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In questo articolo

  • Riepilogo
  • Abstract
  • Introduzione
  • Protocollo
  • Risultati
  • Discussione
  • Divulgazioni
  • Riconoscimenti
  • Materiali
  • Riferimenti
  • Ristampe e Autorizzazioni

Riepilogo

Two- and three-dimensional superhydrophobic polymeric materials are prepared by electrospinning or electrospraying biodegradable polymers blended with a lower surface energy polymer of similar composition.

Abstract

Materiali superhydrophobic, con superfici possiedono stati non a contatto col permanenti o metastabili, sono di interesse per un numero di applicazioni biomediche e industriali. Qui si descrive come electrospinning o electrospraying una miscela polimerica contenente un biodegradabile, biocompatibile poliestere alifatico (ad esempio, policaprolattone e poli (-glycolide co lactide-)), come componente principale, drogato con un copolimero composto idrofobico del poliestere e un stearate- poli modificato (carbonato di glicerolo) offre un biomateriale superhydrophobic. Le tecniche di fabbricazione di electrospinning o electrospraying forniscono la rugosità superficiale e porosità maggiore su e all'interno delle fibre o particelle, rispettivamente. L'uso di un copolimero a bassa energia superficiale drogante che si fonde con il poliestere e può essere stabilmente elettrofilate o electrosprayed offre questi materiali superhydrophobic. Parametri importanti quali la dimensione delle fibre, composizione del copolimero drogante e / o concentration, ei loro effetti sulla bagnabilità sono discussi. Questa combinazione di chimica dei polimeri e di processo offre un approccio versatile per sviluppare materiali specifici dell'applicazione utilizzando tecniche scalabili, che possono generalizzabile ad una classe più ampia di polimeri per una varietà di applicazioni.

Introduzione

Superfici superidrofobiche sono generalmente classificati come espositrici contatto con l'acqua apparente angoli superiori a 150 ° con un basso angolo di contatto isteresi. Queste superfici sono fabbricati introducendo elevata rugosità superficiale su materiali a bassa energia superficiale di stabilire un conseguente interfaccia aria-liquido-solido che resiste bagnare 1-6. A seconda del metodo di fabbricazione, superfici sottili o multistrato superhydrophobic, multistrato rivestimenti substrato superhydrophobic, o strutture superhydrophobic anche sfusi può essere preparato. Questo idrorepellenza permanente o semi-permanente è una proprietà utile che viene impiegato per la preparazione delle superfici autopulenti 7, dispositivi microfluidici 8, antivegetativa superfici cellule / proteine ​​9,10, superfici-trascinare la riduzione di 11, e dispositivi di somministrazione dei farmaci 12- 15. Recentemente, stimoli-responsive materiali superhydrophobic sono descritti in cui la non bagnato allo stato bagnato è attivata da chimici, fisici, O stimoli ambientali (ad esempio, la luce, pH, temperatura, ultrasuoni, e applicato il potenziale elettrico / corrente) 14,16-20, e questi materiali trovano impiego per applicazioni aggiuntive 21-25.

Le prime superfici superhydrophobic sintetici sono stati preparati trattando le superfici di materiali con methyldihalogenosilanes 26, ed erano di valore limitato per applicazioni biomediche, come i materiali utilizzati non erano adatti per l'uso in vivo. Qui si descrive la preparazione di superfici e materiali superhydrophobic rinfusa da polimeri biocompatibili. Il nostro approccio comporta electrospinning o electrospraying una miscela polimerica contenente un biodegradabile, biocompatibile poliestere alifatico come componente principale, drogato con un copolimero composto idrofobico del poliestere e un poli (carbonato di glicerolo) stearato modificato 27-30. Le tecniche di fabbricazione forniscono la rugosità superficiale maggiore e porosità acceso e all'interno della FIBErs o particelle, rispettivamente, mentre l'uso di un drogante copolimero fornisce un polimero a bassa energia superficiale che si fonde con il poliestere e può essere stabilmente elettrofilate o electrosprayed 27,31,32.

Poliesteri alifatici biodegradabili come il poli (acido lattico) (PLA), poli (acido glicolico) (PGA), poli (lattico co acido acido -glycolic) (PLGA) e policaprolattone (PCL) sono polimeri utilizzati in dispositivi clinicamente approvati e prominente in materiali Ricerca Biomedica a causa della loro non-tossicità, biodegradabilità, e la facilità di sintesi 33. PGA e PLGA debuttato nella clinica come suture riassorbibili nel 1960 e 1970, rispettivamente primi anni 34-37. Da allora, questi poli (idrossiacidi) sono stati trasformati in una serie di altri fattori di forma per applicazioni specifiche, come ad esempio micro- e nanoparticelle 40,41 38,39, wafer / dischi 42, maglie 27,43, schiume 44, e 45 film .

Poliesteri alifatici, nonché altri polimeri di interesse biomedico, possono essere elettrofilate per produrre nano o maglie microfibra strutture che possiedono elevata area superficiale e porosità e resistenza alla trazione. Tabella 1 elenca i polimeri sintetici elettrofilate per varie applicazioni biomediche e loro corrispondenti riferimenti. Electrospinning e electrospraying sono tecniche rapide e commercialmente scalabili. Queste due tecniche simili si basano sull'applicazione di alta tensione (repulsione elettrostatica) per superare la tensione superficiale di una soluzione polimerica / fondere in una configurazione pompa a siringa è diretto verso un bersaglio a terra 46,47. Quando questa tecnica viene utilizzata in combinazione con polimeri a bassa energia superficiale (polimeri idrofobi come poli (monostearato co caprolactone- -glycerol)), il conseguente superhydrophobicity materiali per mostre.

Per illustrare questo approccio generale sintetico e trattamento dei materialialla costruzione di materiali superhydrophobic da polimeri biomedici, si descrive la sintesi di polycaprolactone- superhydrophobic e poli (lactide- co -glycolide) materiali basati su come esempi rappresentativi. Il rispettivo poli droganti copolimero (Monostearato co caprolactone- -glycerol) e poli (Monostearato co lactide- -glycerol) vengono prima sintetizzate, poi mescolato con policaprolattone e poli (lactide- co -glycolide), rispettivamente, e infine elettrofilate o electrosprayed. I materiali risultanti sono caratterizzati da SEM imaging e angolo di contatto goniometry, e testati in vitro e in vivo biocompatibilità. Infine, bagnatura massa attraverso tridimensionali maglie superhydrophobic viene esaminato con mdc tomografia microcomputed.

Protocollo

1. Synthesizing Functionalizable poli (1,3-glicerolo carbonate- co caprolattone) 29 e poli (1,3-glicerolo carbonate- co -lactide) 27,28.

