1. Somministrazione intradermica
- La maggior parte delle iniezioni intradermiche sono composti a base acquosa. Le soluzioni devono essere tamponate fisiologicamente per avere un pH neutro, al fine di evitare necrosi tissutale nel sito di iniezione.
- La gamma di dimensioni dell'ago è di 25-30 gauge, la più piccola possibile.
- L'intervallo di dosaggio per sito di iniezione è di 50-100 μL. L'iniezione di volumi eccessivi può provocare necrosi nel sito di iniezione o perdite del composto fuori dal sito a causa della pressione.
- Per un posizionamento accurato dell'ago nello spazio intradermico, è necessario anestetizzare sia topi che ratti. L'anestesia per inalazione consente una rapida induzione e recupero; tuttavia, l'anestesia iniettabile ha il vantaggio di fornire ampio tempo per la preparazione dell'area e l'esecuzione dell'iniezione. 1
- Rimuovere i capelli nel sito di iniezione attraverso l'uso di una crema depilatoria o radendo l'area.
- Rimuovere accuratamente eventuali residui di crema depilatoria o detriti di capelli.
- Applicare un antisettico topico, come una soluzione di iodio, una soluzione di clorexidina o alcol.
- Procedure amministrative
- Allunga la pelle tesa tra il pollice e l'indice. Ciò fornisce stabilità alla pelle durante il posizionamento dell'ago.
- Posizionare la smussatura dell'ago sulla pelle.
- Inserire delicatamente l'ago nella pelle tra l'epidermide e il derma. Avanzare l'ago appena oltre la smussatura.
- Iniettare la sostanza lentamente. L'iniezione del composto creerà un bleb, o una piccola vescica, nella pelle.
- Pausa dopo l'iniezione per consentire alla pelle di allungarsi e regolarsi prima di ritirare l'ago.
- Precauzioni
- Non è necessario tirare indietro lo stantuffo.
- Se l'ago viene inserito nello spazio sottocutaneo, non si forma alcuna bleb. L'iniezione troppo profonda provoca un'iniezione sottocutanea.
- Evitare di pulire o pulire l'area, in quanto ciò può causare la fuoriuscita del composto dal sito di iniezione.
- Quando si eseguono iniezioni multiple, distanziarle in modo che le macchie non si sovrappongano.

Figura 1. Iniezione intradermica nei topi.
2. Somministrazione intranasale
- Attrezzatura
- Utilizzare una pipetta per unità di micropipettaggio che può essere calibrata per fornire un volume accurato.
- Le punte delle pipette monouso devono essere utilizzate per evitare la contaminazione incrociata. Siringhe TB, aghi smussati e tubi flessibili possono anche essere utilizzati per il dosaggio.
- I volumi totali di iniezione per i ratti non devono superare i 40-100 μL e devono essere somministrati in gocce da 6-10 μL. Per i topi, il volume totale massimo è di 24 μL, dato in gocce di 3-4 μL.
- Somministrazione in animali coscienti
- La contenzione manuale negli animali coscienti richiede che la testa sia relativamente immobile in modo che la punta della pipetta o l'ago smussato possano essere posizionati abbastanza vicino alle narici per fornire il composto, ma non così vicino da colpire o lacerare il tessuto nasale.
- Trattenere l'animale e tenerlo in posizione verticale.
- Posizionare una piccola goccia di un composto liquido all'apertura nasale. L'animale dovrebbe inalare la goccia.
- Somministrare un volume aggiuntivo, alternando le narici fino a quando l'intero volume è stato dato.
- Quando si somministrano volumi maggiori, è importante non restringere il torace durante la contenzione. La compressione toracica impedisce alla capacità dell'animale di fare respiri sufficientemente profondi per attirare il liquido nei bronchi e nei polmoni.

