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Method Article
Approfittando dei progressi nello sviluppo fluoroforo e tecnologia di imaging, un metodo semplice di Alexa Fluor etichettatura dei virus dengue è stato ideato per visualizzare le prime interazioni tra virus e cellule.
Gli eventi presto l'interazione tra virus e cellule possono avere un'influenza profonda sul risultato di infezione. Determinare i fattori che influenzano questa interazione potrebbe portare a una migliore comprensione della patogenesi della malattia e quindi influenzare vaccino terapeutico o di progettazione. Quindi, lo sviluppo di metodi per sondare questa interazione potrebbe essere utile. Più recenti progressi della fluorofori sviluppo 1-3 e tecnologia di imaging 4 può essere sfruttato per migliorare le nostre attuali conoscenze sulla patogenesi dengue e quindi aprire la strada per ridurre i milioni di dengue che si verificano ogni anno.
Il virus dengue ha un involucro esterno costituito da un'impalcatura di 90 busta glicoproteina (E) dimeri che proteggono il serbatoio nucleocapside, che contiene un singolo filamento positivo di RNA del genoma 5. Le subunità proteiche identiche sulla superficie del virus può quindi essere etichettato con un colorante reattivo ammina e visualizzati tramite microscopia a immunofluorescenza. Qui, presentiamo un semplice metodo di etichettatura dei virus della dengue con Alexa Fluor succinimidile estere colorante sciolto direttamente in un buffer di bicarbonato di sodio che ha dato virus altamente vitali dopo etichettatura. Non esiste una procedura standardizzata per l'etichettatura dei virus vivo e protocollo del produttore esistente per l'etichettatura delle proteine di solito richiede la ricostituzione di colorante in dimetilsolfossido. La presenza di dimetilsolfossido, anche in piccole quantità, in grado di bloccare l'infezione produttiva da virus e anche indurre citotossicità delle cellule 6. L'esclusione dell'uso di dimetilsolfossido in questo protocollo così ridotto questa possibilità. Alexa Fluor coloranti hanno fotostabilità superiore ed è meno sensibile al pH rispetto ai coloranti comuni, come la fluoresceina e rodamina 2, che li rende ideali per gli studi sulla captazione cellulare e il trasporto endosomali del virus. La coniugazione di Alexa Fluor colorante non ha influenzato il riconoscimento dei virus della dengue etichettati da virus-specifici anticorpi ed i suoi recettori putativi in cellule ospiti 7. Questo metodo potrebbe avere applicazioni utili in studi virologici.
1. Alexa Fluor etichettatura dei virus dengue
2. Purificante Alexa Fluor etichettati virus della dengue
3. Rappresentante Risultati
Un esempio del rendimento del virus dengue marcato con colorante AF594 è illustrato nella figura 2. Normalmente, a meno di 10 volte cadere dal titolo iniziale dovrebbe essere osservate le seguenti etichette di successo. Tuttavia, va notato che tutti i tamponi devono essere preparati freschi per l'etichettatura per avere successo e Alexa Fluor esteri succinimidile deve essere utilizzato immediatamente dopo la ricostituzione come idrolizzano in acidi liberi reattivi in soluzioni acquose 8.
Successivamente, il virus etichettato deve essere controllato per fluorescenza sufficiente prima dell'uso negli esperimenti. Un semplice test di immunofluorescenza è stato fatto su cellule Vero e il grado di etichettatura può essere definita sulla base dei co-localizzazione del virus etichettati con anti-E colorazione delle proteine anticorpali. SeverAl cellule sono state esaminate e una tipica immagine confocale è mostrata in Figura 3. Co-localizzazione di analisi delle immagini utilizzando il software LSM Zen dimostrato sovrapposizione coefficienti che variano dal 0,65-0,8, il che suggerisce che circa il 65 l'80% dei virioni sono stati etichettati con il colorante.