  1. Sintesi monomero.
    1. Sciogliere cis -2-fenil-1,3-diossano-5-olo (50 g, 0,28 moli, 1 eq.) In 500 ml di tetraidrofurano anidro (THF) e mescolate in ghiaccio sotto azoto. Aggiungere idrossido di potassio (33,5 g, 0,84 mol, 3 eq.), Finemente tritato con un mortaio e pestello. Mettere pallone in bagno di ghiaccio.
    2. Aggiungere 49,6 ml di benzil bromuro (71.32 g, 0,42 mol, 1,5 eq.) Goccia a goccia, agitando su ghiaccio. Lasciare la reazione a temperatura ambiente sotto agitazione per 24 ore, sotto azoto.
    3. Aggiungere 150 ml di acqua per sciogliere idrossido di potassio e rimuovere il THF per evaporazione rotante distillata.
    4. Estrarre il materiale rimanente con 200 ml di diclorometano (DCM) in un 1-L separatore imbuto. Ripetere l'estrazione due volte.
    5. Essiccare la fase organica su solfato di sodio.
    6. Cristallizzareil prodotto aggiungendo 600 ml di etanolo assoluto alla soluzione, mescolando bene, e conservare una notte a -20 ° C. Il prodotto può essere conservato a -20 ° C per diversi giorni prima di eseguire i passi successivi.
    7. Isolare prodotto sottovuoto filtrazione attraverso un imbuto Buchner e secca in alto vuoto. Il prodotto può essere conservato per diversi giorni prima di eseguire i passi successivi. Un rendimento tipico per questa fase è ~ 80%.
    8. In un 1-L pallone a fondo tondo, sospendere il prodotto ottenuto nel passaggio 1.1.7. in metanolo (300 ml). Aggiungere 150 ml di acido cloridrico 2 N. Reflux a 80 ° C per 2 ore.
    9. Evaporare solvente e posto sotto alto vuoto per 24 ore. La resa per questa fase è tipicamente> 98%.
    10. Sciogliere prodotto 1.1.9 in THF (650 ml) e portarlo in un pallone a fondo rotondo 2-L. Posizionare pallone su bagno di ghiaccio e mescolare sotto azoto. Aggiungere 22,4 ml di etile cloroformiato (25,6 g, 0,29 mol, 2 eq.) A pallone sotto azoto.
    11. Aggiungere 32,8 ml di trietilammina (0,29 mol, 2 eq.) To imbuto. Mescolare con un uguale volume di THF. Posizionare imbuto sul pallone a fondo tondo e tenere sotto azoto.
    12. Con vigorosa agitazione, dispensare accuratamente triethyamine / THF miscela goccia a goccia per il pallone a fondo tondo sul ghiaccio. ATTENZIONE: si tratta di una reazione esotermica. Per evitare un rapido aumento della temperatura, aggiungere la trietilammina / no più veloce di 1 goccia al secondo soluzione THF. Dopo aver aggiunto il volume totale, agitare la reazione per 4 ore, riscaldare a temperatura ambiente, o per 24 ore.
    13. Filtrare il sale cloridrato di trietilammina utilizzando un imbuto Buchner. Si evapora il solvente mediante evaporatore rotante.
    14. Aggiungere diclorometano (200 ml) al pallone e scaldate fino a quando il residuo è disciolto. Aggiungere 120 ml di etere etilico, mentre vorticoso. Conservare a -20 ° C durante la notte per cristallizzare il prodotto.
    15. Filtro cristalli monomero e ri-cristallizzare prima polimerizzazione. Il prodotto monomero può essere conservato sigillato a temperatura ambiente per 2 settimane oa -206; C a tempo indeterminato. Confermare prodotto 1H NMR, spettrometria di massa e analisi elementare. Un rendimento tipico per questo passaggio finale nella sintesi monomero è compreso tra 40-60%.
  2. La copolimerizzazione di D, L-lattide / ε-caprolattone con 5-benzilossi-1,3-diossan-2-one.
    1. Silicone termico in bagno di olio a 140 ° C.
    2. Misura 2,1 g di 5-benzilossi-1,3-diossan-2-one (preparato in 1.1) e inserirlo in un pallone a fondo rotondo da 100 ml secco. Se copolimerizzando D, L -lactide, misurare 5,7 g e aggiungere al pallone ora. Aggiungi un ancoretta magnetica e sigillare il pallone con un tappo di gomma.
      1. Anche misurare 240 mg (eccesso) di stagno (II) etilesanoato in un piccolo pallone a pera. Questa polimerizzazione comporta 20 mol% glicerolo composizione carbonato di monomero. Regolare le masse di monomeri per ottenere diverse composizioni monomeriche.
    3. Sciacquare entrambi i palloni con azoto su un collettore Schlenk per 5 minuti e aggiungere 4,24 ml di ε-caprolactono sotto azoto. Evacuare atmosfera fiaschi 'applicando alto vuoto (300 mTorr) per 15 minuti per eliminare l'acqua traccia.
    4. Ricaricare atmosfera i palloni 'con azoto; ripetere due volte questo ciclo.
    5. Miscelare 500 ml di toluene secco con il catalizzatore di stagno sotto azoto.
    6. Porre il pallone monomero nella C bagno d'olio a 140 ° e aggiungere catalizzatore una volta che tutti i solidi siano fusi. Il volume totale di catalizzatore miscela erogata dovrebbe essere ~ 100 microlitri. Mantenere a 140 ° C per non più di 24 ore, poi raffreddare il polimero fuso a temperatura ambiente. Eseguire immediatamente o almeno 24 ore dopo i passaggi successivi.
    7. Sciogliere il polimero in diclorometano (50 ml) e precipitare in metanolo freddo (200 ml). Decantare il surnatante e secco sotto alto vuoto. Le fasi successive possono essere eseguite immediatamente o in qualsiasi punto. Conservare polimeri nel congelatore fino a nuovo uso. Il tipico polimerizzazione rendimento / conversione è tra il 80-95%.
    8. Eseguire 1H NMR per determinare i rapporti molari comonomero. Sciogliere polimero in cloroformio deuterato (CDCl 3) e integrare lo spostamento protonica benzilico del monomero carbonato a 4,58-4,68 ppm; confrontare questa area del picco con quella del picco di metilene a 2.3 ppm (PCL) e il picco a 5,2 ppm methyne (PLGA).
  3. Modifica dei polimeri: deprotezione e l'innesto.
    1. Sciogliere polimero (g ~ 7) in 120 ml di tetraidrofurano (THF) in un recipiente di idrogenazione ad alta pressione. Pesare e aggiungere catalizzatore di palladio-carbonio (~ 2 g).
    2. Aggiungere l'idrogeno nel recipiente utilizzando un'apparecchiatura di idrogenazione. Idrogenare a 50 psi per 4 ore. ATTENZIONE: l'idrogeno è estremamente infiammabile. Chiedere l'aiuto da parte di persone che hanno familiarità con questa procedura e sempre ispezionare le linee di alimentazione per eventuali perdite prima di effettuare questo esperimento.
    3. Filtrare catalizzatore di palladio-carbonio con un letto impaccato di terra di diatomee. Concentrare il polimero ~ 50 ml sotto evaporazione rotante e precipitate in metanolo freddo. ATTENZIONE: le particelle di palladio asciutti possono prendere fuoco spontaneamente. Tenere un asciugamano bagnato vicina in caso di un flare-up per soffocando le fiamme. Aggiungere acqua il panello di filtrazione palladio / carbonio per tenerlo raggruppata e per impedire la sua accensione. Chiedere l'aiuto da parte di persone che hanno familiarità con questa procedura.
    4. Decantare il surnatante e secco sotto alto vuoto. Conferma conversione totale a idrossile libero osservando la scomparsa picco a 4,65 ppm (1H NMR in CDCl 3). Questi polimeri possono essere utilizzati immediatamente o salvati per un uso successivo. I rendimenti di questo passo sono> 90%.
    5. Sciogliere il polimero e l'acido stearico (1,5 eq.) In 500 ml di diclorometano anidro (DCM). Aggiungere N, N'-dicicloesilcarbodiimide (DCC, eq 2.0.) E 3 scaglie di 4-dimetilamminopiridina. Mescolare sotto azoto a temperatura ambiente per 24 ore.
    6. Rimuovere N insolubile, N'-dicyclohexylcarbourea attraverso una serie di filtrazioni e concentrazioni utilizzate. Alla fine, il concentratosoluzione a 50 ml.
    7. Precipitare polimero in metanolo freddo (~ 175 ml) e decantare il surnatante. Essiccare il polimero sotto overnight alto vuoto. L'utilizzo successivo di questi polimeri può essere effettuata in qualsiasi momento, ma mantenere polimeri nel congelatore per la conservazione a lungo termine. La resa per questo passaggio modifica finale è generalmente compreso tra 85-90%.

