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  • Erratum Notice
  • Riepilogo
  • Abstract
  • Introduzione
  • Protocollo
  • Risultati
  • Discussione
  • Divulgazioni
  • Riconoscimenti
  • Materiali
  • Riferimenti
  • Erratum
  • Ristampe e Autorizzazioni

Erratum Notice

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Riepilogo

Listeria monocytogenes è un batterio patogeno Gram positivi frequentemente usato come modello importante per lo studio di parassitismo intracellulare. Imaging tardi L. monocytogenes fasi di infezione nel contesto di schermi piccole interferenti RNA permette per lo studio globale di vie cellulari necessarie per infezione batterica delle cellule ospiti bersaglio.

Abstract

Patogeni intracellulari batteriche possono essere concepite come strumenti molecolari per sezionare cascate di segnalazione cellulare a causa della loro capacità di manipolare squisitamente e sovvertire le funzioni cellulari che sono necessarie per l'infezione dei tessuti bersaglio ospitanti. Tra questi batteri patogeni, Listeria monocytogenes è un microrganismo Gram positivo che è stato usato come paradigma per parassitismo intracellulare nella caratterizzazione delle risposte immunitarie cellulari, e che ha avuto un ruolo strumentale nella scoperta di percorsi molecolari che controllano citoscheletro e membrana dinamiche di traffico. In questo articolo descriviamo un saggio microscopica robusto per l'individuazione di fasi tardive infezione cellulare di L. monocytogenes basano sulla marcatura fluorescente di InlC, una proteina batterica secreto che si accumula nel citoplasma delle cellule infette; questo dosaggio può essere accoppiato ad alto throughput schermi piccoli RNA interferenti automatizzati per charziazioni che caratterizzano vie di segnalazione cellulari coinvolti nella up o down-regulation di infezione.

Introduzione

Il batterio Gram positivi Listeria monocytogenes è un patogeno di origine alimentare che invade cellule ospiti, interrompe la sua vacuolo interiorizzazione e replica nel citoplasma delle cellule ospiti 1. L. monocytogenes facilità di manipolazione nel contesto laboratorio (rapida crescita, bassa tossicità per gli individui sani) associato con la persistenza di tratti di virulenza batterica osservati nei modelli cellulari e animali (attività emolitica, leucocitosi) ha permesso l'uso iniziale nel 1960 come un modello importante per lo studio del parassitismo intracellulare e per l'istituzione dei fondamenti teorici della immunità cellulare contro l'infezione 2. Alla fine del 1980 e all'inizio del 1990, la dissezione del ciclo intracellulare batterica 3, nonché la caratterizzazione molecolare dei più importanti fattori di virulenza batterica 4-7 favorito l'uso di L. monocytogenes come strumento molecolare fondamentale per la manipolazione e studY di funzioni della cellula ospite. La presenza di virulenti (L. innocua) e virulenti (L. monocytogenes) specie del genere Listeria aperto la strada a studi di genomica comparativa 8 che, assieme alla recente istituzione del completo L. monocytogenes trascrittoma 9, hanno aumentato la nostra comprensione dell'evoluzione del L. monocytogenes come agente patogeno umano e come sistema modello per l'infezione Studi 10.

L. monocytogenes induce la sua internalizzazione nelle cellule ospiti su interazione delle proteine ​​di superficie batterica dell'INLA e InlB con i loro recettori della cellula ospite E-caderina e Met, rispettivamente, 11-12. Studi basati candidati-iniziali hanno portato all'identificazione del collegamento catenine-actina α / β come componente significativa del percorso inlA-invasione 13 e del phosphoinositide 3-chinasi (PI 3-K) come effettore critica del InlB- dipendente invasione Cascade 14-15. Analisi proteomica e basati funzionale successivamente consentito l'identificazione degli elementi del citoscheletro nuovi 16 e secondi messaggeri lipidici 17 necessari per l'invasione della cellula ospite. Studi trascrizionali 18 e di massa a base di spettrometria di proteomica quantitativa 19 hanno recentemente gettato nuova luce concernente l'attivazione di accoglienza cascate di segnalazione e la repressione delle risposte immunitarie durante L. monocytogenes infezione. La biologia dei sistemi si avvicina basato sulla inattivazione di grandi insiemi di geni (kinomes, genomi completi) da piccoli RNA interferenti (siRNA) silenziamento hanno recentemente aperto nuove strade per l'analisi di accoglienza globale cascate di segnalazione nel contesto di specifiche funzioni cellulari, tra cui la fagocitosi e patogeno interiorizzazione 20. Schermi siRNA genome-wide sono stati precedentemente eseguiti per studiare cascate cellulari necessarie per l'infezione di L. monocytogenes in phagocytic Drosophila cellule S2 21-22, ma questo tipo di analisi non è stata eseguita in cellule non fagocitarie, che rappresentano bersagli critici per l'infezione in vivo.

