>Zhang, R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Activated+neural+stem+cells+contribute+to+stroke-induced+neurogenesis+and+neuroblast+migration+toward+the+infarct+boundary+in+adult+rats.">Activated neural stem cells contribute to stroke-induced neurogenesis and neuroblast migration toward the infarct boundary in adult rats.</a> Journal Of Cerebral Blood Flow And Metabolism. 24 (4), 441-448 (2004).</li><li>Komitova, M., Mattsson, B., Johansson, B. B., Eriksson, P. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Enriched+environment+increases+neural+stem/progenitor+cell+proliferation+and+neurogenesis+in+the+subventricular+zone+of+stroke-lesioned+adult+rats.">Enriched environment increases neural stem/progenitor cell proliferation and neurogenesis in the subventricular zone of stroke-lesioned adult rats.</a> Stroke. 36 (6), 1278-1282 (2005).</li><li>Faiz, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Adult+neural+stem+cells+from+the+subventricular+zone+give+rise+to+reactive+astrocytes+in+the+cortex+after+stroke.">Adult neural stem cells from the subventricular zone give rise to reactive astrocytes in the cortex after stroke.</a> Cell Stem Cell. 17 (5), 624-634 (2015).</li><li>Ren, Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Ependymal+cell+contribution+to+scar+formation+after+spinal+cord+injury+is+minimal,+local+and+dependent+on+direct+ependymal+injury.">Ependymal cell contribution to scar formation after spinal cord injury is minimal, local and dependent on direct ependymal injury.</a> Science Reports - UK. 7, (2017).</li><li>Mothe, A. J., Tator, C. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Proliferation,+migration,+and+differentiation+of+endogenous+ependymal+region+stem/progenitor+cells+following+minimal+spinal+cord+injury+in+the+adult+rat.">Proliferation, migration, and differentiation of endogenous ependymal region stem/progenitor cells following minimal spinal cord injury in the adult rat.</a> Neuroscience. 131 (1), 177-187 (2005).</li><li>Thuret, S., Moon, L. D., Gage, F. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Therapeutic+interventions+after+spinal+cord+injury.">Therapeutic interventions after spinal cord injury.</a> Nature Reviews Neuroscience. 7 (8), 628-643 (2006).</li><li>Bethea, J. R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Systemically+administered+interleukin-10+reduces+tumor+necrosis+factor-alpha+production+and+significantly+improves+functional+recovery+following+traumatic+spinal+cord+injury+in+rats.">Systemically administered interleukin-10 reduces tumor necrosis factor-alpha production and significantly improves functional recovery following traumatic spinal cord injury in rats.</a> Journal of Neurotrauma. 16 (10), 851-863 (1999).</li><li>Donnelly, D. J., Popovich, P. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Inflammation+and+its+role+in+neuroprotection,+axonal+regeneration+and+functional+recovery+after+spinal+cord+injury.">Inflammation and its role in neuroprotection, axonal regeneration and functional recovery after spinal cord injury.</a> Experimental Neurology. 209 (2), 378-388 (2008).</li><li>Cummings, B. J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Human+neural+stem+cells+differentiate+and+promote+locomotor+recovery+in+spinal+cord-injured+mice.">Human neural stem cells differentiate and promote locomotor recovery in spinal cord-injured mice.</a> Proceedings of the National Academy of Sciences USA. 102 (39), 14069-14074 (2005).</li><li>Beattie, M. S., Hermann, G. E., Rogers, R. C., Bresnahan, J. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Cell+death+in+models+of+spinal+cord+injury.">Cell death in models of spinal cord injury.</a> Progress in Brain Research. 137, 37-47 (2002).</li><li>Metz, G. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Validation+of+the+weight-drop+contusion+model+in+rats:+a+comparative+study+of+human+spinal+cord+injury.">Validation of the weight-drop contusion model in rats: a comparative study of human spinal cord injury.</a> Journal of Neurotrauma. 17 (1), 1-17 (2000).</li><li>Faulkner, J. R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Reactive+astrocytes+protect+tissue+and+preserve+function+after+spinal+cord+injury.">Reactive astrocytes protect tissue and preserve function after spinal cord injury.</a> Journal of Neuroscience. 24 (9), 2143-2155 (2004).</li><li>Cheriyan, T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Spinal+cord+injury+models:+a+review.">Spinal cord injury models: a review.</a> Spinal Cord. 52 (8), 588-595 (2014).</li><li>Deleyrolle, L. P., Reynolds, B. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Isolation,+expansion,+and+differentiation+of+adult+Mammalian+neural+stem+and+progenitor+cells+using+the+neurosphere+assay.">Isolation, expansion, and differentiation of adult Mammalian neural stem and progenitor cells using the neurosphere assay.</a> Neural Cell Transplantation: Methods and Protocols. , 91-101 (2009).</li><li>Singec, I., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Defining+the+actual+sensitivity+and+specificity+of+the+neurosphere+assay+in+stem+cell+biology.">Defining the actual sensitivity and specificity of the neurosphere assay in stem cell biology.</a> Nature Methods. 3 (10), (2006).</li><li>Mignone, J. L., Kukekov, V., Chiang, A. S., Steindler, D., Enikolopov, G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Neural+stem+and+progenitor+cells+in+nestin-GFP+transgenic+mice.">Neural stem and progenitor cells in nestin-GFP transgenic mice.</a> The Journal of Comparative Neurology. 469 (3), 311-324 (2004).</li><li>Xu, W., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Myelin+basic+protein+regulates+primitive+and+definitive+neural+stem+cell+proliferation+from+the+adult+spinal+cord.">Myelin basic protein regulates primitive and definitive neural stem cell proliferation from the adult spinal cord.</a> Stem Cells. 35 (2), 485-496 (2017).</li><li>Sachewsky, N., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Primitive+neural+stem+cells+in+the+adult+mammalian+brain+give+rise+to+GFAP-expressing+neural+stem+cells.">Primitive neural stem cells in the adult mammalian brain give rise to GFAP-expressing neural stem cells.</a> Stem Cell Reports. 2 (6), 810-824 (2014).</li><li>Mothe, A., Tator, C. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Isolation+of+neural+stem/progenitor+cells+from+the+periventricular+region+of+the+adult+rat+and+human+spinal+cord.">Isolation of neural stem/progenitor cells from the periventricular region of the adult rat and human spinal cord.</a> Journal of Visualized Experiments. (99), (2015).</li><li>Absher, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Hemocytometer+counting.">Hemocytometer counting.</a> Tissue Culture. , 395-397 (1973).</li><li>Azari, H., Rahman, M., Sharififar, S., Reynolds, B. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Isolation+and+expansion+of+the+adult+mouse+neural+stem+cells+using+the+neurosphere+assay.">Isolation and expansion of the adult mouse neural stem cells using the neurosphere assay.</a> Journal of Visualized Experiments. (45), (2010).</li><li>Xiong, L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Preconditioning+with+isoflurane+produces+dose-dependent+neuroprotection+via+activation+of+adenosine+triphosphate-regulated+potassium+channels+after+focal+cerebral+ischemia+in+rats.">Preconditioning with isoflurane produces dose-dependent neuroprotection via activation of adenosine triphosphate-regulated potassium channels after focal cerebral ischemia in rats.</a> Anesthesia and Analgesia. 96 (1), 233-237 (2003).</li><li>Metz, G. A., Merkler, D., Dietz, V., Schwab, M. E., Fouad, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Efficient+testing+of+motor+function+in+spinal+cord+injured+rats.">Efficient testing of motor function in spinal cord injured rats.</a> Brain Research. 883 (2), 165-177 (2000).</li><li>Hamers, F. P., Koopmans, G. C., Joosten, E. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=CatWalk-assisted+gait+analysis+in+the+assessment+of+spinal+cord+injury.">CatWalk-assisted gait analysis in the assessment of spinal cord injury.</a> Journal of Neurotrauma. 23 (3-4), 537-548 (2006).</li></ol>