2. Caratterizzare i copolimeri sintetizzati

  1. Pesare ~ 10 mg di polimero (registrare la massa reale) e aggiungere al piatto per campioni in alluminio, quindi ermeticamente sigillarlo. Piatto per campioni di carico e scarico di una (di riferimento) in padella calorimetro a scansione differenziale.
  2. Programmare un rampa di temperatura e di raffreddamento ("caldo / freddo / calore") ciclo: 1) il calore da 20 ° C a 225 ° C a 10 ° C / min, 2) freddo a -75 ° C a 5 ° C / min, 3) di calore a 225 ° C a 10 ° C / min.
  3. Determinare il punto di fusione (Tm), cristallizzazione ( T c), e temperature di transizione vetrosa (Tg), e calore di fusione (d H f) dalle tracce termiche (se applicabile).
  4. Sciogliere ogni copolimero sintetizzato in THF (1 mg / ml) e filtrata attraverso un filtro PTFE 0,02 micron. Iniettare la soluzione in un sistema di cromatografia a permeazione di gel e confrontare il tempo di ritenzione contro una serie di standard di polistirene.

3. Preparazione Soluzioni polimeriche per Electrospinning / electrospraying 27,31

  1. Sciogliere polimero (s) al 10-40% in peso in un solvente adatto, come il cloroformio / metanolo (5: 1) per PCL o tetraidrofurano / N, N-dimetilformammide (7: 3) per PLGA, overnight. La massa di polimero richiesto per questo passaggio dipenderà dalle dimensioni della maglia desiderata.
    Nota: Ad esempio, per produrre un 10 cm x 10 cm maglia dello spessore di circa 300 micron, in genere richiesto 1 grammo. Vale la pena notare che la perdita di materialees possono verificarsi in successive fasi di questo protocollo, come ad esempio durante il trasferimento soluzione alla siringa (specialmente per soluzioni viscose), e da volumi morti presenti nel tubo connettore opzionale e l'alloggiamento dell'ago stesso, che ridurrà la resa del processo electrospinning . Queste riduzioni di resa può comportare fino al 20% la perdita di materiale, e si raccomanda di scalare fino 1,5 volte ad anticipare queste perdite, e anche le perdite connesse con l'ottimizzazione dei parametri electrospinning quando eseguire questa procedura per la prima volta.
    1. Controllare le dimensioni fibra variando la concentrazione totale del polimero, con i più grandi fibre attesi da soluzioni più concentrate. Per un modesto aumento di idrofobicità, utilizzare il 10% (in massa totale del polimero) drogante superhydrophobic. Per i materiali estremamente idrofobici / superhydrophobic, utilizzare 30-50% drogante e / o ridurre la concentrazione totale di polimero (es., Ridurre la dimensione della fibra). Il lavoro successivo con queste soluzioni può essere perfoconfermate il giorno successivo o entro una settimana dopo.
    2. Per electrospraying, preparare soluzioni a concentrazioni più basse (cioè, 2-10%) in un solvente adatto come cloroformio. Come elettrofilatura, modulare la dimensione delle particelle, variando la concentrazione del polimero.
  2. Soluzione polimerica Vortex per mescolare accuratamente. Consentire grosse bolle d'aria a placarsi (5 min).
  3. Soluzione di carico in una siringa di vetro. A seconda soluzione viscosità, può essere più facile rimuovere il pistone e versare la soluzione direttamente nella siringa. Un pezzo di inerti, tubi flessibili può essere di aiuto manovrabilità all'interno della configurazione electrospinning. Capovolgere la siringa per spostare l'aria attraverso il gruppo tubo / ago.

4. elettrofilatura / electrospraying Polymer Solutions

  1. Siringa carico sulla pompa a siringa, volume totale impostato (ad esempio, 4,5 ml) e la velocità (ad esempio, 5 ml / h) a cui erogare questa soluzione.
  2. Coprire la piastra con un collettorestagnola luminum per facilitare la successiva rimozione e il trasporto. Fissare il foglio con nastro adesivo lungo i bordi esterni.
  3. Fissare la DC (HVDC) alimentazione legare ad alta tensione a punta dell'ago. La distanza di questo ago punta al collettore è una variabile importante da considerare in quanto 1) influenza il campo elettrico ad una data tensione, e 2) impatti l'evaporazione di solvente e conseguente essiccamento di fibre durante la raccolta.
    1. Come primo tentativo, usare una distanza punta-collettore di 15 cm. ATTENZIONE: tensioni elevate e solventi infiammabili sono coinvolti in electrospinning / electrospraying. Fornire una ventilazione adeguata a gas di scarico al di fuori, e non toccare mai la siringa / ago o aprire la custodia fino a quando assolutamente certo la fornitura HVDC è spento.
  4. Se electrospinning / electrospraying una vasta area di copertura, attivare la rotazione e la traduzione tamburo collettore. In caso contrario, passare alla fase successiva.
  5. Avviare la pompa a siringa.
  6. Accendere e regolare l'alta tensionefonte età per raggiungere un accettabile Taylor Cone. Se la soluzione sulla punta dell'ago è cadente, aumentare la tensione. Se getti multipli stanno formando, ridurre la tensione. In aggiunta a queste regolazioni, potrebbe essere necessario regolare la distanza punta-collettore se le fibre / particelle appaiono bagnati o se la regolazione della tensione non adeguatamente risolvere un droplet trascina sulla punta dell'ago.
    Nota: Per la risoluzione dei problemi dettagliate, vedere il completo processo di ottimizzazione electrospinning da Leach e collaboratori 47. Electrospraying generalmente coinvolgerà alte tensioni e le concentrazioni di soluzioni inferiori rispetto electrospinning.
  7. Spegnere la sorgente ad alta tensione e poi la pompa a siringa e il tamburo motorizzato (se applicabile). Lasciare che il recinto electrospinning di continuare ventilazione per 30 min.
  8. Rimuovere maglie / rivestimenti dal collettore. Consentire solventi traccia per evaporare in una cappa durante la notte. I materiali possono essere conservati a temperatura ambiente per almeno due settimane (PLGA) o duemesi (PCL). Passi 4,5-4,8 possono essere eseguite in qualsiasi ordine.