Abbiamo ottimizzato un protocollo per la rilevazione microscopica delle ultime fasi di infezione da L. monocytogenes che è adatto per gli studi high-throughput siRNA di entrata batterica all'interno delle cellule epiteliali. La nostra analisi si avvale di una L. altamente invasiva monocytogenes che presenta una mutazione puntiforme nel PrfA, il regolatore trascrizionale maggiore di L. monocytogenes fattori di virulenza 6: questa mutazione (denominata PrfA *) rende PrfA costitutivamente attivo 23 e porta ad un aumento dell'espressione delle proteine ​​invasione dell'INLA e InlB, quindi favorendo l'ingresso di batteri in cellule non fagocitarie altrimenti poco infetti. La nostra lettura di infezione si basa sulla rilevazione dell'accumulo citosolica della proteina secreta batterica InlC: questa molecola èun effettore pleiotropici che si esprime preferenzialmente da intra-citoplasmatica L. monocytogenes 9 e che partecipa non solo nella cella cellula-batterica distribuite 24, ma che modula anche la risposta immunitaria 25. La marcatura fluorescente di InlC secrezione da batteri intracellulari permette non solo di distinguere chiaramente infetto da cellule non infette, ma rappresenta anche una lettura end-point che può essere utilizzato per analizzare successivamente infezione nelle sue diverse fasi: entrata, fuga vacuolare, citosolica batterica proliferazione e diffusione cellula-cellula. Questo protocollo basato microscopia può essere accoppiato a schermi siRNA quindi studiare vie cellulari coinvolti nella infezione di cellule ospiti di L. monocytogenes.

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Protocollo

1. Preparazione di cellulare e batteriche culture, Strumenti di trasfezione e primari Anticorpi

  1. Preparare un piatto fresco agar per isolare singoli L. monocytogenes le colonie da uno stock di glicerolo batterica (50% glycerol/50% satura di cultura durante la notte liquida batterica) conservato a -80 ° C.
    1. Utilizzando un rack in alluminio (conservato a -80 ° C) per il trasporto di un congelati glicerolo batteriche archivi, batteri striscia su un Brain Heart Infusion (BHI) piastra di agar.
    2. Incubare la piastra a 37 ° C durante 48 ore (o fino singole colonie batteriche possono essere isolati).
    3. Tenere questo piano di lavoro in seguito a 4 ° C per un tempo massimo di 1 mese (sarà usato per seminare colture liquide).
    4. Nel nostro protocollo, usiamo la L. monocytogenes sierotipo 1/2a EGDe.PrfA * ceppo, ma come illustrato in Figura 1, il L. monocytogenes sierotipo 4b P14.PrfA * ceppo dà risultati simili.
  2. LuiCellule CCL2 La ATCC sono coltivate in Dulbecco Modified Eagle Medium (DMEM) supplementato con 10% siero bovino fetale (FBS) in assenza di antibiotici.
  3. Piscine indipendenti strapazzate (controllo) e anti-Met siRNA sono caricati in 384 pozzetti piastre di coltura di cellule al microscopio nero.
    1. Diluire 160 pmol di siRNA in 500 ml di acqua RNase-free e aggiungere 5 ml di questa soluzione per pozzetto (concentrazione finale: 1,6 pmol).
    2. Mantenere questo piatto a -20 ° C per un periodo massimo di 1 anno.
  4. Anticorpi policlonali di coniglio contro la proteina batterica InlC ottenuto mediante immunizzazione utilizzando una proteina ricombinante GST-InlC come descritto in precedenza 25.