Figura schema 1.Overall raffigurante la Alexa Fluor etichettatura tintura di procedura virus della dengue. In primo luogo, i buffer pertinenti e virus dengue purificato sono preparati. Il Alexa Fluor colorante è ricostituito e ha aggiunto al virus dengue diluito in tampone di etichettatura. La reazione è allora fermato dopo 1 ora con l'aggiunta di reagente di arresto. Successivamente, il virus marcato è purificata attraverso una colonna di esclusione dimensioni per rimuovere colorante libero. Infine, il virus etichettato è ri-titolato mediante test placca e testati per fluorescenza.
Figura 2. Il numero medio di virioni vitali (pfu / ml) su un determinato dosaggio placca prima e dopo l'AF594 etichettatura. Un'aliquota del virus AF594 etichettato dengue è scongelato e ri-titolato con il saggio della placca e si vede in genere meno di 10 volte caduta da il titolo di partenza. Le barre di errore indicano la deviazione standard di duplicati.
Figura 3. Co-localizzazione di AF594 etichette con le proteine del virus dengue E su cellule Vero. Cellule coltivate su vetrini del giorno precedente sono stati infettati con AF594 dengue etichettate MOI di 1 per 10 minuti a 37 ° C. Le cellule sono state successivamente fissa e marcato con anticorpi anti-E, ed esaminati per colocalizzazione della proteina E (verde) e AF594 etichettatura (rosso). Segnali fluorescenti sono state visualizzate sotto ingrandimento 63x con Zeiss LSM 710 microscopio confocale. Barra di scala è 10μm. Giallo indicare le aree di colocalizzazione, come mostrato nel riquadro.
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Anche se AF594 colorante è stato utilizzato in questo rapporto, una vasta gamma di fluorofori nella serie Alexa Fluor succinimidile esteri è disponibile con la chimica etichettatura simili. Questo potrebbe estendere l'applicazione dell'etichettatura di là di imaging. Citometria a flusso può essere usato come alternativa alla microscopia confocale per valutare il grado di etichettatura per fluorofori che può essere eccitato e individuate dalla macchina FACS.
Alexa Fluor coloranti...
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Questo lavoro è stato finanziato dal Medical Consiglio Nazionale delle Ricerche, Singapore.
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Name | Company | Catalog Number | Comments |
Nome del reagente | Azienda | Numero di catalogo | Commenti (opzionale) |
---|---|---|---|
Bicarbonato di sodio | Sigma-Aldrich | S6297 | |
Idrossilammina | Sigma-Aldrich | 159417 | |
Idrossido di sodio | Merck | 106498 | |
AF594 esteri succinimidile | Sonde molecolari, Invitrogen | A20004 | |
PD-10 colonna | GE Healthcare | 17-0851-01 | |
Hepes | Sigma-Aldrich | H6147 | |
NaCl | Sigma-Aldrich | S3014 | |
EDTA | Sigma-Aldrich | E9884 | |
M-199 | Invitrogen | 11150 | |
FBS | Hyclone | SH30070.03 | |
4 pozzetti | Nunc | 176740 | |
Coprioggetto | Einst | 0111520 | |
Vetrino da microscopio | Vela Marca | 7105 | |
Ibridomi 3H5 | ATCC | HB46 | |
10x PBS | 1 Base | BUF-2040-10X1L | |
Saponina | Sigma-Aldrich | S4521 | |
BSA | Sigma-Aldrich | A7906 | |
Cloruro di magnesio | Sigma-Aldrich | M2670 | |
Cloruro di calcio | Sigma-Aldrich | C3306 | |
Paraformaldehye | Sigma-Aldrich | 15,812-7 | |
Mowiol 4-88 | Calbiochem | 475904 | |
DABCO | Sigma-Aldrich | D27802 | |
Centrifuga da tavolo | Eppendorf | 5424 | |
Microscopio confocale | Zeiss | LSM 710 |
Per preparare M-199 terreno di coltura, aggiungere 50 ml di FBS, 5 ml di piruvato di sodio e 5 ml di aminoacidi non essenziali a 500 ml di M-199, filtro sterile.
Per preparare M-199 terreno di mantenimento, aggiungere 15 ml di FBS, 5 ml di piruvato di sodio e 5 ml di aminoacidi non essenziali a 500 ml di M-199, filtro sterile.
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