5. caratterizzante fibra e dimensione delle particelle da Light e microscopia elettronica a scansione

  1. La microscopia ottica
    1. Se producendo una mesh elettrofilate, tagliare e montare porzioni sottili su un vetrino.
    2. Osservare diametro delle fibre, le caratteristiche dei nodi (blob o discrete), e la forma di fibre (ad esempio, in rilievo, piatte, diritto / ondulato). Fibre maglia elettrofilate ideali sono uniformi, dritto o ondulato, e senza tallone.
  2. Microscopia elettronica a scansione (SEM)
    1. Tagliare e montare mesh o superfici rivestite in alluminio stub SEM utilizzando nastro di rame conduttivo. Fibre elettrofilate e rivestimenti electrosprayed possono anche essere osservati al SEM depositando direttamente fibre / particelle sul nastro in anticipo.
    2. Rivestire le maglie / rivestimenti con un sottile (~ 4 nm) strato di Au / Pd con rivestimento sputtering.
    3. Stub di carico nella camera SEM e osservano a 1-2 keV. Una magnifica 250Xzione fornisce una valutazione topografica generale del materiale, mentre ingrandimenti maggiori rivelano caratteristiche delle fibre e delle particelle aggiuntivi come modelli gerarchici fibre estremamente superhydrophobic e interconnettività per i rivestimenti di particelle.

6. Determinazione delle proprietà non-bagnanti

  1. Avanzando e sfuggente contatto con l'acqua misure di angolo con il metodo variazione di volume
    1. Tagliare sottile (0,5 cm x 5 cm) strisce di maglia o materiale rivestito (se possibile) e posto sul palco di un goniometro angolo di contatto.
    2. Cattura il profilo goccia acqua mentre dispensazione (da una siringa ago 24 AWG) sulla superficie del materiale.
      1. Per fare questo, iniziare con un approssimativo goccia 5-microlitri, e prendere contatto con la superficie del materiale. Continuare la gocciolina immagine, che rappresenta l'angolo di contatto di avanzamento acqua da aggiungere lentamente il volume (20-25 ml) e catturare. La punta dell'ago deve essere piccolo rispetto alla goccia, e THe lunghezza del capillare deve essere maggiore della gocciolina di ridurre la distorsione di forma di goccia.
    3. Ritirare questa stessa caduta e contemporaneamente catturare il suo profilo goccia. Ripetere posizioni superficiali distinti di diversi campioni di segnalare un valore medio, in genere, 10 misure di entrambe angoli di contatto che avanzano e retrocedono sono sufficienti a caratterizzare questi materiali.
  2. Determinare tensione critica superficiale dei materiali modificando liquidi sondaggio.
    1. Preparare soluzioni diverse in etanolo, glicole propilenico, o etilene glicole, come queste miscele hanno conosciuto tensioni superficiali 99-101.
      1. In alternativa, utilizzare solventi con diversi tensioni per la superficie esempio, l'acqua (72 mN / m), glicerolo (64 mN / m), dimetil solfossido (44 mN / m), alcool benzilico (39 mN / m), 1,4 diossano (33 mN / m), 1-ottanolo (28 mN / m), e acetone (25 mN / m). È importante utilizzare solventi che non si dissolveranno i polimeri, come questi sarannoconfondere i risultati. Inoltre, è importante notare che, oltre alla tensione superficiale, questi liquidi hanno diverse viscosità, che possono influire misure di angolo di contatto ed è una limitazione di questa tecnica.
      2. Misurare l'angolo di contatto di queste soluzioni sondati sulla superficie del materiale. Plot angolo di contatto in funzione della tensione superficiale.

7. Individuare bagnatura di massa di 31 maglie

  1. Osservare infiltrazioni d'acqua in mesh 3D con micro-tomografia computerizzata (μCT).
    1. Preparare una soluzione di 80 mg / ml di Ioxaglate (un agente di contrasto iodurato) in acqua.
    2. Immergere maglie in queste soluzioni e incubare a 37 ° C; misurare periodicamente mezzo di contrasto (acqua) infiltrazione da μCT (18 micron 3 risoluzione voxel) utilizzando un tubo 70 kVp di tensione, corrente 114 μA, e un tempo di integrazione 300 msec.
    3. Utilizzando il software di elaborazione delle immagini, misurare intens pixellità tutto lo spessore della rete, dove i pixel luminosi rappresentano infiltrazioni d'acqua. Selezionare un valore di soglia di pixel (~ 1500) per le quali maggiore intensità rappresenta infiltrazioni d'acqua.

8. prova delle proprietà meccaniche di maglie

  1. Tagliare maglie a 1 cm x 7 cm e tra le prese di un apparecchio di prove di trazione. Misurare l'esatta larghezza, lunghezza e spessore.
  2. Eseguire un test rampa di estensione su tre campioni. Tracciare una curva di sollecitazione-deformazione utilizzando questi dati per determinare il modulo elastico, carico di rottura e l'allungamento-at-break.

Risultati

Attraverso una serie di trasformazioni chimiche, il monomero funzionale carbonato di 5-benzilossi-1,3-diossan-2-one è sintetizzato come solido bianco cristallino (Figura 1A). 1 H NMR conferma la struttura (Figura 1B) e spettrometria di massa e analisi elementare confermare la composizione. Questo solido viene poi copolimerizzato sia con D, L o -lactide ε-caprolattone con una apertura di anello di reazione tin-catalizzata a 140 ° C. Dopo purificazione mediante prec...

Discussione

Il nostro approccio alla costruzione di materiali superhydrophobic da polimeri biomedici combina chimica dei polimeri sintetici con le tecniche di lavorazione di polimeri di electrospinning e electrospraying. Queste tecniche forniscono sia fibre o particelle, rispettivamente. In particolare, policaprolattone e poli (lactide- co -glycolide) materiali a base superhydrophobic vengono preparati usando questa strategia. Variando la composizione del copolimero idrofobo, copolimero cento nella miscela polimerica final...