2. Reverse siRNA Transfection cellulare

  1. 72 ore prima dell'infezione portare a temperatura ambiente a 384 pozzetti piastra di coltura di cellule al microscopio nero contenente 1,6 pmol siRNA in 5 ml di acqua RNase-free in ogni pozzetto.
  2. Centrifugare la piastra per 3 min a 300RCF a temperatura ambiente per abbattere siRNA che avrebbero potuto essere depositato nelle pareti dei pozzetti.
  3. Preparare temperatura ambiente DMEM supplementato con 0,4% Lipofectamine RNAiMAX.
  4. Aggiungere 25 ml di medium trasfezione DMEM / RNAiMAX a ciascun pozzetto (non incubare il mezzo trasfezione più di 20 minuti prima di aggiungere il siRNA).
  5. Spostare la piastra avanti e indietro per mescolare il siRNA con la soluzione di trasfezione, quindi tenere la piastra per 1 ora a temperatura ambiente per consentire complessi siRNA-Lipofectamine per formare.
  6. Lavare le cellule HeLa da un pallone-confluenti o coltura cellulare sub-confluenti una volta con 10 ml 37 ° C preriscaldata PBS.
  7. Staccare cellule HeLa aggiungendo 1 ml 37 ° C preriscaldata tripsina al pallone di coltura cellulare e incubare per 3 a 5 min a 37 ° C.
  8. Risospendere le cellule in 10 ml 37 ° C preriscaldata DMEM supplementato con 16% FBS.
  9. Contare le celle e preparare una sospensione cellulare di 12.000 cellule per ml in DMEM supplementato con16% FBS.
  10. Aggiungere 50 ml di sospensione cellulare in ciascun pozzetto nella piastra a 384 pozzetti.
  11. Spostare la piastra rapidamente avanti e indietro per distribuire le cellule e lasciare che le cellule stabilirsi per 10 minuti a temperatura ambiente.
  12. Sigillare la piastra con Parafilm e tenerlo per 72 ore in un umidificata al 5% CO 2 contenente l'atmosfera a 37 ° C.

3. Infezione cellulare e colorazione

  1. Il giorno prima infezione, prendere una singola colonia di L. monocytogenes dalla piastra BHI agar e risospendere in 5 ml di terreno BHI liquido in provette di polistirene 15 ml.
  2. Incubare per una notte a 37 ° C in un dispositivo Shacking per consentire la crescita batterica.
  3. Il giorno di infezione, lavare 1 ml della notte L. monocytogenes cultura mediante centrifugazione 2 min a 10,600 rcf in una centrifuga da tavolo.
  4. Scartare il surnatante (che contiene il secreto citotossina listeriolysin O) e risospendere il pellet in 1 ml di PBS (ripett la fase di lavaggio altre 3 volte).
  5. Leggere la densità ottica a 600 nm batterica e stimare il numero di batteri (OD = 1 corrisponde a 1E9 batteri / ml).
  6. Preparare l'adeguato L. monocytogenes diluizione in DMEM supplementato con 1% FBS: utilizzando ceppi altamente invasive come EGDe.PrfA *, si consiglia l'uso di batteri 5E4 in 30 ml di mezzo per pozzetto (la molteplicità di infezione è stimato al 25 per 2.000 celle).
  7. Rimuovere il terreno di coltura cellulare in ciascun pozzetto (80 microlitri) e sostituirlo con l'aggiunta di 30 ml di L. monocytogenes contenenti medie.
  8. Centrifugare la piastra a 200 rcf per 5 min a temperatura ambiente per sincronizzare il processo di infezione.
  9. Incubare la piastra per 1 ora in un umidificata al 5% CO 2 contenente atmosfera a 37 ° C su un blocco di alluminio preriscaldata.
  10. Rimuovere la L. monocytogenes contenente medio di ogni bene e aggiungere 30 ml di DMEM preriscaldata supplementato con 10% FBS e40 mg / ml di gentamicina per uccidere extracellulare L. monocytogenes.
  11. Incubare per 4 ore in un CO 2-atmosfera contenente 5% a 37 ° C su un blocco di metallo preriscaldato.
  12. Preparare una soluzione di PBS supplementato con 8% di formaldeide (questa soluzione deve essere preparato fresco in modo che i monomeri formaldeide, piuttosto che i polimeri paraformaldeide, vengono utilizzati).
  13. Senza scartare il mezzo di coltura cellulare, aggiungere 30 ml di PBS addizionato con 8% di formaldeide (concentrazione finale: 4%) e incubare per 15 min a temperatura ambiente.
  14. Rimuovere il fissativo e lavare le cellule tre volte con 80 ml di PBS per pozzetto (mantenere le cellule in un volume finale di 80 ml di PBS per pozzetto).
  15. Preparare una diluizione 1:250 del coniglio anti-InlC siero in PBS completato con 0,2% di saponina.
  16. Aggiungere 10 ml di soluzione di anticorpo primario a ciascun pozzetto dopo aver rimosso il PBS e incubare per 30 min a temperatura ambiente.
  17. Scartare il primariosoluzione di anticorpi e lavare quattro volte con 40 ml di PBS per pozzetto.
  18. Diluire il Alexa Fluor 546-coupled anticorpo secondario anti-coniglio (1:250), la soluzione DAPI (1:1,500), e falloidina-Dy647 (1:150) in PBS integrato con 0,2% saponina.
  19. Aggiungere 10 ml di questa soluzione colorante secondario in ciascun pozzetto ed incubare per 30 minuti a temperatura ambiente.
  20. Eliminare la soluzione colorante secondario e lavare quattro volte con 40 ml di PBS per pozzetto (lasciare un volume finale di 40 microlitri in ciascun pozzetto e sigillare la piastra).
  21. La piastra può essere ripreso immediatamente o può essere conservato a 4 ° C al riparo dalla luce (coprire con un foglio di alluminio) per successive analisi.