저자는 공개 없다.

외과 절차 동안 어디 연구원 동물 사이 가변성을 최소화 하 고 최적의 결과 얻기에 특히 주의 기울여야 한다 몇 가지 중요 한 단계가 있다. 해야 합니다 주의 (isoflurane) 흡입된 마 취와 수술 중 마 취 장기간된 노출27와 신경 보호 효과를 표시 되었습니다로. 따라서, 부상에 따라 척수의 재생 능력, 공부를 할 때 신속 하 고 혼란 변수를 방지 하기 위해 가능한 한 효율적으로 수술을 ?...

중앙 신 경계 모든 다른 성숙한 신경 세포 유형1,2,,34를 수 있는 자체 갱신, multipotent 줄기 세포의 부분 모집단을 포함 되어 있습니다. 이러한 신경 줄기 세포 (NSCs) 뇌와 척수에서 전문된 틈새에 있으며 증식, 마이그레이션, 성숙한 신경 세포로 분화 하는 부상에 따라 활성화 될 수 있다. NSCs 및 그들의 자손 대뇌 피 질의 부상 모델5,6부상 사이트로 마이그레이션할 표시 되었습니다. 두뇌에 있는 NSCs 측면 심에서 그들은 이다 glial 흉터 대형7을에 분화 상해의 사이트에 마이그레이션할 표시 되었습니다. 그러나 척수,, 몇 가지 연구 수행 되었습니다 다음 척수 상해 회복을 촉진 하이 같은 생 NSCs를 다룰 수 있습니다 경우에 게. 실제로, 현재 논쟁이 있다 활성화는 척수에 줄기 세포 수영장의 중앙 운하8 안 감 뇌 틈새의 직접적인 물리적 손상에 필요한 지 여부 또는 경우는 척추에 손상을 코드 실질 (줄기를 떠나 그대로 셀 틈새)은 생 NSCs9활성화 충분 합니다.
척수 상해 (SCI) 모델의 수는 급성과 만성 부상의 병 태 생리학을 공부 하 이용 되었다. 이 모델 또한 neuroprotection, immunomodulation, 개발 세포 이식/대체 전략10,,1113를 통해 SCI를 치료에 잠재적인 치료를 테스트에 사용 되었습니다. 현재 모델에는 코드14,15에서 대규모 기능적인 적자 뿐 아니라 광범위 한 병 변 및 현상을 일으킬 압축 및 타 박상 부상 포함 됩니다. 결과 glial 흉터는 대부분 척수16의 너비/둘레의 함께 여러 척추 세그먼트를 확장할 수 있습니다. 따라서, 이러한 모델은 임상 관련, 그들은 줄 부상 다음 생 NSCs의 응답을 공부 하 고 중요 한 과제. 중앙 채널17을 마련할 수 있는 상해의 온화한 형태를 적용할 수 있습니다 부상의 화학 모델을 확인 하 고 있습니다. 그러나, 이러한 유형의 부상 demyelination SCI와 관련 된에 초점을 하 고 하지 임상 관련 모델 외상 문화와 관련 된 물리적 또는 기계적 손상에 대 한
현재 부상 모델의 한계를 해결 하기 위해 우리는 바늘 트랙 최소한의 과학 모델, 원래는 쥐9, 성인 마우스 모델에서 응용 프로그램에 대 한 개발을 적응 시켰다. 우리의 적응된 부상 모델 마우스 척수의 dorsolateral 지역의 일관 된 병 변을 만들 수 있으며 상해의 수준에 중앙 운하 예비. 이 모델의 장점은 NSC 속도 론 연구 허가 상해 및 그들의 잠재적인 방사형 마이그레이션 상해의 사이트에 다음. 마우스 모델의 사용 또한 생 NSCs와 부상에 따라 그들의 자손의 혈통 추적을 허용 하는 유전자 변형 마우스의 사용을 허용 합니다. 생체 외에서 neurosphere 분석 결과이 프로토콜에 도입의 수정 된 양식을 사용 하 여 NSCs의 속성 평가 추가 수 있습니다.
Neurosphere 분석 결과 생체 외에서 식민지 형성 분석 결과 mitogens 존재 NSCs의 격리를 허용 하는. 클론 도금 밀도에서 개별 NSCs NSCs의 작은 부분 모집단 및 창시자18,19의 대부분의 구성 하는 셀의 부동성 구형 식민지를 확산. 우리의 프로토콜에서 척수의 뇌 영역에서 두 개의 별개, 직계 관련 NSCs의 설명-초기 조건 하에서 그리고 우리의 최소한의 과학 모델에 따라. 확실 한 신경 줄기 세포 (dNSCs) 익스프레스 nestin 및 폐해 fibrillary 산 성 단백질 (GFAP)와 표 피 성장 인자 (EGF), 섬유 아 세포 성장 인자 (FGF) 및 헤 파 린 (함께 불리 EFH)20의 성장 된다. 이러한 dNSCs 거의 neurospheres에 시험관에게 상승을 주는 순진한 척수에 드물다. 그러나, 우리는 dNSCs 다음 최소한의 과학, 뇌 지역21에서 분리 된 neurospheres의 숫자를 확대 활성화 됩니다 보여줍니다. 기본 신경 줄기 세포 (pNSCs)은 신경 줄기 세포 계보에서 dNSCs의 업스트림. pNSCs의 pluripotency 마커 Oct4, 상당히 드문, 익스프레스 저급 고 백혈병 금지 요인 (LiF) 응답22. pNSCs neurospheres 주 문화;에 있는 myelin 기본적인 단백질 (MBP)의 존재로 인해 성인 마우스 척수에서 격리 때 형성 하지 않는다 그러나, pNSC neurospheres MBP 결핍 생쥐에서 격리 될 수 있습니다 및 그들의 숫자는 확장된 다음 부상-dNSCs21비슷합니다. 마지막으로, 우리 보여 dNSC에서 파생 된 neurospheres 일찍 최소한의 영향은 다음 번에 상해에의 사이트에서 고립 될 수 있다 이러한 결과 우리의 부상 모델 및 분석 실험 그들의 능력을 확산 하 고 부상에 대 한 응답에서 마이그레이션할 같은 뇌 NSCs의 활성화 특성을 평가할 수 있습니다 보여 줍니다.