Divulgazioni

The authors declare that they have no competing financial interests.

Riconoscimenti

Funding was provided in part by BU and the NIH R01CA149561. The authors wish to thank the electrospinning/electrospraying team including Stefan Yohe, Eric Falde, Joseph Hersey, and Julia Wang for their helpful discussions and contributions to the preparation and characterization of superhydrophobic biomaterials.

Materiali

NameCompanyCatalog NumberComments
Silicone oilSigma-Aldrich85409
Cis-2-Phenyl-1,3-dioxan-5-olSigma-Aldrich13468
Benzyl bromideSigma-AldrichB17905Toxic, lacrymator/eye irritant, use in chemical fume hood
Potassium hydroxideSigma-Aldrich221473Corrosive
Rotary evaporatorBuchiR-124
High-vacuum pumpWelch8907
Nitrogen, ultra high purityAirgasNI UHP300Compressed gas
Tetrahydrofuran, stabilized with BHTPharmaco-Aaper346000Flammable. Dried through column of XXX
DichloromethanePharmaco-Aaper313000Flammable, toxic.
Separatory funnel (1 L)Fisher Scientific13-678-606
Sodium sulfateSigma-Aldrich239313
Ethanol, absolutePharmaco-Aaper111USP200Flammable, toxic.
Buchner funnelFisher ScientificFB-966-F
MethanolPharmaco-Aaper339000ACSFlammable, toxic.
Hydrochloric acidSigma-Aldrich320331Corrosive. Diluted to 2N in distilled water.
Ethyl chloroformate, 97%Sigma-Aldrich185892Toxic, flammable, harmful to environment
Triethylamine (anhydrous)Sigma-Aldrich471283Toxic, flammable, harmful to environment
Diethyl etherPharmaco-Aaper373ANHACSHighly flammable. Purified through XXX column.
3,6-Dimethyl-1,4-dioxane-2,5-dione (D,L-lactide)Sigma-Aldrich303143
Tin (II) ethylhexanoateSigma-AldrichS3252Toxic.
ε-caprolactone (97%)Sigma-Aldrich704067
Toluene, anhydrousSigma-Aldrich244511Flammable, toxic.
Glass syringeHamilton Company1700-series
Deuterated chloroformCambridge Isotopes Laboratories, Inc.DLM-29-10Toxic
Nuclear magnetic resonance instrumentVarianV400
Palladium on carbon catalystStrem Chemicals, Inc.46-1707
Hydrogenator unitParr3911
Hydrogenator shaker vesselParr66CA
HydrogenAirgasHY HP300Highly flammable.
Diatomaceous earthSigma-Aldrich22140
2H,2H,3H,3H-perflurononanoic acidOakwood Products, Inc.10519Toxic.
Stearic acidSigma-AldrichS4751
N,N’-dicyclohexylcarbodiimideSigma-AldrichD80002Toxic, irritant.
4-(dimethylamino) pyridineSigma-Aldrich107700Toxic.
HexanesPharmaco-Aaper359000ACSToxic, flammable.
Gel permeation chromatography (GPC) systemRainin
GPC columnWatersWAT044228
Differential scanning calorimeterTA InstrumentsQ100
ChloroformPharmaco-Aaper309000ACSToxic.
N,N-dimethylformamideSigma-Aldrich227056Toxic, flammable.
Polycaprolactone, MW 70-90 kg/molSigma-Aldrich440744
Poly(lactide-co-glycolide), MW 136 kg/molEvonik IndustriesLP-712
10 ml glass syringeHamilton Company81620
18 AWG blunt needleBRICO Medical SuppliesBN1815
Electrospinner enclosure boxCustom-builtN/AMade of acrylic panels
High voltage DC supplyGlassman High Voltage, Inc.PS/EL30R01.5High voltages, electrocution hazard
Linear (translating) stageServo Systems Co.LPS-12-20-0.2Optional
Programmable motor & power supplyIntelligent Motion Systems, Inc.MDrive23 PlusOptional
24V DC motor & power supplyMcMaster-Carr6331K32Optional
Aluminum collector drumCustom-builtOptional
Syringe pumpFisher Scientific78-0100I
Inverted optical microscopeOlympusIX70
Scanning electron microscopeCarl ZeissSupra V55
Conductive copper tape3M16072
Aluminum SEM stubsElectron Microscopy Sciences75200
Contact angle goniometerKrussDSA100
Propylene glycolSigma-AldrichW294004Toxic.
Ethylene glycolSigma-Aldrich324558Toxic.
IoxaglateGuerbet
Fetal bovine serumAmerican Type Culture Collection30-2020
Micro-computed tomography instrumentScanco
Image analysis software (Analyze)Mayo Clinic
Tensile testerInstron5848
MicrometerMultitoyo293-340
CalipersFisher Scientific14-648-17