4. Image Acquisition and Analysis

  1. Acquisire immagini in tre diversi canali (350 nm, 546 nm e 647 nm) con un obiettivo 10X montato su un microscopio automatizzato (acquisire preferenzialmente 9 immagini per bene).
  2. Il segnale InlC può essere misurata con immaginesoftware di analisi come CellProfiler che consente la segmentazione automatica di nuclei e corpi cellulari che utilizzano il DAPI e la colorazione falloidina, rispettivamente.

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Risultati

Marcatura fluorescente di citoplasmatica InlC fornisce una lettura affidabile per l'infezione delle cellule di L. monocytogenes, come illustrato in Figura 1: la cella centrale nella micrografia è altamente infettati dal ceppo P14.PrfA * 23 come si può osservare l'immagine a contrasto di fase (frecce, figura 1A) e viene confermata dal segnale DAPI dove i singoli batteri possono essere chiaramente distinti (Figura 1B). La colorazione InlC (so...

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Discussione

Diversi parametri sono fondamentali per il successo del nostro protocollo InlC rilevamento, compreso l'uso di linee di cellule sane visualizzazione sufficientemente grande citoplasma per consentire una rilevazione univoca del segnale InlC. Nel saggio che presentiamo in questo articolo vi proponiamo l'uso di cellule HeLa CCL2, che sono particolarmente adatti per la nostra analisi a causa della estensione del loro spazio citosolico; altri cloni HeLa come le cellule HeLa Kyoto mostrano un citoplasma più piccolo, m...

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Divulgazioni

Non abbiamo nulla da rivelare.

Riconoscimenti

La ricerca in laboratorio P. Cossart è supportata dall'Istituto Pasteur, l'Institut National de la Santé et de la Recherche Médicale, l'Institut National de la Recherche Agronomique, ERC Advanced Grant (233.348), l'Agence Nationale de la Recherche (Grant MIE- SignRupVac), la Fondazione Louis-Jeantet e la Fondation Le Roch Les Mousquetaires. AK è un destinatario di una borsa di studio dal Pasteur-Parigi Università internazionali Dottorato / Institut Carnot Maladies infectieuses. Ringraziamo Jason Mercer per ottimizzare il protocollo di trasfezione cellulare.

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Materiali

NameCompanyCatalog NumberComments
Bacto Brain Heart InfusionBD237500For liquid BHI preparation
Bacto AgarBD214010Supplement to liquid BHI for BHI agar plates
Heat-Inactivated Fetal Bovine SerumBiowest51830-500
DMEMInvitrogen61965-026
Lipofectamine RNAiMaxInvitrogen13778-100
GentamicinSigmaG1397-10ML
Formaldehyde (16%)EMS15710Prepare fresh before each experiment
Anti-Rabbit Alexa Fluor 546InvitrogenA-11035
DAPIInvitrogenD-1306
Phalloidin Dy647Dyomics647-33
siRNA ScrambleDharmaconD-001810-10
siRNA MetDharmaconL-003156-00-0005
Black 384-well microscopy cell culture plateCorning3985
AxioObserver Z1 microscopeZeiss431007 9901
sCMOS cameraAndorNeo
Metamorph analysis softwareMolecular Devices4000
CellProfiler analysis softwareBroad InstitutePublic software available at http://www.cellprofiler.org/