<table border="0" cellpadding="0" cellspacing="0" width="815">
	<tbody>
		<tr height="22">
			<td height="22" style="height:22px;width:203px;">Agricola Retractor</td>
			<td style="width:201px;">Fine Science Tools</td>
			<td style="width:197px;">17005-04</td>
			<td style="width:215px;"></td>
		</tr>
		<tr height="43">
			<td height="43" style="height:43px;width:203px;">Moria Vannas-Wolff Spring Scissors (Curved)</td>
			<td style="width:201px;">Fine Science Tools</td>
			<td style="width:197px;">15370-50</td>
			<td style="width:215px;">Customize when ordering to get blunted tips</td>
		</tr>
		<tr height="43">
			<td height="43" style="height:43px;width:203px;">Graefe Forceps (Straight, 1x2 Teeth)</td>
			<td style="width:201px;">Fine Science Tools</td>
			<td style="width:197px;">11053-10</td>
			<td style="width:215px;"></td>
		</tr>
		<tr height="43">
			<td height="43" style="height:43px;width:203px;">Extra Fine Graefe Forceps (Curved, Serrated)</td>
			<td style="width:201px;">Fine Science Tools</td>
			<td style="width:197px;">11152-10</td>
			<td style="width:215px;">Or any other forceps for suturing</td>
		</tr>
		<tr height="43">
			<td height="43" style="height:43px;width:203px;">Hartman Hemostats (Straight)</td>
			<td style="width:201px;">Fine Science Tools</td>
			<td style="width:197px;">13002-10</td>
			<td style="width:215px;">Or any other appropriate for suturing</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:203px;">Scalpel Handle #3</td>
			<td style="width:201px;">Fine Science Tools</td>
			<td style="width:197px;">10003-12</td>
			<td style="width:215px;">Or any other appropriate</td>
		</tr>
		<tr height="64">
			<td height="64" style="height:64px;width:203px;">Hair clippers</td>
			<td style="width:201px;">amazon.ca</td>
			<td style="width:197px;">https://www.amazon.ca/Wahl-Professional-8685-Classic-Clipper/dp/B00011K2BA</td>
			<td style="width:215px;">or any other appropriate</td>
		</tr>
		<tr height="22">
			<td height="22" style="height:22px;width:203px;">Stereotaxic instrument</td>
			<td style="width:201px;">Stoeling</td>
			<td align="right">51500</td>
			<td style="width:215px;">or any other appropriate</td>
		</tr>
		<tr height="22">
			<td height="22" style="height:22px;width:203px;">Buprenorphine</td>
			<td style="width:201px;"></td>
			<td style="width:197px;"></td>
			<td>or any appropirate sanctioned my animal care facility</td>
		</tr>
		<tr height="43">
			<td height="43" style="height:43px;width:203px;">Meloxicam</td>
			<td style="width:201px;"></td>
			<td style="width:197px;"></td>
			<td style="width:215px;">or any appropriate sanctioned by animal care facility</td>
		</tr>
		<tr height="64">
			<td height="64" style="height:64px;width:203px;">Tears Naturale P.M.</td>
			<td style="width:201px;">Alcon</td>
			<td style="width:197px;">https://www.amazon.ca/Alcon-Tear-Gel-Liquid-Eye-Gel/dp/B00HHXGUXE</td>
			<td style="width:215px;">or any other appropriate</td>
		</tr>
		<tr height="43">
			<td height="43" style="height:43px;width:203px;">Isoflurane</td>
			<td style="width:201px;">Baxter International Inc</td>
			<td style="width:197px;">DIN 02225875</td>
			<td style="width:215px;">or any other appropriate for anesthesia</td>
		</tr>
		<tr height="168">
			<td height="168" style="height:168px;width:203px;">Q-tips Cottom Swabs</td>
			<td style="width:201px;">amazon.ca</td>
			<td style="width:197px;">https://www.amazon.ca/Q-Tips-Cotton-Swabs-500-Count/dp/B003M5UO6U/ref=pd_lpo_vtph_194_bs_tr_img_1/140-7113119-8364127?_encoding=UTF8&#38;psc=1&#38;refRID=JC16N542KVRF2N62N3DS</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:203px;">Cotton Gauze</td>
			<td style="width:201px;">Fisher Scientific</td>
			<td>13-761-52</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:203px;">30G Needles</td>
			<td style="width:201px;">Becton Dickinson</td>
			<td align="right" style="width:197px;">305106</td>
			<td>For Injury</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:203px;">25G Needles</td>
			<td style="width:201px;">Becton Dickinson</td>
			<td align="right" style="width:197px;">305122</td>
			<td>For Drug injections</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:203px;">1mL Syringes</td>
			<td style="width:201px;">Becton Dickinson</td>
			<td align="right" style="width:197px;">3090659</td>
			<td>for drug injections</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:203px;">3mL Syringes</td>
			<td style="width:201px;">Becton Dickinson</td>
			<td align="right" style="width:197px;">309657</td>
			<td>for fluid injections</td>
		</tr>
		<tr height="24">
			<td height="24" style="height:24px;width:203px;">4-0 Suture</td>
			<td style="width:201px;">uoftmedstore.com</td>
			<td>2297-VS881</td>
			<td>for skin suturing</td>
		</tr>
		<tr height="24">
			<td height="24" style="height:24px;width:203px;">6-0 Suture</td>
			<td style="width:201px;">uoftmedstore.com</td>
			<td>VS889</td>
			<td>for muscle suturing</td>
		</tr>
		<tr height="22">
			<td height="22" style="height:22px;width:203px;">Polysporin ointment</td>
			<td style="width:201px;">amazon.ca</td>
			<td align="right">102051</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:203px;">Isoflurane Vaporizer</td>
			<td style="width:201px;">VetEquip</td>
			<td align="right" style="width:197px;">901806</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:203px;">15mL conical tubes</td>
			<td style="width:201px;">ThermoFisher</td>
			<td></td>
			<td>Any appropriate</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:203px;">Petri Dishes</td>
			<td style="width:201px;">ThermoFisher</td>
			<td style="width:197px;"></td>
			<td>any appropriate</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:203px;">Trypan Blue</td>
			<td style="width:201px;">ThermoFisher</td>
			<td style="width:197px;"></td>
			<td>Any</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:203px;">Hemocytometer</td>
			<td style="width:201px;">ThermoFisher</td>
			<td style="width:197px;"></td>
			<td>Any appropriate</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:203px;">Centrifuge</td>
			<td style="width:201px;">ThermoFisher</td>
			<td style="width:197px;"></td>
			<td>Any appropriate</td>
		</tr>
		<tr height="22">
			<td height="22" style="height:22px;width:203px;">Standard Dissection Tools</td>
			<td style="width:201px;">Fine Science Tools</td>
