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Method Article
L'obiettivo di questo documento e video didattico è quello di descrivere come esporre e rimuovere il post-mortem del cervello di maiale e ghiandola pituitaria in uno stato integro, adatto per la successiva analisi macroscopica e istologica.
Suini sono diventate sempre più popolari in larga animale ricerca traslazionale neuroscienze come sostituto economicamente ed eticamente fattibile primati non umani. La dimensione del cervello di grandi dimensioni del maiale permette l'utilizzo di convenzionali imager cervello clinica e l'uso diretto e la sperimentazione di procedure e attrezzature neurochirurgiche dalla clinica umana. Ulteriori analisi macroscopica e istologica, tuttavia, richiede l'esposizione post mortem del maiale sistema nervoso centrale (SNC) e successiva rimozione del cervello. Questo non è un compito facile, come il maiale CNS è incapsulato da una fitta, il cranio ossuto e della colonna vertebrale. L'obiettivo di questo documento e video didattico è quello di descrivere come esporre e rimuovere il cervello post-mortem di suini e la ghiandola pituitaria in uno stato integro, adatto per la successiva analisi macroscopica e istologica.
studi neuroscienze traslazionale nei suini sono diventati sempre più popolari nel corso degli ultimi due decenni. Le grandi dimensioni del cervello di maiale consente l'utilizzo di convenzionali imager cerebrali clinica e l'uso diretto e sperimentazione di procedure neurochirurgiche ed attrezzature dalla clinica umana 1, 2, 3, 4, 5, 6, 7, 8. Negli ultimi 20 anni, maiali, specialmente maialino (ad esempio, Göttingen cavia), sono stati utilizzati per esaminare modalità di trattamento neuromodulatori, come il trapianto di cellule staminali; Vettore virale trasfezione; e la stimolazione cerebrale profonda diretta verso il morbo di Parkinson, l'obesità, la depressione, e la malattia di Alzheimer 2, 6,= "xref"> 9, 10, 11, 12, 13, 14, 15, 16, 17. Questo è stato seguito dallo sviluppo di approcci stereotassica e chirurgici per manipolare cavia CNS 3, 18, 19, 20, 21. I cambiamenti del SNC istituiti sono state valutate in animali vivi mediante imaging cerebrale (PET 10, 13, 22, 24 e MR 23), cistometria 11, 12, 25, analisi del passo17, la valutazione neurologica 9, 17, e l'esame autoptico basato su istologia e analisi stereologica 14, 15, 17, 26, 27, 31. Tuttavia, l'analisi post-mortem richiede l'esposizione e la rimozione del cervello di maiale, che non è un compito facile, come una spessa cranio osseo e durale fibroso che copre circondano il cervello di maiale.
L'obiettivo di questo documento e video didattico è quello di descrivere come il cervello post-mortem di suini e dell'ipofisi possono essere esposti e rimossi in uno stato integro in 15-20 minuti utilizzando strumenti chirurgici non motorizzati. Il video didattico e illustrazioni fotografiche mostrano cavie di sesso maschile (età: 6 mesi, a corpo libero: 20-25 kg) utilizzato per uno studio anatomico sulla ghiandola pituitaria cavia.
anestesia degli animali e euthanesia è stata eseguita in conformità con i "Principi di laboratorio cura degli animali" (NIH pubblicazione n ° 86-23, rivisto 1985) e approvato dal Consiglio danese per la ricerca etica animale.
1. Strumenti
2. Decapitazione
NOTA: L'anestesia è stata indotta mediante iniezione intramuscolare di 5 mL di midazolam (5 mg / ml) e 5 ml di ketamina (25 mg / mL). 5-10 minuti più tardi, quando l'animale era profondamente sedato, una vena dell'orecchio è stata incannulata e overdose letale (100 mg / kg di peso corporeo) di pentobarbital sodio (200 mg / ml) è stato somministrato per via endovenosa. Per garantire che l'animale è stato completamente eutanasia, il dolore riflesso interdigitale è stato testato come mostrato da Ettrup et al. (2011) 20. euthanization completo è stato assicurato come descritto inl'istruzione etica sopra e seguita da una perfusione transcardial con 5 L di soluzione salina isotonica, come dimostrato da Ettrup et al. (2011) 20. Tutte le procedure vengono eseguite dimostrate postmortem, precludendo la necessità per le precauzioni necessarie per l'anestesia benessere a lungo termine e la sopravvivenza postprocedurale.
Figura 1: minipig decapitazione. (A) del collo incisione (freccia, angolo mandibolare). (B) incisione attraverso i legamenti atlanto e il midollo spinale dura circondato (SC) alla giunzione craniocervicale (C1, arco anteriore dell'atlante, OC, condilo occipitale). (C) La parte posteriore dell'articolazione atlanto viene rilasciato da un'estensione forte (frecce) a livello di sezione. Si prega di cliccare qui per vedere una versione più grande di questa figura.