Riferimenti

  1. Pizarro-Cerdá, J., Kühbacher, A., Cossart, P. Entry of Listeria monocytogenes in mammalian epithelial cells: an updated view. Cold Spring Harbor Perspectives in Medicine. 2, 1-17 (2012).
  2. Mackaness, G. B. Cellular resistance to infection. Journal of Experimental Medicine. 116, 381-406 (1962).
  3. Tilney, L. G., Portnoy, D. A. Actin filaments and the growth, movement, and spread of the intracellular bacterial parasite, Listeria monocytogenes. Journal of Cell Biology. 109, 1597-1608 (1989).
  4. Mengaud, J., Chenevert, J., Geoffroy, C., Gaillard, J. L., Cossart, P. Identification of the structural gene encoding the SH-activated hemolysin of Listeria monocytogenes: listeriolysin O is homologous to streptolysin O and pneumolysin. Infection and Immunity. 55, 3225-3227 (1987).
  5. Gaillard, J. L., Berche, P., Frehel, C., Gouin, E., Cossart, P. Entry of L. monocytogenes into cells is mediated by internalin, a repeat protein reminiscent of surface antigens from gram-positive cocci. Cell. 65, 1127-1141 (1991).
  6. Mengaud, J., Dramsi, S., Gouin, E., Vazquez-Boland, J. A., Milon, G., Cossart, P. Pleiotropic control of Listeria monocytogenes virulence factors by a gene that is autoregulated. Molecular Microbiology. 5, 2273-2283 (1991).
  7. Kocks, C., Gouin, E., Tabouret, M., Berche, P., Ohayon, H., Cossart, P. L. monocytogenes-induced actin assembly requires the actA gene product, a surface protein. Cell. 68, 521-52 (1992).
  8. Glaser, P., et al. Comparative genomics of Listeria species. Science. 294, 849-852 (2001).
  9. Toledo-Arana, A., et al. The Listeria transcriptional landscape: from saprophytism to virulence. Nature. 459, 950-956 (2009).
  10. Cossart, P. Illuminating the landscape of host-pathogen interactions with the bacterium Listeria monocytogenes. Proceedings of the National Academy of Sciences USA. 108, 19484-19491 (1073).
  11. Mengaud, J., Ohayon, H., Gounon, P., Mege, R. -M., Cossart, P. E-cadherin is the receptor for internalin, a surface protein required for entry of L. monocytogenes into epithelial cells. Cell. 84, 923-932 (1996).
  12. Shen, Y., Naujokas, M., Park, M., Ireton, K. InIB-dependent internalization of Listeria is mediated by the Met receptor tyrosine kinase. Cell. 103, 501-510 (2000).
  13. Lecuit, M., Hurme, R., Pizarro-Cerda, J., Ohayon, H., Geiger, B., Cossart, P. A role for alpha-and beta-catenins in bacterial uptake. Proceedings of the National Academy of Sciences USA. 97, 10008-10013 (2000).
  14. Ireton, K., et al. A role for phosphoinositide 3-kinase in bacterial invasion. Science. 274, 780-782 (1996).
  15. Ireton, K., Payrastre, B., Cossart, P. The Listeria monocytogenes protein InlB is an agonist of mammalian phosphoinositide 3-kinase. Journal of Biological Chemistry. 274, 17025-17032 (1999).
  16. Pizarro-Cerdá, J., Jonquières, R., Gouin, E., Vandekerckhove, J., Garin, J., Cossart, P. Distinct protein patterns associated with Listeria monocytogenes InlA- or InlB phagosomes. Cellular Microbiology. 4, 101-115 (2002).
  17. Pizarro-Cerdá, J., Payrastre, B., Wang, Y. -J., Veiga, E., Yin, H. L., Cossart, P. Type II phosphatidylinositol 4-kinases promote Listeria monocytogenes entry into target cells. Cellular Microbiology. 9, 2381-2390 (2007).
  18. Hamon, M. A., et al. Histone modifications induced by a family of bacterial toxins. Proceedings of the National Academy of Sciences USA. 104, 17555-17559 (2007).
  19. Ribet, D., et al. Listeria monocytogenes impairs SUMOylation for efficient infection. Nature. 464, 1192-1195 (2010).
  20. Rämet, M., Manfruelli, P., Pearson, A., Mathey-Prevot, B., Ezekowitz, R. A. Functional genomic analysis of phagocytosis and identification of a Drosophila receptor for E. coli. Nature. 416, 644-648 (2002).
  21. Agaisse, H., Burrack, L. S., Philips, J. A., Rubin, E. J., Perrimon, N., Higgins, D. E. Genome-wide RNAi screen for host factors required for intracellular bacterial infection. Science. 309, 1248-1251 (2005).
  22. Cheng, L. W., Viala, J. P., Stuurman, N., Wiedemann, U., Vale, R. D., Portnoy, D. A. Use of RNA interference in Drosophila S2 cells to identify host pathways controlling compartmentalization of an intracellular pathogen. Proceedings of the National Academy of Sciences USA. 102, 13646-13651 (2005).
  23. Ripio, M. T., Domínguez-Bernal, G., Lara, M., Suárez, M., Vazquez-Boland, J. A. A Gly145Ser substitution in the transcriptional activator PrfA causes constitutive overexpression of virulence factors in Listeria monocytogenes. Journal of Bacteriology. 179, 1533-1540 (1997).
  24. Rajabian, T., et al. The bacterial virulence factor InlC perturbs apical cell junctions and promotes cell-to-cell spread of Listeria. Nature Cell Biology. 11, 1212-1218 (2009).
  25. Gouin, E., et al. The Listeria monocytogenes InlC protein interferes with innate immune responses by targeting the IκB kinase subinit IKKα. Proceedings of the National Academy of Sciences USA. 107, 17333-17338 (2010).
  26. Pizarro-Cerdá, J., Lecuit, M., Cossart, P. Measuring and analysing invasion of mammalian cells by bacterial pathogens: the Listeria monocytogenes system. Methods in Molecular Microbiology. 31, 161-177 (2002).
  27. Snijder, B., Sacher, R., Rämö, P., Damm, E. M., Liberali, P., Pelkmans, L. Population context determines cell-to-cell variability in endocytosis and virus infection. Nature. 461, 520-523 (2009).