			<td style="width:197px;"></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="22">
			<td height="22" style="height:22px;width:203px;">Dissection Microscope</td>
			<td style="width:201px;">Zeiss</td>
			<td style="width:197px;">Stemi 2000</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="22">
			<td height="22" style="height:22px;width:203px;">Counting Microscope</td>
			<td style="width:201px;">Olympus</td>
			<td style="width:197px;">CKX41</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="22">
			<td height="22" style="height:22px;width:203px;">Neural Basal-A Medium</td>
			<td style="width:201px;">Invitrogen</td>
			<td style="width:197px;">10888-022</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="22">
			<td height="22" style="height:22px;width:203px;">B27</td>
			<td style="width:201px;">Invitrogen</td>
			<td style="width:197px;">17404-044</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="22">
			<td height="22" style="height:22px;width:203px;">Penicillin- Streptomycin</td>
			<td style="width:201px;">Gibco</td>
			<td align="right" style="width:197px;">15070</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="22">
			<td height="22" style="height:22px;width:203px;">L- Glutamine</td>
			<td style="width:201px;">Gibco</td>
			<td align="right" style="width:197px;">25030</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="22">
			<td height="22" style="height:22px;width:203px;">DMEM</td>
			<td style="width:201px;">Invitrogen</td>
			<td align="right" style="width:197px;">12100046</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="22">
			<td height="22" style="height:22px;width:203px;">F12</td>
			<td style="width:201px;">Invitrogen</td>
			<td align="right" style="width:197px;">12700075</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:203px;">30% Glucose</td>
			<td style="width:201px;">Sigma</td>
			<td style="width:197px;">G6152</td>
			<td>1M- 9.01g in 100mL dH2O</td>
		</tr>
		<tr height="22">
			<td height="22" style="height:22px;width:203px;">1M Glucose</td>
			<td style="width:201px;"></td>
			<td style="width:197px;"></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:203px;">7.5% NaHCO3</td>
			<td style="width:201px;">Sigma</td>
			<td style="width:197px;">S5761</td>
			<td>155mM- 1.30g in 100mL dH2O</td>
		</tr>
		<tr height="22">
			<td height="22" style="height:22px;width:203px;">155mM NaHCO3</td>
			<td style="width:201px;"></td>
			<td style="width:197px;"></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="24">
			<td height="24" style="height:24px;width:203px;">1M HEPES</td>
			<td style="width:201px;">Sigma</td>
			<td style="width:197px;">H3375</td>
			<td>23.83 g in 100mL dH2O</td>
		</tr>
		<tr height="22">
			<td height="22" style="height:22px;width:203px;">Apo-Transferrin</td>
			<td style="width:201px;">R&#38;D Systems</td>
			<td style="width:197px;">3188-AT</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="22">
			<td height="22" style="height:22px;width:203px;">Putrescine&#160;</td>
			<td style="width:201px;">Sigma</td>
			<td style="width:197px;">P7505</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="22">
			<td height="22" style="height:22px;width:203px;">Insulin</td>
			<td style="width:201px;">Sigma</td>
			<td style="width:197px;">I5500</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="22">
			<td height="22" style="height:22px;width:203px;">Selenium</td>
			<td style="width:201px;">Sigma</td>
			<td style="width:197px;">S9133</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="22">
			<td height="22" style="height:22px;width:203px;">Progesterone</td>
			<td style="width:201px;">Sigma</td>
			<td style="width:197px;">P6149</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="42">
			<td height="42" style="height:42px;width:203px;">Papain Dissociation System&#160;</td>
			<td style="width:201px;">Worthington Biochemical Corporation</td>
			<td style="width:197px;">PDS</td>
			<td>1 vial of papain can be used for 2 samples</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:203px;">Epidermal Growth Factor</td>
			<td style="width:201px;">Invitrogen</td>
			<td style="width:197px;">PMG8041</td>
			<td>Powder reconstituted with 1mL Hormone Mix and aliquoted into 20uL vials to be stored in freezer</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:203px;">Fibroblast Growth Factor</td>
			<td style="width:201px;">Invitrogen</td>
			<td style="width:197px;">PHG0226</td>
			<td>Powder reconstituted with 0.5mL Hormone Mix and aliquoted into 20uL vials to be stored in freezer</td>
		</tr>
		<tr height="22">
			<td height="22" style="height:22px;width:203px;">Heparin</td>
			<td style="width:201px;">Sigma</td>
			<td style="width:197px;">H3149</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="22">
			<td height="22" style="height:22px;width:203px;">Leukemia Inhibitory Factor</td>
			<td style="width:201px;">In House</td>
			<td style="width:197px;"></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="22">
			<td height="22" style="height:22px;width:203px;">Trypan Blue</td>
			<td style="width:201px;"></td>
			<td style="width:197px;"></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="22">
			<td height="22" style="height:22px;width:203px;">Hemocytometer</td>
			<td style="width:201px;"></td>
			<td style="width:197px;"></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="22">
			<td height="22" style="height:22px;width:203px;">24 well Plates</td>
			<td style="width:201px;">NUNC</td>
			<td style="width:197px;"></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:203px;">2M NaCl</td>
			<td style="width:201px;">Sigma</td>
			<td style="width:197px;">S5886</td>
			<td>11.69g in 100mL dH2O</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:203px;">1M KCL</td>
			<td style="width:201px;">Sigma</td>
			<td style="width:197px;">P5405</td>
			<td>7.46g in 100mL dH2O</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:203px;">1M MgCl2</td>
			<td style="width:201px;">Sigma</td>
			<td style="width:197px;">M2393</td>
			<td>20.33g in 100mL dH2O</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:203px;">108mM CaCl2</td>
			<td style="width:201px;">Sigma&#160;</td>
			<td style="width:197px;">C7902</td>
			<td>1.59g in 100mL dH2O</td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