Riferimenti

  1. Li, X. M., Reinhoudt, D., Crego-Calama, M. What do we need for a superhydrophobic surface? A review on the recent progress in the preparation of superhydrophobic surfaces. Chem. Soc. Rev. 36, 1350-1368 (2007).
  2. Crick, C. R., Parkin, I. P. Preparation and characterisation of super-hydrophobic surfaces. Chem. - Eur. J. 16, 3568-3588 (2010).
  3. Genzer, J., Efimenko, K. Recent developments in superhydrophobic surfaces and their relevance to marine fouling: a review. Biofouling. 22, 339-360 (2006).
  4. Marmur, A. Super-hydrophobicity fundamentals: implications to biofouling prevention. Biofouling. 22, 107-115 (2006).
  5. Sas, I., Gorga, R. E., Joines, J. A., Thoney, K. A. Literature review on superhydrophobic self-cleaning surfaces produced by electrospinning. J. Polym. Sci., Part B: Polym. Phys. 50, 824-845 (2012).
  6. Zhang, X., Shi, F., Niu, J., Jiang, Y., Wang, Z. Superhydrophobic surfaces: from structural control to functional application. J. Mat. Chem. 18, 621-633 (2008).
  7. Xue, C. -. H., Li, Y. -. R., Zhang, P., Ma, J. -. Z., Jia, S. -. T. Washable and wear-resistant superhydrophobic surfaces with self-cleaning property by chemical etching of fibers and hydrophobization. ACS Appl. Mater. Interfaces. 6, 10153-10161 (2014).
  8. Ou, J., Perot, B., Rothstein, J. P. Laminar drag reduction in microchannels using ultrahydrophobic surfaces. Phys. Fluids. 16, 4635-4643 (2004).
  9. Ko, T. -. J., et al. Adhesion behavior of mouse liver cancer cells on nanostructured superhydrophobic and superhydrophilic surfaces. Soft Matter. , (2013).
  10. Lourenco, B. N., et al. Wettability influences cell behavior on superhydrophobic surfaces with different topographies. Biointerphases. 7, (2012).
  11. Srinivasan, S., et al. Drag reduction for viscous laminar flow on spray-coated non-wetting surfaces. Soft Matter. 9, 5691-5702 (2013).
  12. Yohe, S. T., Colson, Y. L., Grinstaff, M. W. Superhydrophobic materials for tunable drug release: using displacement of air to control delivery rates. J. Am. Chem. Soc. 134, 2016-2019 (2012).
  13. Yohe, S. T., Herrera, V. L. M., Colson, Y. L., Grinstaff, M. W. 3D superhydrophobic electrospun meshes as reinforcement materials for sustained local drug delivery against colorectal cancer cells. J. Control. Release. 162, 92-101 (2012).
  14. Yohe, S. T., Kopechek, J. A., Porter, T. M., Colson, Y. L., Grinstaff, M. W. Triggered drug release from superhydrophobic meshes using high-intensity focused ultrasound. Adv. Healthcare Mater. 2, 1204-1208 (2013).
  15. Manna, U., Kratochvil, M. J., Lynn, D. M. Superhydrophobic polymer multilayers that promote the extended, long-term release of embedded water-soluble agents. Adv. Mater. 25, 6405-6409 (2013).
  16. Ju, G., Cheng, M., Shi, F. A pH-responsive smart surface for the continuous separation of oil/water/oil ternary mixtures. NPG Asia Mater. 6, e111 (2014).
  17. Lim, H. S., Han, J. T., Kwak, D., Jin, M., Cho, K. Photoreversibly switchable superhydrophobic surface with erasable and rewritable pattern. J. Am. Chem. Soc. 128, 14458-14459 (2006).
  18. Macias-Montero, M., Borras, A., Alvarez, R., Gonzalez-Elipe, A. R. Following the wetting of one-dimensional photoactive surfaces. Langmuir. 28, 15047-15055 (2012).
  19. Sun, T., et al. Reversible switching between superhydrophilicity and superhydrophobicity. Angew. Chem. Int. Ed. 43, 357-360 (2004).
  20. Verplanck, N., Coffinier, Y., Thomy, V., Boukherroub, R. Wettability switching techniques on superhydrophobic surfaces. Nanoscale Res. Lett. 2, 577-596 (2007).
  21. Deng, D., et al. Hydrophobic meshes for oil spill recovery devices. ACS Appl. Mater. Interfaces. 5, 774-781 (2013).
  22. Ebrahimi, A., et al. Nanotextured superhydrophobic electrodes enable detection of attomolar-scale DNA concentration within a droplet by non-faradaic impedance spectroscopy. Lab Chip. 13, 4248-4256 (2013).
  23. Guix, M., et al. Superhydrophobic alkanethiol-coated microsubmarines for effective removal of oil. ACS Nano. 6, 4445-4451 (2012).
  24. Korhonen, J. T., Kettunen, M., Ras, R. H. A., Ikkala, O. Hydrophobic nanocellulose aerogels as floating, sustainable, reusable, and recyclable oil absorbents. ACS Appl. Mater. Interfaces. 3, 1813-1816 (2011).
  25. Wu, Y., Hang, T., Komadina, J., Ling, H., Li, M. High-adhesive superhydrophobic 3D nanostructured silver films applied as sensitive, long-lived, reproducible and recyclable SERS substrates. Nanoscale. 6, 9720-9726 (2014).
  26. Norton, F. J. Waterproofing treatment of materials. US Patent. , (1945).
  27. Kaplan, J. A., et al. Imparting superhydrophobicity to biodegradable poly(lactide-co-glycolide) electrospun meshes. Biomacromolecules. 15, 2548-2554 (2014).
  28. Ray, W. C., Grinstaff, M. W. Polycarbonate and poly(carbonate−ester)s synthesized from biocompatible building blocks of glycerol and lactic acid. Macromolecules. 36, 3557-3562 (2003).
  29. Wolinsky, J. B., Ray, W. C., Colson, Y. L., Grinstaff, M. W. Poly(carbonate ester)s based on units of 6-hydroxyhexanoic acid and glycerol. Macromolecules. 40, 7065-7068 (2007).
  30. Wolinsky, J. B., Yohe, S. T., Colson, Y. L., Grinstaff, M. W. Functionalized hydrophobic poly(glycerol-co-ε-caprolactone) depots for controlled drug release. Biomacromolecules. 13, (2012).
  31. Yohe, S. T., Freedman, J. D., Falde, E. J., Colson, Y. L., Grinstaff, M. W. A mechanistic study of wetting superhydrophobic porous 3D meshes. Adv. Funct. Mater. 23, 3628-3637 (2013).
  32. Yohe, S. T., Grinstaff, M. W. A facile approach to robust superhydrophobic 3D coatings via connective-particle formation using the electrospraying process. Chem. Commun. 49, 804-806 (2013).
  33. Tian, H. Y., Tang, Z. H., Zhuang, X. L., Chen, X. S., Jing, X. B. Biodegradable synthetic polymers: Preparation, functionalization and biomedical application. Prog. Polym. Sci. 37, 237-280 (2012).
  34. Emil, S. E., Albert, P. R. Surgical sutures. US Patent. , (1967).
  35. Greenberg, J. A., Clark, R. M. Advances in suture material for obstetric and gynecologic surgery. Rev. Obstet. Gynecol. 2, 146-158 (2009).
  36. Weldon, C. B., et al. Electrospun drug-eluting sutures for local anesthesia. J. Control. Release. 161, 903-909 (2012).