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Erratum


Formal Correction: Erratum: Imaging InlC Secretion to Investigate Cellular Infection by the Bacterial Pathogen Listeria monocytogenes
Posted by JoVE Editors on 6/25/2014. Citeable Link.

A correction was made to Imaging InlC Secretion to Investigate Cellular Infection by the Bacterial Pathogen Listeria monocytogenes. Three authors were omitted from the article at the time of publication. The acknowledgments section was also updated. The author list has been updated from:

Andreas Kühbacher1,2,3, Edith Gouin1,2,3, Pascale Cossart1,2,3, Javier Pizarro-Cerdá1,2,3
1Unité des Interactions Bactéries Cellules, Pasteur Institute, 2INSERM U604, 3Institut National de la Recherche Agronomique (INRA), USC2020

to

Andreas Kühbacher1,2,3, Edith Gouin1,2,3, Jason Mercer4, Mario Emmenlauer5, Christoph Dehio5, Pascale Cossart1,2,3, Javier Pizarro-Cerdá1,2,3
1Unité des Interactions Bactéries Cellules, Pasteur Institute,2INSERM U604, 3Institut National de la Recherche Agronomique (INRA), USC2020, 4Institute of Biochemistry, ETH Zürich 5Focal Area Infection Biology, Biozentrum, University of Basel

The acknowledgments where update from:

Research in P. Cossart laboratory is supported by the Pasteur Institute, the Institut National de la Santé et de la Recherche Médicale, the Institut National de la Recherche Agronomique, ERC Advanced Grant (233348), the Agence Nationale de la Recherche (Grant MIE-SignRupVac), the Louis-Jeantet Foundation and the Fondation Le Roch Les Mousquetaires. A.K. is a recipient of a scholarship from the Pasteur-Paris University International Doctoral Program/Institut Carnot Maladies Infectieuses. We thank Jason Mercer for optimizing the cellular transfection protocol.

to

Research in P. Cossart laboratory is supported by the Pasteur Institute, the Institut National de la Santé et de la Recherche Médicale, the Institut National de la Recherche Agronomique, ERC Advanced Grant (233348), the Agence Nationale de la Recherche (Grant MIE-SignRupVac), the Louis-Jeantet Foundation and the Fondation Le Roch Les Mousquetaires. A.K. is a recipient of a scholarship from the Pasteur-Paris University International Doctoral Program/Institut Carnot Maladies Infectieuses. We acknowledge support by grant 51RT 0_126008 for the Research and Technology Development (RTD) project InfectX in the frame of SystemsX.ch, the Swiss Initiative for Systems Biology (to C.D.).

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