a neurosphere assay to evaluate endogenous neural stem cell activation in a mouse model of minimal spinal cord injury

성인 포유류 척수에서 신경 줄기 세포 (NSCs)는 공부 생체 외에서 neurosphere 분석 결과 사용 하 여 될 수 있는 뇌 세포의 상대적으로 mitotically 무부하 인구. 이 식민지 형성 분석 결과 접시;에 외 인 요인 NSCs의 반응을 하는 강력한 도구 그러나,이 또한 힘의 적당 한 이해 및 분석 결과의 한계 vivo에서 조작의 효과 연구를 사용할 수 있습니다. 임상 관심의 한 조작 생 NSC 활성화에 상해의 영향 이다. 척수 상해의 현재 모델 제공이 줄기 세포가 있는 상해의 사이트에 NSC 틈새의 파괴를 일으킬 하는 일반적인 타 박상, 압축, 및 transection 모델의 심각도 공부에 대 한 도전. 여기, 우리는 성인 마우스 척수의 낮은 흉부 수준 (t 7/8)의 표면 dorsolateral 표면에 지역화 된 손상을 초래 하는 최소한의 부상 모델을 설명 합니다. 이 부상 모델 상해의 수준에서 중앙 운하를 예비 하 고 부상에 따라 다양 한 시간 지점에서 병 변의 수준에 있는 NSCs의 분석 합니다. 여기, 우리가 어떻게 neurosphere 분석 결과 척수 뇌 영역-기본 및 최종 NSCs에 있는 NSCs의 두 개의 별개, 직계-관련, 인구의 활성화 연구에 이용 될 수 있다 표시 (pNSCs와 dNSCs, 각각). 상해 및 백색 질 부상 사이트의 수준에서 뇌 영역에서 이러한 NSCs 문화를 격리 하는 방법을 보여 줍니다. 수술 후 척수 해 우리의 pNSC 및 부상된 코드 컨트롤, 상해를 통해 그들의 활성화를 말하기에 비해 뇌 영역에서 dNSC에서 파생 된 neurospheres의 증가 수 보여줍니다. 또한, 부상, 다음 dNSC에서 파생 된 neurospheres 격리 될 수 있습니다 부상 사이트에서-상해의 사이트에 그들의 뇌 틈새에서 마이그레이션할 NSCs의 능력을 보여주는.

수술, 다음 쥐 꼬리와 최대 24 h에 대 한 가능한 뒷 다리 사지 paresis 포함할 수 있는 최소 모터 적자를 경험 한다. 이 시간 후 쥐 뒷 다리 사지 마비 또는 paresis 없고 걸음 걸이에서 최소한의 변화를 경험 한다.
그림 3 에서 5 일 최소한의 척수 상해 neurosphere 분석 결과에서 대표적인 결과 보여줍니다. DNSC에서 ?...

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A Neurosphere Assay to Evaluate Endogenous Neural Stem Cell Activation in a Mouse Model of Minimal Spinal Cord Injury

최소한의 척수 상해의 마우스 모델에서 내 인 성 신경 줄기 세포 활성화 평가 Neurosphere 분석 결과

여기, 예비 중앙 운하 틈새 주택 내 인 성 신경 줄기 세포 (NSCs) 성인 마우스에서 최소한의 척수 상해 모델의 성능을 보여 줍니다. 우리는 활성화 및 마이그레이션 고 원시적인 NSCs 부상 다음의 척도를 neurosphere 분석 실험을 사용 하는 방법을 보여줍니다.

Neural stem cells (NSCs) in the adult mammalian spinal cord are a relatively mitotically quiescent population of periventricular cells that can be studied ...

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Research

JoVE Journal

Neuroscience

9.8K 조회수.  University of Toronto. 여기, 예비 중앙 운하 틈새 주택 내 인 성 신경 줄기 세포 (NSCs) 성인 마우스에서 최소한의 척수 상해 모델의 성능을 보여 줍니다. 우리는 활성화 및 마이그레이션 고 원시적인 NSCs 부상 다음의 척도를 neurosphere 분석 실험을 사용 하는 방법을 보여줍니다.