  37. Wright, J., Hoffman, A., Wright, J. C., Burgess, D. J. Chapter 2. Long Acting Injections and Implants. Advances in Delivery Science and Technology. , 11-24 (2012).
  38. Wischke, C., Schwendeman, S. P. Principles of encapsulating hydrophobic drugs in PLA/PLGA microparticles. Int. J. Pharm. 364, 298-327 (2008).
  39. Xie, J. W., Tan, R. S., Wang, C. H. Biodegradable microparticles and fiber fabrics for sustained delivery of cisplatin to treat C6 glioma in vitro. J. Biomed. Mater. Res., Part A. 85A, 897-908 (2008).
  40. Danhier, F., et al. PLGA-based nanoparticles: An overview of biomedical applications. J. Control. Release. 161, 505-522 (2012).
  41. Korin, N., et al. Shear-activated nanotherapeutics for drug targeting to obstructed blood vessels. Science. 337, 738-742 (2012).
  42. Lee, J. S., et al. Evaluation of in vitro and in vivo antitumor activity of BCNU-Ioaded PLGA wafer against 9L gliosarcoma. Eur. J. Pharm. Biopharm. 59, 169-175 (2005).
  43. Liu, H., Wang, S. D., Qi, N. Controllable structure, properties, and degradation of the electrospun PLGA/PLA-blended nanofibrous scaffolds. J. Appl. Polym. Sci. 125, E468-E476 (2012).
  44. Ong, B. Y. S., et al. Paclitaxel delivery from PLGA foams for controlled release in post-surgical chemotherapy against glioblastoma multiforme. Biomaterials. 30, 3189-3196 (2009).
  45. Paun, I. A., Moldovan, A., Luculescu, C. R., Staicu, A., Dinescu, M. M. A. P. L. E. deposition of PLGA:PEG films for controlled drug delivery: Influence of PEG molecular weight. Appl. Surf. Sci. 258, 9302-9308 (2012).
  46. Reneker, D. H., Yarin, A. L., Zussman, E., Xu, H., Aref, H., Van der Giessen, E. Electrospinning of nanofibers from polymer solutions and melts. Advances in Applied Mechanics. 41, 43-195 (2007).
  47. Leach, M. K., Feng, Z. -. Q., Tuck, S. J., Corey, J. M. Electrospinning fundamentals: optimizing solution and apparatus parameters. J. Vis. Exp. (2494), (2011).
  48. Oh, J. H., Park, K. M., Lee, J. S., Moon, H. T., Park, K. D. Electrospun microfibrous PLGA meshes coated with in situ cross-linkable gelatin hydrogels for tissue regeneration. Curr. Appl. Phys. 12, S144-S149 (2012).
  49. Kim, T. G., Park, T. G. Biomimicking extracellular matrix: cell adhesive RGD peptide modified electrospun poly(D,L-lactic-co-glycolic acid) nanofiber mesh. Tissue Eng. 12, 221-233 (2006).
  50. Stitzel, J., et al. Controlled fabrication of a biological vascular substitute. Biomaterials. 27, 1088-1094 (2006).
  51. Liang, D., et al. In vitro non-viral gene delivery with nanofibrous scaffolds. Nucleic Acids Res. 33, e170 (2005).
  52. You, Y., Min, B. -. M., Lee, S. J., Lee, T. S., Park, W. H. In vitro degradation behavior of electrospun polyglycolide, polylactide, and poly(lactide-co-glycolide). J. Appl. Polym. Sci. 95, 193-200 (2005).
  53. Boland, E. D., Wnek, G. E., Simpson, D. G., Pawlowski, K. J., Bowlin, G. L. Tailoring tissue engineering scaffolds using electrostatic processing techniques: a study of poly(glycolic acid) electrospinning. J. Macromol. Sci., Part A: Pure Appl. Chem. 38, 1231-1243 (2001).
  54. Inoguchi, H., Tanaka, T., Maehara, Y., Matsuda, T. The effect of gradually graded shear stress on the morphological integrity of a huvec-seeded compliant small-diameter vascular graft. Biomaterials. 28, 486-495 (2007).
  55. Xu, C. Y., Inai, R., Kotaki, M., Ramakrishna, S. Aligned biodegradable nanofibrous structure: a potential scaffold for blood vessel engineering. Biomaterials. 25, 877-886 (2004).
  56. Mun, C. H., et al. Three-dimensional electrospun poly(lactide-co-varepsilon-caprolactone) for small-diameter vascular grafts. Tissue Eng. Part A. 18, 1608-1616 (2012).
  57. Inai, R., Kotaki, M., Ramakrishna, S. Deformation behavior of electrospun poly(L-lactide-co-ε-caprolactone) nonwoven membranes under uniaxial tensile loading. J. Polym. Sci., Part B: Polym. Phys. 43, 3205-3212 (2005).
  58. Cao, H., McHugh, K., Chew, S. Y., Anderson, J. M. The topographical effect of electrospun nanofibrous scaffolds on the in vivo and in vitro foreign body reaction. J. Biomed.Mater.Res.,PartA.. 93A, 1151-1159 (2010).
  59. Pham, Q. P., Sharma, U., Mikos, A. G. Electrospun poly(epsilon-caprolactone) microfiber and multilayer nanofiber/microfiber scaffolds: characterization of scaffolds and measurement of cellular infiltration. Biomacromolecules. 7, 2796-2805 (2006).
  60. Jiang, H., Zhao, P., Zhu, K. Fabrication and characterization of zein-based nanofibrous scaffolds by an electrospinning method. Macromol. Biosci. 7, 517-525 (2007).
  61. Zhang, Y. Z., Venugopal, J., Huang, Z. M., Lim, C. T., Ramakrishna, S. Characterization of the surface biocompatibility of the electrospun PCL-collagen nanofibers using fibroblasts. Biomacromolecules. 6, 2583-2589 (2005).
  62. Jiang, H., Hu, Y., Zhao, P., Li, Y., Zhu, K. Modulation of protein release from biodegradable core-shell structured fibers prepared by coaxial electrospinning. J. Biomed. Mater. Res., Part B: Appl. Biomat. 79, 50-57 (2006).
  63. Jiang, H., et al. A facile technique to prepare biodegradable coaxial electrospun nanofibers for controlled release of bioactive agents. J. Control. Release. 108, 237-243 (2005).
  64. Zhang, Y. Z., et al. Coaxial electrospinning of (fluorescein isothiocyanate-conjugated bovine serum albumin)-encapsulated poly(epsilon-caprolactone) nanofibers for sustained release. Biomacromolecules. 7, 1049-1057 (2006).
  65. Schnell, E., et al. Guidance of glial cell migration and axonal growth on electrospun nanofibers of poly-epsilon-caprolactone and a collagen/poly-epsilon-caprolactone blend. Biomaterials. 28, 3012-3025 (2007).
  66. Ma, Z., He, W., Yong, T., Ramakrishna, S. Grafting of gelatin on electrospun poly(caprolactone) nanofibers to improve endothelial cell spreading and proliferation and to control cell Orientation. Tissue Eng. 11, 1149-1158 (2005).
  67. Peesan, M., Rujiravanit, R., Supaphol, P. Electrospinning of hexanoyl chitosan/polylactide blends. J. Biomater. Sci., Polym. Ed. 17, 547-565 (2006).
  68. Jia, Y. -. T., et al. Fabrication and characterization of poly (vinyl alcohol)/chitosan blend nanofibers produced by electrospinning method. Carbohydr. Polym. 67, 403-409 (2007).