Figura 2. Somministrazione intranasale in topi coscienti.
- Somministrazione in animali incoscienti
- L'uso di anestetici per inalazione consente un animale immobilizzato durante l'avvicinamento e la consegna del composto. Ciò elimina la possibilità che l'animale morda l'attrezzatura di dosaggio, la perdita del composto a causa di scatti della testa e lesioni al tessuto nasale, agli occhi o alla pelle del viso dell'animale. L'animale ha anche meno probabilità di sbuffare e spruzzare il composto dalle narici al momento della somministrazione.
- Metti l'animale in posizione supina. La posizione della testa influenza il posizionamento della soluzione nelle narici. È stato dimostrato che la posizione ideale per la consegna del SNC è con l'animale supino; questo permette un migliore assorbimento. 2
- Somministrare metà del composto direttamente in un lato dell'apertura nasale, cronometrandolo con l'inalazione. Quindi, gira l'animale.
- Come sopra, somministrare l'altra metà del volume nell'altra apertura nasale.

Figura 3. Somministrazione intranasale in topi incoscienti.
3. Somministrazione intracranica in topi e ratti neonatali
- Topi o ratti devono essere anestetizzati per iniezioni intracranico.
Topo |
Ratto |
Età (giorni) |
Calibro dell'ago (g) |
Età (giorni) |
Calibro dell'ago (g) |
0-7 |
29-30 |
0-5 |
27-29 |
7-14 |
27 |
5-10 |
25-27 |
14-28 |
25 |
10-14 |
25 |
Età (giorni) |
Lunghezza ago (mm) |
Età (giorni) |
Lunghezza ago (mm) |
0-7 |
2 |
0-4 |
2-3 |
7-14 |
3 |
4-7 |
3 |
14-21 |
4 |
7-10 |
4 |
21-28 |
5 |
10-14 |
5 |
Età (giorni) |
Volume (μL) |
Età (giorni) |
Volume (μL) |
0-5 |
< 20 |
1-3 |
< 20 |
6-20 |
< 60 |
4-10 |
< 60 |
20-28 |
< 100 |
11-14 |
< 100 |
Tabella 1. Calibro dell'ago, lunghezza dell'ago e volume massimo di somministrazione intracranica secondo l'età di topi e ratti. 4
- Attrezzatura
- Determinare il misuratore dell'ago corretto e il volume massimo di somministrazione come da Tabella 1.
- Preparare una protezione dell'ago prima di anestetizzare l'animale.
NOTA: La profondità di iniezione dell'ago è controllata attraverso l'uso di una protezione creata con il cappuccio dell'ago.
- Per creare la protezione, un ago viene misurato rispetto al cappuccio dell'ago e un segno viene posto sul cappuccio per indicare dove tagliare. Il taglio deve essere effettuato in modo che da 2 a 5 mm dell'ago siano esposti quando il cappuccio viene sostituito sull'ago.
- La lunghezza dell'ago esposto deve essere abbastanza lunga da penetrare nella pelle e nel cranio e raggiungere la profondità desiderata nel cervello.
- Le lunghezze degli aghi necessarie per topi e ratti sono elencate nella Tabella 1.
- È necessaria una fonte di riscaldamento per prevenire l'ipotermia nei cuccioli. Esistono diversi tipi: una piastra riscaldante elettrica impostata sul basso, una coperta d'acqua circolante o una sacca di calore a reazione chimica riutilizzabile.
- Limitazione
- I cuccioli di topo e ratto di 10 giorni o più giovani non richiedono anestesia per questa procedura. Tratteneteli manualmente tenendoli appena dietro la testa e tirando caudale la pelle per mettere una leggera pressione sulle spalle.
- Anestetizzare i cuccioli di età superiore ai 10 giorni con inalazione di isoflurano. Collegare una camera di induzione a un vaporizzatore di precisione o un barattolo a campana con un batuffolo di cotone imbevuto di isoflurano. Una volta che il cucciolo è immobilizzato, l'anestesia è efficace per circa 40 secondi, il che fornisce ampio tempo per l'iniezione.
- Tecnica di iniezione
- Aspirare la sostanza nella siringa e posizionare la guida del cappuccio/ago sull'ago.
- Il volume di iniezione raccomandato come volume massimo per topo o ratto neonatale è di 100 μL e quello per topi svezzati o anziani è fino a 300 μL.
- Per iniettare nella corteccia cerebrale dei neonati, inserire l'ago 5 mm dietro l'occhio, a circa 3 mm dalla linea mediana del cranio.
- Il sito di iniezione del topo di svezzamento è approssimativamente a metà strada tra l'occhio e l'orecchio e appena fuori dalla linea mediana.

Figura 4. Somministrazione intracranica in un cucciolo di topo.