비디오: A Neurosphere Assay to Evaluate Endogenous Neural Stem Cell Activation in a Mouse Model of Minimal Spinal Cord Injury

Dissection and Culture of Commissural Neurons from Embryonic Spinal Cord

Commissural neurons have been widely used to investigate the mechanisms underlying axon guidance during embryonic spinal cord development. The cell bodies of these neurons are located in the dorsal spinal cord and their axons follow stereotyped trajectories during embryonic development. Commissural axons initially project ventrally towards the floorplate. After crossing the midline, these axons turn anteriorly and project towards the brain. Each of these steps is regulated by the action of several guidance cues. Cultures highly enriched in commissural neurons are ideally suited for many experiments addressing the mechanisms of axon pathfinding, including turning assays, immunochemistry and biochemistry. Here, we describe a method to dissect and culture commissural neurons from E13 rat dorsal spinal cord. First, the spinal cord is isolated and dorsal strips are dissected out. The dorsal tissue is then dissociated into a cell suspension by trypsinization and mechanical disruption. Neurons are plated onto poly-L-lysine-coated glass coverslips or tissue-culture dishes. After 30 hours in vitro, most neurons have extended an axon. The purity of the culture (Yam et al. 2009), typically over 90%, can be assessed by immunolabeling with the commissural neuron markers DCC, LH2 and TAG1 (Helms and Johnson, 1998). This neuronal preparation is a useful tool for in vitro studies of the cellular and molecular mechanisms of commissural axon growth and guidance during spinal cord development.

This video demonstrates a method to dissect and culture commissural neurons from E13 rat dorsal spinal cord. Dissociated commissural neurons are useful to study the cellular and molecular mechanisms of axon growth and guidance.

배아 척수에서 뉴런의 Commissural 해부와 문화

Commissural neurons have been widely used to investigate the mechanisms underlying axon guidance during embryonic spinal cord development. The cell bodies ...

연구

신경과학

Isolation and Expansion of the Adult Mouse Neural Stem Cells Using the Neurosphere Assay

Isolation and expansion of the putative neural stem cells (NSCs) from the adult murine brain was first described by Reynolds and Weiss in 1992 employing a chemically defined serum-free culture system known as the neurosphere assay (NSA). In this assay, the majority of differentiated cell types die within a few days of culture but a small population of growth factor responsive precursor cells undergo active proliferation in the presence of epidermal growth factor (EGF) and/ basic fibroblastic growth factor (bFGF). These cells form colonies of undifferentiated cells called neurospheres, which in turn can be subcultured to expand the pool of neural stem cells. Moreover, the cells can be induced to differentiate, generating the three major cell types of the CNS i.e. neurons, astrocytes, and oligodendrocytes. This assay provides an invaluable tool to supply a consistent, renewable source of undifferentiated CNS precursors, which could be used for in vitro studies and also for therapeutic purposes.
This video demonstrates the NSA method to generate and expand NSCs from the adult mouse periventricular region, and provides technical insights to ensure one can achieve reproducible neurosphere cultures. The procedure includes harvesting the brain from the adult mouse, micro-dissection of the periventricular region, tissue preparation and culture in the NSA. The harvested tissue is first chemically digested using trypsin-EDTA and then mechanically dissociated in NSC medium to achieve a single cell suspension and finally plated in the NSA. After 7-10 days in culture, the resulting primary neurospheres are ready for subculture to reach the amount of cells required for future experiments.

This video protocol demonstrates the neurosphere assay method to generate and expand neural stem cells from the adult mouse periventricular region, and provides technical insights to ensure one can achieve reproducible neurosphere cultures.

절연 및 Neurosphere 어세를 사용하여 성인 마우스 신경 줄기 세포의 확장

Isolation and expansion of the putative neural stem cells (NSCs) from the adult murine brain was first described by Reynolds and Weiss in 1992 employing a ...

Establishing Embryonic Mouse Neural Stem Cell Culture Using the Neurosphere Assay

In mammalians, stem cells acts as a source of undifferentiated cells to maintain cell genesis and renewal in different tissues and organs during the life span of the animal. They can potentially replace cells that are lost in the aging process or in the process of injury and disease. The existence of neural stem cells (NSCs) was first described by Reynolds and Weiss (1992) in the adult mammalian central nervous system (CNS) using a novel serum&#8208;free culture system, the neurosphere assay (NSA). Using this assay, it is also feasible to isolate and expand NSCs from different regions of the embryonic CNS. These in vitro expanded NSCs are multipotent and can give rise to the three major cell types of the CNS. While the NSA seems relatively simple to perform, attention to the procedures demonstrated here is required in order to achieve reliable and consistent results. This video practically demonstrates NSA to generate and expand NSCs from embryonic day 14-mouse brain tissue and provides technical details so one can achieve reproducible neurosphere cultures. The procedure includes harvesting E14 mouse embryos, brain microdissection to harvest the ganglionic eminences, dissociation of the harvested tissue in NSC medium to gain a single cell suspension, and finally plating cells in NSA culture. After 5-7 days in culture, the resulting primary neurospheres are passaged to further expand the number of the NSCs for future experiments.

This video protocol demonstrates the application of the neurosphere assay for the isolation and expansion of neural stem cells from the ganglionic eminences of embryonic day 14-mouse brain.

Neurosphere 분석을 사용하여 마우스 배아 신경 줄기 세포 문화 구축

In mammalians, stem cells acts as a source of undifferentiated cells to maintain cell genesis and renewal in different tissues and organs during the life ...

Neural-Colony Forming Cell Assay: An Assay To Discriminate Bona Fide Neural Stem Cells from Neural Progenitor Cells

The neurosphere assay (NSA) is one of the most frequently used methods to isolate, expand and also calculate the frequency of neural stem cells (NSCs). Furthermore, this serum-free culture system has also been employed to expand stem cells and determine their frequency from a variety of tumors and normal tissues. It has been shown recently that a one-to-one relationship does not exist between neurosphere formation and NSCs. This suggests that the NSA as currently applied, overestimates the frequency of NSCs in a mixed population of neural precursor cells isolated from both the embryonic and adult mammalian brain. This video practically demonstrates a novel collagen based semi- solid assay, the neural-colony forming cell assay (N-CFCA), which has the ability to discriminate stem from progenitor cells based on their long-term proliferative potential, and thus provides a method to enumerate NSC frequency. In the N-CFCA, colonies &ge;2 mm in diameter are derived from cells that meet all the functional criteria of a NSC, while colonies &lt; 2mm are derived from progenitors. The N-CFCA procedure can be used for cells prepared from different sources including primary and cultured adult or embryonic mouse CNS cells. Here we use cells prepared from passage one neurospheres generated from embryonic day 14 mice brain to perform N-CFCA. The cultures are replenished with proliferation medium every seven days for three weeks to allow the plated cells to exhibit their full proliferative potential and then the frequency of neural progenitor and bona fide neural stem cells is calculated respectively by counting the number of colonies that are &lt; 2mm and the ones that are &ge;2mm in reference to the number of cells that were initially plated.