  69. Kenawy, E. -. R., Abdel-Hay, F. I., El-Newehy, M. H., Wnek, G. E. Controlled release of ketoprofen from electrospun poly(vinyl alcohol) nanofibers. Mater. Sci. Eng., A. 459, 390-396 (2007).
  70. Zhang, C., Yuan, X., Wu, L., Han, Y., Sheng, J. Study on morphology of electrospun poly(vinyl alcohol) mats. Eur. Polym. J. 41, 423-432 (2005).
  71. Hong, K. H. Preparation and properties of electrospun poly(vinyl alcohol)/silver fiber web as wound dressings. Polym. Eng. Sci. 47, 43-49 (2007).
  72. Bhattarai, S. R., et al. Novel biodegradable electrospun membrane: scaffold for tissue engineering. Biomaterials. 25, 2595-2602 (2004).
  73. Grafahrend, D., et al. Biofunctionalized poly(ethylene glycol)-block-poly(ε-caprolactone) nanofibers for tissue engineering. J. Mater. Sci.: Mater. Med. 19, 1479-1484 (2008).
  74. Riboldi, S. A., Sampaolesi, M., Neuenschwander, P., Cossu, G., Mantero, S. Electrospun degradable polyesterurethane membranes: potential scaffolds for skeletal muscle tissue engineering. Biomaterials. 26, 4606-4615 (2005).
  75. Gugerell, A., et al. Electrospun poly(ester-urethane)- and poly(ester-urethane-urea) fleeces as promising tissue engineering scaffolds for adipose-derived stem cells. PLoS ONE. 9, e90676 (2014).
  76. Nair, P. A., Ramesh, P. Electrospun biodegradable calcium containing poly(ester-urethane)urea: synthesis, fabrication, in vitro degradation, and biocompatibility evaluation. J. Biomed. Mater. Res., Part A. 101, 1876-1887 (2013).
  77. Caracciolo, P., Thomas, V., Vohra, Y., Buffa, F., Abraham, G. Electrospinning of novel biodegradable poly(ester urethane)s and poly(ester urethane urea)s for soft tissue-engineering applications. J. Mater. Sci.: Mater. Med. 20, 2129-2137 (2009).
  78. Hong, Y., et al. A small diameter, fibrous vascular conduit generated from a poly(ester urethane)urea and phospholipid polymer blend. Biomaterials. 30, 2457-2467 (2009).
  79. Pego, A. P., et al. Preparation of degradable porous structures based on 1,3-trimethylene carbonate and D,L-lactide (co)polymers for heart tissue engineering. Tissue Eng. 9, 981-994 (2003).
  80. Niu, H., Wang, H., Zhou, H., Lin, T. Ultrafine PDMS fibers: preparation from in situ curing-electrospinning and mechanical characterization. RSC Adv. 4, 11782-11787 (2014).
  81. Kim, Y. B., Cho, D., Park, W. H. Electrospinning of poly(dimethyl siloxane) by sol–gel method. J. Appl. Polym. Sci. 114, 3870-3874 (2009).
  82. Kenawy, E. -. R., et al. Release of tetracycline hydrochloride from electrospun poly(ethylene-co-vinylacetate), poly(lactic acid), and a blend. J. Control. Release. 81, 57-64 (2002).
  83. Uykun, N., et al. Electrospun antibacterial nanofibrous polyvinylpyrrolidone/cetyltrimethylammonium bromide membranes for biomedical applications. J. Bioact. Compat. Polym. 29, 382-397 (2014).
  84. Panthi, G., et al. Preparation and characterization of nylon-6/gelatin composite nanofibers via electrospinning for biomedical applications. Fibers Polym. 14, 718-723 (2013).
  85. Pant, H. R., et al. Chitin butyrate coated electrospun nylon-6 fibers for biomedical applications. Appl. Surf. Sci., Part B. 285, 538-544 (2013).
  86. Pant, H. R., Kim, C. S. Electrospun gelatin/nylon-6 composite nanofibers for biomedical applications. Polym. Int. 62, 1008-1013 (2013).
  87. Correia, D. M., et al. Influence of electrospinning parameters on poly(hydroxybutyrate) electrospun membranes fiber size and distribution. Polym. Eng. Sci. 54, 1608-1617 (2014).
  88. Tong, H. -. W., Wang, M. Electrospinning of poly(hydroxybutyrate-co-hydroxyvalerate) fibrous tissue engineering scaffolds in two different electric fields. Polym. Eng. Sci. 51, 1325-1338 (2011).
  89. Carampin, P., et al. Electrospun polyphosphazene nanofibers for in vitro rat endothelial cells proliferation. J. Biomed. Mater. Res., Part A. 80, 661-668 (2007).
  90. Lin, Y. -. J., et al. Effect of solvent on surface wettability of electrospun polyphosphazene nanofibers. J. Appl. Polym. Sci. 115, 3393-3400 (2010).
  91. Zhang, J., et al. Engineering of vascular grafts with genetically modified bone marrow mesenchymal stem cells on poly (propylene carbonate) graft. Artif. Organs. 30, 898-905 (2006).
  92. Nagiah, N., Sivagnanam, U. T., Mohan, R., Srinivasan, N. T., Sehgal, P. K. Development and characterization of electropsun poly(propylene carbonate) ultrathin fibers as tissue engineering scaffolds. Adv. Eng. Mater. 14, B138-B148 (2012).
  93. Welle, A., et al. Electrospun aliphatic polycarbonates as tailored tissue scaffold materials. Biomaterials. 28, 2211-2219 (2007).
  94. Khanam, N., Mikoryak, C., Draper, R. K., Balkus, K. J. Electrospun linear polyethyleneimine scaffolds for cell growth. Acta Biomater. 3, 1050-1059 (2007).
  95. Xu, X., Zhang, J. -. F., Fan, Y. Fabrication of cross-linked polyethyleneimine microfibers by reactive electrospinning with in situ photo-cross-linking by UV radiation. Biomacromolecules. 11, 2283-2289 (2010).
  96. Wang, S., et al. Fabrication and morphology control of electrospun poly(Γ-glutamic acid) nanofibers for biomedical applications. Colloids Surf. B. 89, 254-264 (2012).
  97. Sakai, S., Yamada, Y., Yamaguchi, T., Kawakami, K. Prospective use of electrospun ultra-fine silicate fibers for bone tissue engineering. Biotechnol. J. 1, 958-962 (2006).
  98. Yamaguchi, T., Sakai, S., Kawakami, K. Application of silicate electrospun nanofibers for cell culture. J. Sol-Gel Sci. Technol. 48, 350-355 (2008).
  99. Vazquez, G., Alvarez, E., Navaza, J. M. Surface-tension of alcohol plus water from 20-degrees C to 50-degrees. C. J. Chem. Eng. Data. 40, 611-614 (1995).
  100. Hoke, B. C., Patton, E. F. Surface tensions of propylene glycol water. J. Chem. Eng. Data. 37, 331-333 (1992).
  101. Azizian, S., Hemmati, M. Surface tension of binary mixtures of ethanol + ethylene glycol from 20 to 50. C. J. Chem. Eng. Data. 48, 662-663 (2003).
  102. Nayak, B. K., Caffrey, P. O., Speck, C. R., Gupta, M. C. Superhydrophobic surfaces by replication of micro/nano-structures fabricated by ultrafast-laser-microtexturing. Appl. Surf. Sci. 266, 27-32 (2013).

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