3. Teschio di apertura
Figura 2: apertura cranio cavia. (A) esposizione della dorsoposteriosuperficie del cranio R, tra cui la rimozione del occipitale e muscoli temporali. (B) La rimozione dell'osso occipitale (CB, dura coperta di cervelletto, OB, osso occipitale, OC, condilo occipitale, e SC, midollo spinale). (C) un martello e uno scalpello osso sono usati per penetrare il cranio anteriormente e per entrare nel seno frontale a livello degli occhi. (D) La portata del seno frontale (FS) viene utilizzato per rimuovere il cranio esterna dell'osso spessore (1), esponendo una sottile lamina ossea interna (2) che copre il cervello. (E) La rimozione del sottile lamina ossea, esponendo il cervello dura coperto (freccia). (F) Infine, un martello e uno scalpello osso vengono utilizzati per il collegamento laterale anteriore e le aperture posteriori cranio. Si prega di cliccare qui per vedere una versione più grande di questa figura.
4. Cervello Removal
Figura 3: rimozione cervello cavia. Apertura (A) durale con pinze chirurgiche e un coltello dura. (B) Bisogna fare attenzione a incidere completamente la foglia durale (freccia), che si trova tra il cervello e il cervelletto. (C) La testa di maiale è in posizione verticale per una migliore visualizzazione delle strutture di base del cranio e al fine di gravità per aiutare lo spostamento previsto del cervello. (D) Un dissettore o uno scalpello osso viene usato per alleviare il bulbo olfattivo dalla sezione smussata dalla dura madre-coverebase del cranio d. (E) La dissezione viene continuata in direzione posteriore lungo la base del cranio per l'esposizione e sezionamento del chiasma ottico (freccia), gambo infundibolare e nervi oculomotori. (F) Il rilascio cervello è completato con la sezione dei nervi cranici inferiori come si allontanano dalla superficie ventrale del tronco cerebrale (III, oculomotore, IV, nervo trocleare, V, nervo trigemino e VI, abducente nervi). Si prega di cliccare qui per vedere una versione più grande di questa figura.
5. Rimozione pituitaria
Figura 4: rimozione pituitaria cavia. (A) La fossa pituitaria (*) è identificato nel piano cranio (1, bulbo olfattivo, 2, chiasma ottico e PF, fossa cranica posteriore). (B) La copertura durale (diagphragm Sellar, (freccia)) viene incisa lateralmente. (C) L'ipofisi (freccia) viene rilasciato con un dissettore e tirato fuori dalla fossa pituitaria. barra di scala (AC) = 10 mm. Si prega di cliccare qui per vedere una versione più grande di questa figura.
Per evitare che il materiale del tessuto si secchi, si consiglia di conservare il cervello rimosso e pituitaria in un vaso riempito di fissativo o soluzione salina isotonica immediatamente dopo l'analisi macroscopica è stata eseguita. Il materiale tessuto può essere immagazzinato nel fissativo per anni, mentre stoccaggio in soluzione salina isotonica, anche in frigorifero, porterà a decadimento dei tessuti con il tempo.
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La maggior parte degli studi di neuroscienze sperimentali vengono eseguiti in piccole specie animali, come topi e ratti, in cui l'accesso al sistema nervoso centrale è facilitato da un sottile skull- e durale spessore. Tuttavia, in animali da esperimento più grandi come maiali 1, 4, 8, pecore 32, e primati non umani, l'elevato spessore di queste strutture richiede l'uso di strumenti robusti...
Gli autori non hanno nulla da rivelare.
Gli autori riconoscono con gratitudine l'aiuto sapiente della signora Trine W. Mikkelsen, la signora M. Lise montaggio, e il personale a Påskehøjgaard. The Danish Medical Research Council, la Fondazione Lundbeck, e la Novo Nordisk Foundation sostenuti finanziariamente lo studio.
Name | Company | Catalog Number | Comments |
Heavy Scalpel Handle #4 | FST (Fine Science Tools) | 10008-13 | Good for skin incision and soft tissue removal |
Non-Sterile Scalpel Blades #23 | FST | 10023-00 | |
Scalpel Handle #7 | FST | 10007-12 | Optimal for dural incision and precision work |
Non-Sterile Scalpel Blades #11 | FST | 10011-00 | |
Surgical Forceps | FST | 11024-18 | The tip of the surgical forceps ensure a firm grip |
Kerrison Bone Punch | Aesculap Neurosurgery | FF713R | Must be robust, bite size 3-5 mm |
Bone Rongeur | Aesculap Neurosurgery | MD615 | Must be robust, bite size 15 x 5 mm |
Bone Rongeur | Aesculap Neurosurgery | FO551R | Must be robust, bite size 25 x 15 mm |
Bone Chisel | Lawton | 67-0335 | The size of the chisel head should not exceed 20 mm |
Mallet (Hammer) | Millarco | 5624108 | Weigth 300 g, length 30 cm, head hit area size 2 x 2 cm |
Micro-Scissor | FST | 14002-14 | |
Dissector | Aesculap Neurosurgery | OL165R | |
Göttingen minipigs | Ellegaard Göttingen Minipigs A/S, Denmark | ||
Euthanimal | pentobarbital | ||
Ketamine | Pfizer | ||
Midazolam | Hameln Pharmaceuticals |
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