This video protocol demonstrates how to discriminate and enumerate bona fide neural stem cells in a mixed population of neural precursor cells using the neural colony-forming cell assay.

세포 어세를 형성 신경 콜로니 : 신경 전구 세포로부터 타고난 신경 줄기 세포를 차별 어세이

The neurosphere assay (NSA) is one of the most frequently used methods to isolate, expand and also calculate the frequency of neural stem cells (NSCs). ...

Lateral Fluid Percussion: Model of Traumatic Brain Injury in Mice

Traumatic brain injury (TBI) research has attained renewed momentum due to the increasing awareness of head injuries, which result in morbidity and mortality. Based on the nature of primary injury following TBI, complex and heterogeneous secondary consequences result, which are followed by regenerative processes 1,2. Primary injury can be induced by a direct contusion to the brain from skull fracture or from shearing and stretching of tissue causing displacement of brain due to movement 3,4. The resulting hematomas and lacerations cause a vascular response 3,5, and the morphological and functional damage of the white matter leads to diffuse axonal injury 6-8. Additional secondary changes commonly seen in the brain are edema and increased intracranial pressure 9. Following TBI there are microscopic alterations in biochemical and physiological pathways involving the release of excitotoxic neurotransmitters, immune mediators and oxygen radicals 10-12, which ultimately result in long-term neurological disabilities 13,14. Thus choosing appropriate animal models of TBI that present similar cellular and molecular events in human and rodent TBI is critical for studying the mechanisms underlying injury and repair.
Various experimental models of TBI have been developed to reproduce aspects of TBI observed in humans, among them three specific models are widely adapted for rodents: fluid percussion, cortical impact and weight drop/impact acceleration 1. The fluid percussion device produces an injury through a craniectomy by applying a brief fluid pressure pulse on to the intact dura. The pulse is created by a pendulum striking the piston of a reservoir of fluid. The percussion produces brief displacement and deformation of neural tissue 1,15. Conversely, cortical impact injury delivers mechanical energy to the intact dura via a rigid impactor under pneumatic pressure 16,17. The weight drop/impact model is characterized by the fall of a rod with a specific mass on the closed skull 18. Among the TBI models, LFP is the most established and commonly used model to evaluate mixed focal and diffuse brain injury 19. It is reproducible and is standardized to allow for the manipulation of injury parameters. LFP recapitulates injuries observed in humans, thus rendering it clinically relevant, and allows for exploration of novel therapeutics for clinical translation 20.
We describe the detailed protocol to perform LFP procedure in mice. The injury inflicted is mild to moderate, with brain regions such as cortex, hippocampus and corpus callosum being most vulnerable. Hippocampal and motor learning tasks are explored following LFP.

Lateral fluid percussion (LFP), an established model of traumatic brain injury in mice, is demonstrated. LFP fulfills three major criteria for animal models: validity, reliability and clinical relevance. The procedure, consisting of surgical craniotomy, fixation of hub followed by induction of injury, resulting in focal and diffuse injuries, is described.

측면 유체 타악기 : 마우스의 외상성 뇌 손상 모델

Traumatic brain injury (TBI) research has attained renewed momentum due to the increasing awareness of head injuries, which result in morbidity and ...

An Ex Vivo Laser-induced Spinal Cord Injury Model to Assess Mechanisms of Axonal Degeneration in Real-time

Injured CNS axons fail to regenerate and often retract away from the injury site. Axons spared from the initial injury may later undergo secondary axonal degeneration. Lack of growth cone formation, regeneration, and loss of additional myelinated axonal projections within the spinal cord greatly limits neurological recovery following injury. To assess how central myelinated axons of the spinal cord respond to injury, we developed an ex vivo living spinal cord model utilizing transgenic mice that express yellow fluorescent protein in axons and a focal and highly reproducible laser-induced spinal cord injury to document the fate of axons and myelin (lipophilic fluorescent dye Nile Red) over time using two-photon excitation time-lapse microscopy. Dynamic processes such as acute axonal injury, axonal retraction, and myelin degeneration are best studied in real-time. However, the non-focal nature of contusion-based injuries and movement artifacts encountered during in vivo spinal cord imaging make differentiating primary and secondary axonal injury responses using high resolution microscopy challenging. The ex vivo spinal cord model described here mimics several aspects of clinically relevant contusion/compression-induced axonal pathologies including axonal swelling, spheroid formation, axonal transection, and peri-axonal swelling providing a useful model to study these dynamic processes in real-time. Major advantages of this model are excellent spatiotemporal resolution that allows differentiation between the primary insult that directly injures axons and secondary injury mechanisms; controlled infusion of reagents directly to the perfusate bathing the cord; precise alterations of the environmental milieu (e.g., calcium, sodium ions, known contributors to axonal injury, but near impossible to manipulate in vivo); and murine models also offer an advantage as they provide an opportunity to visualize and manipulate genetically identified cell populations and subcellular structures. Here, we describe how to isolate and image the living spinal cord from mice to capture dynamics of acute axonal injury.

An Ex Vivo Laser-induced Spinal Cord Injury Model to Assess Mechanisms of Axonal Degeneration in Real-time

We present a protocol utilizing two-photon excitation time-lapse microscopy to simultaneously visualize the dynamics of axon and myelin injuries in real time. This proposed protocol permits studies of both intrinsic and extrinsic factors which can influence central myelinated axon fate after injury and contribute to permanent clinical disability.

<em&gt; 전의 VIVO</em&gt; 레이저에 의한 척수 손상 모델은 실시간으로 축삭 변성의 메커니즘을 평가하기 위해

Injured CNS axons fail to regenerate and often retract away from the injury site. Axons spared from the initial injury may later undergo secondary axonal ...

Imaging Neural Activity in the Primary Somatosensory Cortex Using Thy1-GCaMP6s Transgenic Mice

The mammalian brain exhibits marked symmetry across the sagittal plane. However, detailed description of neural dynamics in symmetric brain regions in adult mammalian animals remains elusive. In this study, we describe an experimental procedure for measuring calcium dynamics through dual optical windows above bilateral primary somatosensory corticies (S1) in Thy1-GCaMP6s transgenic mice using 2-photon (2P) microscopy. This method enables recordings and quantifications of neural activity in bilateral mouse brain regions one at a time in the same experiment for a prolonged period in vivo. Key aspects of this method, which can be completed within an hour, include minimally invasive surgery procedures for creating dual optical windows, and the use of 2P imaging. Although we only demonstrate the technique in the S1 area, the method can be applied to other regions of the living brain facilitating the elucidation of structural and functional complexities of brain neural networks.

Imaging Neural Activity in the Primary Somatosensory Cortex Using Thy1-GCaMP6s Transgenic Mice

We describe an experimental procedure for measuring neuronal activity through dual optical windows above bilateral primary somatosensory corticies (S1) in Thy1-GCaMP6s transgenic mice using 2-photon (2P) microscopy in vivo.

Thy1를 사용 하 여 기본 Somatosensory 피 질에서 신경 활동을 이미징-GCaMP6s 유전자 변형 쥐

The mammalian brain exhibits marked symmetry across the sagittal plane. However, detailed description of neural dynamics in symmetric brain regions in ...

Laminectomy and Spinal Cord Window Implantation in the Mouse

This protocol describes a method for spinal cord laminectomy and glass window implantation for in vivo imaging of the mouse spinal cord. An integrated digital vaporizer is utilized to achieve a stable plane of anesthesia at a low-flow rate of isoflurane. A single vertebral spine is removed, and a commercially available cover-glass is overlaid on a thin agarose bed. A 3D-printed plastic backplate is then affixed to the adjacent vertebral spines using tissue adhesive and dental cement. A stabilization platform is used to reduce motion artifact from respiration and heartbeat. This rapid and clamp-free method is well-suited for acute multi-photon fluorescence microscopy. Representative data are included for an application of this technique to two-photon microscopy of the spinal cord vasculature in transgenic mice expressing eGFP:Claudin-5 &#8212; a tight junction protein.

This protocol describes implantation of a glass window onto the spinal cord of a mouse to facilitate visualization by intravital microscopy.

마우스에 있는 Laminectomy 및 척수 창 이식

This protocol describes a method for spinal cord laminectomy and glass window implantation for in vivo imaging of the mouse spinal cord. An integrated ...

Intra-Arterial Delivery of Neural Stem Cells to the Rat and Mouse Brain: Application to Cerebral Ischemia

Neural stem cell (NSC) therapy is an emerging innovative treatment for stroke, traumatic brain injury and neurodegenerative disorders. As compared to intracranial delivery, intra-arterial administration of NSCs is less invasive and produces a more diffuse distribution of NSCs within the brain parenchyma. Further, intra-arterial delivery allows the first-pass effect in the brain circulation, lessening the potential for trapping of cells in peripheral organs, such as liver and spleen, a complication associated with peripheral injections. Here, we detail the methodology, in both mice and rats, for delivery of NSCs through the common carotid artery (mouse) or external carotid artery (rat) to the ipsilateral hemisphere after an ischemic stroke. Using GFP-labeled NSCs, we illustrate the widespread distribution achieved throughout the rodent ipsilateral hemisphere at 1 d, 1 week and 4 weeks after postischemic delivery, with a higher density in or near the ischemic injury site. In addition to long-term survival, we show evidence of differentiation of GFP-labeled cells at 4 weeks. The intra-arterial delivery approach described here for NSCs can also be used for administration of therapeutic compounds, and thus has broad applicability to varied CNS injury and disease models across multiple species.

A method for delivering neural stem cells, adaptable for injecting solutions or suspensions, through the common carotid artery (mouse) or external carotid artery (rat) after ischemic stroke is reported. Injected cells are distributed broadly throughout the brain parenchyma and can be detected up to 30 d after delivery.

쥐와 마우스 두뇌에 신경 줄기 세포의 동맥 내 납품: 대뇌 허혈에 응용 프로그램

Neural stem cell (NSC) therapy is an emerging innovative treatment for stroke, traumatic brain injury and neurodegenerative disorders. As compared to ...

Induction of Complete Transection-Type Spinal Cord Injury in Mice

Spinal cord injury (SCI) largely leads to irreversible and permanent loss of function, most commonly as a result of trauma. Several treatment options, such as cell transplantation methods, are being researched to overcome the debilitating disabilities arising from SCI. Most pre-clinical animal trials are conducted in rodent models of SCI. While rat models of SCI have been widely used, mouse models have received less attention, even though mouse models can have significant advantages over rat models. The small size of mice equates to lower animal maintenance costs than for rats, and the availability of numerous transgenic mouse models is advantageous for many types of studies. Inducing repeatable and precise injury in the animals is the primary challenge for SCI research, which in small rodents requires high-precision surgery. The transection-type injury model has been a commonly used injury model over the last decade for transplantation-based therapeutic research, however a standardized method for inducing a complete transection-type injury in mice does not exist. We have developed a surgical protocol for inducing a complete transection type injury in C57BL/6 mice at thoracic vertebral level 10 (T10). The procedure uses a small tip drill instead of rongeurs to precisely remove the lamina, after which a thin blade with rounded cutting edge is used to induce the spinal cord transection. This method leads to reproducible transection-type injury in small rodents with minimal collateral muscle and bone damage and therefore minimizes confounding factors, specifically where behavioral functional outcomes are analyzed.

This protocol describes how to create a precise laminectomy for induction of stable transection-type spinal cord injury in the mouse model, with minimal collateral damage for spinal cord injury research.

마우스에서 완전한 Transection 형 척수 손상의 유도

Spinal cord injury (SCI) largely leads to irreversible and permanent loss of function, most commonly as a result of trauma. Several treatment options, ...